Larvicultura del Betta splendens utilizando rotíferos Brachionus calyciflorus e infusorios como fuente de alimento
En larvicultura de peces de boca pequeña, el tipo de alimento vivo suministrado, así como los tiempos más adecuados de suministro y transición entre una dieta y otra son de gran importancia. Los rotíferos e infusorios son utilizados comúnmente como alimento vivo inicial para larvas de Betta splenden...
- Autores:
-
Torres Valencia, Gustavo A.
- Tipo de recurso:
- Article of journal
- Fecha de publicación:
- 2016
- Institución:
- Universidad de los Llanos
- Repositorio:
- Repositorio Digital Universidad de los LLanos
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- Acceso en línea:
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- Palabra clave:
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En larvicultura de peces de boca pequeña, el tipo de alimento vivo suministrado, así como los tiempos más adecuados de suministro y transición entre una dieta y otra son de gran importancia. Los rotíferos e infusorios son utilizados comúnmente como alimento vivo inicial para larvas de Betta splendens, especie difícil de alimentar con dietas inertes durante los primeros días de vida. El presente estudio tuvo como fin determinar el efecto del rotífero Brachionus calyciflorus como fuente de alimento vivo en larvicultura del B. splendens. Fue realizado un experimento de larvicultura, en el cual se evaluó la transición de rotíferos o infusorios hacia Artemia bajo dos periodos de tiempo distintos, el primero fue suministro de rotíferos por 3 ó 6 días (T1 y T2). El segundo fue suministro de infusorios por 3 ó 6 días (T3 y T4). En cada tratamiento, se suministró Artemia después del periodo de alimentación con rotíferos. Fueron monitoreados en el agua los parámetros de temperatura y pH. Fueron utilizadas cuatro replicas por tratamiento, a las cuales se les midió la supervivencia y crecimiento en longitud total. Se utilizaron cajas multiceldas de 6 celdas cada una, y 10 larvas por celda. Se presentaron diferencias estadísticas entre los tratamientos (p<0,05), excepto entre T3 y T4 (p>0,05). Las larvas alimentadas con rotíferos crecieron más rápido con la dieta de infusorios, alcanzando 10,1 ± 0,4, 9,4 ± 0,4, 7,9 ± 1 y 7,4 ± 0,4 mm, para T1, T2, T3 y T4, respectivamente. La supervivencia también fue mayor en los tratamientos con rotíferos, presentando 90 y 85,5 % para T1 y T2, comparado con los resultados de T3 y T4, 54,4 y 52,3 %, respectivamente. Los rotíferos muestran ser un mejor alimento para las larvas del B. splendens, mejorando los prospectos de la larvicultura en esta especie. |
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Anjos HD, Amorim RM, Siqueira JA, Anjos CR. Exportação de peixes ornamentais do estado do Amazonas, Bacia Amazônica, Brasil. Boletim do Instituto de Pesca, 2009;35(2):259-274. Aoyama Y, Moriya N, Tanaka S, Taniguchi T, Hosokawa H, Maegawa S. A Novel Method for Rearing Zebrafish by Using Freshwater Rotifers (Brachionus calyciflorus). Zebrafish. 2015;12(4):288-295. Ashraf M, Ullah S, Rashid T, Ayub M, Bhatti EM, Naqvi SA, Javaid M. Optimization of indoor production of fresh water rotifer, Brachionus calyciflorus, b: Feeding Studies. Pakistan Journal of Nutrition. 2010;9(6):582–588. Atencio VJ, Kerguelén E, Wadnipar L, Narváez A. (Prochilodus magdalenae). Revista MVZ Córdoba. 2003;8(1):254-260. Awaiss A, Kestemont P, Micha JC. Nutritional suitability of the rotifer, Brachionus calyciflorus Pallas for rearing freshwater fish larvae. J Appl Ichthyol. 