Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar

Las microalgas son microorganismos fotosintéticos reconocidos por su producción de vitaminas, carbohidratos, pigmentos y lípidos. Sin embargo, esta producción es afectada por la composición de nutrientes micro y macrominerales en el sistema de cultivo, que para algunos casos constituyen altos costos...

Full description

Autores:: Burgos Rada, Cristian A.
Ramírez-Merlano, Juan A.
Jiménez-Forero, Javier A.

Tipo de recurso:: Article of journal

Fecha de publicación:: 2016

Institución:: Universidad de los Llanos

Repositorio:: Repositorio Digital Universidad de los LLanos

Idioma:: spa

id	Unillanos2_012fc14fc1d52c6862873d629d07d36e
oai_identifier_str	oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/3910
network_acronym_str	Unillanos2
network_name_str	Repositorio Digital Universidad de los LLanos
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
dc.title.translated.eng.fl_str_mv	Use of commercial fertilizer in the cell kinetics of Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), preliminary report
title	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
spellingShingle	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar chlorophyll cell density edaphic microalgae pigments clorofila densidade celular edáficas microalgas pigmentos clorofila densidad celular edáfico microalga pigmentos
title_short	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
title_full	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
title_fullStr	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
title_full_unstemmed	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
title_sort	Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar
dc.creator.fl_str_mv	Burgos Rada, Cristian A. Ramírez-Merlano, Juan A. Jiménez-Forero, Javier A.
dc.contributor.author.spa.fl_str_mv	Burgos Rada, Cristian A. Ramírez-Merlano, Juan A. Jiménez-Forero, Javier A.
dc.subject.eng.fl_str_mv	chlorophyll cell density edaphic microalgae pigments clorofila densidade celular edáficas microalgas pigmentos
topic	chlorophyll cell density edaphic microalgae pigments clorofila densidade celular edáficas microalgas pigmentos clorofila densidad celular edáfico microalga pigmentos
dc.subject.spa.fl_str_mv	clorofila densidad celular edáfico microalga pigmentos
description	Las microalgas son microorganismos fotosintéticos reconocidos por su producción de vitaminas, carbohidratos, pigmentos y lípidos. Sin embargo, esta producción es afectada por la composición de nutrientes micro y macrominerales en el sistema de cultivo, que para algunos casos constituyen altos costos, un 70% en la producción de microalgas. El objetivo de este estudio fue evaluar un fertilizante edáfico comercial como medio de cultivo para la microalga Desmodesmus opoliensis y su efecto en la cinética celular. Para esto, se utilizó como medio comercial Remital® en cultivos estáticos, evaluando un total de cuatro concentraciones (0.5; 1.0; 1.5 y 2.0 gr/l de agua destilada), este medio de cultivo fue comprando con el medio F/2 Guillard (1 ml/l) por triplicado para cada medio de cultivo (n=3). Para determinar la curva cinética y su comportamiento, la densidad celular (cel/ml) se llevó a cabo por medio de conteo celular en cámara de Neubauer y las clorofilas totales (μg/ml) por espectrofotometría, a una tempertura de cultivo de 242 °C y un fotoperiodo de 12:12 (Luz:Oscuridad) durante 14 días. El F/2 Guillard alcanzó una densidad celular máxima de 4.33±1.96 (106 cel/ml). El tratamiento con concentraciones de 2 g/l, mostró el mayor crecimiento con un promedio de 2.9x106 cel/m, sin diferencias estadísticas significativas al ser comparado con las diferentes concentraciones del fertilizante comercial Remital® (P&gt;0.05). Estos resultados confirman y permiten el uso de fertilizantes no convencionales como el Remital® en la producción de Desmodesmus opolienis.
