Desarrollo de productos funcionales promisorios a partir de la guayaba (Psidium guajava L.) para el fortalecimiento de la cadena productiva

Ilustraciones y fotografías

Autores:
Melgarejo, Luz Marina
Romero, Hernán Mauricio
Insuasty, Orlando
Hernández, María Soledad
Fernández-Trujillo, Juan Pablo
Solarte, María Elena
Osorio, Coralia
Morales, Alicia Lucia
Barbosa, Helber
Jiménez, Aleyda
Forero, Diana Paola
Restrepo, Luz Patricia
Parada, Fabián
Camacho, María Isabel
Espinal, Mauricio
García, Johnbryner
Jiménez, Leonardo
Silva, Kelly
Olaya, Julio
Castro, Henry
Tipo de recurso:
Book
Fecha de publicación:
2010
Institución:
Universidad Nacional de Colombia
Repositorio:
Universidad Nacional de Colombia
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.unal.edu.co:unal/11139
Acceso en línea:
https://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/11139
https://repositorio.unal.edu.co/
Palabra clave:
580 - Plantas
Guayabas
Fisiología vegetal
Guayabo
guayaba (Psidium guajava)
Ecofisiología
Fibra dietaria
Siembra
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Cantillo, Johana
Jurado, Rubén Darío
Flórez, Laura Marcela
Koop, Alejandra
Palacio, Magda
Téllez, Bilardo
Kopp, Eugenio
Barbosa, William
Bayona, Antonio
Prada, Luz Esperanza
Sinuco, Diana
González, Ivonne
Castillo, Julián
Tique, Claudia
Siabato, Félix Gabriel
Villate, Patricia
Castaño, María Paola
Schieberle, Peter
Steinhaus, Martín
Heredia, Francisco José
González-Miret, María Lourdes
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Müller M. W. Ecofisiología del cultivo del cacao. Conferencia seminario internacional de agroforestería con énfasis en cacao. Bucaramanga. Colombia. 2003.
Reynolds M. P.; Thretowan R.; Crossa J.; Vargas M; Sayre K. D. Physiological factors associated with genotype by environment interaction in wheat. Field Crops Res. 2002. 75: 139-169.
Martin T.; Hellmann H.; Schmidt R.; Willmitzer L.; Fronmer W. B. Identification of mutants in metabolically regulated gene expression. The Plant Journal. 1997. 11: 53-62.
Damatta F. Drought as a multidimensional stress affecting photosynthesis in tropical the crops. Adv. Plant Physiol.. 2003. 5: 227-265.
Wang C.Y. Physiological and biochemical responses of plants to chilling stress. Hort. Science. 1982. 17: 173-186.
Boyer J. S. Plant productivity and environment. Science. 1982. 218: 443-448
Flexas J. J.; Bota J.; Cifre J. M.; Escalona J.; Galmes J.; Gulias K.; Lefi S. F.; Martinez-Cañelas M.; Moreno M.; Rivas-Carbo D.; Riera B.; Sampol Y.; Medrano H. Understanding downregulation of photosynthesis under stress: future prospects and searching for physiological tools for irrigation management. Ann. Appl. Biol. 2004. 144: 273-283.
Jones H. G.; Archer N. A.; Rotenberg E.; Casa R. Radiation measurement form plant ecophysiology. J. Exp. Bot. 2003. 54: 1-11.
Grossnickle S. C. Ecophysiology of northern spruce species: The performance of planted seedlings. NRC. Research Press (Ed). 2000. 407 p.
Sallunkhe D. K.; Desahi. B. Guava. Chapter 5. Guava. Postharvest Biotechnology of fruits Volume II. CRC Press, Inc. 1984. V II 39-46 p.
Luna De A. La Guayaba en Calvillo Aguascalientes y factores que limitan su producción. En: Padilla J. S.; Reyes L. M.; González E. G.; Perales M. A. Memoria Primer Simposio Internacional de la guayaba guava – goiabeira. Aguascalientes. México. Diciembre 8 al 11 de 2003. pp184 – 197.
Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp. 278.
FAO. ECOGRIP 1. The adaptability level of de FAO crop environmental requeriments database. Versión 1.0. FAO. 1994. Rome Italy.
Mata B. I.; Rodríguez A. Cultivo y producción del guayabo. Editorial Trillas. México. 1990. pp. 160 .
Eamus D. Ecophysiological traits of deciduos and evergreen woody species in the seasonally dry tropics. 1999. Tree. 14(1): 11-16
Peñuelas J.; Filella I.; Lluisià, D.; Siscart Piñol J. Comparative field study of spring and summer leaf gas Exchange and photobiology of the mediterranean trees Quercus ilex and Phillyrea latifolia. J. Exp. Bot.. 1998. 49 (319): 229-238.
Nobel P. S. Physicochemical and environmental plant physiology, Ed Second. Academic Press, New York. 1999. pp 474.
Romero H. M.; Ayala I. M.; Ruiz R. R. Ecofisiología de la palma de aceite. 2007. Palmas. 28: 176-184.
Larcher W. Physiological Plant Ecology. Ecophysiology and stress physiology of functional groups. 4th. Edition. Springer. 2003. pp. 513.
Tezara W.; Marín O.; Martinez D.; Rengifo E.; Herrera A. Photosynthesis and photoinhibition in two xerofitic shrubs during drought. Photosynthetica. 2005. 43: (1) 37-4.
Epron D.; Dreyer E.; Breda N. Photosynthesis of oak trees (Quercus petraea (Matt.) Liebl) during drought under field conditions: diurnal course of net CO2 assimilation and photochemical efficiency of photosystem II. Plant, Cell Environ. 1992. 15: 809-820.
Rathore D. S. Effect of season in the growth and chemical composition of guava (Psidium guajava L.). J. Hort. Sci., 1976. 51: 41-47.
Singh N.; Rajput C. 1978. Effect of leaf age and position and fruiting status on guava leaf mineral composition. J. Hort. Sci. 53: 74-74.
Walker R.; Kriedmann R.; Maggs P. E. Growth leaf physiology and fruit development in salt stressed guavas. Aust. J. Agric. Res. 30 (3) 477-488.
H. Fisiología del Cacao. En memorias primer curso de fisiología de plantas leñosas tropicales. Santander. Colombia. 2003.
Maxwell K.; Johnson G. N. Chlorophyll fluorescence-a practical guide. J. Exp. Bot. 2000. 51(345): 659-668.
Flexas J. J.; Gulias S.; Jonasson H.; Medrano M.; Mus M. Seasonal patterns and control of gas exchange in local populations of the Mediterranean evergreen shrub Pistacia lentiscus L. 2001. Acta Oecology. 22: 33-43.
Fuentes V. R.; Granda M.; Lemes C.; Rodriguez C. Estudios fenológicos en plantas medicinales XII. Rev.Cubana Planta Med. 2001. 3: 87-92.
Salazar D.; Melgarejo P.; Martınez R.; Martínez J.; Hernandez F.; Buerguera M. Phenological stages of the guava tree (Psidium guajava L.). Sci. Hortic.. 2006. 108: 157-161.
Salinero M. C; Vela P.; Sainz M. J. Phenological growth stages of Kiwi fruit (Actinidia deliciosa ‘Hayward’). Sci. Hortic.. 2009. 121: 27-31.
Fournier L. A. Di Stefano J. F. Variaciones climáticas entre 1988 y 2001 y sus posibles efectos sobre la fenología de varias especies leñosas y el manejo de un cafetal con sombra en la ciudad de Colon de Mora. Costa Rica. Agron. Costarric.. 2004. 28 (1): 101- 120.
Lemus-Jimenez L.; Ramirez N. Fenología reproductiva en tres tipos de vegetación de la planicie costera de Paraguaná,Venezuela. Acta Cient. Venezolana. 2002. 53: 266-278.
Garriz, P. I.; Alvarez H. I.; Colavita G. M. Growth pattern of “Abbe Fetel” pear fruits. Acta Hortic. 2005. 674: 321-327.
Aguilar L. A.; Mendoza L. M.; Mena J. Ch. Comportamiento del guayabo en la Región oriente de Michoacan. En. Padilla R. J.; Reyes M. L.; González E. G.; Perales M.A. (Eds). Memoria Primer Simposio Internacional de la Guayaba. Aguascalientes, México. Diciembre del 2003.124-146 p.
Laguado N.; Marin M.; Arenas de Moreno L.; Araujo F.; Castro de Rincón, C.; Rincon A. Crecimiento del fruto de de guayaba (Psidium guajava L) del tipo Criolla Roja. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2002. 19(4): 273 – 283.
Ramírez J.; González E.; Esquivel F.; Mercado E.; Hernandez S.; Mayek N. Caracterización de germoplasma sobresaliente de guayabo de la región Calvillo-Cañones, México. Revista Fitotecnia Mexicana. 2002. 25:393-399.
