Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable

In this work, the coagulant properties of chitosan were investigated, finding that it is a linear cationic polymer, biodegradable, with excellent characteristics as a coagulant, due to the presence of amino groups in its structure that confer the ability to reduce the presence of colloids in water....

Full description

Autores:: Cruz Jiménez, Keila Isabel

Tipo de recurso:: Trabajo de grado de pregrado

Fecha de publicación:: 2021

Institución:: Corporación Universidad de la Costa

Repositorio:: REDICUC - Repositorio CUC

Idioma:: spa

id	RCUC2_5cc48c398834e9cfc27468b00b3b3608
oai_identifier_str	oai:repositorio.cuc.edu.co:11323/8957
network_acronym_str	RCUC2
network_name_str	REDICUC - Repositorio CUC
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
title	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
spellingShingle	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable Chitosan Flakes Coagulation-flocculation Homogeneous chemical method Turbidity Water quality Deacetylation Quitosano Escamas Coagulación-floculación Método químico homogéneo Turbiedad Calidad del agua Desacetilación
title_short	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
title_full	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
title_fullStr	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
title_full_unstemmed	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
title_sort	Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable
dc.creator.fl_str_mv	Cruz Jiménez, Keila Isabel
dc.contributor.advisor.spa.fl_str_mv	Cantero Rodelo, Ruben Dario Gómez Plata, Leandro
dc.contributor.author.spa.fl_str_mv	Cruz Jiménez, Keila Isabel
dc.subject.spa.fl_str_mv	Chitosan Flakes Coagulation-flocculation Homogeneous chemical method Turbidity Water quality Deacetylation Quitosano Escamas Coagulación-floculación Método químico homogéneo Turbiedad Calidad del agua Desacetilación
topic	Chitosan Flakes Coagulation-flocculation Homogeneous chemical method Turbidity Water quality Deacetylation Quitosano Escamas Coagulación-floculación Método químico homogéneo Turbiedad Calidad del agua Desacetilación
description	In this work, the coagulant properties of chitosan were investigated, finding that it is a linear cationic polymer, biodegradable, with excellent characteristics as a coagulant, due to the presence of amino groups in its structure that confer the ability to reduce the presence of colloids in water. Thus, the objective of the present work was to prepare a natural coagulant from chitosan, originating from fish scales of the Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), by the homogeneous chemical method. First, the chitin was separated from the scales, through depigmentation, deproteinization, demineralization and deacetylation processes (obtaining chitosan); Which had a yield in the process of 78%, 78.20%, 88.752% and 30% respectively. To verify the efficiency of the procedure, the structure of the chitosan obtained was characterized, where a degree of DD (76.87%), proteins (<2.45%) and ashes (40.52%) were obtained by potentiometric titration. Said results obtained are theoretically compared with different types of coagulants, both of commercial origin, and obtained experimentally, by other authors; In both cases, the chitosan obtained from Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), has shown favorable results in the different processes that have been compared. By applying the chitosan obtained, as a coagulant to the water treatment, different jar tests were developed to obtain the optimal dose of coagulant (300mg / l) and the flocculation time (30 min). These variables were subjected to an ANOVA statistical analysis, which indicates that the coagulant dose and flocculation time do significantly affect (p-value <0.05) on the removal of turbidity from the water; Thus, obtaining a decrease in turbidity of 76.30%, so it can be inferred that the coagulant performance and the parameters to be determined were optimal. However, when comparing the values obtained for turbidity and final color, with the maximum permissible limits of resolution 2115 of 2007 regulation of water quality for human consumption, the average turbidity obtained was 79.1 NTU and 370 UPC for color, exceeding the permissible limits. Because the coagulant is not totally removing the impurities present in the water sample from the Magdalena River to be studied; It is recommended before using the coagulant, to carry out a sweep to eliminate impurities, in addition to improving the deacetylation stage, to obtain a purer chitosan (higher degree of DD) and thus be able to obtain a better performance of the coagulant and therefore a yield greater in the removal of turbidity and color.
