Crioconservación de semen y calidad espermática en sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae)

La  crioconservación de semen es una técnica utilizada tanto en humanos como en animales, permitiendo la congelación del material genético que será utilizado en la reproducción. El objetivo de esta investigación fue evaluar el efecto de tres crioprotectores sobre los parámetros de movilidad y vitali...

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Autores:
Pineda-Santis, Hermes
Gómez-Oquendo, Jorge
Montoya-Páez, Juan
Acevedo-Villa, Oscar
Restrepo-Betancur, Giovanni
Toro-Rendón, Verónica
Tipo de recurso:
Article of journal
Fecha de publicación:
2015
Institución:
Universidad de los Llanos
Repositorio:
Repositorio Digital Universidad de los LLanos
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/3823
Acceso en línea:
https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3823
https://doi.org/10.22579/20112629.316
Palabra clave:
Crioprotectores
peces
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vitalidad
Cryoprotectant
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Orinoquia - 2016
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description La  crioconservación de semen es una técnica utilizada tanto en humanos como en animales, permitiendo la congelación del material genético que será utilizado en la reproducción. El objetivo de esta investigación fue evaluar el efecto de tres crioprotectores sobre los parámetros de movilidad y vitalidad en el semen post descongelado de la sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae). Tres crioprotectores: dimetilformamida (DMF), dimetilsulfoxido (DMSO) y etilenglicol (EG), fueron utilizados independientemente para la crioconservación seminal, a una concentración de 5%, el semen fue empacado en pajillas de 0.5 ml. Diecinueve machos sexualmente maduros y 116 pajillas fueron analizadas en el laboratorio de Biotecnología Animal del Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid. En la evaluación del semen fresco y post descongelado se utilizó el Sistema de Análisis de Clase (SCA®), para los parámetros de movilidad total (MT), movilidad progresiva (MP), velocidad curvilínea (VCL), velocidad rectilínea (VSL) y velocidad promedio (VAP), entre otros. La vitalidad espermática post descongelación se evaluó mediante microscopia de fluorescencia utilizando la combinación de sondas SYBR/IP. Para el análisis estadístico se ajustaron modelos lineales generalizados (GLM) y las medias se compararon por la prueba de Tukey. Los porcentajes de MT fueron 96.1±3.3% (semen fresco), 52.7±9.2% (DMF), 59.7±9.3% (DMSO) y 62.1±11.2% (EG).Mientras que para la MP fueron de 73.3±14.2 (semen fresco), 11.7±6.7% (DMF), 13.8±6.8% (DMSO) y 15.6±7.8% (EG). No hubo diferencias significativas entre DMSO y EG, pero fueron superiores a DMF (P≤0.05), para ambas variables. VCL, VSL y VAP fueron estadísticamente superiores para EG (P≤0.05). DMSO presentó valores mayores de vitalidad espermática (82.0±1.9%), cuando fue comparado con DMF (73.5±5.9%) y EG (69.2±6.7%) (P≤0.05). Se concluye que DMSO y EG presentan porcentajes superiores de MT y MP que DMF, mientras DMSO produce mejores resultados de vitalidad, cuando se evalúa el semen post descongelado de sabaleta Brycon henni.
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Betancur J, Ospina J, Botero J, Uribe J, Botero M, Montoya A. Efecto de diferentes activadores espermáticos sobre el porcentaje de movilidad y tiempo de activación en semen de dorada Brycon moorei (Dahl, 1955) fresco y criopreservado. Rev Colomb Cienc Pecu. 2009;22:385.
Carolsfeld J, Godinho H, Zaniboni-Filho E, Harvey B. Cryopreservation of sperm in Brazilian migratory fish conservation. J Fish Biol. 2003;63:472-189.
Challah T, Brillard J. Comparison of assessment of fowl sperm viability by Eosin Nigrosin and dual fluorescence (SYBR-14/PI). Theriogenology. 1998;50:487–493.
Cruz-Casallas P, Pardo-Carrasco S, Arias-Castellanos J, Lombo-Castellanos P, Lombo-Rodriguez D. Cryopreservation of yamu Brycon siebenthalae milt. J World Aquacult Soc. 2004;35:529535.