Mercado-Silva E.; Benito-Bautista P.; García-Velasco M. Fruit development, harvest index and ripening changes of guavas produced in central Mexico. Postharvest Biol. Technol. 1998. 13: 143–150.
Solarte C.; Florez L.; Jurado R.; Rojas A.; Insuasty O.; Melgarejo L.; Romero H M. Fenología reproductiva de cuatro materiales de guayaba (Psidium guajava L.) en tres localidades de la hoya del río Suárez (Santander, Colombia). Presentación Cartel. V Congreso Colombiano de Botánica. San Juan de Pasto Nariño. Septiembre 19 al 24 de 2009.
Insuasty O.; Monroy R.; Díaz A.; Bautista, J. Manejo fitosanitario del cultivo de la guayaba (Psidium guajava L.) en Santander. Boletín técnico.Corpoica-ICA. 2008. 40 p.
Nava A.; González A.; Sanchez. P.; Peña C.; Livera M. M.; Díaz G. Potencial de producción y fisiología del guayabo (Psidium guajava L.) en Iguala Guerrero. En. Padilla J.; Reyes L.; González E.; Perales M. A. (Eds). Memoria Primer Simposio Internacional de la Guayaba. Aguascalientes, México. 2003. 41-49 pp.
Mata B. C.; Rodriguez A.M. Cultivo y producción del guayabo. México. Editorial Trillas. 1990. pp. 160.
Nakasone H.; Paull R. E. Editores. Tropical Fruits. UK. CAB Internacional.1997. pp. 270- 291.
Nitsch P. J.The Physiology of Fruit Growth. Annu. Rev. Plant Physiol. 1953. 4:199-236.
Laguado N.; Rendiles E.; Marín M.; Arenas de Moreno L.; Castro C. Crecimiento de frutos de guayabo (Psidium guajava L.) del tipo criolla roja. Etapa I. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 1999. 16 Supl. 1: 30-35.
Pereira W. E.; DÀraujo F. C.; Lopes D.; Horst C. B.; Cecon P. R.; Santos R. B. Rendimiento e algumas características físico.quimicas dos frutos de seis variedades de goiabeira desenvueltos em condicoes de déficit hídrico. Rev. Ceres. 2000. 272: 349-362
Rathore D. S. Effect of season on the growth and chemical composition of guava (Psidium guajava L.) fruits. J. Hortic. Sci. 1976. 51: 41-47.
Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp.2t6.
Giovannoni J. Molecular Biology of Fruit Maturation and Ripening. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2001. 52: 725-749.
Agronet. Análisis-Estadísticas. www.agronet.gov.co. Acceso abril 17 de 2008.
CRECED Provincia de Vélez. La agroindustria de la guayaba en la provincia de Vélez, Departamento de Santander. Subdirección de sistemas de producción. Programa nacional de maquinaria y postcosecha. Documento técnico. 2000. pp 15.
Azzolini M.; Jacomino A.; Fillete P.; Spoto M. H. Estádios de maturação e qualidade póscolheita de goiabas ‘Pedro Sato’. Rev. Bras. Frutic.. 2004; 26(1): 29-31.
Piza Jr. C.; Kavati R. Acultura da goiava de mesa. Campinas: CATI. 1994. 28 P. 6. Manica I.; Icuma I. M.; Junkeira N. T.; Salvador J. O.; Moreira A.; Malawolta E. Fruticultura Tropical
Goiava. Portoalegre: cinco continentes. 2000. pp 374.
Fernández-Trujillo J. P. Análisis del punto de venta de frutas y hortalizas y propuestas de mejora desde la poscosecha. Horticultura (Reus). 2006. XXIV(3) 192 (Abril): 38-47. http:// www.horticom.com/pd/article.php?sid=63077
Mercado-Silva E.; Bautista P.; Garcia-Velasco M. Fruit development, harvest index and ripening changes of guavas produced in Central Mexico. Postharvest Biol. Technol.. 1998. 13: 143-150.
Biale J. B.; Barcus D. E. Respiratory Patterns in Tropical Fruits of the Amazon basin. Trop. Sci. 1979. 12: 93-104.
Medina J. C.; Castro J. V.; de Martin J. M.; Kaato K.; Maia M. L.; García A. E.; Fernandes R.S. Goiaba: cultura materia-prima, processamento e aspectos económicos. 2nd ed. Campinas, Instituto de Tecnologia de Alimentos, Série Frutas Tropicais 6. Campinas SP. Ital. 1998. pp. 17.
Chitarra M. I.; Chitarra A. B. Póscolheita de frutos e hortalicàs: fisiología e manuseio. ESAL/ FAEPE, Lavras. 1990. pp. 320.
Pal R. K.; Singh S. P. Response of climacteric type guava (Psidium guajava L.) to postharvest treatmen with 1-MCP. Postharvest Biol. Technol. 2008. 47: 307-314.
Azzolini M.; Jacomino P.; Bron U.; Kluje R.; Schiavinato M. Ripening of “Pedro Sato” guava: study on its climateric or non climateric nature. Braz. J. Plant. Physiol. 2005.17 (3): 299-306.
Moreno E.; Obando J.; Dos-Santos N.; Fernández-Trujillo J. P.; Monforte A. J; García-Mas J. Candidate genes and QTLs for fruit ripening and softening in melon. Theor. Appl. Genet. 2008. 116: 589-602.
Marin R. C.; Orchard J.; Seymour G. V. Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. J. Exp. Bot. 2002. 53: 2115-2119.
Kays S. J.; Paull R. E. Postharvest biology. Exon Press, Athens, Georgia, EEUU.2004. pp. 568.
Kader A. A. Postharvest technology of horticulrutal crops. Univ. Calif. Publ. 1992. pp. 311.
Gôkmen V.; Kahraman N.; Demir N.; Acar J. Enzymatically validated liquid chromatographic method for the determination of ascorbic and dehydroascorbic acids in fruit and vegetables. J. Chromatogr., A. 2000. 881: 309-316p.
Keys J. S. Postharvest Physiology of Perishable Plant Products. Published by Exon Press. Athens. GA. 1997. 143-161 p.
Hernández M. S.; Martínez O.; Fernández-Trujillo J. P. Behavior of Arazá (Eugenia stipitata Mc Vaugh) fruit quality traits during growth, development and ripening. Sci. Hortic.. 2007. 111: 220-227.
Dubois M.; Gilles K. A.; Hamilton J. K.; Rebers P. A.; Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem. 1956; 28(3): 350-356.
Somogy M. Determination of blood sugar. J. Biol. Chem.1945. 160(1): 69
Nelson N. A photometric adaptation of the Somogyi method for the determination of glucose. J. Biol. Chem. 1944.153: 375-80.
Bashir H. A.; Abu-Goukh A. B. Compositional changes during guava fruit ripening. Food Chem. 2003. 80: 557-563.
Bron I. U.; Ribeiro R. V.; Cavalini F. C.; Jacomino A. P.; Trevisan M. J. Temperature-related changes in respiration and Q10 coefficiente of guava. Sci. Agric (Piracicaba, Braz.) 2005. 62(5): 458-463.
Solarte M.E.; Cantillo J.; Melgarejo L.M.; Romero H.M. Cambios fisiológicos durante la maduración del fruto de materiales regionales de guayaba (Psidium guajava L.) de la provincia de Vélez Santander Colombia. Presentación Cartel. V Congreso Colombiano de Botánica. San Juan de Pasto septiembre 19 al 24 de 2009. 186 p.
Basetto E.; Jacomino A. P.; Pinheiro A.L.; Kluge R.A. Delay of ripening of Pedro Sato. Guava with 1-methyl cyclopropene. Postharvest Biology and Tecnology 2005. 35: 303-308.
Mondal K.; Singh A. P.; Saxena N.; Malhotra S. P.; Dhawan K.; Singh R. Possible Interactions of Polyamines and Ethylene During Ripering of Guava (Psidium guajava L.) fruits. J. Food. Chem. 2008. 32: 46-59.
Yang S. F.; Hoffman N. E. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants. Annu. Rev. Plant Physiol. 1984. 35: 155-189.
Azzolini M.; Jacomino P.; Urbano I. B. Indices para avaliar qualidade pós-colheita de goibas em diferentes estádios de maturacao. Pesqui. Agropecu. Bras. 2004. 39(2): 139-145.
Gomez M. L.; Lajolo F. M. Ascorbic acid metabolism in fruits: activity of enzymes involved in synthesis and degradation during ripening in mango and guava. J. Sci. Food Agric. 2008. 88 (5): 756-762.
Lee S. K.; Kader A. A. Preharvest and postharvest factors influencing vitamina C. content of horticultural crops. Postharvest Biol. Technol. 2000. 20: 207-220.