publishDate	2021
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv	2021-12-10T15:32:31Z
dc.date.available.none.fl_str_mv	2021-12-10T15:32:31Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv	2021
dc.type.spa.fl_str_mv	Trabajo de grado - Pregrado
dc.type.coar.spa.fl_str_mv	http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.content.spa.fl_str_mv	Text
dc.type.driver.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.redcol.spa.fl_str_mv	http://purl.org/redcol/resource_type/TP
dc.type.version.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/acceptedVersion
format	http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
status_str	acceptedVersion
dc.identifier.uri.spa.fl_str_mv	https://hdl.handle.net/11323/8957
dc.identifier.instname.spa.fl_str_mv	Corporación Universidad de la Costa
dc.identifier.reponame.spa.fl_str_mv	REDICUC - Repositorio CUC
dc.identifier.repourl.spa.fl_str_mv	https://repositorio.cuc.edu.co/
url	https://hdl.handle.net/11323/8957 https://repositorio.cuc.edu.co/
identifier_str_mv	Corporación Universidad de la Costa REDICUC - Repositorio CUC
dc.language.iso.none.fl_str_mv	spa
language	spa
dc.relation.references.spa.fl_str_mv	A. Zambrano and D. Liliana. (2008). Modelo de correlación entre las variables medibles en línea que afectan el proceso de determinación de la dosis óptima. Agulló, E., Mato R., Peniche, C., Tapia, C., Heras, A., Pastor de Abram A, et al. (2004). Quitina y quitosano: obtención, caracterización y aplicaciones. Ed. Ana Pastor de Abram. Lima, Perú: Fondo editorial de la Pontificia Universidad Católica del Perú. Álava, J. M. (2015). Aplicación de quitosano como biocoagulante en aguas residuales contaminadas con hidrocarburos. Enfoque UTE, 6(3), 52-64. Andia, Y. (2000). Tratamiento de Agua. 16-17. APHA, AWWA, WCF. Standard Methods for the Examination of Water and Waste. 18th Ed. American PublicHealth Association/American Water Works Association/Water Environmental Federation, Washington, DC., USA, 1998, 1207 pp Arboleda. (1994). Teoría y práctica de la purificación del agua. Bogotá. Autoridad Nacional de Acuicultura y pesca (AUNAP) y Organización de las Naciones Unidas para la alimentación y agricultura FAO. (2014). Plan Nacional para el Desarrollo Sostenible de la Acuicultura en Colombia PlaNDAS. Recuperado el 15 de 08 de 2020, de Pagina de AUNAP: http://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/Plan-Nacional-para-el-Desarrollode-la AcuiculturaSostenible-Colombia.pdf. Balanta, D.; Grande, C. D.; & Zuluaga, F. (2010). Extracción, identificación y caracterización de quitosano del micelio de Aspergillus Níger y sus aplicaciones como material bioadsorbente en el tratamiento de aguas. Revista Iberoamericana de Polímeros 11(5), 297-316. Barth, H.; Habs, M.; Klute, R.; Müller, S.; Tauscher, B. (1982). Trinkwasseraufbereitung mit samen von Moringa oleifera lam. Chemiker-Zeitung (Drinking Water Treatment with Moringa oleifera Seeds). Chemists Newspaper, 106, 75–78. Berghoff, C. F. (2011). Desarrollo y caracterización de matrices compuestas quitosano/polímero sintético para regeneración de tejido óseo. (Tesis Doctoral). Universidad Nacional de la Plata - Facultad de Ciencias Exactas. Argentina. Cabarcas, M., Marimón, W., & Miranda, M. (2011). Diseño de un proceso económico y competitivo para la extracción de quitina y producción de quitosano a partir de exoesqueletos de camarón. (Tesis de grado). Universidad de Cartagena, Colombia. Camp, T. R. (1943). Velocity gradients and internal work in fluid motion. Campo Vera, Y., Delgado, M. A., Roa, Y., Mora, G., & Carreño Ortiz, J. (2018). Evaluación preliminar del efecto del quitosano y cascara de naranja en la coagulación-floculación de aguas residuales. Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 21(2), 565-572. Campos, José Roberto; Di bernardo Luís. Uso de polímeros Naturales en el Tratamiento de Agua para abastecimiento, CINARA, Centro Inter. Regional de abastecimiento y Remoción de Agua, Universidad de Sao Paulo, Escuela de ingeniería de Sao Carlos – Brasil.2000 Centro de cooperación del Mediterráneo de UICN. (2007). Guía para el Desarrollo Sostenible de la Acuicultura Mediterránea. Interacciones entre la Acuicultura y el Medio Ambiente. Recuperado el 22 de 08 de 2020, de uicn.org: https://www.iucn.org/sites/dev/files/import/downloads/interactions_es_lr.pdf. Chatelet, C., Damour, O. y Domard, A. (2001). Influencia del grado de acetilación sobre algunas propiedades biológicas de las películas de quitosano. Biomateriales, 22 (3), 261-268. Choque-Quispe, David, Choque-Quispe, Yudith, Solano-Reynoso, Aydeé M., & Ramos-Pacheco, Betsy S. (2018). Capacity flocculant of natural coagulants in water treatment. Tecnología Química, 38(2), 298-309. Recuperado en 04 de junio de 2020, de http://scielo.sld.cu/scielo.phpscript=sci_arttext&pid=S222461852018000200008&lng=es&tlng=en. Cruz, G., Guzmán, V., Rimaycuna, J., Alfaro, R., Cruz, J., Aguirre, D., & Ubillus, E. (2016). Tratamiento complementario de agua potable utilizando un filtro de carbón activado impregnado con quitosano producidos a partir de biomasa residual. Manglar, 12(1), 65-74. Días Ponceca, N. Y., Lino Matos, C. R., & Quispe Huaytalla, R. (2018). Uso del quitosano como coagulante natural