Determinación de Babesia canis y Ehrlichia canis, en hemolinfa de garrapatas teleoginas de Riphicephalus sanguineus
El presente estudio se llevó a cabo en el laboratorio de microbiología de la Universidad de los Llanos Orientales, ubicada a 4 km de la ciudad de Villavicencio (Meta), con una temperatura promedio de 28°C, humedad relativa del 80% y una altura de 440 msnm. El objetivo fue determinar la presencia de...
- Autores:
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Gonzales Barbosa, Liliana
Lesmes, Luis Alfonso
- Tipo de recurso:
- Article of journal
- Fecha de publicación:
- 2013
- Institución:
- Universidad de los Llanos
- Repositorio:
- Repositorio Digital Universidad de los LLanos
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- Acceso en línea:
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El presente estudio se llevó a cabo en el laboratorio de microbiología de la Universidad de los Llanos Orientales, ubicada a 4 km de la ciudad de Villavicencio (Meta), con una temperatura promedio de 28°C, humedad relativa del 80% y una altura de 440 msnm. El objetivo fue determinar la presencia de Babesia canis y Ehrlichia canis, por medio del extendido y coloración de Giemsa en la hemolinfa de garrapatas teleoginas de Riphicephalus sanguineus (RS), mediante capturadas en perros de la ciudad de Villavicencio, utilizando la técnica de identificación propuesta por López (1980); con el fin de conocer si la técnica es aplicable para esta garrapata. Para el estudio se recolectaron 200 garrapatas teleoginas de RS, las cuales se tomaron de caninos infestados, en la ciudad de Villavicencio. Para el procedimiento del examen de hemolinfa se lavaron las garrapatas con agua y alcohol antiséptico al 70%, luego fueron secadas con toalla de papel introduciéndolas en cajas de petri para colocarlas a incubar a 28°C y 80% de humedad relativa por tres días. Se procedió a cortar los tarsos cuidadosamente de cada una de las garrapatas en incubación, extrayendo de estos una muestra de hemolinfa. Esta gota de hemolinfa se colocó en láminas porta objetos, se procedió a fijarla con alcohol metílico por 2 minutos, luego se inició la coloración con Giemsa por 45 minutos, posteriormente se observaron al microscopio (100x) y se identificaron las células de la hemolinfa. Las muestras analizadas de hemolinfa de RS, arrojaron un resultado del 100% negativas para los dos agentes patógenos en estudio Babesia canis y Ehrlichia canis. Aunque no se determinó la presencia de Ehrlichia canis y Babesia canis en los extendidos de hemolinfa tomados del tarso de las teleoginas de RS en los muestreos realizados no se puede asumir que los hemoparásitos no se encuentran presentes en los caninos, por esta razón es recomendable realizar muestreos de las garrapatas en diferentes fases del ciclo de vida, con base en estudios realizados en la hemolinfa de RS variando la temperatura. Se concluye que la técnica descrita por López en 1980, no es aplicable para la determinación de Babesia canis y Ehrlicha canis en las condiciones desarrolladas en el presente trabajo. |
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Aguirre, D. H., Cafrune M. M., Rada, M., Torioni de E. S. Babesiosis clínica en caninos. Cerillos, Argentina. p. 124-125. 2004. Almeira K. Garrapatas un peligro para la salud animal. En: www.scielo.com Instituto Butantan, São Paulo, Brasil. 2003. Baker A. S. Mites and ticks of domestic animals. An identification guide and information source. 1st ed. The Natural History Museum. The Stationary office. London. 240 p. 1999. Barreira J., Rossi M. I., Pires, F. A. et al. Dynamic of infection of Babesia bovis in engorged females and eggs of Boophilus microplus. Cienc. Rural, 35 (5): 1131-1135. 2005. Barriga O. O. Veterinary Parasitology. The Ohio State University. 297 p. 1994. Benavides O. E. Biología ovoposicional de la garrapata Boophilus microplus en condiciones de los Llanos orientales de Colombia. En: Revista ICA. 1984. Breitschwerdt E. B., Hegarty B. C., Hancock S. I. Sequential evaluation of dogs naturally infected with Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia equi, Ehrlichia ewingii, or Bartonella vinsonii, J. Clin. Microbiol, 36: 2645-2651. 