Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito

El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en...

Full description

Autores:
Velásquez-Penagos, José G.
Velásquez-Penagos, José H.
Gutiérrez-Parrado, Sonia Lucía
Barajas-Pardo, Diana Patricia
Neira-Rivera, Eliana
Ortiz-Valdés, Ciro
Onofre-Rodríguez, Héctor G.
Tipo de recurso:
Article of journal
Fecha de publicación:
2019
Institución:
Universidad de los Llanos
Repositorio:
Repositorio Digital Universidad de los LLanos
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/3959
Acceso en línea:
https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3959
https://doi.org/10.22579/20112629.566
Palabra clave:
sperm quality
in vitro
oocytes
reproduction
semen
calidad espermátic
in vitro
ovocitos
reproducción
semen
qualidade espermática
in vitro
oócitos
reprodução
sêmen
Rights
openAccess
License
Orinoquia - 2019
id Unillanos2_86181ab93cf25c6e3c0cb1f86b89305b
oai_identifier_str oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/3959
network_acronym_str Unillanos2
network_name_str Repositorio Digital Universidad de los LLanos
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
dc.title.translated.eng.fl_str_mv Consumption of treated water from oil production in male bovine fertility of the double purpose system
title Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
spellingShingle Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
sperm quality
in vitro
oocytes
reproduction
semen
calidad espermátic
in vitro
ovocitos
reproducción
semen
qualidade espermática
in vitro
oócitos
reprodução
sêmen
title_short Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
title_full Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
title_fullStr Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
title_full_unstemmed Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
title_sort Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito
dc.creator.fl_str_mv Velásquez-Penagos, José G.
Velásquez-Penagos, José H.
Gutiérrez-Parrado, Sonia Lucía
Barajas-Pardo, Diana Patricia
Neira-Rivera, Eliana
Ortiz-Valdés, Ciro
Onofre-Rodríguez, Héctor G.
dc.contributor.author.spa.fl_str_mv Velásquez-Penagos, José G.
Velásquez-Penagos, José H.
Gutiérrez-Parrado, Sonia Lucía
Barajas-Pardo, Diana Patricia
Neira-Rivera, Eliana
Ortiz-Valdés, Ciro
Onofre-Rodríguez, Héctor G.
dc.subject.eng.fl_str_mv sperm quality
in vitro
oocytes
reproduction
semen
topic sperm quality
in vitro
oocytes
reproduction
semen
calidad espermátic
in vitro
ovocitos
reproducción
semen
qualidade espermática
in vitro
oócitos
reprodução
sêmen
dc.subject.spa.fl_str_mv calidad espermátic
in vitro
ovocitos
reproducción
semen
qualidade espermática
in vitro
oócitos
reprodução
sêmen
description El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en Villavicencio y el Área de sostenibilidad agroenergetica, ASA en Acacias con disponibilidad de agua tratada de los campos petroleros, Apiay (A) y Castilla (C) respectivamente. Los animales seleccionados fueron distribuidos al azar para cada localidad en 4 tratamientos: 1) Consumo del 100 % agua de producción tratada; 2) consumo de mezcla 50 % agua de producción tratada y 50 % agua cruda; 3) consumo de mezcla 25 % agua de producción tratada y 75 % agua cruda; y 4) consumo 100 % agua cruda. Las variables consideradas fueron: calidad seminal para A y C determinadas por un sistema computarizado y de fertilidad in vitro para A evaluada por tinción fluorescente, Hoechst 33342. Los datos se analizaron estadística descriptiva, análisis de varianza (ANOVA) y pruebas de comparación de medias, Tukey, en un modelo de medidas repetidas en el tiempo. Los resultados indicaron, para calidad seminal, que los tratamientos que consumieron A y C en cada localidad presentaron diferencias (P < 0,05) para motilidad, 75,00±4,50, 69.24±4.13, espermatozoides motiles/100 células evaluadas, en el tratamiento dos respectivamente y en A para morfología, 76,67±2,06 espermatozoides normales/100 en el tratamiento cuatro, el índice de calidad espermática (ICE) no mostró diferencia (P > 0,05). Los resultados de unión espermatozoide - zona pelúcida mostraron diferencias entre tratamientos (P < 0,05), al igual que en fecundación in vitro, sin embargo, el comportamiento de estos cambios no indica asociación con el consumo de este tipo de agua. El estudio muestra que no se observan cambios contundentes o negativos que demuestren efecto en la fertilidad del toro por consumo de agua de producción tratada.