para el tratamiento de efluentes generados por la industria textil caso: Compañía Universal Textil SA. Díaz, C., Jacinto, C., Medina, R., Navarro, A., Cuizano, N., & Llanos, B. (2013). Estudio de la biosorcion de cromo (VI) con quitosano cuaternario reticulado para su aplicación en biorremediación de aguas contaminadas. Revista de la Sociedad Química del Perú, 79(4), 304318 Donato, N.; Navarro, R.; Ávila, M.; Mendizábal. Obtención de sulfato de quitosano y su aplicación en el proceso de coagulación-floculación de suspensiones coloidales aniónicas de caolinita. Revista Iberoamericana de Polímeros, 2006, 7. Dumez, L. d. (1985). “Tratamiento de Agua” “Tratamiento de Agua”. Ebeling, J.M.; Welsh, C. F; Rishel, K.L.; & Sibrell, P.L. (2006). Screening and evaluation of polymers as flocculation aids for the treatment of aqua-cultural effluents. Aquacult. Eng 33 (4), 235–249. European Commission. Science for Environment Policy Sustainable Aquaculture. Recuperado el 15 de 08 de 2020, de Comision Europea: http://ec.europa.eu/environment/integration/research/newsalert/pdf/sustainable_aquaculture_FB11_en.pdf. Expósito R. (2010). Quitosano, un biopolímero con aplicaciones en sistemas de Liberación controlada en fármacos. (Tesis Doctoral). Universidad Complutense de Madrid, España. FAO, Organización de la Naciones Unidas para la alimentación y la agricultura. (2014). El estado mundial de la pesca y la acuicultura, oportunidades y desafíos. Recuperado el 16 de 08 de 2020, de FAO.org: http://www.fao.org/3/a-i3720s.pdf Flaten, T.P. 2001. Aluminium as a risk factor in Alzheimer’s disease, with emphasis on drinking water. Brain Res. Bull. 55:187-196. Fong, L., (2012). Evaluación del grado de conversión de quitina a quitosano procedente del exoesqueleto del abdomen del camarón (Litopenaeus Vannamel) en función del contenido de nitrógeno total medido durante la hidrolisis alcalina a nivel laboratorio. (Tesis de grado). Universidad San Carlos de Guatemala, Guatemala Fuentes Molina, N., Molina Rodríguez, E. J., & Ariza, C. P. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas. Producción+Limpia, 11(2), 41-54. Garcés, M., (2013). Inmovilización enzimática de lipasa mediante el agente quitosano obtenido del exoesqueleto de cangrejo cáncer setosus. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Lima - Perú. García, Ángela & Ramos, Rodrigo & Castro Salazar, Hans. (2016). Aprovechamiento de las escamas de la industria acuícola en el departamento del Huila, Colombia. Producción + Limpia. 11.102.10.22507/pml. v11n2a9. García, C. (2017). Obtención de quitosano a partir de exoesqueleto de langostino blanco (litopenaeus vannamei), para el tratamiento de efluentes industriales (Doctoral dissertation, Tesis de Ingeniería Agroindustrial y Comercio Exterior, Universidad Señor de Sipán, Lambayeque, Perú). Ghebremichael, K. A.; Gunaratna, K. R.; Henriksson H.; Brumer, H.; Dalhammar, G. (2005). A simple purification and activity assay of the coagulant protein from Moringa oleifera seed. Water Research, 39, 2338-2344. González, m.; hernández, c.; kaehler, j. Determinación de aluminio en el agua potable de Valencia y localidades cercanas, Tesis de grado, Departamento de Química, Universidad de Carabobo, 1991. Gopalakannan, A. y Arul, V. (2006). Efectos inmunomoduladores de la ingesta dietética de quitina, quitosano y levamisol sobre el sistema inmunológico de Cyprinus carpio y el control de la infección por Aeromonas hydrophila en estanques. Acuicultura, 255 (1-4), 179-187. Guzmán, L., Villabona, Á., Tejada, C., & García, R. (2013). Reducción de la turbidez del agua usando coagulantes naturales: una revisión. Hood LF, Zall RR. (1980). Recovery, utilization, and treatment of seafood processing wastes. In: Conell JJ (ed) Advances in fish science and technology. Fishing News Books, Ltd., Surrey, England Howe, k. J. (2017). Principios del tratamiento de agua. México. Hu, C. Y., Lo, S. L., Chang, C. L., Chen, F. L., Wu, Y. D., & Ma, J. L. (2013). Treatment of highly turbid water using chitosan and aluminum salts. Separation and Purification Technology, 104,322-326. Jairo, A. M. (2014). Eficiencia de la semilla Moringa Oleífera como coagulante natural para la remoción de la turbidez del río Sinú. Producción+ limpia, 91. Jairo, A. M. E. T. J., Díaz, F., & Roa, S. B. (2014). Eficiencia de la semilla Moringa Oleífera como coagulante natural para la remoción de la turbidez del río Sinú. Producción+ limpia, 9(1). Kiely, G. 1999. Ingeniería ambiental. Fundamentos, entornos, tecnologías y sistemas de gestión. Vol. II. España. McGraw-Hill. 1331p). Lárez C. (2006). Quitina y quitosano: materiales del pasado para el presente y el futuro. Grupo de polímeros. Departamento de Química. Facultad de Ciencias. Universidad de los Andes, Venezuela. Recuperado de: http://www.saber.ula.ve/avancesenquimica. Lárez Velásquez, Cristóbal. (2003). Algunos usos del quitosano en sistemas acuosos. Revista Iberoamericana de Polímeros. 4. 