1998. Castillo A., López J., Hallazgos de Ehrlichia canis en Chile, Valdivia, Chile volumen 31 n.2. 1999. Codner E. C., Farris S. L. L. Characterization of the subclinical phase of ehrlichiosis on dogs, Am. J. Vet. Res., 50: 1544. 1989. Cordero del C. et al. Parasitología Veterinaria, Mc Graw Hill, 1999. Cordovés, C. O. Carrapato controle ou erradicao. 2ª ed. Livraria Editora Agropecuária, Guaiba Rs-Brasil. 1997. Couto G., N. R. Medicina interna pequeños animales. 2ª ed. Editorial lntermédica, Buenos Aires, Argentina, 2000. Cholich L. A., Moriena R. A., Álvarez J. D. Identificación de hemoprotozoarios causante de la babesiosis canina en la ciudad de Corrientes. En: Comunicaciones Científicas y Tecnológicas, São Paulo, Brasil. 2004. Greene R. T. Canine ehrlichiosis: Clinical implications for humoral factors. En: Bonagura J. D.: Kirk's Current Veterinary Therapy, Small Animal Practice XII. W.S. Saunders, Philadelphia, U.S.A. 1995. Guglielmone AA, Bechara, GH, Szabó, MP, Barros, DM, Faccini JL, Labruna MB, et al. Garrapatas de importancia médica y veterinaria: América Latina y el Caribe. International Consortium on Ticks and Tick-borne Diseases (ICTTD-2). The Netherlands: p. 4. 2004. Hendrix, Ch. M., Diagnóstico Parasitológico Veterinario, 2ª Ed. Harcourt Brack. México, 1999. Hoskins, J. D. Ehrlichial diseases of dogs: diagnosis and treatment, Can. Pract. 16: 13-21. 1991. López, V., G. Control de garrapatas. Instituto Colombiano Agropecuario, ICA Regional 4, Medellín. Compendio N. 39. 1980. López, J. Ehrlichiosis canina. MEVEPA 13 (2): 34-35. 1999. Ristic M., Holland C. Ehrlichiosis canina. En: Manual de las enfermedades infecciosas en pequeños animales. 1ª ed., Editorial Médica Panamericana, S.A. Buenos Aires, Argentina. 1992. Magela M. S., Machado R., Lygia Friche Passos, Detection of Ehrlichia canis in bone marrow aspirates of experimentally infected dogs, 35 (4). 2005. de Tamí I del C., Tamí M. I. M. Identification morphological of Ehrlichia sp. In the plaquets of patients En: Pan American Journal of Public Health, Venezuela. 16 (5): 345-349. 2004 Wood B. J., Hoskins J. D. Ehrlichial diseases of dogs. Vet Clin. N. Am., 21: 75-98. 1991. |
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Para el estudio se recolectaron 200 garrapatas teleoginas de RS, las cuales se tomaron de caninos infestados, en la ciudad de Villavicencio. Para el procedimiento del examen de hemolinfa se lavaron las garrapatas con agua y alcohol antiséptico al 70%, luego fueron secadas con toalla de papel introduciéndolas en cajas de petri para colocarlas a incubar a 28°C y 80% de humedad relativa por tres días. Se procedió a cortar los tarsos cuidadosamente de cada una de las garrapatas en incubación, extrayendo de estos una muestra de hemolinfa. Esta gota de hemolinfa se colocó en láminas porta objetos, se procedió a fijarla con alcohol metílico por 2 minutos, luego se inició la coloración con Giemsa por 45 minutos, posteriormente se observaron al microscopio (100x) y se identificaron las células de la hemolinfa. Las muestras analizadas de hemolinfa de RS, arrojaron un resultado del 100% negativas para los dos agentes patógenos en estudio Babesia canis y Ehrlichia canis. Aunque no se determinó la presencia de Ehrlichia canis y Babesia canis en los extendidos de hemolinfa tomados del tarso de las teleoginas de RS en los muestreos realizados no se puede asumir que los hemoparásitos no se encuentran presentes en los caninos, por esta razón es recomendable realizar muestreos de las garrapatas en diferentes fases del ciclo de vida, con base en estudios realizados en la hemolinfa de RS variando la temperatura. Se concluye que la técnica descrita por López en 1980, no es aplicable para la determinación de Babesia canis y Ehrlicha canis en las condiciones desarrolladas en el presente trabajo.The present study was carried out in the laboratory of microbiology at the University of the Llanos Orientales, located 4 km from the city of Villavicencio (Meta), with an average temperature of 28°C, relative humidity of 80% and a height of 440 m.a.s.l. The