Capacidad antioxidante en semen fresco y crioconservado a largo término en cachama blanca (piaractusbrachypomus)

Incluye tablas y figuras.

Autores:
León Roldán, Nicolás Felipe
Chacón Morales, Andrés Esteban
Tipo de recurso:
Trabajo de grado de pregrado
Fecha de publicación:
2020
Institución:
Universidad de los Llanos
Repositorio:
Repositorio Digital Universidad de los LLanos
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/3295
Acceso en línea:
https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3295
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Palabra clave:
Capacidad antioxidante (CAntiOx)
Piaractus brachypomus
Semen crioconservado
Calidad espermática
Especies reactivas de oxígeno(EROs)
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Reactive oxygen species (EROs)
Rights
openAccess
License
Derechos Reservados - Universidad de los Llanos, año 2020
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Álvarez Caro, D. M., & Larqué Saavedra, A. (2004).La supermolécula, el dimetilsulfóxido:¿un nuevo regulador del crecimiento vegetal?(Vol. 55). México. Retrieved fromhttps://www.revistaciencia.amc.edu.mx/images/revista/55_3/la_supermolecula.pdf
Andrade, R. F., Bazzoli, N., Rizzo, E., & Sato, Y. (2001). Continuousgametogenesis in the neotropical freshwater teleost, Bryconops affinis(Pisces:Characidae).Tissue & Cell, 33. https://doi.org/10.1054/tice.2001.0206
Ansaldo, Martín. (2001).Niveles de antioxidantes en peces Antárticospertenecientesa las familiasnototheniidaeychannichthydae. (Tesis Doctoral.Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales.).Recuperado dehttp://hdl.handle.net/20.500.12110/tesis_n3355_Ansaldo
Aramli, M. S., Kalbassi, M. R., Nazari, R. M., &Aramli, S. (2013).Effects of short-term storage on the motility, oxidative stress, and ATP content of Persiansturgeon (Acipenser persicus) sperm.Animal Reproduction Science,143(1–4), 112–117. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.10.010
Argumedo,T.; & H. Rojas.(2000). Manual de piscicultura con especies nativas.Asociación de Acuicultores de Caquetá (ACUICA), y Plan Nacional deDesarrollo Alternativo (PNDA), pp. 51-59. Florencia, Colombia.
Arias, J., & W. Vásquez. (1988). Ampliación del conocimiento biológico deColossoma sp (Cypriniformes: Characidae), en ambientes naturales de lacuenca del río Meta. En: El cultivo de la Cachama (González, R), p. 329.Fundamentos de Acuicultura Continental, p. 329. Ministerio de Agricultura yDesarrollo Rural. INPA. Bogotá.
Atencio García, V., Perez E, Pardo S. (2013). Evaluación de dimetilacetamidacomo crioprotector para la criopreservación de semen de bocachico(Prochilodus magdalenae).Arch Med Vet 45: 151-158. doi: 10.4067/S0301-732X20130-00200006
AtencioGarcía, V., Dorado Longas, M., Montes Petro, C., Pietro Guevara, M., &Espinosa Araujo, J. (2017). Crioconservación de se men de doradaBryconmoorei con dimetilsulfóxido Cryopreservation of dorada Brycon moorei spermwith dimethyl sulfoxide. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n2.59987
AUNAP. (2018).Plan Estratégico institucional 2014-2018-AUNAP.Retrieved fromhttps://www.aunap.gov.co/images/documentos/plan-estrategico-institucional-2014-2018.pdf
Bazzoli, N. & H.P. Godinho.1991. Reproductive biology of theAcestrorhynchuslacustris(Reinhardt, 1874) (Pisces: Characidae) from Tres Marias Reservoir,Brazil.
Bernal Gómez, M. E., Mendonça-Junior, C. X. de, & Mancini-Filho, J. (2003).Estabilidad oxidativa de huevos enriquecidos con ácidos grasospoliinsaturados omega 3, frente a antioxidantes naturales.Revista Brasileirade Ciências Farmacêuticas,39(4), 425–432. https://doi.org/10.1590/S1516-93322003000400010
Berríos, O., Valdebenito, I., Treulén, F., & Ubilla, A. (2010). Almacenamiento enfrío deespermatozoides de trucha arcoiris (oncorhynchus mykiss): Efectos enla movilidad, superóxido intracelular, integridad de la membrana plasmática ypotencial de membrana mitocondrial.Archivos de Medicina Veterinaria, 42(3),179–186. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2010000300009
Bozkurt, Y., ÖĞretmen, F., Kökçü, Ö., & Erçin, U. (2009).Relationships betweenseminal plasma composition and sperm quality parameters of the Salmo truttamacrostigma (Dumeril, 1858) semen: with emphasis on sperm motility. CzechJ. Anim. Sci, 56(8), 2011–355. Retrieved fromhttps://www.agriculturejournals.cz/publicFiles/45476.pdf
Butts, I. A. E., Babiak, I., Ciereszko, A., Litvak, M. K., Słowińska, M., Soler, C., &Trippel, E. (2011). Semen characteristics and their ability to predict spermcryopreservation potential of Atlantic cod, Gadus morhua L.Theriogenology,75(7), 1290–1300. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.11.044
Cabrera, O., Morales, D., Barragán, J., Solá, J., Bacha, F., & Fernández, A.(2015). ¿Qué son las Especies Reactivas del Oxígeno (ROS, según siglas eninglés)?-nutriNews, la revista de nutrición animal.Retrieved June 27, 2018,from https://nutricionanimal.info/que-son-las-especies-reactivas-del-oxigeno-ros-segun-siglas-en-ingles/
Casasole, G., Costantini, D., Cichoń, M., & Rutkowska, J. (2016).The effect ofmaternal immunization on female oxidative status, yolk antioxidants and offspring survival in a songbird.Comparative Biochemistry and Physiology-Part A : Molecular and Integrative Physiology, 194, 56–61.https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2016.01.019
Chen, S.-L., Ji, X.-S., Yu, G.-C., Tian, Y.-S., & Sha, Z.-X. (2004). Cryopreservationof sperm from turbot (Scophthalmus maximus) and application to large-scalefertilization. Aquaculture, 236(1–4), 547–556.https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2003.10.027
Ciereszko, A., Dabrowski, K., Kucharczyk, D., Dobosz, S., Goryczko, K., &Glogowski, J. (1999). The presence of uric acid, an antioxidantive substance,in fish seminal plasma. Fish Physiology and Biochemistry, 21(4), 313–315.https://doi.org/10.1023/A:1007886121663
Ciereszko, A., Glogowski, J., Dabrowski, K. (2000). Biochemical characteristics ofseminal plasma and spermatozoa of freshwater fishes. Cryopreservation inaquatic species. Edited by T.R. Tiersch and P.M. Mazik. Baton Rouge,Louisiana: World Aquaculture Society. 20–48.http://link.springer.com/10.1007/s10695-005-4742-8
Cloud J.G. y S.J. Patton. (2008). Basic principles of fish spermatozoacryopreservation. In: Cabrita E.,Robles V., Herráez M.P. (edit.). Methods inreproductive aquaculture: Marine and freshwater species. London, UK: CRCPress (Taylor and Francis group), p. 237-250.
Cosson, J., Linhart, O., Mims, S. D., Shelton, W. L., & Rodina, M. (2000). Analysisof motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa.Journal of Fish Biology, 56(6), 1348–1367.https://doi.org/10.1006/jfbi.2000.1256
Cosson, J. (2004). The ionic and osmotic factors controlling motility of fishspermatozoa. Aquaculture International, 12(1), 69–85.https://doi.org/10.1023/B:AQUI.0000017189.44263.bc
Cosson, J. (2008). Methods to Analyse the Movements of Fish Spermatozoa andtheir Flagella.