publishDate	2016
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv	2016-12-16T00:00:00Z 2024-07-25T18:14:38Z
dc.date.available.none.fl_str_mv	2016-12-16T00:00:00Z 2024-07-25T18:14:38Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv	2016-12-16
dc.type.spa.fl_str_mv	Artículo de revista
dc.type.coar.fl_str_mv	http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1
dc.type.driver.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/article
dc.type.local.eng.fl_str_mv	Journal article
dc.type.version.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.type.coar.spa.fl_str_mv	http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
dc.type.content.spa.fl_str_mv	Text
dc.type.coarversion.spa.fl_str_mv	http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
format	http://purl.org/coar/resource_type/c_6501
status_str	publishedVersion
dc.identifier.issn.none.fl_str_mv	0121-3709
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv	https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3910
dc.identifier.doi.none.fl_str_mv	10.22579/20112629.438
dc.identifier.eissn.none.fl_str_mv	2011-2629
dc.identifier.url.none.fl_str_mv	https://doi.org/10.22579/20112629.438
identifier_str_mv	0121-3709 10.22579/20112629.438 2011-2629
url	https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/3910 https://doi.org/10.22579/20112629.438
dc.language.iso.spa.fl_str_mv	spa
language	spa
dc.relation.references.spa.fl_str_mv	An JY, Sim SJ, Lee JS, Kim BW. Hydrocarbon production from secondarily treated piggery wastewater by the green alga Botryococcus braunii. Appl Phycol. 2003;15(2-3):185-191. Aslan S, Kapdan IK. Batch kinetics of nitrogen and phosphorus removal from synthetic wastewater by algae. Ecol Eng. 2006;28:64-70. Belay A, Ota Y, Miyakawa K, Shimamatsu H. Current knowledge on potential health benefits of Spirulina. J Appl Phycol. 1993;5:235-241. Bhatnagar A, Chinnasamy S, Singh M, Das KC. Renewable biomass production by mixotrophic algae in the presence of various carbon sources and wastewaters. Appl Energy. 2011;88:3425-3431. Chong AMY, Wong YS, Tam NFY. Performance of different microalgal species in removing nickel and zinc from industrial waste water. Chemosphere. 2000; 41:251-257. Domínguez-Bocanegra AR, Legarreta IG, Jeronimo FM, Campocosio AT. Influence of environmental and nutritional factors in the production of astaxanthin from Haematococcus pluvialis. Bioresource Technol. 2004.92(2): 209-214. Espinosa I, Lorenzo M, Riverón Y, Álvarez E, Villoch A. Evaluación de diferentes medios líquidos para el cultivo de Gardnerella vaginalis y caracterización del perfil de proteína por electroforesis PAGE-SDS. Rev Cubana Med Trop. 2003;5(2):69-75. Estrada CA, Noguera YC, Lopez JE. 2010. Desarrollo tecnológico prototipo para la producción de biodiesel a partir de microalgas en sistemas cerrados, como biocombustible de segunda generación. In Eighth LACCEI Latin American and Caribbean Conference for Engineering and Technology, Arequipa. Faria de ACE, Hayashi C, Soares CM, Furuya WM. Dinâmica da comunidade fitoplanctônica e variáveis físicas e químicas em tanques experimentais submetidos a diferentes adubações orgânicas. Acta Scientiarum. 2001;23:291-297. Fernández C, Gauna MC, Croce ME, Parodi ER. Primer registro de Spermatozopsis similis (Chlorophyta) en un ambiente marino. Rev Mex Biodivers. 