1992;8(1-4):263-270. Chapman FA, Fitz-Coy SA, Thunberg EM, Adams CM. United States of America trade in ornamental fish. J World Aquacult Soc. 1997;28(1):1-10. de Côrtes GF, Tsuzuki MY. Effect of different live food on survival and growth of first feeding barber goby, Elacatinus figaro (Sazima, Moura y Rosa 1997) larvae. Aquac Res. 2012;43(6):831-834. Fabregat TE, Wosniak B, Takata R, Miranda-Filho KC, Fernandes JB, Portella MC. Larviculture of siamese fighting fish Betta splendensin low-salinity water. Boletim Do Instituto de Pesca. 2017;43(2):164-171. Harzevili AS, Charleroy DD, Auwerx J, Vught I, Slycken JV, Dhert P, Sorgeloos P. Larval rearing of burbot (Lota Iota L.) using Brachionus caIyciflorus rotifer as starter food. J Appl Ichthyol. 2003;19:84-87. Kabir IA, Baby IL, Hasan I, Naser N, Ali S. High Density Rotifer Culture as Live Food for Larval Rearing in Carp Hatcheries. World Journal of Zoology. 2010;5(2): 110-114. Lim LC, Wong CC. Use of the rotifer, Brachionus calyciflorus Pallas, in freshwater ornamental fish larviculture. Hydrobiologia. 1997;358(1):269-273. Lubzens E, Zamora O. 2003. Chapter 2. Production and Nutritional Value of Rotifers. In J. Støttrup y L. McEvoy (Eds.), Blackwell Science Ltd. Live Feeds in Marine Aquaculture. p. 17–64. Luizi FS, Gara B, Shields RJ, Bromage NR. Further description of the development of the digestive organs in Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) larvae, with notes on differential absorption of copepod and Artemia prey. Aquaculture. 1999;176(1-2):101-116. Nass D, Gonçalves E, Tsuzuki M. Effect of live food transition time on survival, growth and metamorphosis of yellowtail clownfish, Amphiprion clarkii, larvae. Aquacult Int. 2016;24:1255. Navarro-Guillén C, Moyano FJ, Yúfera M. Diel food intake and digestive enzyme production patterns in Solea senegalensis larvae. Aquaculture. 2015;435:33-42. Ogata Y, Kurokura H. Use of the freshwater rotifer Brachionus angularis as the first food for larvae of the Siamese fighting fish Betta splendens. Fisheries Science. 2012;78(1):109-112. Olivotto I, Zenobi A, Rollo A, Migliarini B, Avella M, Carnevali O. Breeding, rearing and feeding studies in the cleaner goby Gobiosoma evelynae. Aquaculture. 2005;250(1-2):175-182. Park HG, Woo KL, Cho SH, Kim HS, Jung MM, Kim HS. High density culture of the freshwater rotifer, Brachionus calyciflorus. Hydrobiologia. 2001;(446-447):369-374. Puello AC, Velasco G, Martínez IE, Ramos E, Voltolina D. Growth and survival of siamese fighting fish, Betta Splendens, larvae at low salinity and with different diets. J World Aquacult Soc. 2010;41(5):823-828. Puello-Cruz AC, Velasco-Blanco G, Martínez-Rodríguez IE, Felix-Ramos E, Voltolina D. Growth and survival of siamese fighting fish, Betta Splendens Larvae at low salinity and with different diets. J World Aquacult Soc. 2010;41(5):823-828. Rosenlund G, Stoss J, Talbot C. Co-feeding marine fish larvae with inert and live diets. Aquaculture. 1997;155(1):183-191. Shields RJ, Irwin S, Smith PL, McEvoy LA. Effects of diet transition regimen on survival, growth and lipid composition of intensively reared Atlantic cod, Gadus morhua, larvae. Aquacult Int. 2003;11(1-2):119-130. Woolley LD, Partridge GJ, Qin JG. Mortality reduction in yellowtail kingfish (Seriola lalandi) larval rearing by optimising Artemia feeding regimes. Aquaculture. 2012;(344-349):161-167. |