Cruz Casallas; Velasco Santamaría y Medina Robles Mauricio (2005). Manejohormonal de la función reproductiva de peces tropicales bajo condiciones decautiverio.http://revistas.udenar.edu.co/index.php/reipa/article/download/1595/1936
Cruz Casallas, Medina Robles, & Velasco Santamaría. (2006). Evaluación dediferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú (Brycon amazonicus). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2),152–159. Retrieved fromhttp://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=3240058&info=resumen&idioma=SPA
Faramarzi, M. (2012). Assessment of Reproductive Parameters in Silver Carp(Hypophthalmichthys molitrix). World Journal of Fish and Marine Sciences,4(3), 244–248. https://doi.org/10.5829/idosi.wjfms.2012.04.03.61325
Fauvel, C., Suquet, M., Dreanno, C., Zonno, V., & Menu, B. (1998).Cryopreservation of sea bass (Dicentrarchus labrax) spermatozoa inexperimental and production simulating conditions. Aquatic Living Resources,11(6), 387–394. https://doi.org/10.1016/S0990-7440(99)80004-7
Fauvel, C., Suquet, M., & Cosson, J. (2010). Evaluationof fish sperm quality.Journal of Applied Ichthyology, 26(5), 636–643. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01529.x
Flannery, E. W., Butts, I. A. E., Słowińska, M., Ciereszko, A., & Pitcher, T. E.(2013). Reproductive investment patterns, sperm characteristics, and seminalplasma physiology in alternative reproductive tactics of Chinook salmon(Oncorhynchus tshawytscha). Biological Journal of the Linnean Society,108(1), 99-108. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2012.01980.x
Fostier, A., Jalabert, B., Billard, R., Breton, R. & Zohar, Y. (1983). The gonadalsteroids. En: Hoar, R.S, Randall, D.J. & Donaldson, E.M. Fish physiology,Vol.IXA, Cap 7.
Fresneda, A., Lenis, G., Agudelo, E., & Olivera Ángel, M. (2004).Espermiacióninducida y crioconservación de semen de Cachama Blanca (Piaractusbrachypomus). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 17(4), 46–52.
Grier y Lo Nostro. (2000). El epitelio germinal de teleósteo: a) concepto unificador.Actas del 6 ° Simposio Internacional sobre Fisiología Reproductiva del Pescado.
González, R. 2001. El Cultivo de la Cachama. En: Fundamentos de Acuiculturacontinental, pp. 329-346. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. INPA.Bogotá.
Grassiotto I., Q., Gameiro, M. C., Schneider, T., Malabarba, L. R., & Oliveira, C.(2003).Spermiogenesis and spermatozoa ultrastructure in five species of theCurimatidae with some considerationson spermatozoal ultrastructure in the Characiformes. Neotropical Ichthyology, 1(1), 35–45.https://doi.org/10.1590/S1679-62252003000100004
Grassiotto, Q., Negrão, J. N. C., Carvalho, E. D., & Foresti, F. (2001).Ultrastructure of spermatogenic cells and spermatozoa in Hoplias malabaricus(Teleostei, Characiformes, Erythrinidae). Journal of Fish Biology, 59(6), 1494–1502. https://doi.org/10.1006/jfbi.2001.1797
İnanan, B. E., Öğretmen, F., İnanan, T., & Yılmaz, F. (2016).Total antioxidantcapacity, catalase activity, and lipid peroxidation changes in seminal plasma ofsex-reversed female and male rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) duringspawning season. Theriogenology, 86(8), 1975–1982.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.06.014
Jamieson, B. G. M. (1991). Fish Evolution and Systematics: Evidence fromSpermatozoa.Cambridge: Cambridge University Press, 319p
Kobelkowsky A (2007) Diversidad Morfológica del sistema de conductosexcretores de los peces teleósteos. Rev Mex Biodivers 78:105–116.
Koca Y, Ozdal OL, Celik M, Unal S, Balaban NY.Antioxidant activity of seminalplasma in fertile and infertile men. Arch Androl. 2003;49:355-9.
Kowalski, R. K., & Cejko, B. I. (2019). Sperm quality in fish: Determinants andaffecting factors. Theriogenology, 135, 94–108.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.06.009
Kumar, P., Pawaria, S., Dalal, J., Ravesh, S., Bharadwaj, S., Jerome, A., …Yadav, P. S. (2019).Sodium alginate potentiates antioxidants, cryoprotectionand antibacterial activities of egg yolk extender during semen cryopreservationin buffalo. Animal Reproduction Science, 209(July), 106166.https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.106166
KurlandCg, Andersson Sge. (2000) Origin And Evolution Of The MitochondrialProteome. Microbiol. Mol Biol Rev. 2000;64:786-820
Kutluyer, F., Kayim, M., Öğretmen, F., Büyükleblebici, S., & Tuncer, P. B. (2014).Cryopreservation of rainbow trout Oncorhynchus mykissspermatozoa: Effectsof extender supplemented with different antioxidants on sperm motility, velocityand fertility. Cryobiology, 69(3), 462–466.https://doi.org/10.1016/J.CRYOBIOL.2014.10.005
Lahnsteiner, F., Berger, B., & Weismann, T. (1999). Sperm metabolism of thetelost fishes Chalcalburnus chalcoides and Oncorhynchus mykiss and itsrelation to motility and viability. Journal of Experimental Zoology, 284(4), 454–465. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-010X(19990901)284:4<454::AID-JEZ12>3.0.CO;2-O
Lahnsteiner, F., Berger, L. B., Horvath, A., Urbanyi, B., & Weismann, T. (2000).Cryopreservation Of Spermatozoa Ln Cyprinid Fishes. Theriogenology, 54(9),1477–1498. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(00)00469-6
Lahnsteiner, F., & Mansour, N. (2010). A comparative study on antioxidantsystems in semen of species of the Percidae, Salmonidae, Cyprinidae, andLotidae for improving semen storage techniques. Aquaculture, 307(1–2), 130–140. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.07.011
Lahnsteiner, F., Mansour, N., & Kunz, F. A. (2011). The effect of antioxidants onthe quality of cryopreserved semen in two salmonid fish, the brook trout(Salvelinus fontinalis) and the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).Theriogenology, 76(5), 882–890.https://doi.org/10.1016/J.THERIOGENOLOGY.2011.04.019
Lahnsteiner, F., Mansour, N., & Plaetzer, K. (2010). Antioxidant systems of browntrout (Salmo trutta f. fario) semen. Animal Reproduction Science, 119(3–4),314–321. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.01.010
Lanes, C. F.C., Okamoto, M. H., Bianchini, A., Marins, L. F., & Sampaio, L. A.(2010). Sperm quality of Brazilian flounder Paralichthys orbignyanusthroughout the reproductive season.Aquaculture Research, 41(9), 199–207.https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02501.x
Lançoni R, Celeghini E, Bianchi Alves M, Santos G, Florez Rodriguez S, Leite T,Arruda R. (2015). Use of melatonin and ferulic acid as promoters ofcryopreserved equine sperm. Anim Reprod. 12:559
Lim, H. K., & Le, M. H. (2013). Evaluation of extenders and cryoprotectants onmotility and morphology of longtooth grouper (Epinephelus bruneus) sperm.Theriogenology, 79(5), 867–871.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.01.004
Linhart, Slechta, Slavik, T. (1991). Fish semen composition and biochemistry.Bull.Inst. Zool. Acad. Sin. Monogr. 1991.16: 285-311
Londoño, J. (2012). Antioxidantes: importancia biológica y métodos para medir suactividad. Retrieved fromhttp://repository.lasallista.edu.co/dspace/bitstream/10567/133/3/9.%20129-162.pdf
López Macías, J.N., Salas Benavides, J., Gómez Cerón, A.E., Sanguíno Ortíz,W.R. (2012). Estudio gonadal de la sabaleta de la cuenca del patía (Bryconsp.)como indicador del potencial acuícola. Revista electrónica de ingenieríade producción acuícola, Vol. 6, Núm 6
López Núñez, F. O., Amaya Amaya, M. P., Anaya Yosmar, M. A., & Arango Hoyos,A. W. (2013). Efecto Del Dimetilsulfóxido En Un Modelo Animal DeNefrotoxicidad Inducida Por Gentamicina En Conejos. CIMEL: Ciencia eInvestigación Médica Estudiantil Latinoamericana, 18(1), 1–15.https://doi.org/10.23961/cimel.2013.181.382
Macedo Márquez, A. (2012).La Producción de Especies Reactivas de Oxígeno(EROs) en las Mitocondrias de Saccharomyces cerevisiae. RevistaEspecializada En Ciencias Químico-Biológicas, 15(2), 97–103. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.mx/pdf/tip/v15n2/v15n2a3.pdf
Mahfouz, R., Sharma, R., Sharma, D., Sabanegh, E., & Agarwal, A. (2009).Diagnostic value of the total antioxidant capacity (TAC) in human seminalplasma. Fertility and Sterility, 91.https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.01.022
Martínez José Gregorio, Pardo Carrasco Sandra (2010). Crioconservación DeSemen En Peces: Efectos Sobre La Movilidad Espermática Y La Fertilidad.