publishDate 2019
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv 2019-12-16T00:00:00Z
2024-07-25T18:14:56Z
dc.date.available.none.fl_str_mv 2019-12-16T00:00:00Z
2024-07-25T18:14:56Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv 2019-12-16
dc.type.spa.fl_str_mv Artículo de revista
dc.type.coar.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1
dc.type.driver.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/article
dc.type.local.eng.fl_str_mv Journal article
dc.type.version.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.coar.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
dc.type.content.spa.fl_str_mv Text
dc.type.coarversion.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
format http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
status_str publishedVersion
dc.identifier.issn.none.fl_str_mv 0121-3709
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3959
dc.identifier.doi.none.fl_str_mv 10.22579/20112629.566
dc.identifier.eissn.none.fl_str_mv 2011-2629
dc.identifier.url.none.fl_str_mv https://doi.org/10.22579/20112629.566
identifier_str_mv 0121-3709
10.22579/20112629.566
2011-2629
url https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3959
https://doi.org/10.22579/20112629.566
dc.language.iso.spa.fl_str_mv spa
language spa
dc.relation.references.spa.fl_str_mv Almansa E, Velásquez JG, Rodríguez GA. Efecto del uso de aguas provenientes de la producción petrolera en actividades agrícolas y pecuarias. Corpoica Cienc Tecnol Agropecu. 2018;19(2):403-420
Anchieta MC, Vale Filho VR, Colosimo E, Sampaio IBM, Andrade VJ. Descarte e congelabilidade do sêmen de touros de raças zebuínas e taurinas em central de inseminação artificial no Brasil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2005;57(2):196-204
Barszcz K, Wiesetek D, Wasowick M, Kupczynska M. Bull semen collection and analysis for artificial insemination. J Agric Sci. 2012;4(3):1-10
Berg HF, Kommisrud E, Bai G, Gaustad ER, Klinkenberg G, Standerholen FB, et al. Comparison of sperm adenosine triphosphate content, motility and fertility of immobilized and conventionally cryopreserved Norwegian Red bull semen. Theriogenology. 2018:121:181-187
Burnett CR, Pratt SL, Long NM, Sell GS, Schrick FN. Assessment of semen quality and fertility in young growing beef bulls exposed to ergot alkaloids. Theriogenology 2018;118:219-224
Braundmeier AG, Demers J, Shanks R, Saacke R, Miller D. Examination of the binding ability of bovine spermatozoa to the zona pellucida as an indicador of fertility. J Androl. 2002;23(5):645-651
Blondin P, Beaulieu M, Fournier V, Morin M, Crawford L, Madan P, King WA. Analysis of bovine sexed sperm for IVF from sorting to the embryo. Theriogenology. 2009;71: 30-38
Brito L. A Multilaboratory study on the variability of bovine semen analysis. Theriogenology. 2016;85(2):254-266
Cabrera P, Pantoja C. Viabilidad espermática e integridade del acrosoma em sêmen congelado de toros nacionales. Rev Investig Vet Perú. 2012;23(2):192-200
Cardozo JA, Velásquez JG, Rodríguez G, Prieto E, Tarazona G, Espitia A. 2002. Evaluación reproductiva del macho bovino en condiciones tropicales. Plan de modernización tecnológica de la ganadería colombiana. Manual técnico.