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Fue realizado un experimento de larvicultura, en el cual se evaluó la transición de rotíferos o infusorios hacia Artemia bajo dos periodos de tiempo distintos, el primero fue suministro de rotíferos por 3 ó 6 días (T1 y T2). El segundo fue suministro de infusorios por 3 ó 6 días (T3 y T4). En cada tratamiento, se suministró Artemia después del periodo de alimentación con rotíferos. Fueron monitoreados en el agua los parámetros de temperatura y pH. Fueron utilizadas cuatro replicas por tratamiento, a las cuales se les midió la supervivencia y crecimiento en longitud total. Se utilizaron cajas multiceldas de 6 celdas cada una, y 10 larvas por celda. Se presentaron diferencias estadísticas entre los tratamientos (p<0,05), excepto entre T3 y T4 (p>0,05). Las larvas alimentadas con rotíferos crecieron más rápido con la dieta de infusorios, alcanzando 10,1 ± 0,4, 9,4 ± 0,4, 7,9 ± 1 y 7,4 ± 0,4 mm, para T1, T2, T3 y T4, respectivamente. La supervivencia también fue mayor en los tratamientos con rotíferos, presentando 90 y 85,5 % para T1 y T2, comparado con los resultados de T3 y T4, 54,4 y 52,3 %, respectivamente. Los rotíferos muestran ser un mejor alimento para las larvas del B. splendens, mejorando los prospectos de la larvicultura en esta especie.In larviculture fish of small mouth, the kind of live food supplied, as well as the most appropriate delivery times and transition between one diet and other are of great importance. The rotifers and infusorious are commonly used as first live feed for Betta splendens larvae, difficult species to feed with inert diets during the first days of life. The present study was aimed to determine the effect of rotifer Brachionus calyciflorus as a source of live feed on the larval rearing of B. splendens. Therefore, a larviculture experiment was organized, in which the transition of rotifers or infusoria to Artemia, under two different time periods, the first was rotifers supply for 3 or 6 days (T1 and T2). The second was Infusoria supply 3 or 6 days (T3 and T4). In each treatment, Artemia was supplied after the period rotifer feed. The parameters of temperature and pH were monitored. Four replicates per treatment, to which the survival and growth in total length were measured. Multiwell plates of 6 well and ten larvae were used per well. Statistical differences between treatments were presented (p <0,05), except between T3 and T4 (p>0,05). The larvae fed with rotifer grew more rapidly than infusoria diets, reaching 10,1 ± 0,4, 9,4 ± 0,4, 7,9 ± 1 and 7,4 ± 0,4 mm, for T1, T2, T3, and T4, respectively. Survival was also higher in treatments with rotifers, presenting 90 and 85,5% for T1 and T2, compared with 54,4 and 52,3% for T3 and T4. Rotifers are better food than infusorians for B. splendens larvae, improving larviculture prospects.application/pdfspaUniversidad de los LlanosOrinoquia - 2019https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/443Piaractus brachypomusrefeedingfastingcompensatory growthCachama blancaayunorealimentacióncrecimiento compensatorioLarvicultura del Betta splendens utilizando rotíferos Brachionus calyciflorus e infusorios como fuente de alimentoBetta splendens larviculture of using rotifers Brachionus calyciflorus and infusoria as a feed sourceArtículo de revistaJournal Articleinfo:eu-repo/semantics/articleSección Ciencias agrariasSección Agricultural sciencesinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Texthttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Anjos HD, Amorim RM, Siqueira JA, Anjos CR. Exportação de peixes ornamentais do estado do Amazonas, Bacia Amazônica, Brasil. Boletim do Instituto de Pesca, 2009;35(2):259-274.Aoyama Y, Moriya N, Tanaka S, Taniguchi T, Hosokawa H, Maegawa S. A Novel Method for Rearing Zebrafish by Using Freshwater Rotifers (Brachionus calyciflorus). Zebrafish. 