Nitsch P. J. The physiology of fruit growth. Annu. Rev. Plant Physiol. 1953. 4:199-236.
Cañizares A.; Laverde D.; Puesme R. Crecimiento y desarrollo de guayaba (Psidium guajava L.) en Santa Bárbara, estado de Monagas, Venezuela. Revista Udo Agrícola. 2003. 3(1): 34-38.
Moreno A. L.; Marín M.; Castro C. R.; Sandoval L. Determinación por HPLC de los azúcares en los frutos de guayaba (Psidium guajava L.) de una plantación comercial del Municipio de Mara. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 1995. 12: 467-483.
Jain N.; Dhawan K.; Malhotra S.; Singh R. Biochemistry of fruit ripening of guava (Psidium Guajava L.): Compositional and enzymatic changes. Plant Foods Hum. Nutr.. 2003. 58: 309–315.
Laguado N.; Marín M.; Arenas L.; Araujo F.; Castro C.; Rincón A. Crecimiento del fruto de Guayava Psidium guajava L. de tipo criolla roja. Rev. Fac. Agron (LUZ). 2002. 19: 273-283 p.
Soares F. D.; Pereira T.; Maio Marques M. O.; Monteiro A. R. Volatile and non-volatile chemical composition of the white guava fruit (Psidium Guajava) at different stages of maturity. Food Chem. 2007. 100: 15–21.
Sinuco D.; Steinhaus M.; Osorio C.; Schieberle P. Characterization of the key aroma compounds in Colombian white guavas (Psidium guajava L.) En: Recent Advances in Food and Flavor Chemistry. Ch.-T, Ho, C. Mussinan, Eds. The Royal Society of Chemistry, 2010. En impresión.
Chyau C.; Chen S.; Wu M. Differences on volatile and non-volatile constituents between mature and ripe guava (Psidium guajava Linn.) J. Agric. Food Chem., 1992, 40: 846-849.
Toth-Markus M.; Siddiqui S.; Kovacs E.; Roth E.; Nemeth-Szerdahely E. Changes in flavour, cell wall degrading enzymes and ultrastucture of guava (Psidium guajava L.) during ripening. Acta Alimentaria, 2005, 34: 259-266.
Sinuco D. C. Estudio químico del aroma de la guayaba (Psidium guajava L. Var. Regional roja y Regional blanca) proveniente de la hoya del río Suárez. Tesis doctoral. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2009.
Sinuco D.; Steinhaus M.; Osorio C.; Schieberle P. Changes in Adour-active compounds of two varieties of Colombian guava (Psidium guajava L.) during ripening. Eur. Food Res. Technol. En evaluación.
Cantillo J. J. Caracterización de la respiración, producción de etileno y compuestos volátiles durante el proceso de maduración de cuatro variedades de guayaba Psidium guajava (Myrtaceae) del Departamento de Santander, Colombia. Trabajo de grado. Departamento de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2009.
González I. A. Estudio del aroma de la guayaba (Psidium guajava L.) de la hoya del río Suárez por HS-MEFS. Trabajo de grado. Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2007.
Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle P. Characterization of the aromaactive compounds in pink guava (Psidium guajava L.) by application of the aroma extract dilution analysis. J. Agric. Food Chem. 2008, 56 (11): 4120-4127.
Defilippi B.; Manriquez D.; Luengwilai K.; González M. Aroma volatiles: Biosynthesis and mechanisms of modulation during fruit ripening. En: Advances in Botanical research. Elsevier.2009; p. 17-53.
Instituto Politécnico Nacional. Diseño y Desarrollo de Productos Alimenticios. UPDCE, México, Mayo 2006.
Sinuco D. C. Estudio químico del aroma de la guayaba (Psidium guajava L. Var. Regional roja y Regional blanca) proveniente de la hoya del río Suárez. Tesis doctoral. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2009.
Quijano C.; Suárez M.; Duque C. Constituyentes volátiles de dos variedades de guayaba (Psidium guajava L.): Palmira ICA-1 y Glum Sali. Rev. Colomb. Quim. 1999, 28: 55-63.
Schieberle P. New developments in methods for analysis of volatile compounds and their precursors. In: Characterization of food: emerging methods, 1995, Goankar AG, ed; Elsevier Science BV, pp. 403-431.
Engel W.; Bahr W.; Schieberle P. Solvent assisted flavour evaporation – a new and versatile technique for the careful and direct isolation of aroma compounds from complex food matrices. Eur. Food Res. Technol. 1999, 209: 237-241.
Grosch W. Determination of potent odourants in foods by Aroma Extract Dilution Analysis (AEDA) and calculationof odour activity values (OAVs). Flavour Fragrance J. 1994, 9: 147- 158.
Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle, P. Characterization of the key aroma compounds in pink guava (Psidium guajava L.) by means of aroma re-engineering experiments and omission tests. J. Agric. Food. Chem. 2009, 57 (7): 2882-2888.
Deman J.M. Principles of Food Chemistry. New York. Van Nostrand Reinhold. 1990. pp 65-68.
Barbosa-Canovas G.; Vega-Mercado H. Deshidratación de Alimentos. España. Acribia S. A. 2000. pp. 235-255.
Lozano C. J.; Toro M.; Julio C. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma Regional del valle Lavalle Ltda. 2002. p. 237
AOAC. Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemist (AOAC). En: Helrich K (Ed.), Arlington: AOAC. 1990.
Badui D.S. Química de los Alimentos. México. Ed. Alhambra Mexicana S.A. 1986. pp. 63- 68.
Castillo J. Caracterización de las propiedades químicas, sensoriales y derivadas de los productos obtenidos por secado con aire caliente, a partir de frutos de guayaba (Psidium guajava) variedad regional roja, de la hoya del río Suárez. Trabajo de grado, Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2008.
Re R.; Pellegrini N.; Roteggente A.; Pannala A.; Yang M.; Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol. Med. 1999, 26: 1231-1237.
Sinuco D. C.; Solarte M. E.; Melgarejo L. M.; Osorio C. Evaluation of antioxidant activity, chemicals and sensorial changes in two varieties of Colombian guava (Psidium guajava L.) during their ripening. Presentado en 236th ACS National Meeting & Exposition, Philadelphia, Agosto. 17-21, 2008.
Carasek E.; Pawliszyn J. screening of tropical fruit volatile compounds using solid phase Microextraction (SPME) fibers and internally cooled SPME fiber. J. Agric. Food Chem. 2006, 54 (23): 8688-8696.
Jiménez A.; Castillo J.; Sinuco D.; Barbosa H.; Osorio C. Análisis cromatográfico de los compuestos volátiles presentes en los productos obtenidos por deshidratación de guayaba (Psidium guajava L.). Presentado en 5º Congreso Colombiano de Cromatografía. Bogotá, Colombia, Septiembre 10-12 de 2008.
Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle P. The aroma of guavas – Key aroma compounds and influence of tissue disruption. Presentado en International Flavor Conference, George Charambolus memorial, Skiathos, Grecia. Mayo 2009.
McCann D.; Barrett A.; Cooper A.; Crumpler D.; Dale l.; Grimshaw K.; Kitchin E.; Lok K.; Porteous L,; Prince E.; Sonuga-Barke E.; Warner J.O,; Stevenson J. Food additives and hyperactive behaviour in 3-year-old and 8/9-year-old children in the community: a randomised, double-blinded, placebo-controlled trial. The Lancet, 2007, 370: 1560-1567.
Delgado-Vargas F.; Jiménez A. R; Paredes-Lopez, O. Natural Pigments: Carotenoids, Anthocyanins, and Betalains-Characteristic, Biosynthesis, Processing, and Stability. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2000, 40: 173-289.
Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp.26.
Padula M.; Rodríguez-Amaya D. B. Characterization of the carotenoids and assessment of the vitamin A value of Brasilian guavas (Psidium guajava L.). Food Chem., 1986, 20: 11-19.
Wilberg V. C.; Rodríguez-Amaya D. B. HPLC quantitation of major carotenoids of fresh and processed guava, mango and papaya. LWT--Food Sci. Technol. 1995, 28: 474-480.
Mercadante A. Z.; Steck A.; Pfander H. Carotenoids from Guava (Psidium guajava L.): Isolation and structure elucidation. J. Agric. Food Chem., 1999, 47:145-151.
Ventosa M.; Rodríguez J. L.; Zerqueria O. L. Determinación de los principales carotenoides de la guayaba (Psidium guajava L.). Ciencia y Tecnología de Alimentos, 2007, 18: 1-4.
Gonzalez I. A. Caracterización química del color de diferentes variedades de guayaba (Psidium guajava L.) colombiana. Tesis de Maestría. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2010.
Chiou D.; Langrish T. A. G. Development and characterisation of novel nutraceuticals with spray drying technology. J. Food Eng., 2007, 82 (1): 84-91.