Martínez-Páramo, S., Diogo, P., Dinis, M. T., Herráez, M. P., Sarasquete, C., &Cabrita, E. (2012). Incorporation of ascorbic acid and α-tocopherol to theextender media to enhance antioxidant system of cryopreserved sea basssperm. Theriogenology, 77(6), 1129–1136.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.10.017
Mattei, X. (1970). Spermiogenése comparé des poisson. Pp.57-72. in: Baccetti, B.(Ed.). Comparative Spermatology. New York: Academic Press, 773p.
Mattei, X. (1991). Spermatozoon ultrastructure and its systematic implications infishes.Canadian Journal of Zoology, 69: 3038-3055.
Medina Robles, V. M., Velasco Santamaría, Y.,& Cruz Casallas, P. E. (2005).Aspectos Generales de la Crioconservación de Semen.Revista Colombianade Ciencias Pecuarias,18(1), 34–48.
Melo, F. C. S. A., & Godinho, H. P. (2006). A protocol for cryopreservation ofspermatozoa of the fishBrycon orthotaenia.Animal Reproduction,3(3), 380–385.
Melorose, J., Perroy, R., & Careas, S. (2015). Avances de acuicultura y pesca enColombia. Statewide Agricultural Land Use Baseline 2015 (Vol. 1).https://doi.org/10.1017/CBO9781107415324.004
Merino M.C., J.C. Alonso, INCODER–FAO, (2011). Situación del repoblamientode cuerpos de agua continentales en Colombia. Bogotá.
Merino, M. C., Bonilla, S. P., & Bages, F. (2013). Diagnóstico del estado de laAcuicultura en Colombia. Retrieved from http://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/25-Diagnóstico-del-estado-de-la-acuicultura-en-Colombia.pdf
Merino, M. C., Bonilla, S. P., Bages, F., Guerrero, I., Mojica, H. O., Hortúa, N., &de la pava, M. L. (2014).Plan Nacional para el Desarrollo Sostenible de laAcuicultura en Colombia AUNAP-FAO Plan Nacional para el Desarrollo de laAcuicultura Sostenible en Colombia -PlaNDAS. Bogotá. Retrieved fromhttp://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/Plan-Nacional-para-el-Desarrollo-de-la-Acuicultura-Sostenible-Colombia.pdf
Merino, M. C. (2018). Acuicultura en Colombia, 63.Retrieved fromhttps://www.aunap.gov.co/images/convenio/presentacion-tecnica-acuicultura-en-colombia.pdf
Miller, N., Rice, C., J. Davies, M., Gopinathan, V., & Milner Anthony. (1993). Anovel method for measuring antioxidant capacity and its application tomonitoring the antioxidant status in premature neonates. Clinical Science,84(4), 407–412. https://doi.org/10.1042/cs0840407
Montes Montes, Melissa (2012). Evaluación de la calidad espermática y ensayospreliminares en Crioconservación de espermatozoides de LenguadoParalichthys Adspersus(Steindachner, 1867). Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Retrieved fromhttp://cybertesis.unmsm.edu.pe/handle/cybertesis/575
Morisawa, S., & Morisawa, M. (1986). Acquisition of potential for sperm motility inrainbow trout and chum salmon.Journal of Experimental Biology, 126, 89–96.
Muñoz Andrea, Caldas María Leonor, Hurtado Giraldo Hernán (2004). AnálisisHistomorfológico Del Sistema Digestivo Y Glándulas Anexas En Alevinos DeCachama Blanca,Piaractus brachypomus (Characidae: Piaractus)
Nagahama, Y. (1983). The functional morphology of teleost gonads. En: Hoar,W.S.,Randall, D.J. & Donaldson, E.M. Fish Physio Volume IxPart A, Cap.6.
Nagahama, Y. (2000). Gonadal steroid hormones: major regulators of gonadal sexdifferentiation and gametogenesis in fish, in: Norberg, B. et al. (Ed.)Proceedings of the 6th International Symposium on the ReproductivePhysiology of Fish, Bergen, Norway, July 4-9, 1999. pp. 211-222
Nascimento, A. F., Maria, A. N., Pessoa, N. O., Carvalho, M. A. M., & Viveiros, A.T. M. (2010).Out-of-season sperm cryopreserved in different media of theAmazonian freshwater fish pirapitinga (Piaractus brachypomus). AnimalReproduction Science, 118(2–4), 324–329.https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2009.07.002
Orfão, L. H., Nascimento, A. F., Corrêa, F. M., Cosson, J., & Viveiros, A. T. M.(2011).Extender composition, osmolality and cryoprotectant effects on themotility of sperm in the Brazilian endangered species Brycon opalinus(Characiformes). Aquaculture, 311(1–4), 241–247.https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.11.041
Osorio, A., Wills, A., & Muñoz A. P. (2013).Caracterización De Coproductos De LaIndustria Del Fileteado De Tilapia Nilótica (Oreochromis niloticus) y TruchaArcoíris (Oncorhynchus mykiss) En Colombia. Revista de La Facultad deMedicina Veterinaria y de Zootecnia, 60. Retrieved fromhttps:revistas.unal.edu.co/index.php/remevez/rt/printerFriendly/42127/44066
Pardo Carrasco, S., Salas Villalva, J., Reza Gaviria, L., Espinosa Araujo, J., &Atencio-García, V. (2015). Cryopreservation of Trans-Andean shovelnosecatfish (Sorubim cuspicaudus) semen using dimethylacetamide.CES MedicinaVeterinaria y Zootecnia (Vol. 10). Universidad CES, Facultad de MedicinaVeterinaria y Zootecnia. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1900-96072015000200004
Patricio, A., Cruz, D. F., Vieira Silva, J., Padrão, A., Correia, B. R., Korrodi-Gregório, L., …Fardilha, M. (2016). Relation between seminal quality andoxidative balance in sperm cells PALAVRAS-CHAVE. Acta UrológicaPortuguesa, 33(1), 6–15. https://doi.org/10.1016/j.acup.2015.10.001
Quagio-Grassiotto, I., Negrão, J. N. C., Carvalho, E. D., & Foresti, F. (2001).Ultrastructure of spermatogenic cells and spermatozoa in Hoplias malabaricus(Teleostei, Characiformes, Erythrinidae). Journal of Fish Biology, 59(6), 1494–1502. https://doi.org/10.1006/jfbi.2001.1797
Ramírez Merlano, J. A., Medina Robles, V. M., & Cruz-Casallas, P. E. (2010).Crioconservación espermática en peces, un acercamiento en Siluriformes.ORINOQUIA (Vol. 14). Instituto de Investigaciones de la Orinoquia Colombiana. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-37092010000100007
Ramírez Merlano, J. A., Medina-Robles, V. M., & Cruz-Casallas, P. E. (2011).Crioconservación seminal de bagre rayado Pseudoplatystoma metaense(Teleostei, Pimelodidae), bajo diferentes protocolosde congelación. Archivosde Medicina Veterinaria, 43(2), 135–144. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2011000200006
Restrepo-Betancur, G., Montoya Páez, J. D., & Arboleda Chacón, L. (2017).Evaluación de Dos Crioprotectores y Tres Curvas de CongelaciónProgramable en la Criopreservación de Semen de Brycon henni (Pisces:Characidae).Revista de Investigaciones Veterinarias Del Perú,28(3), 597.https://doi.org/10.15381/rivep.v28i3.13349
Restrepo, G., Montoya, J. D., & Rojano, B. (2016). Capacidad antioxidante ycalidad post-descongelación de semen equino crioconservado con quercetinay ergotioneina. Revista de La Facultad de Medicina Veterinaria Y deZootecnia, 63(3), 167–178. https://doi.org/10.15446/rfmvz.v63n3.62747
Rodríguez, E., Gil-Villa, A. M., Aguirre-Acevedo, D. C., Cardona-Maya, W., &Cadavid, A. P. (2011). Evaluación de parámetros seminales noconvencionales en individuos cuyas parejas presentan muerte embrionariatemprana recurrente: En busca de un valor de referencia.Biomédica,31(1),100–107.