2015;12(4):288-295.Ashraf M, Ullah S, Rashid T, Ayub M, Bhatti EM, Naqvi SA, Javaid M. Optimization of indoor production of fresh water rotifer, Brachionus calyciflorus, b: Feeding Studies. Pakistan Journal of Nutrition. 2010;9(6):582–588.Atencio VJ, Kerguelén E, Wadnipar L, Narváez A. (Prochilodus magdalenae). Revista MVZ Córdoba. 2003;8(1):254-260.Awaiss A, Kestemont P, Micha JC. Nutritional suitability of the rotifer, Brachionus calyciflorus Pallas for rearing freshwater fish larvae. J Appl Ichthyol. 1992;8(1-4):263-270.Chapman FA, Fitz-Coy SA, Thunberg EM, Adams CM. United States of America trade in ornamental fish. J World Aquacult Soc. 1997;28(1):1-10.de Côrtes GF, Tsuzuki MY. Effect of different live food on survival and growth of first feeding barber goby, Elacatinus figaro (Sazima, Moura y Rosa 1997) larvae. Aquac Res. 2012;43(6):831-834.Fabregat TE, Wosniak B, Takata R, Miranda-Filho KC, Fernandes JB, Portella MC. Larviculture of siamese fighting fish Betta splendensin low-salinity water. Boletim Do Instituto de Pesca. 2017;43(2):164-171.Harzevili AS, Charleroy DD, Auwerx J, Vught I, Slycken JV, Dhert P, Sorgeloos P. Larval rearing of burbot (Lota Iota L.) using Brachionus caIyciflorus rotifer as starter food. J Appl Ichthyol. 2003;19:84-87.Kabir IA, Baby IL, Hasan I, Naser N, Ali S. High Density Rotifer Culture as Live Food for Larval Rearing in Carp Hatcheries. World Journal of Zoology. 2010;5(2): 110-114.Lim LC, Wong CC. Use of the rotifer, Brachionus calyciflorus Pallas, in freshwater ornamental fish larviculture. Hydrobiologia. 1997;358(1):269-273.Lubzens E, Zamora O. 2003. Chapter 2. Production and Nutritional Value of Rotifers. In J. Støttrup y L. McEvoy (Eds.), Blackwell Science Ltd. Live Feeds in Marine Aquaculture. p. 17–64.Luizi FS, Gara B, Shields RJ, Bromage NR. Further description of the development of the digestive organs in Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) larvae, with notes on differential absorption of copepod and Artemia prey. Aquaculture. 1999;176(1-2):101-116.Nass D, Gonçalves E, Tsuzuki M. Effect of live food transition time on survival, growth and metamorphosis of yellowtail clownfish, Amphiprion clarkii, larvae. Aquacult Int. 2016;24:1255.Navarro-Guillén C, Moyano FJ, Yúfera M. Diel food intake and digestive enzyme production patterns in Solea senegalensis larvae. Aquaculture. 2015;435:33-42.Ogata Y, Kurokura H. Use of the freshwater rotifer Brachionus angularis as the first food for larvae of the Siamese fighting fish Betta splendens. Fisheries Science. 2012;78(1):109-112.Olivotto I, Zenobi A, Rollo A, Migliarini B, Avella M, Carnevali O. 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Effects of diet transition regimen on survival, growth and lipid composition of intensively reared Atlantic cod, Gadus morhua, larvae. Aquacult Int. 2003;11(1-2):119-130.Woolley LD, Partridge GJ, Qin JG. Mortality reduction in yellowtail kingfish (Seriola lalandi) larval rearing by optimising Artemia feeding regimes. Aquaculture. 2012;(344-349):161-167.https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/443/1033Núm. 2 Sup , Año 2016772 Sup7120OrinoquiaPublicationOREORE.xmltext/xml2619https://dspace7-unillanos.metacatalogo.org/bitstreams/a3c1e3fa-42de-4560-8fb0-f63fc6e5ba3b/download9f0972793f84a3805f736ba8737245d9MD51001/2663oai:dspace7-unillanos.metacatalogo.org:001/26632024-04-17 16:38:34.302https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/Orinoquia - 2019metadata.onlyhttps://dspace7-unillanos.metacatalogo.orgRepositorio Universidad de Los Llanosrepositorio@unillanos.edu.co |