Chenoweth PJ, McPherson FJ. Bull breeding soundness, semen evaluation and cattle productivity. Anim Reprod Sci. 2016;169:32-36
Contri A, Valorz C, Faustini M, Wegher L, Carluccio A. Effect of sperm preparation on CASA motility results in cryopreserved bull spermatozoa. Theriogenology. 2010;74: 424-435
Coy P, Romar R, Payton R, McCann L, Saxton A, Edwards L. Maintenance of meiotic arrest in bovine oocytes using the S-enantiomer of roscovitine: effects on maturation, fertilization and subsequent embryo development in vitro. Reproduction. 2005;129(1):19-26
Fair S, Lonergan P. Review: Understanding the causes of variation in reproductive wastage among bulls. Animal. 2018;12(s1):s53-s62. Doi: 10.1017/S1751731118000964
Felipe-Pérez YE, Juárez ML, Hernández EO, Valencia JJ. Viability of fresh and frozen bull sperm compared by two staining techniques. Acta Vet Bras. 2008;2(4):123-130
Ferraz MAMM, Morató R, Yeste M, Arcarons N, Pena AI, Tamargo C, et al. 2014. Evaluation of sperm subpopulation structure in relation to in vitro sperm-oocyte interaction of frozen-thawed semen from Holstein bulls. Theriogenology. 2014;81:1067-1072
Flowers WL. Sperm characteristics that limit success of fertilization. J Anim Sci. 2013;9(7):3022-3029
Hidaka T, Fukumoto Y, Yamamoto S, Ogata Y, Horiuchi T. Variations in bovine embryo production between individual donors for OPU-IVF are closely related to glutathione concentrations in oocytes during in vitro maturation. Theriogenology. 2018;113:176-182
Kastelic JP, Thundathil JC. Breeding soundness evaluation and semen analysis for predicting bull fertility. Reprod Domest Anim. 2008;43(2):368-373
Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AE, Hassan MA, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018;6:s49-s56
Oliveira LZ, Paes de Arruda R, Cesar de Andrade AF, Carvalho Celeghini EC, Dos Santos RM, Beletti ME, et al. Assessment of field fertility and several in vitro sperm characteristics following the use of different Angus sires in a timed-AI program with suckled Nelore cows. Livest Sci. 2012;146:38-46
Orantes MA, Vilaboa J, Ortega E, Córdova V. Comportamiento de los comercializadores de ganado bovino en la región Centro del estado de Chiapas. Quehacer Científico en Chiapas. 2010;1(9):51-56
Páez EM, Corredor ES. Evaluación de la aptitud reproductiva del toro. Ciencia y Agricultura. 2014;11(2):49-59
Parkinson TJ. Evaluation of fertility and infertility in natural service bulls. Vet J. 2004;168(3):215-229. Doi:10.1016/j.tvjl.2003.10.017
Petherick JC. A review of some factors affecting the expression of libido in beef cattle, and individual bull and herd fertility. Appl Anim Behav Sci. 2004;90:185-205
Prinosilova P, Kopecká V, Hlavicová J, Kunetková M. Modified hypoosmotic swelling test for the assessment of boar and bull sperm sensitivity to cryopreservation. Acta Vet Brno. 2014;(83):313-319
Quintero MA, Mayorga JM, Cardona MW. El análisis seminal como herramienta para predecir el potencial reproductivo en toros. Journal of veterinary andrology (JVA). 2017;2(1):30-37
Restrepo BG, Úsuga SA, Rojano BA. Técnicas para el análisis de la fertilidad potencia del semen equino. CES Med Vet Zootec. 2013;8(1):69-81
Rosseto A. O uso de sondas fluorescentes na avaliação morfofuncional de espermatozóides bovinos. Rev Ciêne Agrár Belêm. 2005;43 junio/julio Suplemento
Ruiz SB, Ruiz HH, Mendoza NP, Oliva MA, Gutiérrez MF, Rojas MRI, et al. Caracterización reproductiva de toros Bos taurus y Bos indicus y sus cruzas en un sistema de monta natural y sin reposo sexual en el trópico mexicano. Revista científica UDO Agrícola. 2010;10(1):94-102
Thundathil JC, Dance AL, Kastelic JP. Fertility management of bulls to improve beef cattle productivity. Theriogenology. 2016;86(1):397-405