Cruz-Casallas P, Medina V, Velasco Y. Evaluación de diferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú Brycon amazonicus. Rev Colom Cien Pec. 2006;19(2):153-159.
Dahl G. 1971. Los peces del norte de Colombia. Bogotá (Colombia): Instituto de Desarrollo de los Recursos Naturales Renovables, (Inderena), Talleres Litografia Arco. 391p.
Fresneda A, Lenis G, Agudelo E, Olivera M. Espermiación inducida y crioconservación de semen de cachama blanca Piaractus brachypomus. Rev Colom Cien Pec. 2004;17:46-52.
Gonzalez J, Losada E, Cruz-Casallas N, Cruz-Casallas P, Medina V. Efecto de la sustancia crioprotectora y nivel de glucosa sobre la viabilidad de embriones de cachama blanca Piaractus brachypomus conservados a -14 °C. Rev Colomb Cienc Pecu. 2011;24:384.
Gillan L, Evans G, Maxwell W. Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology. 2005;63(2):445-457.
Hurtado J, Mancera N, Saldamando C. Variabilidad genética de Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, sistema río Magdalena, Colombia. Rev Biol Trop. 2011;59:269-282.
Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). 2007. Buenas prácticas en la producción acuícola: directrices sanitarias y de inocuidad para la producción acuícola destinada al consumo humano. Subgerencia de Protección y Regulación Pecuaria. Grupo de Inocuidad en las Cadenas Agroalimentarias Pecuarias. Grupo de prevención y análisis de riesgos zoosanitarios y asuntos internacionales. Produmedios. Bogotá. 67p.
Lenis G, Restrepo L, Rivera J, Monsalve F, Cruz-Casallas P. Reproducción inducida y producción de alevinos de Sabaleta Brycon henni: determinación del tiempo de latencia utilizando extracto de hipófisis de carpa. Rev Colom Cien Pec. 2009;22:143-155.
Lichtenstein G. 2009. Desarrollo e implementación de técnicas para la crioconservación de esperma de pejerrey bonaerense Odonstesthes bonariensis. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Belgrano.
Martínez S. 2008. Bases para la elaboración de bancos de germoplasma en peces: aplicación a la trucha leonesa. Facultad de Ciencias Biológicas y Ambientales. Departamento de Biología Molecular. Universidad de León. 174p.
Martinez G, Atencio V, Pardo S. Efectos de la concentración de glucosa sobre la activación de la movilidad espermática en bocachico Prochilodus magdalenae (Pisces, Characiformes) Rev MVZ Córdoba. 2011;16(2):2554-2563.
Martínez J, Pardo-Carrasco S, Tarazona-Morales A. Sperm cryopreservation of freshwater fish bocachico Prochilodus magdalenae in DMSO and glucose and its effects on fertilization and hatching efficiency. Anim Reprod. 2012;9:19-26.
Medina M, Velasco Y, Cruz-Casallas P. Aspectos generales de la criopreservación espermática de peces teleósteos. Rev Colom Cien Pec. 2005;18(1):34-36. Montoya A, Carrillo L, Olivera M. Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la Sabaleta Brycon henni Eigenmann, 1913 (Pisces: Characidae) Rev Col Cienc Pec. 2006;19(2):180185.
Murgas L, Gualhanone A, Silva M, Mello C, Freitas R, Zangeronimo M. Calidad seminal del pez pirancanjuba Brycon orbignyanus post descongelación. An Vet. (Murcia). 2001;17:3-10.
Navarro O, Velasco Y, Cruz-Casallas P. Evaluación de cinco protectores para la crioconservación de semen de Cachama Blanca Piaractus brachypomus, Rev Col Cienc Pec. 2004;17:53-59.
Pardo-Carrasco S, Zaniboni-Filho E, Arias-Castellanos J, Suarez-Mahecha H, Atencio-García V, Cruz-Casallas P. Evaluation of milt quality of the yamú Brycon amazonicus under hormonal induction. Rev Colom Cienc Pec. 2006;19:134-139.
Pineda-Santis H, Arboleda L, Echeverry A, Urcuqui S, Pareja D, Olivera M, Builes J. Caracterización de la diversidad genética en el pez Brycon henni (Characiformes: Characidae) en Colombia central por medio de marcadores RAPD. Rev Biol Trop. 2007;55:1025-1035.