Risch S. J.; Reineccius, G. Encapsulation and Controlled Release of Food Ingredients, Washington D.C. ACS Symposium series 590, 1995. pp 202.
BETE Spray Dry Manual. http://www.bete.com/pdfs/BETE_SprayDryManual.pdf (acceso octubre 12, 2009).
Howlett, J. Functional Foods. From Science to Health and claims. Bruselas, Bélgica. ILSI Europa. 2008. pp.3-4.
Las dos caras de la nutrición en Colombia. http:/www.medilegis.com/BancoConocimiento/ A/AM76-AA-nutricion/AM76-AA-nutricion.asp (acceso septiembre de 2005)
CORPOICA. La Agroindustria de la Guayaba en la provincia de Vélez en el departamento de Santander, Colombia. 2000. pp.
Matarese L., Gottschlich M. Nutrición Clínica Práctica. España, 2ª ed. Elsevier, 2004. pp. 313
Fraeye I.; Duvetter T.; Verlent I.; Ndaka Sila D.; Hendrickx M.; Van Loey A. Comparison of enzymatic de-esterification of strawberry and apple pectin at elevated pressure by fungal pectinmethylesterase. Innovative Food Sci. Emerging Technol. 2007. 8 (1): 93-101.
ICBF- Instituto Colombiano de Bienestar Familiar. Encuesta Nacional de la situación nutricional en Colombia. Colombia. Panamericana Formas e impresos, S.A. 2006.
Vanhemelrijck, J.; Van de Sype, J. Citrus fruit fibers in processed meat. WO2006/122734 A1. 2006.
ICONTEC. Norma Técnica Colombiana NTC 1325. Industrias alimentarias. Productos cárnicos procesados no enlatados. Colombia, 1998.
Velioglu Y.; Mazza L.; Gao B., Omah. Antioxidant and total phenolics in selected fruits, vegetables, and grain products. J. Agric. Food Chem. 1998. 46: 4113-4117.
Bravo L.; Polyphenols: Chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance. Nutr. Rev. 1998. 56 (11): 317-333.
Pannala A.; Chan S.; O’Brien P.; Rice-Evans C. Flavonoid B-ring chemistry and antioxidant activity: fast-reaction kinetics. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. 282: 1161-1168.
Restrepo D.; Narváez C.; Restrepo L. P. Extracción de compuestos con actividad de frutos de guayaba cultivada en Vélez Santander, Colombia. Quím. Nova, 2009. 32 (6): 1517- 1522.
Shahidi F.; Naczk M. Method of analysis and quantification of phenolic compound. En Food phenolics: sources, chemistry, effects and applications. Lanchester, PA. USA: Technomic Publishing Company. 1995. pp. 287–293.
Thaipong K.; Boonprakoba U.; Crosbyb K.; Cisneros-Zevallos L.; Byrne D. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts. J. Food Compos. Anal. 2006. 19: 669–675.
Benzie F.; Strain J. The ferric reducing ability of plasma as a measure of “antioxidant power” the FRAP assay. Anal. Biochem. 1996. 239: 70–76.
Berra B.; Caruso D.; Cortesi N.; Fedeli E .; Rasetti M. F.; Galli G. Antioxidant properties of minor polar components of olive oil on the oxidative processes of cholesterol in human LDL . Riv. Ital. Sostanze Grasse. 1995. 72: 285- 291.
Quijada O.; Ramírez R.; Castellano G.; Camacho R.; Sayago E.; Burgos M. Calidad Fisicoquímica de Frutos de Guayaba en el Estado Zulia. INIA Divulga 2007. 10: 6-8.
Murga R.; Sanz M. T.; Beltrán S.; Cabezas J. L. Solubility of Some Phenolic Compounds Contained in Grape Seeds, in Supercritical Carbon Dioxide. J. Supercrit. Fluids 2002. 23: 113-121.
Tsuda T.; Mizuno K.; Ohshima K.; Kawakishi S.; Osawa T. Supercritical Carbon Dioxide Extraction of Antioxidative Components from Tamarind (Tamarindus indica L.) Seed Coat. J. Agric. Food Chem. 1995. 43: 2803-2806.
Sticher O. Natural Product Isolation. Nat. Prod. Rep. 2008. 25: 517-554.
Rodríguez L. I. Estudio de un Proceso Continuo para la Metanólisis del Aceite de Palma en Condiciones Supercríticas. Tesis de Maestría, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C. Colombia, 2009.
Reverchon E.; De Marco I. Review. Supercritical Fluid Extraction and Fractionation of Natural Matter. J. Supercrit. Fluids 2006. 38: 146-166.
Parada F. Extracción con Fluidos Supercríticos: Realidad o Fantasía. Química e Industria 2001. 22: 20-23.
Herrero M.; Cifuentes A.; Ibañez E. Sub- and Supercritical Fluid Extraction of Functional Ingredients from Different Natural Sources: Plants, Food-by-Products, Algae and Microalgae, A review. Food Chem. 2006. 98: 136-148.
Wu S. J.; Tsai J. Y.; Chang S. P.; Lin D. L.; Wang S. S.; Huang S. N.; Ng L.T. Supercritical Carbon Dioxide Extract Exhibits Enhanced Antioxidant and Anti-inflammatory Activities of Physalis peruviana. J. Ethnopharmacol. 2006. 108: 407-413.
Kitzberger C. S. G.; Artur Smânia A.; Pedrosa R. C.; Ferreira S. R. S. Antioxidant and Antimicrobial Activities of Shiitake (Lentinula edodes) Extracts Obtained by Organic Solvents and Supercritical Fluids. J. Food Eng. 2007. 80: 631-638.
Pinheiro A. C.; Aragão A. M.; Fett R.; Block J. M. Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Pecan (Carya illinoinensis (Wangenh.) C. Koch) Kernel Cake Extracts. Grasas y Aceites 2009. 60: 458-467.
Rodrigues R. F.; Tashima A. K.; Pereira R. M. S.; Mohameda R.S.; Cabral F. A. Coumarin Solubility and Extraction from Emburana (Torresea cearensis) Seeds with Supercritical Carbon Dioxide. J. Supercrit. Fluids 2008. 43: 375-382.
Mendoza A.; Rodríguez L. I.; Parada F. Home Made Supercritical Fluid Extraction Systems by Thermal Dilatation-Contraction, Trabajo presentado en Prosciba 2007, Foz do Iguaçu, Brazil, April 10-13, 2007.
Castro, H.; Restrepo, P.; Parada F. Aprovechamiento Integral de la Guayaba (Psidium guajava L.): II Obtención de Aceite a Partir de Semillas Empleando CO2 Supercrítico-Etanol. Trabajo presentado en X Congreso Colombiano de Fitoquímica, Popayan, Colombia, Junio 9-12, 2009.
Nivia, A.; Castro, H.; Parada, F.; Rodríguez, I.; Restrepo, P. Aprovechamiento Integral de la Guayaba (Psidium guajava L.): I. Obtención de Extractos a Partir de Semillas Utilizando como Solvente CO2 Supercrítico. Scientia et Technica 2007. 33: 79-82.
Castro, H. I.; Rodríguez, L. I.; Ferreira, S. R. S.; Parada, F. Extraction of Phenolic Fraction from Guava Seeds (Psidium guajava L.) Using Supercritical Carbon Dioxide and Co-solvents. J. Supercrit. Fluids. 2010. 51:319-324.
Soong, Y.; Barlow, P. J. Antioxidant Activity and Phenolic Content of Selected Fruit Seeds. Food Chem. 2004. 88: 411-417.
Silva, E.; Souza, J.; Rogez, H.; Rees, J.; Larondelle, Y. Antioxidant Activities and Polyphenolic Contents of Fifteen Selected Plant Species from the Amazonian Region. Food Chem. 2007. 101: 1012-1018.
Reyes, E.; Tecante, A.; Valdivia, M. A. Dietary Fibre Content and Antioxidant Activity of Phenolic Compounds Present in Mexican Chia (Salvia hispanica L.) seeds. Food Chem. 2008. 107: 656-663.