2014;85(2):606-609. Ferrera-Cerrato R, Rojas-Avelizapa NG, Poggi-Varaldo HM, Alarcón A, Cañizares-Villanueva RO. Procesos de biorremediación de suelo y agua contaminados por hidrocarburos del petróleo y otros compuestos orgánicos. Rev Latinoam Microbiol. 2006;48(2):179-187. Gärtner G. Algal Culturing Techniques. Andersen R.A. (Eds.). Academic Press, Burlington, San Diego, London, (2005), ISBN: 0-12-088426-7. J Plant Physiol. 2008;165(3):350-352. Goldberg IK, Cohen Z. The effect of phosphate starvation on the lipid and fatty acid composition of the fresh water eustigmatophyte Monodus subterraneus. Phytochemistry. 2006;67:696-701. Guiry MD, Guiry GM. 2016. AlgaeBase. World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway. Available at: http://www.algaebase.org [Accessed September 30, 2016]. Guillard R, Ryther J. Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea (Cleve) Gran. Can J Microbiol. 1962;8(2):229-239. Humberto GP, Román DLVS. 2008. Analisís y diseño de experimentos Second Edi., Mexico D.F. John DM, Whitton BA, Brook AJ. 2002. The freshwater algal flora of the British Isles: an identification guide to freshwater and terrestrial algae, Vol. 1, Cambridge University Press. John DM, Whitton BA, Brook AJ. 2011. The freshwater algal flora of the British Isles: an identification guide to freshwater and terrestrial algae (Eds.). (Vol. 2). Cambridge University Press. Kim MK, Giraud G. Characters of neutral lipids of Detonula sp. in culture. Korean. J Phycol. 1989;4:55-61. Kim MK, Smith RE. Effect of ionic copper toxicity on the growth of green alga. J Microbiol Biotechnol. 2001;11(2):211-216. Kim MK, Park JW, Park CS, Kim SJ, Jeune KH, Chang MU, Acreman J. Enhanced production of Scenedesmus spp. (green microalgae) using a new medium containing fermented swine wastewater. Bioresour Technol. 2007;98(11):2220-2228. Koller M, Alerno A, Tuffner P , Koinigg M, Böchzelt H , Schober S, Pieber S, Schnitzer H, Mittelbach M, Braunegg G. “Characteristics and Potential of Micro Algal Cultivation Strategies: A Review.” J Clean Prod. 2012;37:377-88. Li Y, Zhou W, Hu B, Min M, Chen P, Ruan RR. Integration of algae cultivation as biodiesel production feedstock with municipal wastewater treatment: Strains screening and significance evaluation of environmental factors. Bioresour Technol. 2011;102(23):10861-10867. Lim CY, Yoo YH, Sidharthan M, Ma CW, Bang IC, Kim JM, Lee KS, Park NS, Shin HW. Effects of copper (I) oxide on growth and biochemical compositions of two marine microalgae. J Environ Biol. 2006;27:461-466. Mata MT, Martins AA, Caetano NS. Microalgae for biodiesel production and other applications: a review. Renew Sust Energ Rev. 2010;14(1):217-232. McLachlan J. 1973. Growth media – marine. In: Stein, J.R. (Ed.), Handbook of Phycological Methods – Culture Methods and Growth Measurements. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 25–51. Morris-Quevedo HJ, Quintana-Cabrales MM, Almarales-Arceo A, Hernandez- Nazario L. Composición bioquímica y evaluación de la calidad proteica de la biomasa autotrófica de Chlorella vulgaris. Revista Cubana de Alimentación y Nutrición. 1999;13:123-128. Muñoz-Peñuela M, Ramirez-Merlano J, Otero-Paternina A, Medina-Robles V M, Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamaria Y. Effect of culture medium on growth and protein content of Chlorella vulgaris. Rev Colomb Cienc Pec. 2012;25:438-449. Nichols HW. 1973. Growth media – freshwater. In: Stein, J.R. (Ed.), Handbook of Phycological Methods – Culture Methods and Growth Measurements. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 7–24. Nieves-Soto M, Cortes-Altamirano R, Gutiérrez-Corona C, Pacheco-Marges M. Producción de fitoplancton a bajo costo. 