91. Leonardo, V. G. (2013). Remoción de turbiedad de agua con coagulantes naturales obtenidos de semillas (Eritrina americana, Quercus ilex, Acacia farnesiana, Viscum album y Senna candolleana). Naturaleza y desarrollo, (11). Lin, W., Khor, E., Koon, T., Yong, L., & Ching S. (2001). Concurrent production of chitin from shrimp shells and fungi. Department of Chemistry, Faculty of Science, National University of Singapore. Carbohydrate Research, 332, 305- 316. Liu, D. W. (2013). Removal of algal blooms from freshwater by the coagulation-magnetic separation method. Environmental Science and Pollution Research International. Lopes, A. S. & Silva, F. J. (2004). Tratamiento de efluente de tanque de piscicultura con Moringa oleífera. XI SILUBESA - Simposio Luso-Brasileiro de Engenharia sanitaria e Ambiental, Natal/RN. Lorena Fuentes et al. (2008). Uso del quitosano obtenido de Litopenaeus schmitti (Decapoda, Penaeidae) en el tratamiento de aguapara consumo humano. Multiciencias. Ma, C.; Wenrong, H.; Pei, H., Xu, H.; & Pei, R. (2016). La mejora de la eliminación integrada de Micro-cystis aeruginosa y la adsorción de microcistinas usando coagulantes combinados de cloruro de aluminio quitosano: Efecto de las órdenes de dosificación de productos químicos y los mecanismos de coagulación. Coloides y Superficies 490, 258 – 267. Majeti, N.V., & Kumar, R. (2000). A review of chitin and chitosan applications. Reactive and Functional Polymers, 46(1), 1-27. Mandujano Tazza, N. P. (2020). Biopolímeros microbianos: aplicaciones en biomedicina y farmacia. Márquez Rivera, S. J., & Zúñiga Salazar, B. A. (2019). Desacetilación termoalcalina de la quitina de cáscara de camarón para depuración de aguas residuales de una industria procesadora de salsas (Bachelor's thesis, Universidad de Guayaquil. Facultad de Ingeniería Química). Martínez, N. C. C., Julio, A. R. H., Vásquez, E. D. P. S., Jiménez, J. M. A., & Caraballo, K. A. (2017). Coagulantes naturales extraídos de Ipomoea incarnata en el tratamiento de aguas residuales industriales en Cartagena de Indias. Scientia et technica, 22(1), 109-113. Miller, r.g.; kopfler, f.c.; kelty, k.c.; stober, j.a.; ulmer, n.s. 1984. The occurrence of aluminium in drinking water. J. Am. Water Workers Assoc. 76:84-91. Molina, N. F. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas., 11(2). Producción+ Limpia, 11. Molina, N. F., Rodríguez, E. J. M., & Ariza, C. P. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas. Producción+ Limpia, 11(2). Muslim, T., Rahman, M., Begum, H. & Rahman, M. (2013). Chitosan and Carboxymethyl Chitosan from Fish Scales of Labeo rohita. Dhaka Univ. J. Sci, 61 (1), 145-148. Ndabigengesere, A., & NArasiah, K. (1998). Quality of water treated by coagulation using Moringa oleifera seeds. Water Research, 781 - 791. Disponible en: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0043135497002959 Nieto, R., & Orellana, P., (2011) Aplicación del quitosano como promotor de floculación para disminuir la carga contaminante. (Tesis de grado). Universidad Politécnica Salesiana, Sede Cuenca-Colombia. Özkan, O. O. (2010). Characterisation of medical-waste sterilisation-plant wastewater and a preliminary study of coagulation-flocculation treatment options. En W. S. Technology. Pardo, J. M., & Vargas, L. (2014). Eficiencia del quitosano como coagulante en aguas residuales de una industria procesadora de harina. Boletín del Centro de Investigaciones Biológicas, 48(3), 206223. Quintana, R. (2000). Cómo tratar el agua. Documento técnico. Coca Cola de Colombia, Bogotá D.C. Rinaudo, M. (2006). Quitina y quitosano: propiedades y aplicaciones. Progreso en la ciencia de los polímeros, 31 (7), 603-632. Rodríguez Díaz et al. (2015). Uso de un polímero natural (quitosano) como coagulante durante el tratamiento de agua para consumo. INGENIARE, 25-32. Rodríguez, J. P. (2007). "Evaluación del proceso de la coagulación para el diseño de una planta potabilizadora.”. Umbral científico 11, 8-16. Šćiban, m.; klašnja, m; stojimirovic, J. 2005. Investigation of coagulation activity of natural coagulants from seeds of different leguminose species. Acta Periodica Technol. 36:81-87. Tello Palma, E. (2017). Evaluación del quitosano obtenido a partir de escamas de la trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) por métodos químicos y biológico. Uawonggul, N., Kongsri, S., & Chanthai, S. (2011). Study on Dye-Binding Interactions of Chitosan Obtained from the Fish Scale of Tilapia (Tilapia nilotica). International Journal of Pure & Applied Chemistry, 6 (2), 139-147. Valencia, J. A. (2000). Teoría y práctica de la purificación del agua. Bogotá: Mc graw-hill. Vásquez, L., Vidal, B., (2011). Caracterización y alternativa de uso de una película biodegradable de quitosano a partir de la extracción de quitina de langostino (Pleuroncodes planipes) para la industria de alimentos. (Tesis de grado). Facultad Universidad del Salvador, El Salvador. Yee, K.; & Yeong, T. (2015). Optimizado el uso de alumbre no modificado, junto con Cassia obtusifolia goma de semilla como una ayuda de coagulan-te en el tratamiento del efluente de la planta de aceite de palma en condiciones de pH natural de las aguas residuales. Industrial crops a pro-duct 76, 1169 – 1178 Yongabi, K.A. 2004. Studies on the potential use of medicinal plants and macrofungi (lower plants) in water and wastewater purification. FMENV/ZERI Res. Centre. Abubakar Tafawa Balewa U. Bauchi. Nigeria. Disponible desde Internet en: http: www.botech.kth.se/ iobb/news/e-sem05.html.