Pinzón-Arciniegas S, Mojica-Rodríguez J; Cruz-Casallas P. Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquia. 2005;9:28-37.
Ramirez J, Medina V, Cruz-Casallas P. Crioconservación de semen de bagre rayado Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766) empleando un congelador programable: evaluación de la movilidad y fertilidad post descongenlación. Rev Colomb Cienc Pecu. 2008;21:473.
Ramalho-Santos J, Amaral A, Sousa A, Rodrigues A, Martins L, Baptista M, Mota P, Tavares R, Amaral S, Gamboa S. 2007. Probing the structure and function of mammalian sperm using optical and fluorescence microscopy. Modern Research and Educational Topics in Microscopy 394-402.
Restrepo G, Ocampo D, Velasquez A. Evaluación de la movilidad del semen criopreservado de caballos criollo colombiano por un Sistema analizador de clase. Revista UDCA. 2013;16(2):445450.
Reza L, Salas J. 2010. Crioconservación de semen de bagre blanco Sorubim cuspicaudus (Littmann, Burr & Nass 2000) con Dimetilacetamida (DMA) y Dimetilsulfoxido (DMSO). Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Programa de Acuicultura. Universidad de Córdoba. 60p.
Tabares J, Montoya A, Ruiz Z, Cerón M, Arboleda L, Olivera M. Caracterización seminal en sabaleta Brycon henni: evaluación de factores inhibidores y activadores de la motilidad espermática. Iatreia. 2004;17(2):173-174.
Tabares J, 2005. Evaluación del efecto de algunos iones sobre la activación de la movilidad espermática y el potencial de membrana en Brycon henni, tesis, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia, Medellín; 68p
Tabares J, Montoya A., Arboleda L, Echeverri A, Restrepo L, Olivera A. Efecto de la pluviosidad y el brillo solar sobre la producción y características del semen en el pez (Brycon henni) Rev Biol Trop. 2006;54(1):179-187.
Tabares J, Ruiz T, Arboleda L, Olivera A. Effect of some ions on sperm activation in Brycon henni. Efecto de algunos iones sobre la activación espermática en Brycon henni. Acta Biol Colom. 2007;12:87-98.
Tian Y, Chen S, Ji X, Zhai J, Sun L, Chen C, Su P. Cryopreservation of spotted halibut (Veraspes variegatus) sperm. Aquaculture. 2008;284:268-271.
Tiersch T. Strategies for commercialization of cryopreserved fish semen. R Bras Zootec. 2008;37:15-19.
Varela-Junior A, Corcini C, Gheller S, Jardim S, Lucia-Junior C, StreitJunior D, Figueiredo M. Use of amides as cryoprotectants in extenders for frozen sperm for tambaqui Colossoma macropoum. Theriogenology. 2012;78:244-251.
Viveiros ATM, Godinho HP Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: a review. Fish Phys Bioch. 2009;35:137-150.
Vuthiphandchai V, Chomphuthawach S, Nimrat S. Cryopreservation of red snapper (Lutjanus argentimaculatus) sper: effect of cryoprotectans and cooling rates on sperm motility, sperm viability and fertilization capacity. Theriogenology. 2009;72:129-138.