Rurangwa, E., Kime, D. ., Ollevier, F., & Nash, J. . (2004). The measurement ofsperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish.Aquaculture,234(1–4), 1–28. https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2003.12.006
Salazar Ariza, G. (2018). FAO Fisheries &amp; Aquaculture-Visión general delsector acuícola nacional –Colombia-Departamento de Pesca y Acuicultura dela FAO. Retrieved May 5, 2018, fromhttp://www.fao.org/fishery/countrysector/naso_colombia/es
Schulz, R.W. & T. MIURA. (2002). Spermatogenesis and its endocrine regulation.Fish Physiology and Biochemistry 26: 43-56.
Sikka, S. C. (2004). Andrology Lab Corner*: Role of Oxidative Stress andAntioxidants in Andrology and Assisted Reproductive Technology. Journal ofAndrology, 25(1), 5–18. https://doi.org/10.1002/j.1939-4640.2004.tb02751.x
Słowińska, M., Nynca, J., Cejko, B. I., Dietrich, M. A., Horváth, Á., Urbányi, B., …Ciereszko, A. (2013). Total antioxidant capacity of fish seminal plasma.Aquaculture, 400–401, 101–104.https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2013.03.010
Suárez Martínez,R. O., Medina Robles, V. M., & Cruz Casallas, P. E. (2019).Efecto de dos colectas de semen en una temporada reproductiva sobre lacalidad seminal de cachama blanca (Piaractus brachypomus).Revista deInvestigaciones Veterinarias Del Peru,30(3), 1184–1195.https://doi.org/10.15381/rivep.v30i3.15515
Tabares, C. J., Tarazona, A. M., Olivera Ángel, M., & Sci Agr, D. (2005). Fisiologíade la activación del espermatozoide en peces de agua dulce.149 Rev ColCienc Pec, 18(2). Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/pdf/rccp/v18n2/v18n2a06.pdf
Tatone C, Di Emidio G, Vento M, Ciriminna R, Artini P. (2010).Cryopreservationand oxidative stress in reproductive cells. Gynecol Endocrinol. 26:563-56
Tiersch, T.R. y M. Mazik. (2000). Cryopreservation of sperm of some marinefishes. En: Tiersch, T.R.y M. Mazik (edit.). Cryopreservation in AquaticSpecies. The World Aquaculture Society. Baton Rouge, Louisiana: 439 pp.
Tiersch, T. R. (2008). Strategies for commercialization of cryopreserved fishsemen. Revista Brasileira de Zootecnia, 37(spe), 15–19.https://doi.org/10.1590/S1516-35982008001300003
Turan, N. N., Akar, F., Budak, B., Seren, M., Parlar, A. İ., Sürücü, S., & Ulus, A. T.(2008).Efecto protector del dimetil sulfóxido sobre un modelo experimental delesión medular por reperfusión.Anales de Cirugía Vascular,22(1), 108–116.https://doi.org/10.1016/j.acvsp.2008.04.005
Tvrdá, E., Kňažická, Z., Bárdos, L., Massányi, P., & Lukáč, N. (2011). Impact ofoxidative stress on male fertility-A review.Acta Veterinaria Hungarica,59(4),465–484. https://doi.org/10.1556/AVet.2011.034
Valdebenito, I., Fletcher, C., Vera, V., & Fernández, J. (2009). Factoresfisicoquímicos que regulan la motilidad espermática en peces: Aspectosbásicos y aplicados. Una revisión. Archivos de Medicina Veterinaria, 41(2),97–106. https://doi.org/10.4067/s0301-732x2009000200002
Valdebenito, I. I., Gallegos, P. C., & Effer, B. R. (2015).Gamete quality in fish:Evaluation parameters and determining factors. Zygote, 23(2), 177–197.https://doi.org/10.1017/S0967199413000506
Vílchez, C. (2017). Influence of the ionic and protein environment on sperm motilityactivation in the European eel. Universitat Politècnica de València.https://doi.org/10.4995/Thesis/10251/90408
Viveiros, A. T. M., & Godinho, H. P. (2009).Sperm quality and cryopreservation ofBrazilian freshwater fish species: A review.Fish Physiology and Biochemistry,35(1), 137–150. https://doi.org/10.1007/s10695-008-9240-3
Watanabe W. O., Ellis E. P., Ellis S. C., Chaves J., Manfredi C., Hagood R. W.,Sparsis M., Arneson S. (1998). Artificial propagation of mutton snapperLutjanus analis, a new candidate marine fish species for aquaculture. J. WorldAquaculture Soc. 29: 176-187.
Zohar Y., Mylonas C. C. (2001). Endocrine manipulations of spawning in culturedfish: from hormones to genes.Aquaculture, 197: 99-136.
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Repositorio digital Universidad de los Llanos.https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3295Universidad de los LlanosRepositorio digital Universidad de los Llanoshttps://repositorio.unillanos.edu.co/Incluye tablas y figuras.El estrés oxidativo es generado por desequilibrios entre especies reactivas deloxígeno (EROs)y actividad antioxidante durante la congelación seminal, afectanestructuralmente membranas celulares, actividad enzimática y ácidos nucleicosdel espermatozoide interrumpiendo procesos fisiológicos como la producción deenergía (ATP), reduciendo la movilidad, viabilidad y capacidad fertilizante. Estetrabajo evaluó la calidad seminal (pH, duración de la movilidad, movilidad,volumen), y capacidad antioxidante (CAntiOX) en semen fresco y semencrioconservado de Piaractus brachypomus. Se utilizaron seis (n=6), machossexualmente maduros inducidos con 4 mg.kg -1 deExtractoHipofisario deCarpa(EHC), de los que se colectó semen 18 horas pos-inducción. Calidad espermáticay CAntiOX del semen fresco se evaluaron en 4 tiempos diferentes posteriores a lacolecta (0, 15, 30 y 60 min.), y en semen crioconservado (24 horas, 1, 6 y 12meses) a-196°C en nitrógeno líquido. Se evidenciaron variaciones significativasen la movilidad espermática (p< 0,00567), duración de la movilidad (p< 0,037) ypH (p < 0,001) del semen crioconservado, mientras que CAntiOx no mostródiferencias significativas (p< 0,690). En el semen fresco la movilidad espermáticapresentó diferencias significativas (p< 0,00228), a los 60 min., respecto a losdemás tiempos.Oxidative stress is generated by imbalances between reactive oxygen species(ERO’s) and antioxidant activity during seminal freezing, structurally affects cellmembranes, enzymatic activity and nucleic acids of the sperm disruptingphysiological processes such as energy production (ATP), reducing mobility,viability and fertilizing capacity. This work evaluated the seminal quality (pH,motility duration, motility, volume), and antioxidant capacity (CAntiOX) in freshsemen and cryopreserved semen of Piaractusbrachypomus. Six (n = 6), sexuallymature males induced with 4 mg.kg-1 of pituitary carp extract (EHC) were used,from which semen was collected 18 hours post-induction. Sperm quality andCAntiOX of fresh semen were evaluated in 4 different times after collection (0, 15,30 and 60 min.), And in cryopreserved semen (24 hours, 1, 6 and 12 months) at -196 ° C in liquid nitrogen. Significant variations in sperm mobility (p <0.00567),motility duration (p <0.037) and pH (p <0.001) of cryopreserved semen wereevidenced, while CAntiOx showed no significant differences (p <0.690). In thefresh semen the sperm mobility presented significant differences (p<0.00228), at60 min., Compared to the other times.Objetivos. -- Objetivo General. -- Objetivos Específicos. -- Introducción. -- Planteamiento del problema. -- Justificación. -- Marco