Vejarano OA, Sanabria RD, Trujillo GA. Diagnóstico de la capacidad reproductiva de toros en ganaderías de tres municipios del alto Magdalena. Rev MVZ Córdoba 2005;10(2):648-662
Velásquez JG, Canovas S, Barajas DP, Marcos J, Jiménes-Movilla M, Gutierrez R, et al. Role of Sialic Acid in Bovine Sperm–Zona Pellucida Binding. Mol Reprod Dev. 2007;74:617-628
Velho ALC, Menezes E, Dinh T, Kaya A, Topper E, Moura AA, Memili E. Metabolomic markers of fertility in bull seminal plasma. Plos One. 2018;13(4):e0195279. doi: 10.1371 / journal.pone.0195279
Viana AGA, Martins AMA, Pontes AH, Fontes W, Castro MS, Ricart CAO, et al. Proteomic landscape of seminal plasma associated with dairy bull fertility. Nature. 2018(8):16323. Doi:10.1038/s41598-018-34152-w
Yániz JL, Palacín I, Vicente-Fiel S, Gosalvez J, López-Fernández C, Santolaria P. Evaluation of comercial kit base don acridine orange/propidium iodide to assess the plasma membrane integrity of ram sperm. Span J Agric Res. 2013;11(2):362-365
Yániz JL, Palacín I, Caycho KS, Soler C, Silvestre MA, Santolaria P. Determining the relationship between bull sperm kinematic subpopulations and fluorescence groups using an integrated sperm quality analysis technique. Reprod Fert Develop. 2018;(30):919-923
Youngquist RS, Threlfall WR. 2007. Current therapy in Large Animal Theriogenology. Second edition. Philadelphia, United States: Elsevier.
dc.relation.bitstream.none.fl_str_mv https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/566/pdf
dc.relation.citationissue.spa.fl_str_mv 2
dc.relation.citationvolume.spa.fl_str_mv 23
dc.relation.ispartofjournal.spa.fl_str_mv Orinoquia
dc.rights.spa.fl_str_mv Orinoquia - 2019
dc.rights.uri.spa.fl_str_mv https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rights.accessrights.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.coar.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv Orinoquia - 2019
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.mimetype.spa.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.spa.fl_str_mv Universidad de los Llanos
dc.source.spa.fl_str_mv https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/566
institution Universidad de los Llanos
bitstream.url.fl_str_mv https://repositorio.unillanos.edu.co/bitstreams/9c859fbd-05dc-4f6a-82de-bfc8c5dca7b8/download
bitstream.checksum.fl_str_mv 77e76bc67356842e021148cbc92175d2
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
repository.name.fl_str_mv Repositorio Universidad de Los Llanos
repository.mail.fl_str_mv repositorio@unillanos.edu.co
_version_ 1812104663744380928
spelling Velásquez-Penagos, José G.Velásquez-Penagos, José H.Gutiérrez-Parrado, Sonia LucíaBarajas-Pardo, Diana PatriciaNeira-Rivera, ElianaOrtiz-Valdés, CiroOnofre-Rodríguez, Héctor G.2019-12-16T00:00:00Z2024-07-25T18:14:56Z2019-12-16T00:00:00Z2024-07-25T18:14:56Z2019-12-160121-3709https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/395910.22579/20112629.5662011-2629https://doi.org/10.22579/20112629.566El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en Villavicencio y el Área de sostenibilidad agroenergetica, ASA en Acacias con disponibilidad de agua tratada de los campos petroleros, Apiay (A) y Castilla (C) respectivamente. Los animales seleccionados fueron distribuidos al azar para cada localidad en 4 tratamientos: 1) Consumo del 100 % agua de producción tratada; 2) consumo de mezcla 50 % agua de producción tratada y 50 % agua cruda; 3) consumo de mezcla 25 % agua de producción tratada y 75 % agua cruda; y 4) consumo 100 % agua cruda. Las variables consideradas fueron: calidad seminal para A y C determinadas por un sistema computarizado