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Diecinueve machos sexualmente maduros y 116 pajillas fueron analizadas en el laboratorio de Biotecnología Animal del Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid. En la evaluación del semen fresco y post descongelado se utilizó el Sistema de Análisis de Clase (SCA®), para los parámetros de movilidad total (MT), movilidad progresiva (MP), velocidad curvilínea (VCL), velocidad rectilínea (VSL) y velocidad promedio (VAP), entre otros. La vitalidad espermática post descongelación se evaluó mediante microscopia de fluorescencia utilizando la combinación de sondas SYBR/IP. Para el análisis estadístico se ajustaron modelos lineales generalizados (GLM) y las medias se compararon por la prueba de Tukey. Los porcentajes de MT fueron 96.1±3.3% (semen fresco), 52.7±9.2% (DMF), 59.7±9.3% (DMSO) y 62.1±11.2% (EG).Mientras que para la MP fueron de 73.3±14.2 (semen fresco), 11.7±6.7% (DMF), 13.8±6.8% (DMSO) y 15.6±7.8% (EG). No hubo diferencias significativas entre DMSO y EG, pero fueron superiores a DMF (P≤0.05), para ambas variables. VCL, VSL y VAP fueron estadísticamente superiores para EG (P≤0.05). DMSO presentó valores mayores de vitalidad espermática (82.0±1.9%), cuando fue comparado con DMF (73.5±5.9%) y EG (69.2±6.7%) (P≤0.05). Se concluye que DMSO y EG presentan porcentajes superiores de MT y MP que DMF, mientras DMSO produce mejores resultados de vitalidad, cuando se evalúa el semen post descongelado de sabaleta Brycon henni.Semen cryopreservation (i.e. sperm banking) is a technique which is used for both humans and animals; it allows the genetic material which will be used in reproduction to be frozen. This research was aimed at evaluating the effect of three cryoprotectants on the mobility and vitality of post-thaw semen from the trans-Andean, omnivorous fish Brycon henni (Pisces: Characidae). Three cryoprotectants (N,N-dimethylformamide (DMF), dimethyl sulphoxide (DMSO) and ethylene glycol  (EG)) were used independently for semen cryopreservation (5% concentration); B. henni semen was packed in 0.5 ml plastic mini-straws. Nineteen sexually-mature males and 116 straws were analysed at Animal Biotechnology Laboratory of Politécnico Colombiano Jaime Isaza Cadavid.  A computer-assisted sperm class analyser (SCA) system was used for evaluating fresh and post-thaw semen regarding the following parameters: total motility (TM), progressive motility (PM), curvilinear velocity (VCL), straight line velocity (VSL) and average path velocity (VAP). Post-thaw sperm vitality was evaluated by fluorescence microscopy using the SYBR Green I/PI probe assay. Statistical analysis involved fitting generalised linear models (GLM) and Tukey multiple comparison test was used for comparing means. TM percentages were 96.1±3.3% (fresh semen), 52.7±9.2% (DMF), 59.7±9.3% (DMSO) and 62.1±11.2% (EG), whilst PM percentages were 73.3±14.2 (fresh semen), 11.7±6.7% (DMF), 13.8±6.8% (DMSO) and 15.6±7.8% (EG). There were no statistically significant differences between DMSO and EG, but these were greater than those for DMF (p≤0.05) for both variables.  Differences for VCL, VSL and VAP were statistically greater for EG (p≤0.05). DMSO had greater sperm vitality values (82.0±1.9%) compared to DMF (73.5±5.9%) and EG (69.2±6.7%) (p≤0.05). it was thus concluded that DMSO and EG had greater TM and PM percentages than DMF, whilst DMSO produced better results regarding vitality when evaluating post-thaw semen from the trans-Andean, omnivorous fish Brycon henni.Key words: Cryoprotectant; fish; viability; vitality.application/pdftext/htmlspaUniversidad de los LlanosOrinoquia - 2016https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/316CrioprotectorespecesviabilidadvitalidadCryoprotectantfishviabilityvitalityCryoprotectantfishviabilityvitalityCrioconservación de semen y calidad espermática en sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae)Semen cryoconservation and sperm quality regardin the Neotropical fish Brycon henni (Pisces: Characidae)Artículo de revistainfo:eu-repo/semantics/articleJournal articleinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Texthttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Andrade-Talmelli E, Kayamoto E, Fenerich-Verani N. Características seminais da piabanha Brycon insignis (Steindachner, 1876) após estimulação hormonal. Biol Inst Pesca, São Paulo. 