teórico. -- Generalidades de cachama blanca. -- Anatomía reproductiva del macho y espermatogénesis. -- Los espermatozoides y composición del plasma seminal. -- Método de extracción de semen. -- Calidad seminal y su evaluación. -- Capacidad Antioxidante función, importancia. -- Fundamento de la Capacidad Antioxidante Total. -- Método ABTS para la medición de Capacidad Antioxidante Total. -- Materiales Y Métodos. -- Ubicación y Características agroclimatológicas. -- Animales e instalaciones. -- Tratamientos y diseño experimental. -- Manejo de los animales. -- Parámetros de evaluación. -- Análisis Estadístico. -- Resultados. -- Discusión. -- Conclusión. -- Recomendaciones. -- Bibliografía.PregradoMedico(a) Veterinario(a) ZootecnistaMedicina Veterinaria y Zootecnia71 páginasapplication/pdfspaUniversidad de los LlanosFacultad de Ciencias Agropecuarias y Recursos NaturalesVillavicencioDerechos Reservados - Universidad de los Llanos, año 2020https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Capacidad antioxidante en semen fresco y crioconservado a largo término en cachama blanca (piaractusbrachypomus)Trabajo de grado - Pregradoinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTexthttps://purl.org/redcol/resource_type/TPhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Agarwal A. (2003) Significance of oxidative stress and sperm chromatin damage inmale infertility. In: De Vriese S. Christophe A, editors. Male fertility and lipidmetabolism.Champaign, IL: AOCS, p.157.Álvarez Caro, D. M., & Larqué Saavedra, A. (2004).La supermolécula, el dimetilsulfóxido:¿un nuevo regulador del crecimiento vegetal?(Vol. 55). México. Retrieved fromhttps://www.revistaciencia.amc.edu.mx/images/revista/55_3/la_supermolecula.pdfAndrade, R. F., Bazzoli, N., Rizzo, E., & Sato, Y. (2001). Continuousgametogenesis in the neotropical freshwater teleost, Bryconops affinis(Pisces:Characidae).Tissue & Cell, 33. https://doi.org/10.1054/tice.2001.0206Ansaldo, Martín. (2001).Niveles de antioxidantes en peces Antárticospertenecientesa las familiasnototheniidaeychannichthydae. (Tesis Doctoral.Universidad de Buenos Aires. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales.).Recuperado dehttp://hdl.handle.net/20.500.12110/tesis_n3355_AnsaldoAramli, M. S., Kalbassi, M. R., Nazari, R. M., &Aramli, S. (2013).Effects of short-term storage on the motility, oxidative stress, and ATP content of Persiansturgeon (Acipenser persicus) sperm.Animal Reproduction Science,143(1–4), 112–117. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2013.10.010Argumedo,T.; & H. Rojas.(2000). Manual de piscicultura con especies nativas.Asociación de Acuicultores de Caquetá (ACUICA), y Plan Nacional deDesarrollo Alternativo (PNDA), pp. 51-59. Florencia, Colombia.Arias, J., & W. Vásquez. (1988). Ampliación del conocimiento biológico deColossoma sp (Cypriniformes: Characidae), en ambientes naturales de lacuenca del río Meta. En: El cultivo de la Cachama (González, R), p. 329.Fundamentos de Acuicultura Continental, p. 329. Ministerio de Agricultura yDesarrollo Rural. INPA. Bogotá.Atencio García, V., Perez E, Pardo S. (2013). Evaluación de dimetilacetamidacomo crioprotector para la criopreservación de semen de bocachico(Prochilodus magdalenae).Arch Med Vet 45: 151-158. doi: 10.4067/S0301-732X20130-00200006AtencioGarcía, V., Dorado Longas, M., Montes Petro, C., Pietro Guevara, M., &Espinosa Araujo, J. (2017). Crioconservación de se men de doradaBryconmoorei con dimetilsulfóxido Cryopreservation of dorada Brycon moorei spermwith dimethyl sulfoxide. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v19n2.59987AUNAP. (2018).Plan Estratégico institucional 2014-2018-AUNAP.Retrieved fromhttps://www.aunap.gov.co/images/documentos/plan-estrategico-institucional-2014-2018.pdfBazzoli, N. & H.P. Godinho.1991. Reproductive biology of theAcestrorhynchuslacustris(Reinhardt, 1874) (Pisces: Characidae) from Tres Marias Reservoir,Brazil.Bernal Gómez, M. E., Mendonça-Junior, C. X. de, & Mancini-Filho, J. (2003).Estabilidad oxidativa de huevos enriquecidos con ácidos grasospoliinsaturados omega 3, frente a antioxidantes naturales.Revista Brasileirade Ciências Farmacêuticas,39(4), 425–432. https://doi.org/10.1590/S1516-93322003000400010Berríos, O., Valdebenito, I., Treulén, F., & Ubilla, A. (2010). Almacenamiento enfrío deespermatozoides de trucha arcoiris (oncorhynchus mykiss): Efectos enla movilidad, superóxido intracelular, integridad de la membrana plasmática ypotencial de membrana mitocondrial.Archivos de Medicina Veterinaria, 42(3),179–186. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2010000300009Bozkurt, Y., ÖĞretmen, F., Kökçü, Ö., & Erçin, U. (2009).Relationships betweenseminal plasma composition and sperm quality parameters of the Salmo truttamacrostigma (Dumeril, 1858) semen: with emphasis on sperm motility. CzechJ. Anim. Sci, 56(8), 2011–355. Retrieved fromhttps://www.agriculturejournals.cz/publicFiles/45476.pdfButts, I. A. E., Babiak, I., Ciereszko, A., Litvak, M. K., Słowińska, M., Soler, C., &Trippel, E. (2011). Semen characteristics and their ability to predict spermcryopreservation potential of Atlantic cod, Gadus morhua L.Theriogenology,75(7), 1290–1300. https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2010.11.044Cabrera, O., Morales, D., Barragán, J., Solá, J., Bacha, F., & Fernández, A.(2015). ¿Qué son las Especies Reactivas del Oxígeno (ROS, según siglas eninglés)?-nutriNews, la revista de nutrición animal.Retrieved June 27, 2018,from https://nutricionanimal.info/que-son-las-especies-reactivas-del-oxigeno-ros-segun-siglas-en-ingles/Casasole, G., Costantini, D., Cichoń, M., & Rutkowska, J. (2016).The effect ofmaternal immunization on female oxidative status, yolk antioxidants and offspring survival in a songbird.Comparative Biochemistry and Physiology-Part A : Molecular and Integrative Physiology, 194, 56–61.https://doi.org/10.1016/j.cbpa.2016.01.019Chen, S.-L., Ji, X.-S., Yu, G.-C., Tian, Y.-S., & Sha, Z.-X. (2004). Cryopreservationof sperm from turbot (Scophthalmus maximus) and application to large-scalefertilization. Aquaculture, 236(1–4), 547–556.https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2003.10.027Ciereszko, A., Dabrowski, K., Kucharczyk, D., Dobosz, S., Goryczko, K., &Glogowski, J. (1999). The presence of uric acid, an antioxidantive substance,in fish seminal plasma. Fish Physiology and Biochemistry, 21(4), 313–315.https://doi.org/10.1023/A:1007886121663Ciereszko, A., Glogowski, J., Dabrowski, K. (2000). Biochemical characteristics ofseminal plasma and spermatozoa of freshwater fishes. Cryopreservation inaquatic species. Edited by T.R. Tiersch and P.M. Mazik. Baton Rouge,Louisiana: World Aquaculture Society. 