dc.rights.spa.fl_str_mv	Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International
dc.rights.uri.spa.fl_str_mv	http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rights.accessrights.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.coar.spa.fl_str_mv	http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv	Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv	openAccess
dc.format.mimetype.spa.fl_str_mv	application/pdf
dc.publisher.spa.fl_str_mv	Corporación Universidad de la Costa
dc.publisher.program.spa.fl_str_mv	Ingeniería Ambiental
institution	Corporación Universidad de la Costa
bitstream.url.fl_str_mv	https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/faabf234-e99f-4821-ad11-80d5f9f39e9f/download https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/bebf796c-6865-4f5a-9d84-4e26834fa5ac/download https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/5e9de402-1162-43b7-8a05-69903a36d973/download
bitstream.checksum.fl_str_mv	a1c0fadda75dde584da05b06c050561b 934f4ca17e109e0a05eaeaba504d7ce4 e30e9215131d99561d40d6b0abbe9bad
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv	MD5 MD5 MD5
repository.name.fl_str_mv	Repositorio de la Universidad de la Costa CUC
repository.mail.fl_str_mv	repdigital@cuc.edu.co
_version_	1811760709235638272
spelling	Cantero Rodelo, Ruben DarioGómez Plata, LeandroCruz Jiménez, Keila Isabel2021-12-10T15:32:31Z2021-12-10T15:32:31Z2021https://hdl.handle.net/11323/8957Corporación Universidad de la CostaREDICUC - Repositorio CUChttps://repositorio.cuc.edu.co/In this work, the coagulant properties of chitosan were investigated, finding that it is a linear cationic polymer, biodegradable, with excellent characteristics as a coagulant, due to the presence of amino groups in its structure that confer the ability to reduce the presence of colloids in water. Thus, the objective of the present work was to prepare a natural coagulant from chitosan, originating from fish scales of the Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), by the homogeneous chemical method. First, the chitin was separated from the scales, through depigmentation, deproteinization, demineralization and deacetylation processes (obtaining chitosan); Which had a yield in the process of 78%, 78.20%, 88.752% and 30% respectively. To verify the efficiency of the procedure, the structure of the chitosan obtained was characterized, where a degree of DD (76.87%), proteins (<2.45%) and ashes (40.52%) were obtained by potentiometric titration. Said results obtained are theoretically compared with different types of coagulants, both of commercial origin, and obtained experimentally, by other authors; In both cases, the chitosan obtained from Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), has shown favorable results in the different processes that have been compared. By applying the chitosan obtained, as a coagulant to the water treatment, different jar tests were developed to obtain the optimal dose of coagulant (300mg / l) and the flocculation time (30 min). These variables were subjected to an ANOVA statistical analysis, which indicates that the coagulant dose and flocculation time do significantly affect (p-value <0.05) on the removal of turbidity from the water; Thus, obtaining a decrease in turbidity of 76.30%, so it can be inferred that the coagulant performance and the parameters to be determined were optimal. However, when comparing the values obtained for turbidity and final color, with the maximum permissible limits of resolution 2115 of 2007 regulation of water quality for human consumption, the average turbidity obtained was 79.1 NTU and 370 UPC for color, exceeding the permissible limits. Because the coagulant is not totally removing the impurities present in the water sample from the Magdalena River to be studied; It is recommended before using the coagulant, to carry out a sweep to eliminate impurities, in addition to improving the deacetylation stage, to obtain a purer chitosan (higher degree of DD) and thus be able to obtain a better performance of the coagulant and therefore a yield greater in the removal of turbidity and color.En este trabajo, se investigó sobre las propiedades coagulantes del quitosano, encontrándose que es un polímero catiónico lineal, biodegradable, con excelentes características como coagulante, debido a la presencia de los grupos aminos en su estructura que confieren la capacidad para disminuir la presencia de coloides en el agua. De este modo, el objetivo del presente trabajo fue preparar un coagulante natural a partir de quitosano, originario de escamas de pescado de la Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), por el método químico homogéneo. Primeramente, se separó la quitina de las escamas, mediante los procesos de despigmentación, desproteinizacion, desmineralización y des acetilación (obtención de quitosano); Los cuales tuvieron un rendimiento en el proceso de 78%, 78.20%, 88.752 % y 30% respectivamente. Para comprobar la eficiencia del procedimiento se caracterizó la estructura del quitosano obtenido, donde se obtuvo por titulación potencio métrica un grado de DD (76,87%), proteínas (<2.45%) y cenizas (40.52%). Dichos resultados obtenidos se encuentran comparados teóricamente con diferentes tipos de coagulantes, tanto de origen comercial, como obtenidos de manera experimental, por otros autores; En ambos casos el quitosano obtenido a partir de Mojarra Lora (Oreochromis niloticus), ha mostrado resultados favorables en los diferentes procesos que se han comparados. Al aplicar el quitosano obtenido, como coagulante al tratamiento de agua, se desarrollaron diferentes pruebas de jarras para obtener la dosis optima de coagulante (300mg/l) y el tiempo de floculación (30 min). Estas variables se