objective was to determine the presence of Babesia canis and Ehrlichia canis, through extended and Giemsa in the hemolymph of engorged females of Rhipicephalus sanguineus ticks (RS) by dogs captured in the city of Villavicencio, using the proposed identification technique by Lopez (1980) in order to determine whether the technique is applicable to this tick. For the study collected 200 ticks engorged RS, which were taken from infected canines in the city of Villavicencio. For hemolymph-examination ticks were washed with water and 70% rubbing alcohol, then were dried with paper towel petri dishes fitting them in to place to incubate at 28°C and 80% relative humidity for three days. He proceeded to cut the shanks carefully each incubation ticks, extracting from them a sample of hemolymph. This drop of hemolymph was placed on slide slides, fixed with methyl alcohol for 2 minutes, then began staining with Giemsa for 45 minutes, then observed under a microscope (100x) and cells were identified by the hemolymph. The samples of hemolymph RS, yielded a negative result of 100% for both study pathogens Babesia canis and Ehrlichia canis. Although not determined the presence of Ehrlichia canis and Babesia canis in hemolymph smears taken from the tarsus of the RS engorged in the samples taken cannot be assumed that blood parasites are not present in canines, for this reason it is advisable to perform sampling of ticks in different phases of the life cycle, based on studies in the hemolymph of RS varying the temperature. We conclude that the technique described by Lopez in 1980, does not apply to the determination of Babesia canis and Ehrlicha canis in the conditions developed in the present work.application/pdfspaUniversidad de los LlanosRevista Sistemas de Producción Agroecológicos - 2013https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0info:eu-repo/semantics/openAccessEsta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.http://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://revistas.unillanos.edu.co/index.php/sistemasagroecologicos/article/view/611Determinación de Babesia canis y Ehrlichia canis, en hemolinfa de garrapatas teleoginas de Riphicephalus sanguineusDetermination of Babesia canis and Ehrlichia canis, in hemolymph of teleogynous ticks of Riphicephalus sanguineusArtículo de revistaJournal Articleinfo:eu-repo/semantics/articleSección Artículos originalesinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Texthttp://purl.org/redcol/resource_type/ARTREFhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Aguirre, D. H., Cafrune M. M., Rada, M., Torioni de E. S. Babesiosis clínica en caninos. Cerillos, Argentina. p. 124-125. 2004.Almeira K. Garrapatas un peligro para la salud animal. En: www.scielo.com Instituto Butantan, São Paulo, Brasil. 2003.Baker A. S. Mites and ticks of domestic animals. An identification guide and information source. 1st ed. The Natural History Museum. The Stationary office. London. 240 p. 1999.Barreira J., Rossi M. I., Pires, F. A. et al. Dynamic of infection of Babesia bovis in engorged females and eggs of Boophilus microplus. Cienc. Rural, 35 (5): 1131-1135. 2005.Barriga O. O. Veterinary Parasitology. The Ohio State University. 297 p. 1994.Benavides O. E. Biología ovoposicional de la garrapata Boophilus microplus en condiciones de los Llanos orientales de Colombia. En: Revista ICA. 1984.Breitschwerdt E. B., Hegarty B. C., Hancock S. I. 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Am., 21: 75-98. 1991.https://revistas.unillanos.edu.co/index.php/sistemasagroecologicos/article/download/611/666Núm. 1 , Año 2013771664Revista Sistemas de Producción AgroecológicosPublicationOREORE.xmltext/xml2656https://dspace7-unillanos.metacatalogo.org/bitstreams/9061f6f4-7ba2-4c41-a14f-0e752069ac5d/download5854b94b7ba259cbb651292911c9d1b4MD51001/2005oai:dspace7-unillanos.metacatalogo.org:001/20052024-04-17 16:39:52.506https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0Revista Sistemas de Producción Agroecológicos - 2013metadata.onlyhttps://dspace7-unillanos.metacatalogo.orgRepositorio Universidad de Los Llanosrepositorio@unillanos.edu.co |