20–48.http://link.springer.com/10.1007/s10695-005-4742-8Cloud J.G. y S.J. Patton. (2008). Basic principles of fish spermatozoacryopreservation. In: Cabrita E.,Robles V., Herráez M.P. (edit.). Methods inreproductive aquaculture: Marine and freshwater species. London, UK: CRCPress (Taylor and Francis group), p. 237-250.Cosson, J., Linhart, O., Mims, S. D., Shelton, W. L., & Rodina, M. (2000). Analysisof motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa.Journal of Fish Biology, 56(6), 1348–1367.https://doi.org/10.1006/jfbi.2000.1256Cosson, J. (2004). The ionic and osmotic factors controlling motility of fishspermatozoa. Aquaculture International, 12(1), 69–85.https://doi.org/10.1023/B:AQUI.0000017189.44263.bcCosson, J. (2008). Methods to Analyse the Movements of Fish Spermatozoa andtheir Flagella.Cruz Casallas; Velasco Santamaría y Medina Robles Mauricio (2005). Manejohormonal de la función reproductiva de peces tropicales bajo condiciones decautiverio.http://revistas.udenar.edu.co/index.php/reipa/article/download/1595/1936Cruz Casallas, Medina Robles, & Velasco Santamaría. (2006). Evaluación dediferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú (Brycon amazonicus). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2),152–159. Retrieved fromhttp://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=3240058&info=resumen&idioma=SPAFaramarzi, M. (2012). Assessment of Reproductive Parameters in Silver Carp(Hypophthalmichthys molitrix). World Journal of Fish and Marine Sciences,4(3), 244–248. https://doi.org/10.5829/idosi.wjfms.2012.04.03.61325Fauvel, C., Suquet, M., Dreanno, C., Zonno, V., & Menu, B. (1998).Cryopreservation of sea bass (Dicentrarchus labrax) spermatozoa inexperimental and production simulating conditions. Aquatic Living Resources,11(6), 387–394. https://doi.org/10.1016/S0990-7440(99)80004-7Fauvel, C., Suquet, M., & Cosson, J. (2010). Evaluationof fish sperm quality.Journal of Applied Ichthyology, 26(5), 636–643. https://doi.org/10.1111/j.1439-0426.2010.01529.xFlannery, E. W., Butts, I. A. E., Słowińska, M., Ciereszko, A., & Pitcher, T. E.(2013). Reproductive investment patterns, sperm characteristics, and seminalplasma physiology in alternative reproductive tactics of Chinook salmon(Oncorhynchus tshawytscha). Biological Journal of the Linnean Society,108(1), 99-108. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2012.01980.xFostier, A., Jalabert, B., Billard, R., Breton, R. & Zohar, Y. (1983). The gonadalsteroids. En: Hoar, R.S, Randall, D.J. & Donaldson, E.M. Fish physiology,Vol.IXA, Cap 7.Fresneda, A., Lenis, G., Agudelo, E., & Olivera Ángel, M. (2004).Espermiacióninducida y crioconservación de semen de Cachama Blanca (Piaractusbrachypomus). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 17(4), 46–52.Grier y Lo Nostro. (2000). El epitelio germinal de teleósteo: a) concepto unificador.Actas del 6 ° Simposio Internacional sobre Fisiología Reproductiva del Pescado.González, R. 2001. El Cultivo de la Cachama. En: Fundamentos de Acuiculturacontinental, pp. 329-346. Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. INPA.Bogotá.Grassiotto I., Q., Gameiro, M. C., Schneider, T., Malabarba, L. R., & Oliveira, C.(2003).Spermiogenesis and spermatozoa ultrastructure in five species of theCurimatidae with some considerationson spermatozoal ultrastructure in the Characiformes. Neotropical Ichthyology, 1(1), 35–45.https://doi.org/10.1590/S1679-62252003000100004Grassiotto, Q., Negrão, J. N. C., Carvalho, E. D., & Foresti, F. (2001).Ultrastructure of spermatogenic cells and spermatozoa in Hoplias malabaricus(Teleostei, Characiformes, Erythrinidae). Journal of Fish Biology, 59(6), 1494–1502. https://doi.org/10.1006/jfbi.2001.1797İnanan, B. E., Öğretmen, F., İnanan, T., & Yılmaz, F. (2016).Total antioxidantcapacity, catalase activity, and lipid peroxidation changes in seminal plasma ofsex-reversed female and male rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) duringspawning season. Theriogenology, 86(8), 1975–1982.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2016.06.014Jamieson, B. G. M. (1991). Fish Evolution and Systematics: Evidence fromSpermatozoa.Cambridge: Cambridge University Press, 319pKobelkowsky A (2007) Diversidad Morfológica del sistema de conductosexcretores de los peces teleósteos. Rev Mex Biodivers 78:105–116.Koca Y, Ozdal OL, Celik M, Unal S, Balaban NY.Antioxidant activity of seminalplasma in fertile and infertile men. Arch Androl. 2003;49:355-9.Kowalski, R. K., & Cejko, B. I. (2019). Sperm quality in fish: Determinants andaffecting factors. Theriogenology, 135, 94–108.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2019.06.009Kumar, P., Pawaria, S., Dalal, J., Ravesh, S., Bharadwaj, S., Jerome, A., …Yadav, P. S. (2019).Sodium alginate potentiates antioxidants, cryoprotectionand antibacterial activities of egg yolk extender during semen cryopreservationin buffalo. Animal Reproduction Science, 209(July), 106166.https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2019.106166KurlandCg, Andersson Sge. (2000) Origin And Evolution Of The MitochondrialProteome. Microbiol. Mol Biol Rev. 2000;64:786-820Kutluyer, F., Kayim, M., Öğretmen, F., Büyükleblebici, S., & Tuncer, P. B. (2014).Cryopreservation of rainbow trout Oncorhynchus mykissspermatozoa: Effectsof extender supplemented with different antioxidants on sperm motility, velocityand fertility. Cryobiology, 69(3), 462–466.https://doi.org/10.1016/J.CRYOBIOL.2014.10.005Lahnsteiner, F., Berger, B., & Weismann, T. (1999). Sperm metabolism of thetelost fishes Chalcalburnus chalcoides and Oncorhynchus mykiss and itsrelation to motility and viability. Journal of Experimental Zoology, 284(4), 454–465. https://doi.org/10.1002/(SICI)1097-010X(19990901)284:4<454::AID-JEZ12>3.0.CO;2-OLahnsteiner, F., Berger, L. B., Horvath, A., Urbanyi, B., & Weismann, T. (2000).Cryopreservation Of Spermatozoa Ln Cyprinid Fishes. Theriogenology, 54(9),1477–1498. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(00)00469-6Lahnsteiner, F., & Mansour, N. (2010). A comparative study on antioxidantsystems in semen of species of the Percidae, Salmonidae, Cyprinidae, andLotidae for improving semen storage techniques. Aquaculture, 307(1–2), 130–140. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.07.011Lahnsteiner, F., Mansour, N., & Kunz, F. A. (2011). The effect of antioxidants onthe quality of cryopreserved semen in two salmonid fish, the brook trout(Salvelinus fontinalis) and the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).Theriogenology, 76(5), 882–890.https://doi.org/10.1016/J.THERIOGENOLOGY.2011.04.019Lahnsteiner, F., Mansour, N., & Plaetzer, K. (2010). Antioxidant systems of browntrout (Salmo trutta f. fario) semen. Animal Reproduction Science, 119(3–4),314–321. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2010.01.010Lanes, C. F.C., Okamoto, M. H., Bianchini, A., Marins, L. F., & Sampaio, L. A.