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Así, en los tres primeros capítulos se presentan resultados del proyecto “Caracterización ecofisiológica de variedades de guayaba por función de uso”; en los capítulos 4 y 5 resultados del proyecto “Desarrollo de aditivos naturales de color y aroma a partir de frutas de guayaba”, y en los capítulos 6, 7 y 8 los del proyecto “Obtención de antioxidantes y fibra dietaria a partir de la guayaba”. / Abstract: This book presents the results of research on four guava materials – Regional Roja (RR), Regional Blanca (RB), Guavatá Victoria (GV) and Ráquira (RQ) - at three production sites in the province of Vélez, Santander (Puente Nacional, Barbosa, and Vélez) that participate in the program “Development of promising guava-based functional products for strengthening the productive chain”. The first three chapters present the results of the project “Ecophysiological characterization of guava varieties by use function”. Chapters 4 and 5 present the results of the project “Development of natural color and aroma additives based on guava fruits”. Finally, in Chapters 6, 7 and 8 the results of the project “Obtaining antioxidants and dietary fiber from the guava” are presented. (Texto tomado de la fuente).ISBN de la versión impresa 9789587194104Primera edición194 páginasapplication/pdfspaUniversidad Nacional de ColombiaSede BogotáUniversidad Nacional de Colombia Sede Bogotá Facultad de Ciencias Departamento de BiologíaDepartamento de BiologíaGutierrez M. V. The scientific development of the physiology of plants in the American tropics. Minireview. Rev. Biol. Trop. 2002. 50 (2): 429-438Müller M. W. Ecofisiología del cultivo del cacao. Conferencia seminario internacional de agroforestería con énfasis en cacao. Bucaramanga. Colombia. 2003.Reynolds M. P.; Thretowan R.; Crossa J.; Vargas M; Sayre K. D. Physiological factors associated with genotype by environment interaction in wheat. Field Crops Res. 2002. 75: 139-169.Martin T.; Hellmann H.; Schmidt R.; Willmitzer L.; Fronmer W. B. Identification of mutants in metabolically regulated gene expression. The Plant Journal. 1997. 11: 53-62.Damatta F. Drought as a multidimensional stress affecting photosynthesis in tropical the crops. Adv. Plant Physiol.. 2003. 5: 227-265.Wang C.Y. Physiological and biochemical responses of plants to chilling stress. Hort. Science. 1982. 17: 173-186.Boyer J. S. Plant productivity and environment. Science. 1982. 218: 443-448Flexas J. J.; Bota J.; Cifre J. M.; Escalona J.; Galmes J.; Gulias K.; Lefi S. F.; Martinez-Cañelas M.; Moreno M.; Rivas-Carbo D.; Riera B.; Sampol Y.; Medrano H. Understanding downregulation of photosynthesis under stress: future prospects and searching for physiological tools for irrigation management. Ann. Appl. Biol. 2004. 144: 273-283.Jones H. G.; Archer N. A.; Rotenberg E.; Casa R. Radiation measurement form plant ecophysiology. J. Exp. Bot. 2003. 54: 1-11.Grossnickle S. C. Ecophysiology of northern spruce species: The performance of planted seedlings. NRC. Research Press (Ed). 2000. 407 p.Sallunkhe D. K.; Desahi. B. Guava. Chapter 5. Guava. Postharvest Biotechnology of fruits Volume II. CRC Press, Inc. 1984. V II 39-46 p.Luna De A. La Guayaba en Calvillo Aguascalientes y factores que limitan su producción. En: Padilla J. S.; Reyes L. M.; González E. G.; Perales M. A. Memoria Primer Simposio Internacional de la guayaba guava – goiabeira. Aguascalientes. México. Diciembre 8 al 11 de 2003. pp184 – 197.Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp. 278.FAO. ECOGRIP 1. The adaptability level of de FAO crop environmental requeriments database. Versión 1.0. FAO. 1994. Rome Italy.Mata B. I.; Rodríguez A. Cultivo y producción del guayabo. Editorial Trillas. México. 1990. pp. 160 .Eamus D. Ecophysiological traits of deciduos and evergreen woody species in the seasonally dry tropics. 1999. Tree. 14(1): 11-16Peñuelas J.; Filella I.; Lluisià, D.; Siscart Piñol J. Comparative field study of spring and summer leaf gas Exchange and photobiology of the mediterranean trees Quercus ilex and Phillyrea latifolia. J. Exp. Bot.. 1998. 49 (319): 229-238.Nobel P. S. Physicochemical and environmental plant physiology, Ed Second. Academic Press, New York. 1999. pp 474.Romero H. M.; Ayala I. M.; Ruiz R. R. Ecofisiología de la palma de aceite. 2007. Palmas. 28: 176-184.Larcher W. Physiological Plant Ecology. Ecophysiology and stress physiology of functional groups. 4th. Edition. Springer. 2003. pp. 513.Tezara W.; Marín O.; Martinez D.; Rengifo E.; Herrera A. Photosynthesis and photoinhibition in two xerofitic shrubs during drought. Photosynthetica. 2005. 43: (1) 37-4.Epron D.; Dreyer E.; Breda N. Photosynthesis of oak trees (Quercus petraea (Matt.) Liebl) during drought under field conditions: diurnal course of net CO2 assimilation and photochemical efficiency of photosystem II. Plant, Cell Environ. 1992. 15: 809-820.Rathore D. S. Effect of season in the growth and chemical composition of guava (Psidium guajava L.). J. Hort. Sci., 1976. 51: 41-47.Singh N.; Rajput C. 1978. Effect of leaf age and position and fruiting status on guava leaf mineral composition. J. Hort. Sci. 53: 74-74.Walker R.; Kriedmann R.; Maggs P. E. Growth leaf physiology and fruit development in salt stressed guavas. Aust. J. Agric. Res. 30 (3) 477-488.H. Fisiología del Cacao. En memorias primer curso de fisiología de plantas leñosas tropicales. Santander. Colombia. 2003.Maxwell K.; Johnson G. N. Chlorophyll fluorescence-a practical guide. J. Exp. Bot. 2000. 51(345): 659-668.Flexas J. J.; Gulias S.; Jonasson H.; Medrano M.; Mus M. Seasonal patterns and control of gas exchange in local populations of the Mediterranean evergreen shrub Pistacia lentiscus L. 2001. Acta Oecology. 22: 33-43.Fuentes V. R.; Granda M.; Lemes C.; Rodriguez C. Estudios fenológicos en plantas medicinales XII. Rev.Cubana Planta Med. 2001. 3: 87-92.Salazar D.; Melgarejo P.; Martınez R.; Martínez J.; Hernandez F.; Buerguera M. Phenological stages of the guava tree (Psidium guajava L.). Sci. Hortic.. 2006. 108: 157-161.Salinero M. C; Vela P.; Sainz M. J. Phenological growth stages of Kiwi fruit (Actinidia deliciosa ‘Hayward’). Sci. Hortic.. 2009. 121: 27-31.Fournier L. A. Di Stefano J. F. Variaciones climáticas entre 1988 y 2001 y sus posibles efectos sobre la fenología de varias especies leñosas y el manejo de un cafetal con sombra en la ciudad de Colon de Mora. Costa Rica. Agron. Costarric.. 2004. 28 (1): 101- 120.Lemus-Jimenez L.; Ramirez N. Fenología reproductiva en tres tipos de vegetación de la planicie costera de Paraguaná,Venezuela. Acta Cient. Venezolana. 2002. 53: 266-278.Garriz, P. I.; Alvarez H. I.; Colavita G. M. Growth pattern of “Abbe Fetel” pear fruits. Acta Hortic. 2005. 674: 321-327.Aguilar L. A.; Mendoza L. M.; Mena J. Ch. Comportamiento del guayabo en la Región oriente de Michoacan. En. Padilla R. J.; Reyes M. L.; González E. G.; Perales M.A. (Eds). Memoria Primer Simposio Internacional de la Guayaba. Aguascalientes, México. Diciembre del 2003.124-146 p.Laguado N.; Marin M.; Arenas de Moreno L.; Araujo F.; Castro de Rincón, C.; Rincon A. Crecimiento del fruto de de guayaba (Psidium guajava L) del tipo Criolla Roja. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 2002. 19(4): 273 – 283.Ramírez J.; González E.; Esquivel F.; Mercado E.; Hernandez S.; Mayek N. Caracterización de germoplasma sobresaliente de guayabo de la región Calvillo-Cañones, México. Revista Fitotecnia Mexicana. 2002. 25:393-399.Mercado-Silva E.; Benito-Bautista P.; García-Velasco M. Fruit development, harvest index and ripening changes of guavas produced in central Mexico. Postharvest Biol. Technol. 