2001;27(2):149-154.Betancur J, Ospina J, Botero J, Uribe J, Botero M, Montoya A. Efecto de diferentes activadores espermáticos sobre el porcentaje de movilidad y tiempo de activación en semen de dorada Brycon moorei (Dahl, 1955) fresco y criopreservado. Rev Colomb Cienc Pecu. 2009;22:385.Carolsfeld J, Godinho H, Zaniboni-Filho E, Harvey B. Cryopreservation of sperm in Brazilian migratory fish conservation. J Fish Biol. 2003;63:472-189.Challah T, Brillard J. Comparison of assessment of fowl sperm viability by Eosin Nigrosin and dual fluorescence (SYBR-14/PI). Theriogenology. 1998;50:487–493.Cruz-Casallas P, Pardo-Carrasco S, Arias-Castellanos J, Lombo-Castellanos P, Lombo-Rodriguez D. Cryopreservation of yamu Brycon siebenthalae milt. J World Aquacult Soc. 2004;35:529535.Cruz-Casallas P, Medina V, Velasco Y. Evaluación de diferentes crioprotectores para la crioconservación de espermatozoides de yamú Brycon amazonicus. Rev Colom Cien Pec. 2006;19(2):153-159.Dahl G. 1971. Los peces del norte de Colombia. Bogotá (Colombia): Instituto de Desarrollo de los Recursos Naturales Renovables, (Inderena), Talleres Litografia Arco. 391p.Fresneda A, Lenis G, Agudelo E, Olivera M. Espermiación inducida y crioconservación de semen de cachama blanca Piaractus brachypomus. Rev Colom Cien Pec. 2004;17:46-52.Gonzalez J, Losada E, Cruz-Casallas N, Cruz-Casallas P, Medina V. Efecto de la sustancia crioprotectora y nivel de glucosa sobre la viabilidad de embriones de cachama blanca Piaractus brachypomus conservados a -14 °C. Rev Colomb Cienc Pecu. 2011;24:384.Gillan L, Evans G, Maxwell W. Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology. 2005;63(2):445-457.Hurtado J, Mancera N, Saldamando C. Variabilidad genética de Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, sistema río Magdalena, Colombia. Rev Biol Trop. 2011;59:269-282.Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). 2007. Buenas prácticas en la producción acuícola: directrices sanitarias y de inocuidad para la producción acuícola destinada al consumo humano. Subgerencia de Protección y Regulación Pecuaria. Grupo de Inocuidad en las Cadenas Agroalimentarias Pecuarias. Grupo de prevención y análisis de riesgos zoosanitarios y asuntos internacionales. Produmedios. Bogotá. 67p.Lenis G, Restrepo L, Rivera J, Monsalve F, Cruz-Casallas P. Reproducción inducida y producción de alevinos de Sabaleta Brycon henni: determinación del tiempo de latencia utilizando extracto de hipófisis de carpa. Rev Colom Cien Pec. 2009;22:143-155.Lichtenstein G. 2009. Desarrollo e implementación de técnicas para la crioconservación de esperma de pejerrey bonaerense Odonstesthes bonariensis. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales. Universidad de Belgrano.Martínez S. 2008. Bases para la elaboración de bancos de germoplasma en peces: aplicación a la trucha leonesa. Facultad de Ciencias Biológicas y Ambientales. Departamento de Biología Molecular. Universidad de León. 174p.Martinez G, Atencio V, Pardo S. Efectos de la concentración de glucosa sobre la activación de la movilidad espermática en bocachico Prochilodus magdalenae (Pisces, Characiformes) Rev MVZ Córdoba. 2011;16(2):2554-2563.Martínez J, Pardo-Carrasco S, Tarazona-Morales A. Sperm cryopreservation of freshwater fish bocachico Prochilodus magdalenae in DMSO and glucose and its effects on fertilization and hatching efficiency. Anim Reprod. 2012;9:19-26.Medina M, Velasco Y, Cruz-Casallas P. Aspectos generales de la criopreservación espermática de peces teleósteos. Rev Colom Cien Pec. 2005;18(1):34-36. Montoya A, Carrillo L, Olivera M. Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la Sabaleta Brycon henni Eigenmann, 1913 (Pisces: Characidae) Rev Col Cienc Pec. 2006;19(2):180185.Murgas L, Gualhanone A, Silva M, Mello C, Freitas R, Zangeronimo M. Calidad seminal del pez pirancanjuba Brycon orbignyanus post descongelación. An Vet. (Murcia). 