(2010). Sperm quality of Brazilian flounder Paralichthys orbignyanusthroughout the reproductive season.Aquaculture Research, 41(9), 199–207.https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2010.02501.xLançoni R, Celeghini E, Bianchi Alves M, Santos G, Florez Rodriguez S, Leite T,Arruda R. (2015). Use of melatonin and ferulic acid as promoters ofcryopreserved equine sperm. Anim Reprod. 12:559Lim, H. K., & Le, M. H. (2013). Evaluation of extenders and cryoprotectants onmotility and morphology of longtooth grouper (Epinephelus bruneus) sperm.Theriogenology, 79(5), 867–871.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2013.01.004Linhart, Slechta, Slavik, T. (1991). Fish semen composition and biochemistry.Bull.Inst. Zool. Acad. Sin. Monogr. 1991.16: 285-311Londoño, J. (2012). Antioxidantes: importancia biológica y métodos para medir suactividad. Retrieved fromhttp://repository.lasallista.edu.co/dspace/bitstream/10567/133/3/9.%20129-162.pdfLópez Macías, J.N., Salas Benavides, J., Gómez Cerón, A.E., Sanguíno Ortíz,W.R. (2012). Estudio gonadal de la sabaleta de la cuenca del patía (Bryconsp.)como indicador del potencial acuícola. Revista electrónica de ingenieríade producción acuícola, Vol. 6, Núm 6López Núñez, F. O., Amaya Amaya, M. P., Anaya Yosmar, M. A., & Arango Hoyos,A. W. (2013). Efecto Del Dimetilsulfóxido En Un Modelo Animal DeNefrotoxicidad Inducida Por Gentamicina En Conejos. CIMEL: Ciencia eInvestigación Médica Estudiantil Latinoamericana, 18(1), 1–15.https://doi.org/10.23961/cimel.2013.181.382Macedo Márquez, A. (2012).La Producción de Especies Reactivas de Oxígeno(EROs) en las Mitocondrias de Saccharomyces cerevisiae. RevistaEspecializada En Ciencias Químico-Biológicas, 15(2), 97–103. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.mx/pdf/tip/v15n2/v15n2a3.pdfMahfouz, R., Sharma, R., Sharma, D., Sabanegh, E., & Agarwal, A. (2009).Diagnostic value of the total antioxidant capacity (TAC) in human seminalplasma. Fertility and Sterility, 91.https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2008.01.022Martínez José Gregorio, Pardo Carrasco Sandra (2010). Crioconservación DeSemen En Peces: Efectos Sobre La Movilidad Espermática Y La Fertilidad.Martínez-Páramo, S., Diogo, P., Dinis, M. T., Herráez, M. P., Sarasquete, C., &Cabrita, E. (2012). Incorporation of ascorbic acid and α-tocopherol to theextender media to enhance antioxidant system of cryopreserved sea basssperm. Theriogenology, 77(6), 1129–1136.https://doi.org/10.1016/j.theriogenology.2011.10.017Mattei, X. (1970). Spermiogenése comparé des poisson. Pp.57-72. in: Baccetti, B.(Ed.). Comparative Spermatology. New York: Academic Press, 773p.Mattei, X. (1991). Spermatozoon ultrastructure and its systematic implications infishes.Canadian Journal of Zoology, 69: 3038-3055.Medina Robles, V. M., Velasco Santamaría, Y.,& Cruz Casallas, P. E. (2005).Aspectos Generales de la Crioconservación de Semen.Revista Colombianade Ciencias Pecuarias,18(1), 34–48.Melo, F. C. S. A., & Godinho, H. P. (2006). A protocol for cryopreservation ofspermatozoa of the fishBrycon orthotaenia.Animal Reproduction,3(3), 380–385.Melorose, J., Perroy, R., & Careas, S. (2015). Avances de acuicultura y pesca enColombia. Statewide Agricultural Land Use Baseline 2015 (Vol. 1).https://doi.org/10.1017/CBO9781107415324.004Merino M.C., J.C. Alonso, INCODER–FAO, (2011). Situación del repoblamientode cuerpos de agua continentales en Colombia. Bogotá.Merino, M. C., Bonilla, S. P., & Bages, F. (2013). Diagnóstico del estado de laAcuicultura en Colombia. Retrieved from http://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/25-Diagnóstico-del-estado-de-la-acuicultura-en-Colombia.pdfMerino, M. C., Bonilla, S. P., Bages, F., Guerrero, I., Mojica, H. O., Hortúa, N., &de la pava, M. L. (2014).Plan Nacional para el Desarrollo Sostenible de laAcuicultura en Colombia AUNAP-FAO Plan Nacional para el Desarrollo de laAcuicultura Sostenible en Colombia -PlaNDAS. Bogotá. Retrieved fromhttp://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/Plan-Nacional-para-el-Desarrollo-de-la-Acuicultura-Sostenible-Colombia.pdfMerino, M. C. (2018). Acuicultura en Colombia, 63.Retrieved fromhttps://www.aunap.gov.co/images/convenio/presentacion-tecnica-acuicultura-en-colombia.pdfMiller, N., Rice, C., J. Davies, M., Gopinathan, V., & Milner Anthony. (1993). Anovel method for measuring antioxidant capacity and its application tomonitoring the antioxidant status in premature neonates. Clinical Science,84(4), 407–412. https://doi.org/10.1042/cs0840407Montes Montes, Melissa (2012). Evaluación de la calidad espermática y ensayospreliminares en Crioconservación de espermatozoides de LenguadoParalichthys Adspersus(Steindachner, 1867). Universidad Nacional Mayor deSan Marcos. Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Retrieved fromhttp://cybertesis.unmsm.edu.pe/handle/cybertesis/575Morisawa, S., & Morisawa, M. (1986). Acquisition of potential for sperm motility inrainbow trout and chum salmon.Journal of Experimental Biology, 126, 89–96.Muñoz Andrea, Caldas María Leonor, Hurtado Giraldo Hernán (2004). AnálisisHistomorfológico Del Sistema Digestivo Y Glándulas Anexas En Alevinos DeCachama Blanca,Piaractus brachypomus (Characidae: Piaractus)Nagahama, Y. (1983). The functional morphology of teleost gonads. En: Hoar,W.S.,Randall, D.J. & Donaldson, E.M. Fish Physio Volume IxPart A, Cap.6.Nagahama, Y. (2000). Gonadal steroid hormones: major regulators of gonadal sexdifferentiation and gametogenesis in fish, in: Norberg, B. et al. (Ed.)Proceedings of the 6th International Symposium on the ReproductivePhysiology of Fish, Bergen, Norway, July 4-9, 1999. pp. 211-222Nascimento, A. F., Maria, A. N., Pessoa, N. O., Carvalho, M. A. M., & Viveiros, A.T. M. (2010).Out-of-season sperm cryopreserved in different media of theAmazonian freshwater fish pirapitinga (Piaractus brachypomus). AnimalReproduction Science, 118(2–4), 324–329.https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2009.07.002Orfão, L. H., Nascimento, A. F., Corrêa, F. M., Cosson, J., & Viveiros, A. T. M.(2011).Extender composition, osmolality and cryoprotectant effects on themotility of sperm in the Brazilian endangered species Brycon opalinus(Characiformes). Aquaculture, 311(1–4), 241–247.https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2010.11.041Osorio, A., Wills, A., & Muñoz A. P. (2013).Caracterización De Coproductos De LaIndustria Del Fileteado De Tilapia Nilótica (Oreochromis niloticus) y TruchaArcoíris (Oncorhynchus mykiss) En Colombia. Revista de La Facultad deMedicina Veterinaria y de Zootecnia, 60. Retrieved fromhttps:revistas.unal.edu.co/index.php/remevez/rt/printerFriendly/42127/44066Pardo Carrasco, S., Salas Villalva, J., Reza Gaviria, L., Espinosa Araujo, J., &Atencio-García, V. (2015). Cryopreservation of Trans-Andean shovelnosecatfish (Sorubim cuspicaudus) semen using dimethylacetamide.CES MedicinaVeterinaria y Zootecnia (Vol. 10). Universidad CES, Facultad de MedicinaVeterinaria y Zootecnia. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1900-96072015000200004Patricio, A., Cruz, D. F., Vieira Silva, J., Padrão, A., Correia, B. R., Korrodi-Gregório, L., …Fardilha, M. (2016). Relation between seminal quality andoxidative balance in sperm cells PALAVRAS-CHAVE. Acta UrológicaPortuguesa, 33(1), 6–15. https://doi.org/10.1016/j.acup.2015.10.001Quagio-Grassiotto, I., Negrão, J. N. C., Carvalho, E. D., & Foresti, F. (2001).Ultrastructure of spermatogenic cells and spermatozoa in Hoplias malabaricus(Teleostei, Characiformes, Erythrinidae). Journal of Fish Biology, 59(6), 1494–1502. https://doi.org/10.1006/jfbi.2001.1797Ramírez Merlano, J. A., Medina Robles, V. M., & Cruz-Casallas, P. E. (2010).Crioconservación espermática en peces, un acercamiento en Siluriformes.ORINOQUIA (Vol. 14). Instituto de Investigaciones de la Orinoquia Colombiana. Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0121-37092010000100007Ramírez Merlano, J. A., Medina-Robles, V. M., & Cruz-Casallas, P. E. (2011).Crioconservación seminal de bagre rayado Pseudoplatystoma metaense(Teleostei, Pimelodidae), bajo diferentes protocolosde congelación. Archivosde Medicina Veterinaria, 43(2), 135–144. https://doi.org/10.4067/S0301-732X2011000200006Restrepo-Betancur, G., Montoya Páez, J. D., & Arboleda Chacón, L. (2017).Evaluación de Dos Crioprotectores y Tres Curvas de CongelaciónProgramable en la Criopreservación de Semen de Brycon henni (Pisces:Characidae).Revista de Investigaciones Veterinarias Del Perú,28(3), 597.https://doi.org/10.15381/rivep.v28i3.13349Restrepo, G., Montoya, J. D., & Rojano, B. (2016). Capacidad antioxidante ycalidad post-descongelación de semen equino crioconservado con quercetinay ergotioneina. Revista de La Facultad de Medicina Veterinaria Y deZootecnia, 63(3), 167–178. https://doi.org/10.15446/rfmvz.v63n3.62747Rodríguez, E., Gil-Villa, A. M., Aguirre-Acevedo, D. C., Cardona-Maya, W., &Cadavid, A. P. (2011). Evaluación de parámetros seminales noconvencionales en individuos cuyas parejas presentan muerte embrionariatemprana recurrente: En busca de un valor de referencia.Biomédica,31(1),100–107.Rurangwa, E., Kime, D. ., Ollevier, F., & Nash, J. . (2004). The measurement ofsperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish.Aquaculture,234(1–4), 1–28. https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2003.12.006Salazar Ariza, G. (2018). FAO Fisheries &amp; Aquaculture-Visión general delsector acuícola nacional –Colombia-Departamento de Pesca y Acuicultura dela FAO. Retrieved May 5, 2018, fromhttp://www.fao.org/fishery/countrysector/naso_colombia/esSchulz, R.W. & T. MIURA. (2002). Spermatogenesis and its endocrine regulation.Fish Physiology and Biochemistry 26: 43-56.Sikka, S. C. (2004). Andrology Lab Corner*: Role of Oxidative Stress andAntioxidants in Andrology and Assisted Reproductive Technology. Journal ofAndrology, 25(1), 5–18. https://doi.org/10.1002/j.1939-4640.2004.tb02751.xSłowińska, M., Nynca, J., Cejko, B. I., Dietrich, M. A., Horváth, Á., Urbányi, B., …Ciereszko, A. (2013). Total antioxidant capacity of fish seminal plasma.Aquaculture, 400–401, 101–104.https://doi.org/10.1016/J.AQUACULTURE.2013.03.010Suárez Martínez,R. O., Medina Robles, V. M., & Cruz Casallas, P. E. (2019).Efecto de dos colectas de semen en una temporada reproductiva sobre lacalidad seminal de cachama blanca (Piaractus brachypomus).Revista deInvestigaciones Veterinarias Del Peru,30(3), 1184–1195.https://doi.org/10.15381/rivep.v30i3.15515Tabares, C. J., Tarazona, A. M., Olivera Ángel, M., & Sci Agr, D. (2005). Fisiologíade la activación del espermatozoide en peces de agua dulce.149 Rev ColCienc Pec, 18(2). Retrieved fromhttp://www.scielo.org.co/pdf/rccp/v18n2/v18n2a06.pdfTatone C, Di Emidio G, Vento M, Ciriminna R, Artini P. (2010).Cryopreservationand oxidative stress in reproductive cells. Gynecol Endocrinol. 26:563-56Tiersch, T.R. y M. Mazik. (2000). Cryopreservation of sperm of some marinefishes. En: Tiersch, T.R.y M. Mazik (edit.). Cryopreservation in AquaticSpecies. The World Aquaculture Society. Baton Rouge, Louisiana: 439 pp.Tiersch, T. R. (2008). Strategies for commercialization of cryopreserved fishsemen. Revista Brasileira de Zootecnia, 37(spe), 15–19.https://doi.org/10.1590/S1516-35982008001300003Turan, N. N., Akar, F., Budak, B., Seren, M., Parlar, A. İ., Sürücü, S., & Ulus, A. T.(2008).Efecto protector del dimetil sulfóxido sobre un modelo experimental delesión medular por reperfusión.Anales de Cirugía Vascular,22(1), 108–116.https://doi.org/10.1016/j.acvsp.2008.04.005Tvrdá, E., Kňažická, Z., Bárdos, L., Massányi, P., & Lukáč, N. (2011). Impact ofoxidative stress on male fertility-A review.Acta Veterinaria Hungarica,59(4),465–484. https://doi.org/10.1556/AVet.2011.034Valdebenito, I., Fletcher, C., Vera, V., & Fernández, J. (2009). Factoresfisicoquímicos que regulan la motilidad espermática en peces: Aspectosbásicos y aplicados. Una revisión. Archivos de Medicina Veterinaria, 41(2),97–106. https://doi.org/10.4067/s0301-732x2009000200002Valdebenito, I. I., Gallegos, P. C., & Effer, B. R. (2015).Gamete quality in fish:Evaluation parameters and determining factors. Zygote, 23(2), 177–197.https://doi.org/10.1017/S0967199413000506Vílchez, C. (2017). Influence of the ionic and protein environment on sperm motilityactivation in the European eel. Universitat Politècnica de València.https://doi.org/10.4995/Thesis/10251/90408Viveiros, A. T. M., & Godinho, H. P. (2009).Sperm quality and cryopreservation ofBrazilian freshwater fish species: A review.Fish Physiology and Biochemistry,35(1), 137–150. https://doi.org/10.1007/s10695-008-9240-3Watanabe W. O., Ellis E. P., Ellis S. C., Chaves J., Manfredi C., Hagood R. W.,Sparsis M., Arneson S. (1998). Artificial propagation of mutton snapperLutjanus analis, a new candidate marine fish species for aquaculture. J. WorldAquaculture Soc. 29: 176-187.Zohar Y., Mylonas C. C. (2001). Endocrine manipulations of spawning in culturedfish: from hormones to genes.Aquaculture, 197: 99-136.Capacidad antioxidante (CAntiOx)Piaractus brachypomusSemen crioconservadoCalidad espermáticaEspecies reactivas de oxígeno(EROs)Antioxidant capacity (CAntiOx)Piaractus brachypomusCryopreserved semenSperm qualityReactive oxygen species (EROs)PublicationORIGINAL1234790083-10306420261234790083-1030642026Trabajo de gradoapplication/pdf799056https://dspace7-unillanos.metacatalogo.org/bitstreams/0344c8d3-b410-4510-af8f-0706a66aec1b/downloadb27cac0536c152ba065aee581cde3337MD53Anexo 1Anexo 1Artículoapplication/pdf332522https://dspace7-unillanos.metacatalogo.org/bitstreams/a3dac2a4-093c-4313-b9fa-455ce52183d7/download7a937ddea0baf7cea79c32c06eb000f5MD51Anexo 2Anexo 2Carta de autorizaciónapplication/pdf1143223https://dspace7-unillanos.metacatalogo.org/bitstreams/d58778eb-27b8-4e84-9c40-321c483cd555/download0d40220471f3fba129df3029338ca9afMD52LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; 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