1998. 13: 143–150.Solarte C.; Florez L.; Jurado R.; Rojas A.; Insuasty O.; Melgarejo L.; Romero H M. Fenología reproductiva de cuatro materiales de guayaba (Psidium guajava L.) en tres localidades de la hoya del río Suárez (Santander, Colombia). Presentación Cartel. V Congreso Colombiano de Botánica. San Juan de Pasto Nariño. Septiembre 19 al 24 de 2009.Insuasty O.; Monroy R.; Díaz A.; Bautista, J. Manejo fitosanitario del cultivo de la guayaba (Psidium guajava L.) en Santander. Boletín técnico.Corpoica-ICA. 2008. 40 p.Nava A.; González A.; Sanchez. P.; Peña C.; Livera M. M.; Díaz G. Potencial de producción y fisiología del guayabo (Psidium guajava L.) en Iguala Guerrero. En. Padilla J.; Reyes L.; González E.; Perales M. A. (Eds). Memoria Primer Simposio Internacional de la Guayaba. Aguascalientes, México. 2003. 41-49 pp.Mata B. C.; Rodriguez A.M. Cultivo y producción del guayabo. México. Editorial Trillas. 1990. pp. 160.Nakasone H.; Paull R. E. Editores. Tropical Fruits. UK. CAB Internacional.1997. pp. 270- 291.Nitsch P. J.The Physiology of Fruit Growth. Annu. Rev. Plant Physiol. 1953. 4:199-236.Laguado N.; Rendiles E.; Marín M.; Arenas de Moreno L.; Castro C. Crecimiento de frutos de guayabo (Psidium guajava L.) del tipo criolla roja. Etapa I. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 1999. 16 Supl. 1: 30-35.Pereira W. E.; DÀraujo F. C.; Lopes D.; Horst C. B.; Cecon P. R.; Santos R. B. Rendimiento e algumas características físico.quimicas dos frutos de seis variedades de goiabeira desenvueltos em condicoes de déficit hídrico. Rev. Ceres. 2000. 272: 349-362Rathore D. S. Effect of season on the growth and chemical composition of guava (Psidium guajava L.) fruits. J. Hortic. Sci. 1976. 51: 41-47.Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp.2t6.Giovannoni J. Molecular Biology of Fruit Maturation and Ripening. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 2001. 52: 725-749.Agronet. Análisis-Estadísticas. www.agronet.gov.co. Acceso abril 17 de 2008.CRECED Provincia de Vélez. La agroindustria de la guayaba en la provincia de Vélez, Departamento de Santander. Subdirección de sistemas de producción. Programa nacional de maquinaria y postcosecha. Documento técnico. 2000. pp 15.Azzolini M.; Jacomino A.; Fillete P.; Spoto M. H. Estádios de maturação e qualidade póscolheita de goiabas ‘Pedro Sato’. Rev. Bras. Frutic.. 2004; 26(1): 29-31.Piza Jr. C.; Kavati R. Acultura da goiava de mesa. Campinas: CATI. 1994. 28 P. 6. Manica I.; Icuma I. M.; Junkeira N. T.; Salvador J. O.; Moreira A.; Malawolta E. Fruticultura TropicalGoiava. Portoalegre: cinco continentes. 2000. pp 374.Fernández-Trujillo J. P. Análisis del punto de venta de frutas y hortalizas y propuestas de mejora desde la poscosecha. Horticultura (Reus). 2006. XXIV(3) 192 (Abril): 38-47. http:// www.horticom.com/pd/article.php?sid=63077Mercado-Silva E.; Bautista P.; Garcia-Velasco M. Fruit development, harvest index and ripening changes of guavas produced in Central Mexico. Postharvest Biol. Technol.. 1998. 13: 143-150.Biale J. B.; Barcus D. E. Respiratory Patterns in Tropical Fruits of the Amazon basin. Trop. Sci. 1979. 12: 93-104.Medina J. C.; Castro J. V.; de Martin J. M.; Kaato K.; Maia M. L.; García A. E.; Fernandes R.S. Goiaba: cultura materia-prima, processamento e aspectos económicos. 2nd ed. Campinas, Instituto de Tecnologia de Alimentos, Série Frutas Tropicais 6. Campinas SP. Ital. 1998. pp. 17.Chitarra M. I.; Chitarra A. B. Póscolheita de frutos e hortalicàs: fisiología e manuseio. ESAL/ FAEPE, Lavras. 1990. pp. 320.Pal R. K.; Singh S. P. Response of climacteric type guava (Psidium guajava L.) to postharvest treatmen with 1-MCP. Postharvest Biol. Technol. 2008. 47: 307-314.Azzolini M.; Jacomino P.; Bron U.; Kluje R.; Schiavinato M. Ripening of “Pedro Sato” guava: study on its climateric or non climateric nature. Braz. J. Plant. Physiol. 2005.17 (3): 299-306.Moreno E.; Obando J.; Dos-Santos N.; Fernández-Trujillo J. P.; Monforte A. J; García-Mas J. Candidate genes and QTLs for fruit ripening and softening in melon. Theor. Appl. Genet. 2008. 116: 589-602.Marin R. C.; Orchard J.; Seymour G. V. Pectate lyases, cell wall degradation and fruit softening. J. Exp. Bot. 2002. 53: 2115-2119.Kays S. J.; Paull R. E. Postharvest biology. Exon Press, Athens, Georgia, EEUU.2004. pp. 568.Kader A. A. Postharvest technology of horticulrutal crops. Univ. Calif. Publ. 1992. pp. 311.Gôkmen V.; Kahraman N.; Demir N.; Acar J. Enzymatically validated liquid chromatographic method for the determination of ascorbic and dehydroascorbic acids in fruit and vegetables. J. Chromatogr., A. 2000. 881: 309-316p.Keys J. S. Postharvest Physiology of Perishable Plant Products. Published by Exon Press. Athens. GA. 1997. 143-161 p.Hernández M. S.; Martínez O.; Fernández-Trujillo J. P. Behavior of Arazá (Eugenia stipitata Mc Vaugh) fruit quality traits during growth, development and ripening. Sci. Hortic.. 2007. 111: 220-227.Dubois M.; Gilles K. A.; Hamilton J. K.; Rebers P. A.; Smith F. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem. 1956; 28(3): 350-356.Somogy M. Determination of blood sugar. J. Biol. Chem.1945. 160(1): 69Nelson N. A photometric adaptation of the Somogyi method for the determination of glucose. J. Biol. Chem. 1944.153: 375-80.Bashir H. A.; Abu-Goukh A. B. Compositional changes during guava fruit ripening. Food Chem. 2003. 80: 557-563.Bron I. U.; Ribeiro R. V.; Cavalini F. C.; Jacomino A. P.; Trevisan M. J. Temperature-related changes in respiration and Q10 coefficiente of guava. Sci. Agric (Piracicaba, Braz.) 2005. 62(5): 458-463.Solarte M.E.; Cantillo J.; Melgarejo L.M.; Romero H.M. Cambios fisiológicos durante la maduración del fruto de materiales regionales de guayaba (Psidium guajava L.) de la provincia de Vélez Santander Colombia. Presentación Cartel. V Congreso Colombiano de Botánica. San Juan de Pasto septiembre 19 al 24 de 2009. 186 p.Basetto E.; Jacomino A. P.; Pinheiro A.L.; Kluge R.A. Delay of ripening of Pedro Sato. Guava with 1-methyl cyclopropene. Postharvest Biology and Tecnology 2005. 35: 303-308.Mondal K.; Singh A. P.; Saxena N.; Malhotra S. P.; Dhawan K.; Singh R. Possible Interactions of Polyamines and Ethylene During Ripering of Guava (Psidium guajava L.) fruits. J. Food. Chem. 2008. 32: 46-59.Yang S. F.; Hoffman N. E. Ethylene biosynthesis and its regulation in higher plants. Annu. Rev. Plant Physiol. 1984. 35: 155-189.Azzolini M.; Jacomino P.; Urbano I. B. Indices para avaliar qualidade pós-colheita de goibas em diferentes estádios de maturacao. Pesqui. Agropecu. Bras. 2004. 39(2): 139-145.Gomez M. L.; Lajolo F. M. Ascorbic acid metabolism in fruits: activity of enzymes involved in synthesis and degradation during ripening in mango and guava. J. Sci. Food Agric. 2008. 88 (5): 756-762.Lee S. K.; Kader A. A. Preharvest and postharvest factors influencing vitamina C. content of horticultural crops. Postharvest Biol. Technol. 2000. 20: 207-220.Nitsch P. J. The physiology of fruit growth. Annu. Rev. Plant Physiol. 1953. 4:199-236.Cañizares A.; Laverde D.; Puesme R. Crecimiento y desarrollo de guayaba (Psidium guajava L.) en Santa Bárbara, estado de Monagas, Venezuela. Revista Udo Agrícola. 2003. 3(1): 34-38.Moreno A. L.; Marín M.; Castro C. R.; Sandoval L. Determinación por HPLC de los azúcares en los frutos de guayaba (Psidium guajava L.) de una plantación comercial del Municipio de Mara. Rev. Fac. Agron. (LUZ). 1995. 12: 467-483.Jain N.; Dhawan K.; Malhotra S.; Singh R. Biochemistry of fruit ripening of guava (Psidium Guajava L.): Compositional and enzymatic changes. Plant Foods Hum. Nutr.. 2003. 