sometieron a un análisis estadístico ANOVA, el cual indica que la dosis de coagulante y tiempo de floculación, si afectan significativamente (p-valor < 0.05) sobre la remoción de la turbiedad del agua; Obteniendo así una disminución de la turbiedad del 76.30%, por lo que se puede inferir que la realización del coagulante y los parámetros a determinar fueron óptimos. Sin embargo, al comparar los valores obtenidos de turbiedad y color final, con los límites máximos permisibles de la resolución 2115 del 2007 normatividad de calidad de agua para consumo humano, la turbiedad promedio que se obtuvo fue 79.1 NTU y 370 UPC para color, sobrepasan los límites permisibles. Debido a que el coagulante no está removiendo totalmente las impurezas presentes en la muestra de agua del rio magdalena a estudiar; se recomienda antes de utilizar el coagulante, realizar un barrido para eliminar las impurezas, además de mejorar la etapa de des acetilación, para obtener un quitosano más puro (mayor grado de DD) y así poder obtener un mejor rendimiento del coagulante y por ende un rendimiento mayor en la remoción de turbiedad y color.application/pdfspaCorporación Universidad de la CostaIngeniería AmbientalAttribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 Internationalhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2ChitosanFlakesCoagulation-flocculationHomogeneous chemical methodTurbidityWater qualityDeacetylationQuitosanoEscamasCoagulación-floculaciónMétodo químico homogéneoTurbiedadCalidad del aguaDesacetilaciónObtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potableTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttp://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionA. Zambrano and D. Liliana. (2008). Modelo de correlación entre las variables medibles en línea que afectan el proceso de determinación de la dosis óptima.Agulló, E., Mato R., Peniche, C., Tapia, C., Heras, A., Pastor de Abram A, et al. (2004). Quitina y quitosano: obtención, caracterización y aplicaciones. Ed. Ana Pastor de Abram. Lima, Perú: Fondo editorial de la Pontificia Universidad Católica del Perú.Álava, J. M. (2015). Aplicación de quitosano como biocoagulante en aguas residuales contaminadas con hidrocarburos. Enfoque UTE, 6(3), 52-64.Andia, Y. (2000). Tratamiento de Agua. 16-17.APHA, AWWA, WCF. Standard Methods for the Examination of Water and Waste. 18th Ed. American PublicHealth Association/American Water Works Association/Water Environmental Federation, Washington, DC., USA, 1998, 1207 ppArboleda. (1994). Teoría y práctica de la purificación del agua. Bogotá.Autoridad Nacional de Acuicultura y pesca (AUNAP) y Organización de las Naciones Unidas para la alimentación y agricultura FAO. (2014). Plan Nacional para el Desarrollo Sostenible de la Acuicultura en Colombia PlaNDAS. Recuperado el 15 de 08 de 2020, de Pagina de AUNAP: http://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/Plan-Nacional-para-el-Desarrollode-la AcuiculturaSostenible-Colombia.pdf.Balanta, D.; Grande, C. D.; & Zuluaga, F. (2010). Extracción, identificación y caracterización de quitosano del micelio de Aspergillus Níger y sus aplicaciones como material bioadsorbente en el tratamiento de aguas. Revista Iberoamericana de Polímeros 11(5), 297-316.Barth, H.; Habs, M.; Klute, R.; Müller, S.; Tauscher, B. (1982). Trinkwasseraufbereitung mit samen von Moringa oleifera lam. Chemiker-Zeitung (Drinking Water Treatment with Moringa oleifera Seeds). Chemists Newspaper, 106, 75–78.Berghoff, C. F. (2011). Desarrollo y caracterización de matrices compuestas quitosano/polímero sintético para regeneración de tejido óseo. (Tesis Doctoral). Universidad Nacional de la Plata - Facultad de Ciencias Exactas. Argentina.Cabarcas, M., Marimón, W., & Miranda, M. (2011). Diseño de un proceso económico y competitivo para la extracción de quitina y producción de quitosano a partir de exoesqueletos de camarón. (Tesis de grado). Universidad de Cartagena, Colombia.Camp, T. R. (1943). Velocity gradients and internal work in fluid motion.Campo Vera, Y., Delgado, M. A., Roa, Y., Mora, G., & Carreño Ortiz, J. (2018). Evaluación preliminar del efecto del quitosano y cascara de naranja en la coagulación-floculación de aguas residuales. Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 21(2), 565-572.Campos, José Roberto; Di bernardo Luís. Uso de polímeros Naturales en el Tratamiento de Agua para abastecimiento, CINARA, Centro Inter. Regional de abastecimiento y Remoción de Agua, Universidad de Sao Paulo, Escuela de ingeniería de Sao Carlos – Brasil.2000Centro de cooperación del Mediterráneo de UICN. (2007). Guía para el Desarrollo Sostenible de la Acuicultura Mediterránea. Interacciones entre la Acuicultura y el Medio Ambiente. Recuperado el 22 de 08 de 2020, de uicn.org: https://www.iucn.org/sites/dev/files/import/downloads/interactions_es_lr.pdf.Chatelet, C., Damour, O. y Domard, A. (2001). Influencia del grado de acetilación sobre algunas propiedades biológicas de las películas de quitosano. Biomateriales, 22 (3), 261-268.Choque-Quispe, David, Choque-Quispe, Yudith, Solano-Reynoso, Aydeé M., & Ramos-Pacheco, Betsy S. (2018). Capacity flocculant of natural coagulants in water treatment. Tecnología Química, 38(2), 298-309. Recuperado en 04 de junio de 2020, de http://scielo.sld.cu/scielo.phpscript=sci_arttext&pid=S222461852018000200008&lng=es&tlng=en.Cruz, G., Guzmán, V., Rimaycuna, J., Alfaro, R., Cruz, J., Aguirre, D., & Ubillus, E. (2016). Tratamiento complementario de agua potable utilizando un filtro de carbón activado impregnado con quitosano producidos a partir de biomasa residual. Manglar, 12(1), 65-74.Días Ponceca, N. Y., Lino Matos, C. R., & Quispe Huaytalla, R. (2018). Uso del quitosano como coagulante natural para el tratamiento de efluentes