y de fertilidad in vitro para A evaluada por tinción fluorescente, Hoechst 33342. Los datos se analizaron estadística descriptiva, análisis de varianza (ANOVA) y pruebas de comparación de medias, Tukey, en un modelo de medidas repetidas en el tiempo. Los resultados indicaron, para calidad seminal, que los tratamientos que consumieron A y C en cada localidad presentaron diferencias (P < 0,05) para motilidad, 75,00±4,50, 69.24±4.13, espermatozoides motiles/100 células evaluadas, en el tratamiento dos respectivamente y en A para morfología, 76,67±2,06 espermatozoides normales/100 en el tratamiento cuatro, el índice de calidad espermática (ICE) no mostró diferencia (P > 0,05). Los resultados de unión espermatozoide - zona pelúcida mostraron diferencias entre tratamientos (P < 0,05), al igual que en fecundación in vitro, sin embargo, el comportamiento de estos cambios no indica asociación con el consumo de este tipo de agua. El estudio muestra que no se observan cambios contundentes o negativos que demuestren efecto en la fertilidad del toro por consumo de agua de producción tratada.The objective of this study was to evaluate the consumption of treated water from oil production in the seminal quality of the breeding male; To this end, 16 bulls between 4 and 5 years old were selected, distributed in two groups at Agrosavia’s La Libertad centers in Villavicencio and the Agroenergetic Sustainability Area, ASA in Acacias with availability of treated water from the oil fields, Apiay (A) and Castilla (C) respectively. The selected animals were distributed randomly to each location in 4 treatments: 1) Consumption of 100% treated production water; 2) 50% consumption of treated production water and 50% raw water consumption; 3) mixing consumption 25% treated production water and 75% raw water; and 4) 100% raw water consumption. The variables considered were: seminal quality for A and C determined by a computerized system, and in vitro fertility for A evaluated by fluorescent staining, Hoechst 33342. The data were analyzed descriptive statistics, analysis of variance (ANOVA) and means comparison tests, Tukey, in a model of measures repeated over time. The results indicated, for seminal quality, that the treatments that consumed A and C in each locality presented differences (P <0.05) for motility, 75.00 ± 4.50, 69.24 ± 4.13, motile sperm / 100 cells evaluated, in treatment two respectively and in A for morphology, 76.67 ± 2.06 normal sperm / 100 in treatment four, the sperm quality index (SQI) showed no difference (P> 0.05). The results of sperm-pellucid zone binding showed differences between treatments (P <0.05), as in in vitro fertilization, however, the behavior of these changes does not indicate an association with the consumption of this type of water. The study shows that there are no strong or negative changes that show an effect on the fertility of the bull due to the consumption of treated production water.application/pdfspaUniversidad de los LlanosOrinoquia - 2019https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/566sperm qualityin vitrooocytesreproductionsemencalidad espermáticin vitroovocitosreproducciónsemenqualidade espermáticain vitrooócitosreproduçãosêmenConsumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósitoConsumption of treated water from oil production in male bovine fertility of the double purpose systemArtículo de revistainfo:eu-repo/semantics/articleJournal articleinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Texthttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Almansa E, Velásquez JG, Rodríguez GA. Efecto del uso de aguas provenientes de la producción petrolera en actividades agrícolas y pecuarias. Corpoica Cienc Tecnol Agropecu. 