58: 309–315.Laguado N.; Marín M.; Arenas L.; Araujo F.; Castro C.; Rincón A. Crecimiento del fruto de Guayava Psidium guajava L. de tipo criolla roja. Rev. Fac. Agron (LUZ). 2002. 19: 273-283 p.Soares F. D.; Pereira T.; Maio Marques M. O.; Monteiro A. R. Volatile and non-volatile chemical composition of the white guava fruit (Psidium Guajava) at different stages of maturity. Food Chem. 2007. 100: 15–21.Sinuco D.; Steinhaus M.; Osorio C.; Schieberle P. Characterization of the key aroma compounds in Colombian white guavas (Psidium guajava L.) En: Recent Advances in Food and Flavor Chemistry. Ch.-T, Ho, C. Mussinan, Eds. The Royal Society of Chemistry, 2010. En impresión.Chyau C.; Chen S.; Wu M. Differences on volatile and non-volatile constituents between mature and ripe guava (Psidium guajava Linn.) J. Agric. Food Chem., 1992, 40: 846-849.Toth-Markus M.; Siddiqui S.; Kovacs E.; Roth E.; Nemeth-Szerdahely E. Changes in flavour, cell wall degrading enzymes and ultrastucture of guava (Psidium guajava L.) during ripening. Acta Alimentaria, 2005, 34: 259-266.Sinuco D. C. Estudio químico del aroma de la guayaba (Psidium guajava L. Var. Regional roja y Regional blanca) proveniente de la hoya del río Suárez. Tesis doctoral. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2009.Sinuco D.; Steinhaus M.; Osorio C.; Schieberle P. Changes in Adour-active compounds of two varieties of Colombian guava (Psidium guajava L.) during ripening. Eur. Food Res. Technol. En evaluación.Cantillo J. J. Caracterización de la respiración, producción de etileno y compuestos volátiles durante el proceso de maduración de cuatro variedades de guayaba Psidium guajava (Myrtaceae) del Departamento de Santander, Colombia. Trabajo de grado. Departamento de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2009.González I. A. Estudio del aroma de la guayaba (Psidium guajava L.) de la hoya del río Suárez por HS-MEFS. Trabajo de grado. Departamento de Química, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. 2007.Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle P. Characterization of the aromaactive compounds in pink guava (Psidium guajava L.) by application of the aroma extract dilution analysis. J. Agric. Food Chem. 2008, 56 (11): 4120-4127.Defilippi B.; Manriquez D.; Luengwilai K.; González M. Aroma volatiles: Biosynthesis and mechanisms of modulation during fruit ripening. En: Advances in Botanical research. Elsevier.2009; p. 17-53.Instituto Politécnico Nacional. Diseño y Desarrollo de Productos Alimenticios. UPDCE, México, Mayo 2006.Sinuco D. C. Estudio químico del aroma de la guayaba (Psidium guajava L. Var. Regional roja y Regional blanca) proveniente de la hoya del río Suárez. Tesis doctoral. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2009.Quijano C.; Suárez M.; Duque C. Constituyentes volátiles de dos variedades de guayaba (Psidium guajava L.): Palmira ICA-1 y Glum Sali. Rev. Colomb. Quim. 1999, 28: 55-63.Schieberle P. New developments in methods for analysis of volatile compounds and their precursors. In: Characterization of food: emerging methods, 1995, Goankar AG, ed; Elsevier Science BV, pp. 403-431.Engel W.; Bahr W.; Schieberle P. Solvent assisted flavour evaporation – a new and versatile technique for the careful and direct isolation of aroma compounds from complex food matrices. Eur. Food Res. Technol. 1999, 209: 237-241.Grosch W. Determination of potent odourants in foods by Aroma Extract Dilution Analysis (AEDA) and calculationof odour activity values (OAVs). Flavour Fragrance J. 1994, 9: 147- 158.Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle, P. Characterization of the key aroma compounds in pink guava (Psidium guajava L.) by means of aroma re-engineering experiments and omission tests. J. Agric. Food. Chem. 2009, 57 (7): 2882-2888.Deman J.M. Principles of Food Chemistry. New York. Van Nostrand Reinhold. 1990. pp 65-68.Barbosa-Canovas G.; Vega-Mercado H. Deshidratación de Alimentos. España. Acribia S. A. 2000. pp. 235-255.Lozano C. J.; Toro M.; Julio C. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma Regional del valle Lavalle Ltda. 2002. p. 237AOAC. Official methods of analysis of the Association of Official Analytical Chemist (AOAC). En: Helrich K (Ed.), Arlington: AOAC. 1990.Badui D.S. Química de los Alimentos. México. Ed. Alhambra Mexicana S.A. 1986. pp. 63- 68.Castillo J. Caracterización de las propiedades químicas, sensoriales y derivadas de los productos obtenidos por secado con aire caliente, a partir de frutos de guayaba (Psidium guajava) variedad regional roja, de la hoya del río Suárez. Trabajo de grado, Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2008.Re R.; Pellegrini N.; Roteggente A.; Pannala A.; Yang M.; Rice-Evans C. Antioxidant activity applying an improved ABTS radical cation decolorization assay. Free Radical Biol. Med. 1999, 26: 1231-1237.Sinuco D. C.; Solarte M. E.; Melgarejo L. M.; Osorio C. Evaluation of antioxidant activity, chemicals and sensorial changes in two varieties of Colombian guava (Psidium guajava L.) during their ripening. Presentado en 236th ACS National Meeting & Exposition, Philadelphia, Agosto. 17-21, 2008.Carasek E.; Pawliszyn J. screening of tropical fruit volatile compounds using solid phase Microextraction (SPME) fibers and internally cooled SPME fiber. J. Agric. Food Chem. 2006, 54 (23): 8688-8696.Jiménez A.; Castillo J.; Sinuco D.; Barbosa H.; Osorio C. Análisis cromatográfico de los compuestos volátiles presentes en los productos obtenidos por deshidratación de guayaba (Psidium guajava L.). Presentado en 5º Congreso Colombiano de Cromatografía. Bogotá, Colombia, Septiembre 10-12 de 2008.Steinhaus M.; Sinuco D.; Polster J.; Osorio C.; Schieberle P. The aroma of guavas – Key aroma compounds and influence of tissue disruption. Presentado en International Flavor Conference, George Charambolus memorial, Skiathos, Grecia. Mayo 2009.McCann D.; Barrett A.; Cooper A.; Crumpler D.; Dale l.; Grimshaw K.; Kitchin E.; Lok K.; Porteous L,; Prince E.; Sonuga-Barke E.; Warner J.O,; Stevenson J. Food additives and hyperactive behaviour in 3-year-old and 8/9-year-old children in the community: a randomised, double-blinded, placebo-controlled trial. The Lancet, 2007, 370: 1560-1567.Delgado-Vargas F.; Jiménez A. R; Paredes-Lopez, O. Natural Pigments: Carotenoids, Anthocyanins, and Betalains-Characteristic, Biosynthesis, Processing, and Stability. Crit. Rev. Food Sci. Nutr., 2000, 40: 173-289.Lozano J. C.; Toro J. C.; García R.; Tafur R. Manual sobre el cultivo del guayabo en Colombia. Cali, Colombia. Litografía Autónoma del Valle Lavalle Ltda. 2002. pp.26.Padula M.; Rodríguez-Amaya D. B. Characterization of the carotenoids and assessment of the vitamin A value of Brasilian guavas (Psidium guajava L.). Food Chem., 1986, 20: 11-19.Wilberg V. C.; Rodríguez-Amaya D. B. HPLC quantitation of major carotenoids of fresh and processed guava, mango and papaya. LWT--Food Sci. Technol. 1995, 28: 474-480.Mercadante A. Z.; Steck A.; Pfander H. Carotenoids from Guava (Psidium guajava L.): Isolation and structure elucidation. J. Agric. Food Chem., 1999, 47:145-151.Ventosa M.; Rodríguez J. L.; Zerqueria O. L. Determinación de los principales carotenoides de la guayaba (Psidium guajava L.). Ciencia y Tecnología de Alimentos, 2007, 18: 1-4.Gonzalez I. A. Caracterización química del color de diferentes variedades de guayaba (Psidium guajava L.) colombiana. Tesis de Maestría. Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D. C. Colombia. 