generados por la industria textil caso: Compañía Universal Textil SA.Díaz, C., Jacinto, C., Medina, R., Navarro, A., Cuizano, N., & Llanos, B. (2013). Estudio de la biosorcion de cromo (VI) con quitosano cuaternario reticulado para su aplicación en biorremediación de aguas contaminadas. Revista de la Sociedad Química del Perú, 79(4), 304318Donato, N.; Navarro, R.; Ávila, M.; Mendizábal. Obtención de sulfato de quitosano y su aplicación en el proceso de coagulación-floculación de suspensiones coloidales aniónicas de caolinita. Revista Iberoamericana de Polímeros, 2006, 7.Dumez, L. d. (1985). “Tratamiento de Agua” “Tratamiento de Agua”.Ebeling, J.M.; Welsh, C. F; Rishel, K.L.; & Sibrell, P.L. (2006). Screening and evaluation of polymers as flocculation aids for the treatment of aqua-cultural effluents. Aquacult. Eng 33 (4), 235–249.European Commission. Science for Environment Policy Sustainable Aquaculture. Recuperado el 15 de 08 de 2020, de Comision Europea: http://ec.europa.eu/environment/integration/research/newsalert/pdf/sustainable_aquaculture_FB11_en.pdf.Expósito R. (2010). Quitosano, un biopolímero con aplicaciones en sistemas de Liberación controlada en fármacos. (Tesis Doctoral). Universidad Complutense de Madrid, España.FAO, Organización de la Naciones Unidas para la alimentación y la agricultura. (2014). El estado mundial de la pesca y la acuicultura, oportunidades y desafíos. Recuperado el 16 de 08 de 2020, de FAO.org: http://www.fao.org/3/a-i3720s.pdfFlaten, T.P. 2001. Aluminium as a risk factor in Alzheimer’s disease, with emphasis on drinking water. Brain Res. Bull. 55:187-196.Fong, L., (2012). Evaluación del grado de conversión de quitina a quitosano procedente del exoesqueleto del abdomen del camarón (Litopenaeus Vannamel) en función del contenido de nitrógeno total medido durante la hidrolisis alcalina a nivel laboratorio. (Tesis de grado). Universidad San Carlos de Guatemala, GuatemalaFuentes Molina, N., Molina Rodríguez, E. J., & Ariza, C. P. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas. Producción+Limpia, 11(2), 41-54.Garcés, M., (2013). Inmovilización enzimática de lipasa mediante el agente quitosano obtenido del exoesqueleto de cangrejo cáncer setosus. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Lima - Perú.García, Ángela & Ramos, Rodrigo & Castro Salazar, Hans. (2016). Aprovechamiento de las escamas de la industria acuícola en el departamento del Huila, Colombia. Producción + Limpia. 11.102.10.22507/pml. v11n2a9.García, C. (2017). Obtención de quitosano a partir de exoesqueleto de langostino blanco (litopenaeus vannamei), para el tratamiento de efluentes industriales (Doctoral dissertation, Tesis de Ingeniería Agroindustrial y Comercio Exterior, Universidad Señor de Sipán, Lambayeque, Perú).Ghebremichael, K. A.; Gunaratna, K. R.; Henriksson H.; Brumer, H.; Dalhammar, G. (2005). A simple purification and activity assay of the coagulant protein from Moringa oleifera seed. Water Research, 39, 2338-2344.González, m.; hernández, c.; kaehler, j. Determinación de aluminio en el agua potable de Valencia y localidades cercanas, Tesis de grado, Departamento de Química, Universidad de Carabobo, 1991.Gopalakannan, A. y Arul, V. (2006). Efectos inmunomoduladores de la ingesta dietética de quitina, quitosano y levamisol sobre el sistema inmunológico de Cyprinus carpio y el control de la infección por Aeromonas hydrophila en estanques. Acuicultura, 255 (1-4), 179-187.Guzmán, L., Villabona, Á., Tejada, C., & García, R. (2013). Reducción de la turbidez del agua usando coagulantes naturales: una revisión.Hood LF, Zall RR. (1980). Recovery, utilization, and treatment of seafood processing wastes. In: Conell JJ (ed) Advances in fish science and technology. Fishing News Books, Ltd., Surrey, EnglandHowe, k. J. (2017). Principios del tratamiento de agua. México.Hu, C. Y., Lo, S. L., Chang, C. L., Chen, F. L., Wu, Y. D., & Ma, J. L. (2013). Treatment of highly turbid water using chitosan and aluminum salts. Separation and Purification Technology, 104,322-326.Jairo, A. M. (2014). Eficiencia de la semilla Moringa Oleífera como coagulante natural para la remoción de la turbidez del río Sinú. Producción+ limpia, 91.Jairo, A. M. E. T. J., Díaz, F., & Roa, S. B. (2014). Eficiencia de la semilla Moringa Oleífera como coagulante natural para la remoción de la turbidez del río Sinú. Producción+ limpia, 9(1).Kiely, G. 1999. Ingeniería ambiental. Fundamentos, entornos, tecnologías y sistemas de gestión. Vol. II. España. McGraw-Hill. 1331p).Lárez C. (2006). Quitina y quitosano: materiales del pasado para el presente y el futuro. Grupo de polímeros. Departamento de Química. Facultad de Ciencias. Universidad de los Andes, Venezuela. Recuperado de: http://www.saber.ula.ve/avancesenquimica.Lárez Velásquez, Cristóbal. (2003). Algunos usos del quitosano en sistemas acuosos. Revista Iberoamericana de Polímeros. 4. 91.Leonardo, V. G. (2013). Remoción de turbiedad de agua con coagulantes naturales obtenidos de semillas (Eritrina americana, Quercus ilex, Acacia farnesiana, Viscum album y Senna candolleana). Naturaleza y desarrollo, (11).Lin, W., Khor, E., Koon, T., Yong, L., & Ching S. (2001). Concurrent production of chitin from shrimp shells and fungi. Department of Chemistry, Faculty of Science, National University of Singapore. Carbohydrate Research, 332, 305- 316.Liu, D. W. (2013). Removal of algal blooms from freshwater by the coagulation-magnetic separation method. Environmental Science and Pollution Research International.Lopes, A. S. & Silva, F. J. (2004). Tratamiento de efluente de tanque de piscicultura con Moringa oleífera. XI SILUBESA - Simposio Luso-Brasileiro de Engenharia sanitaria e Ambiental, Natal/RN.Lorena Fuentes et al. (2008). Uso del quitosano obtenido de Litopenaeus