2001;17:3-10.Navarro O, Velasco Y, Cruz-Casallas P. Evaluación de cinco protectores para la crioconservación de semen de Cachama Blanca Piaractus brachypomus, Rev Col Cienc Pec. 2004;17:53-59.Pardo-Carrasco S, Zaniboni-Filho E, Arias-Castellanos J, Suarez-Mahecha H, Atencio-García V, Cruz-Casallas P. Evaluation of milt quality of the yamú Brycon amazonicus under hormonal induction. Rev Colom Cienc Pec. 2006;19:134-139.Pineda-Santis H, Arboleda L, Echeverry A, Urcuqui S, Pareja D, Olivera M, Builes J. Caracterización de la diversidad genética en el pez Brycon henni (Characiformes: Characidae) en Colombia central por medio de marcadores RAPD. Rev Biol Trop. 2007;55:1025-1035.Pinzón-Arciniegas S, Mojica-Rodríguez J; Cruz-Casallas P. Ensayos preliminares sobre crioconservación de semen de bagre rayado (Pseudoplatystoma fasciatum Linnaeus, 1766). Orinoquia. 2005;9:28-37.Ramirez J, Medina V, Cruz-Casallas P. Crioconservación de semen de bagre rayado Pseudoplatystoma fasciatum (Linnaeus, 1766) empleando un congelador programable: evaluación de la movilidad y fertilidad post descongenlación. Rev Colomb Cienc Pecu. 2008;21:473.Ramalho-Santos J, Amaral A, Sousa A, Rodrigues A, Martins L, Baptista M, Mota P, Tavares R, Amaral S, Gamboa S. 2007. Probing the structure and function of mammalian sperm using optical and fluorescence microscopy. Modern Research and Educational Topics in Microscopy 394-402.Restrepo G, Ocampo D, Velasquez A. Evaluación de la movilidad del semen criopreservado de caballos criollo colombiano por un Sistema analizador de clase. Revista UDCA. 2013;16(2):445450.Reza L, Salas J. 2010. Crioconservación de semen de bagre blanco Sorubim cuspicaudus (Littmann, Burr & Nass 2000) con Dimetilacetamida (DMA) y Dimetilsulfoxido (DMSO). Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Programa de Acuicultura. Universidad de Córdoba. 60p.Tabares J, Montoya A, Ruiz Z, Cerón M, Arboleda L, Olivera M. Caracterización seminal en sabaleta Brycon henni: evaluación de factores inhibidores y activadores de la motilidad espermática. Iatreia. 2004;17(2):173-174.Tabares J, 2005. Evaluación del efecto de algunos iones sobre la activación de la movilidad espermática y el potencial de membrana en Brycon henni, tesis, Facultad de Ciencias Agrarias, Universidad de Antioquia, Medellín; 68pTabares J, Montoya A., Arboleda L, Echeverri A, Restrepo L, Olivera A. Efecto de la pluviosidad y el brillo solar sobre la producción y características del semen en el pez (Brycon henni) Rev Biol Trop. 2006;54(1):179-187.Tabares J, Ruiz T, Arboleda L, Olivera A. Effect of some ions on sperm activation in Brycon henni. Efecto de algunos iones sobre la activación espermática en Brycon henni. Acta Biol Colom. 2007;12:87-98.Tian Y, Chen S, Ji X, Zhai J, Sun L, Chen C, Su P. Cryopreservation of spotted halibut (Veraspes variegatus) sperm. Aquaculture. 2008;284:268-271.Tiersch T. Strategies for commercialization of cryopreserved fish semen. R Bras Zootec. 2008;37:15-19.Varela-Junior A, Corcini C, Gheller S, Jardim S, Lucia-Junior C, StreitJunior D, Figueiredo M. Use of amides as cryoprotectants in extenders for frozen sperm for tambaqui Colossoma macropoum. Theriogenology. 2012;78:244-251.Viveiros ATM, Godinho HP Sperm quality and cryopreservation of Brazilian freshwater fish species: a review. Fish Phys Bioch. 2009;35:137-150.Vuthiphandchai V, Chomphuthawach S, Nimrat S. Cryopreservation of red snapper (Lutjanus argentimaculatus) sper: effect of cryoprotectans and cooling rates on sperm motility, sperm viability and fertilization capacity. Theriogenology. 2009;72:129-138.https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/316/882https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/316/html_5173216619OrinoquiaPublicationOREORE.xmltext/xml2826https://repositorio.unillanos.edu.co/bitstreams/c001717e-0b7e-4c7e-b384-3017c646ddd6/downloadaa47623f28d1ab2e818a0b4e464b7293MD51001/3823oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/38232024-07-25 13:14:10.141https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Orinoquia - 2016metadata.onlyhttps://repositorio.unillanos.edu.coRepositorio Universidad de Los Llanosrepositorio@unillanos.edu.co