2010.Chiou D.; Langrish T. A. G. Development and characterisation of novel nutraceuticals with spray drying technology. J. Food Eng., 2007, 82 (1): 84-91.Risch S. J.; Reineccius, G. Encapsulation and Controlled Release of Food Ingredients, Washington D.C. ACS Symposium series 590, 1995. pp 202.BETE Spray Dry Manual. http://www.bete.com/pdfs/BETE_SprayDryManual.pdf (acceso octubre 12, 2009).Howlett, J. Functional Foods. From Science to Health and claims. Bruselas, Bélgica. ILSI Europa. 2008. pp.3-4.Las dos caras de la nutrición en Colombia. http:/www.medilegis.com/BancoConocimiento/ A/AM76-AA-nutricion/AM76-AA-nutricion.asp (acceso septiembre de 2005)CORPOICA. La Agroindustria de la Guayaba en la provincia de Vélez en el departamento de Santander, Colombia. 2000. pp.Matarese L., Gottschlich M. Nutrición Clínica Práctica. España, 2ª ed. Elsevier, 2004. pp. 313Fraeye I.; Duvetter T.; Verlent I.; Ndaka Sila D.; Hendrickx M.; Van Loey A. Comparison of enzymatic de-esterification of strawberry and apple pectin at elevated pressure by fungal pectinmethylesterase. Innovative Food Sci. Emerging Technol. 2007. 8 (1): 93-101.ICBF- Instituto Colombiano de Bienestar Familiar. Encuesta Nacional de la situación nutricional en Colombia. Colombia. Panamericana Formas e impresos, S.A. 2006.Vanhemelrijck, J.; Van de Sype, J. Citrus fruit fibers in processed meat. WO2006/122734 A1. 2006.ICONTEC. Norma Técnica Colombiana NTC 1325. Industrias alimentarias. Productos cárnicos procesados no enlatados. Colombia, 1998.Velioglu Y.; Mazza L.; Gao B., Omah. Antioxidant and total phenolics in selected fruits, vegetables, and grain products. J. Agric. Food Chem. 1998. 46: 4113-4117.Bravo L.; Polyphenols: Chemistry, dietary sources, metabolism, and nutritional significance. Nutr. Rev. 1998. 56 (11): 317-333.Pannala A.; Chan S.; O’Brien P.; Rice-Evans C. Flavonoid B-ring chemistry and antioxidant activity: fast-reaction kinetics. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2001. 282: 1161-1168.Restrepo D.; Narváez C.; Restrepo L. P. Extracción de compuestos con actividad de frutos de guayaba cultivada en Vélez Santander, Colombia. Quím. Nova, 2009. 32 (6): 1517- 1522.Shahidi F.; Naczk M. Method of analysis and quantification of phenolic compound. En Food phenolics: sources, chemistry, effects and applications. Lanchester, PA. USA: Technomic Publishing Company. 1995. pp. 287–293.Thaipong K.; Boonprakoba U.; Crosbyb K.; Cisneros-Zevallos L.; Byrne D. Comparison of ABTS, DPPH, FRAP, and ORAC assays for estimating antioxidant activity from guava fruit extracts. J. Food Compos. Anal. 2006. 19: 669–675.Benzie F.; Strain J. The ferric reducing ability of plasma as a measure of “antioxidant power” the FRAP assay. Anal. Biochem. 1996. 239: 70–76.Berra B.; Caruso D.; Cortesi N.; Fedeli E .; Rasetti M. F.; Galli G. Antioxidant properties of minor polar components of olive oil on the oxidative processes of cholesterol in human LDL . Riv. Ital. Sostanze Grasse. 1995. 72: 285- 291.Quijada O.; Ramírez R.; Castellano G.; Camacho R.; Sayago E.; Burgos M. Calidad Fisicoquímica de Frutos de Guayaba en el Estado Zulia. INIA Divulga 2007. 10: 6-8.Murga R.; Sanz M. T.; Beltrán S.; Cabezas J. L. Solubility of Some Phenolic Compounds Contained in Grape Seeds, in Supercritical Carbon Dioxide. J. Supercrit. Fluids 2002. 23: 113-121.Tsuda T.; Mizuno K.; Ohshima K.; Kawakishi S.; Osawa T. Supercritical Carbon Dioxide Extraction of Antioxidative Components from Tamarind (Tamarindus indica L.) Seed Coat. J. Agric. Food Chem. 1995. 43: 2803-2806.Sticher O. Natural Product Isolation. Nat. Prod. Rep. 2008. 25: 517-554.Rodríguez L. I. Estudio de un Proceso Continuo para la Metanólisis del Aceite de Palma en Condiciones Supercríticas. Tesis de Maestría, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá D.C. Colombia, 2009.Reverchon E.; De Marco I. Review. Supercritical Fluid Extraction and Fractionation of Natural Matter. J. Supercrit. Fluids 2006. 38: 146-166.Parada F. Extracción con Fluidos Supercríticos: Realidad o Fantasía. Química e Industria 2001. 22: 20-23.Herrero M.; Cifuentes A.; Ibañez E. Sub- and Supercritical Fluid Extraction of Functional Ingredients from Different Natural Sources: Plants, Food-by-Products, Algae and Microalgae, A review. Food Chem. 2006. 98: 136-148.Wu S. J.; Tsai J. Y.; Chang S. P.; Lin D. L.; Wang S. S.; Huang S. N.; Ng L.T. Supercritical Carbon Dioxide Extract Exhibits Enhanced Antioxidant and Anti-inflammatory Activities of Physalis peruviana. J. Ethnopharmacol. 2006. 108: 407-413.Kitzberger C. S. G.; Artur Smânia A.; Pedrosa R. C.; Ferreira S. R. S. Antioxidant and Antimicrobial Activities of Shiitake (Lentinula edodes) Extracts Obtained by Organic Solvents and Supercritical Fluids. J. Food Eng. 2007. 80: 631-638.Pinheiro A. C.; Aragão A. M.; Fett R.; Block J. M. Phenolic Compounds and Antioxidant Activity of Pecan (Carya illinoinensis (Wangenh.) C. Koch) Kernel Cake Extracts. Grasas y Aceites 2009. 60: 458-467.Rodrigues R. F.; Tashima A. K.; Pereira R. M. S.; Mohameda R.S.; Cabral F. A. Coumarin Solubility and Extraction from Emburana (Torresea cearensis) Seeds with Supercritical Carbon Dioxide. J. Supercrit. Fluids 2008. 43: 375-382.Mendoza A.; Rodríguez L. I.; Parada F. Home Made Supercritical Fluid Extraction Systems by Thermal Dilatation-Contraction, Trabajo presentado en Prosciba 2007, Foz do Iguaçu, Brazil, April 10-13, 2007.Castro, H.; Restrepo, P.; Parada F. Aprovechamiento Integral de la Guayaba (Psidium guajava L.): II Obtención de Aceite a Partir de Semillas Empleando CO2 Supercrítico-Etanol. Trabajo presentado en X Congreso Colombiano de Fitoquímica, Popayan, Colombia, Junio 9-12, 2009.Nivia, A.; Castro, H.; Parada, F.; Rodríguez, I.; Restrepo, P. Aprovechamiento Integral de la Guayaba (Psidium guajava L.): I. Obtención de Extractos a Partir de Semillas Utilizando como Solvente CO2 Supercrítico. Scientia et Technica 2007. 33: 79-82.Castro, H. I.; Rodríguez, L. I.; Ferreira, S. R. S.; Parada, F. Extraction of Phenolic Fraction from Guava Seeds (Psidium guajava L.) Using Supercritical Carbon Dioxide and Co-solvents. J. Supercrit. Fluids. 2010. 51:319-324.Soong, Y.; Barlow, P. J. Antioxidant Activity and Phenolic Content of Selected Fruit Seeds. Food Chem. 2004. 88: 411-417.Silva, E.; Souza, J.; Rogez, H.; Rees, J.; Larondelle, Y. Antioxidant Activities and Polyphenolic Contents of Fifteen Selected Plant Species from the Amazonian Region. Food Chem. 2007. 101: 1012-1018.Reyes, E.; Tecante, A.; Valdivia, M. A. Dietary Fibre Content and Antioxidant Activity of Phenolic Compounds Present in Mexican Chia (Salvia hispanica L.) seeds. Food Chem. 2008. 107: 656-663.580 - PlantasGuayabasFisiología vegetalGuayaboguayaba (Psidium guajava)EcofisiologíaFibra dietariaSiembraDesarrollo de productos funcionales promisorios a partir de la guayaba (Psidium guajava L.) para el fortalecimiento de la cadena productivaLibroinfo:eu-repo/semantics/bookhttp://purl.org/coar/resource_type/c_2f33http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Texthttp://purl.org/redcol/resource_type/LIBGeneralORIGINALGuayaba 9789587194104.pdfGuayaba 9789587194104.pdfLibro del Departamento de Biologíaapplication/pdf47581366https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/11139/1/Guayaba%209789587194104.pdf9ca5cae48f911837cd72758c285ee0aaMD51THUMBNAILGuayaba 9789587194104.pdf.jpgGuayaba 9789587194104.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg8048https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/11139/2/Guayaba%209789587194104.pdf.jpgb4e66119a8ca35c953fcf73b219b8a98MD52unal/11139oai:repositorio.unal.edu.co:unal/111392023-11-07 23:59:51.076Repositorio Institucional Universidad Nacional de Colombiarepositorio_nal@unal.edu.co