schmitti (Decapoda, Penaeidae) en el tratamiento de aguapara consumo humano. Multiciencias.Ma, C.; Wenrong, H.; Pei, H., Xu, H.; & Pei, R. (2016). La mejora de la eliminación integrada de Micro-cystis aeruginosa y la adsorción de microcistinas usando coagulantes combinados de cloruro de aluminio quitosano: Efecto de las órdenes de dosificación de productos químicos y los mecanismos de coagulación. Coloides y Superficies 490, 258 – 267.Majeti, N.V., & Kumar, R. (2000). A review of chitin and chitosan applications. Reactive and Functional Polymers, 46(1), 1-27.Mandujano Tazza, N. P. (2020). Biopolímeros microbianos: aplicaciones en biomedicina y farmacia.Márquez Rivera, S. J., & Zúñiga Salazar, B. A. (2019). Desacetilación termoalcalina de la quitina de cáscara de camarón para depuración de aguas residuales de una industria procesadora de salsas (Bachelor's thesis, Universidad de Guayaquil. Facultad de Ingeniería Química).Martínez, N. C. C., Julio, A. R. H., Vásquez, E. D. P. S., Jiménez, J. M. A., & Caraballo, K. A. (2017). Coagulantes naturales extraídos de Ipomoea incarnata en el tratamiento de aguas residuales industriales en Cartagena de Indias. Scientia et technica, 22(1), 109-113.Miller, r.g.; kopfler, f.c.; kelty, k.c.; stober, j.a.; ulmer, n.s. 1984. The occurrence of aluminium in drinking water. J. Am. Water Workers Assoc. 76:84-91.Molina, N. F. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas., 11(2). Producción+ Limpia, 11.Molina, N. F., Rodríguez, E. J. M., & Ariza, C. P. (2016). Coagulantes naturales en sistemas de flujo continuo, como sustituto del Al2 (SO4) 3 para clarificación de aguas. Producción+ Limpia, 11(2).Muslim, T., Rahman, M., Begum, H. & Rahman, M. (2013). Chitosan and Carboxymethyl Chitosan from Fish Scales of Labeo rohita. Dhaka Univ. J. Sci, 61 (1), 145-148.Ndabigengesere, A., & NArasiah, K. (1998). Quality of water treated by coagulation using Moringa oleifera seeds. Water Research, 781 - 791. Disponible en: http://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0043135497002959Nieto, R., & Orellana, P., (2011) Aplicación del quitosano como promotor de floculación para disminuir la carga contaminante. (Tesis de grado). Universidad Politécnica Salesiana, Sede Cuenca-Colombia.Özkan, O. O. (2010). Characterisation of medical-waste sterilisation-plant wastewater and a preliminary study of coagulation-flocculation treatment options. En W. S. Technology.Pardo, J. M., & Vargas, L. (2014). Eficiencia del quitosano como coagulante en aguas residuales de una industria procesadora de harina. Boletín del Centro de Investigaciones Biológicas, 48(3), 206223.Quintana, R. (2000). Cómo tratar el agua. Documento técnico. Coca Cola de Colombia, Bogotá D.C.Rinaudo, M. (2006). Quitina y quitosano: propiedades y aplicaciones. Progreso en la ciencia de los polímeros, 31 (7), 603-632.Rodríguez Díaz et al. (2015). Uso de un polímero natural (quitosano) como coagulante durante el tratamiento de agua para consumo. INGENIARE, 25-32.Rodríguez, J. P. (2007). "Evaluación del proceso de la coagulación para el diseño de una planta potabilizadora.”. Umbral científico 11, 8-16.Šćiban, m.; klašnja, m; stojimirovic, J. 2005. Investigation of coagulation activity of natural coagulants from seeds of different leguminose species. Acta Periodica Technol. 36:81-87.Tello Palma, E. (2017). Evaluación del quitosano obtenido a partir de escamas de la trucha arco iris (Oncorhynchus mykiss) por métodos químicos y biológico.Uawonggul, N., Kongsri, S., & Chanthai, S. (2011). Study on Dye-Binding Interactions of Chitosan Obtained from the Fish Scale of Tilapia (Tilapia nilotica). International Journal of Pure & Applied Chemistry, 6 (2), 139-147.Valencia, J. A. (2000). Teoría y práctica de la purificación del agua. Bogotá: Mc graw-hill.Vásquez, L., Vidal, B., (2011). Caracterización y alternativa de uso de una película biodegradable de quitosano a partir de la extracción de quitina de langostino (Pleuroncodes planipes) para la industria de alimentos. (Tesis de grado). Facultad Universidad del Salvador, El Salvador.Yee, K.; & Yeong, T. (2015). Optimizado el uso de alumbre no modificado, junto con Cassia obtusifolia goma de semilla como una ayuda de coagulan-te en el tratamiento del efluente de la planta de aceite de palma en condiciones de pH natural de las aguas residuales. Industrial crops a pro-duct 76, 1169 – 1178Yongabi, K.A. 2004. Studies on the potential use of medicinal plants and macrofungi (lower plants) in water and wastewater purification. FMENV/ZERI Res. Centre. Abubakar Tafawa Balewa U. Bauchi. Nigeria. Disponible desde Internet en: http: www.botech.kth.se/ iobb/news/e-sem05.html.PublicationORIGINALObtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potableObtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potableapplication/octet-stream3089244https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/faabf234-e99f-4821-ad11-80d5f9f39e9f/downloada1c0fadda75dde584da05b06c050561bMD51CC-LICENSElicense_rdflicense_rdfapplication/rdf+xml; charset=utf-81031https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/bebf796c-6865-4f5a-9d84-4e26834fa5ac/download934f4ca17e109e0a05eaeaba504d7ce4MD52LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-83196https://repositorio.cuc.edu.co/bitstreams/5e9de402-1162-43b7-8a05-69903a36d973/downloade30e9215131d99561d40d6b0abbe9badMD5311323/8957oai:repositorio.cuc.edu.co:11323/89572024-09-17 10:44:34.058http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 Internationalopen.accesshttps://repositorio.cuc.edu.coRepositorio de la Universidad de la Costa CUCrepdigital@cuc.edu.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

Obtención de quitosano por medio de escamas de pescado para tratamiento de agua potable

Publicaciones similares