2018;19(2):403-420Anchieta MC, Vale Filho VR, Colosimo E, Sampaio IBM, Andrade VJ. Descarte e congelabilidade do sêmen de touros de raças zebuínas e taurinas em central de inseminação artificial no Brasil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2005;57(2):196-204Barszcz K, Wiesetek D, Wasowick M, Kupczynska M. Bull semen collection and analysis for artificial insemination. J Agric Sci. 2012;4(3):1-10Berg HF, Kommisrud E, Bai G, Gaustad ER, Klinkenberg G, Standerholen FB, et al. Comparison of sperm adenosine triphosphate content, motility and fertility of immobilized and conventionally cryopreserved Norwegian Red bull semen. Theriogenology. 2018:121:181-187Burnett CR, Pratt SL, Long NM, Sell GS, Schrick FN. Assessment of semen quality and fertility in young growing beef bulls exposed to ergot alkaloids. Theriogenology 2018;118:219-224Braundmeier AG, Demers J, Shanks R, Saacke R, Miller D. Examination of the binding ability of bovine spermatozoa to the zona pellucida as an indicador of fertility. J Androl. 2002;23(5):645-651Blondin P, Beaulieu M, Fournier V, Morin M, Crawford L, Madan P, King WA. Analysis of bovine sexed sperm for IVF from sorting to the embryo. Theriogenology. 2009;71: 30-38Brito L. A Multilaboratory study on the variability of bovine semen analysis. Theriogenology. 2016;85(2):254-266Cabrera P, Pantoja C. Viabilidad espermática e integridade del acrosoma em sêmen congelado de toros nacionales. Rev Investig Vet Perú. 2012;23(2):192-200Cardozo JA, Velásquez JG, Rodríguez G, Prieto E, Tarazona G, Espitia A. 2002. Evaluación reproductiva del macho bovino en condiciones tropicales. Plan de modernización tecnológica de la ganadería colombiana. Manual técnico.Chenoweth PJ, McPherson FJ. Bull breeding soundness, semen evaluation and cattle productivity. Anim Reprod Sci. 2016;169:32-36Contri A, Valorz C, Faustini M, Wegher L, Carluccio A. Effect of sperm preparation on CASA motility results in cryopreserved bull spermatozoa. Theriogenology. 2010;74: 424-435Coy P, Romar R, Payton R, McCann L, Saxton A, Edwards L. Maintenance of meiotic arrest in bovine oocytes using the S-enantiomer of roscovitine: effects on maturation, fertilization and subsequent embryo development in vitro. Reproduction. 2005;129(1):19-26Fair S, Lonergan P. Review: Understanding the causes of variation in reproductive wastage among bulls. Animal. 2018;12(s1):s53-s62. Doi: 10.1017/S1751731118000964Felipe-Pérez YE, Juárez ML, Hernández EO, Valencia JJ. Viability of fresh and frozen bull sperm compared by two staining techniques. Acta Vet Bras. 2008;2(4):123-130Ferraz MAMM, Morató R, Yeste M, Arcarons N, Pena AI, Tamargo C, et al. 2014. Evaluation of sperm subpopulation structure in relation to in vitro sperm-oocyte interaction of frozen-thawed semen from Holstein bulls. Theriogenology. 2014;81:1067-1072Flowers WL. Sperm characteristics that limit success of fertilization. J Anim Sci. 2013;9(7):3022-3029Hidaka T, Fukumoto Y, Yamamoto S, Ogata Y, Horiuchi T. Variations in bovine embryo production between individual donors for OPU-IVF are closely related to glutathione concentrations in oocytes during in vitro maturation. Theriogenology. 2018;113:176-182Kastelic JP, Thundathil JC. Breeding soundness evaluation and semen analysis for predicting bull fertility. Reprod Domest Anim. 2008;43(2):368-373Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AE, Hassan MA, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018;6:s49-s56Oliveira LZ, Paes de Arruda R, Cesar de Andrade AF, Carvalho Celeghini EC, Dos Santos RM, Beletti ME, et al. Assessment of field fertility and several in vitro sperm characteristics following the use of different Angus sires in a timed-AI program with suckled Nelore cows. Livest Sci. 2012;146:38-46Orantes MA, Vilaboa J, Ortega E, Córdova V. Comportamiento de los comercializadores de ganado bovino en la región Centro del estado de Chiapas. Quehacer Científico en Chiapas. 2010;1(9):51-56Páez EM, Corredor ES. Evaluación de la aptitud reproductiva del toro. Ciencia y Agricultura. 2014;11(2):49-59Parkinson TJ. Evaluation of fertility and infertility in natural service bulls. Vet J. 2004;168(3):215-229. Doi:10.1016/j.tvjl.2003.10.017Petherick JC. A review of some factors affecting the expression of libido in beef cattle, and individual bull and herd fertility. Appl Anim Behav Sci. 2004;90:185-205Prinosilova P, Kopecká V, Hlavicová J, Kunetková M. Modified hypoosmotic swelling test for the assessment of boar and bull sperm sensitivity to cryopreservation. Acta Vet Brno. 2014;(83):313-319Quintero MA, Mayorga JM, Cardona MW. El análisis seminal como herramienta para predecir el potencial reproductivo en toros. Journal of veterinary andrology (JVA). 2017;2(1):30-37Restrepo BG, Úsuga SA, Rojano BA. Técnicas para el análisis de la fertilidad potencia del semen equino. CES Med Vet Zootec. 2013;8(1):69-81Rosseto A. O uso de sondas fluorescentes na avaliação morfofuncional de espermatozóides bovinos. Rev Ciêne Agrár Belêm. 2005;43 junio/julio SuplementoRuiz SB, Ruiz HH, Mendoza NP, Oliva MA, Gutiérrez MF, Rojas MRI, et al. Caracterización reproductiva de toros Bos taurus y Bos indicus y sus cruzas en un sistema de monta natural y sin reposo sexual en el trópico mexicano. Revista científica UDO Agrícola. 2010;10(1):94-102Thundathil JC, Dance AL, Kastelic JP. Fertility management of bulls to improve beef cattle productivity. Theriogenology. 2016;86(1):397-405Vejarano OA, Sanabria RD, Trujillo GA. Diagnóstico de la capacidad reproductiva de toros en ganaderías de tres municipios del alto Magdalena. Rev MVZ Córdoba 2005;10(2):648-662Velásquez JG, Canovas S, Barajas DP, Marcos J, Jiménes-Movilla M, Gutierrez R, et al. Role of Sialic Acid in Bovine Sperm–Zona Pellucida Binding. Mol Reprod Dev. 2007;74:617-628Velho ALC, Menezes E, Dinh T, Kaya A, Topper E, Moura AA, Memili E. Metabolomic markers of fertility in bull seminal plasma. Plos One. 2018;13(4):e0195279. doi: 10.1371 / journal.pone.0195279Viana AGA, Martins AMA, Pontes AH, Fontes W, Castro MS, Ricart CAO, et al. Proteomic landscape of seminal plasma associated with dairy bull fertility. Nature. 2018(8):16323. Doi:10.1038/s41598-018-34152-wYániz JL, Palacín I, Vicente-Fiel S, Gosalvez J, López-Fernández C, Santolaria P. Evaluation of comercial kit base don acridine orange/propidium iodide to assess the plasma membrane integrity of ram sperm. Span J Agric Res. 2013;11(2):362-365Yániz JL, Palacín I, Caycho KS, Soler C, Silvestre MA, Santolaria P. Determining the relationship between bull sperm kinematic subpopulations and fluorescence groups using an integrated sperm quality analysis technique. Reprod Fert Develop. 2018;(30):919-923Youngquist RS, Threlfall WR. 2007. Current therapy in Large Animal Theriogenology. Second edition. Philadelphia, United States: Elsevier.https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/566/pdf223OrinoquiaPublicationOREORE.xmltext/xml2936https://repositorio.unillanos.edu.co/bitstreams/9c859fbd-05dc-4f6a-82de-bfc8c5dca7b8/download77e76bc67356842e021148cbc92175d2MD51001/3959oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/39592024-07-25 13:14:56.34https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Orinoquia - 2019metadata.onlyhttps://repositorio.unillanos.edu.coRepositorio Universidad de Los Llanosrepositorio@unillanos.edu.co

Publicaciones similares