1. Aislamiento y cultivo de Monoraphidium sp. (Chlorophyceae) en un sistema estático en medio F y cuatro a base de fertilizantes agrícolas. An Inst Cienc Mar Limnol. 1994;21:119-127. Ortiz-Moreno ML, Cortés-Castillo CE, Sánchez-Villarraga J, Padilla J, Otero-Paternina AM. Evaluación del crecimiento de la microalga Chlorella sorokiniana en diferentes medios de cultivo en condiciones autotróficas y mixotróficas. Orinoquia. 2012;16(1):12-20. Pacheco-Ruíz I, Zertuche-González JA, Arroyo-Ortega E, Valenzuela-Espinoza E. Agricultural fertilizers as alternative culture media for biomass production of Chondracanthus squarrulosus (Rhodophyta, Gigartinales) under semi-controlled conditions. Aquaculture. 2004;240(1-4):201-209. Piña P, Medina MA, Nieves M, Leal S, López-Elías JA, Guerrero MA. Cultivo de cuatro especies de microalgas con diferentes fertilizantes utilizados en acuicultura. Rev Invest Mar. 2007;28(3):225-236. Ritchie RJ. Universal chlorophyll equations for estimating chlorophylls a, b, c and d and total chlorophylls in natural assemblages of photosynthetic organisms using acetone, methanol, or ethanol solvents. Photosynthetica. 2008;46(1):115-126. Rodolfi L, Zittelli GC, Bassi N, Padovani G, Biondi N, Bonini G, Tredici MR. Microalgae for oil: strain selection, induction of lipid synthesis and outdoor mass cultivation in a low-cost photobioreactor. Biotechnol Bioeng. 2009;102(1):100-112. Sánchez-Torres H, Juscamaita-Morales J, Vargas-Cárdenas J, Oliveros-Ramos R. Producción de la microalga Nannochloropsis oculata (Droop) Hibberd en medios enriquecidos con ensilado biológico de pescado. Ecología Aplicada. 2008;7(1-2):149-158. Scott SA, Davey, MP, Dennis JS, Horst I, Howe CJ, Lea-Smith DJ, Smith AG, Biodiesel from algae: challenges and prospects. Curr Opin Biotechnol. 2010;21: 277-286. Silveira ST, Daroit DJ, Brandelli A. Pigment production by Monascus purpureus in grape waste using factorial design. LWT-Food Sci Technol. 2008;41(1):170-174. Sipauba-Tavares LH, Rocha O. 2003. Produção de Plancton (Fitoplancton e Zooplancton) para alimentação de Organismos Aquáticos. São Carlos, Brasil: RiMa editora. Soletto D, Binaghi L, Ferrari L, Lodi A, Carvalho JCM, Zilli M, Converti A. Effects of carbon dioxide feeding rate and light intensity on the fed-batch pulse feeding cultivation of Spirulina platensis in helical photobioreactor. Biochem Eng J. 2008;39(2):369-375. Valenzuela-Espinoza E, Lafarga-de la Cruz F, Millán-Núñez R, Núñez-Cebrero F. Crecimiento, consumo de nutrientes y composición proximal de Rhodomonas sp. cultivada con medio f/2 y fertilizantes agrÌcolas. Cienc Mar. 2005;31:79-89. Xenopoulos MA, Frost PC, Elser JJ. Joint effects of UV radiation and phosphours supply on algal growth rate and elemental composition. Ecology. 2002;83(2):423-435. Xin L, Hong-ying H, Ke G, Ying-xue S. Effects of different nitrogen and phosphorus concentrations on the growth, nutrient uptake, and lipid accumulation of a freshwater microalga Scenedesmus sp. Bioresour Technol. 2010;101(14):5494-5500.
dc.relation.bitstream.none.fl_str_mv	https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/438/1028
dc.relation.citationendpage.none.fl_str_mv	25
dc.relation.citationissue.spa.fl_str_mv	2 Sup
dc.relation.citationstartpage.none.fl_str_mv	18
dc.relation.citationvolume.spa.fl_str_mv	20
dc.relation.ispartofjournal.spa.fl_str_mv	Orinoquia
dc.rights.spa.fl_str_mv	Orinoquia - 2019
dc.rights.uri.spa.fl_str_mv	https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rights.accessrights.spa.fl_str_mv	info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.coar.spa.fl_str_mv	http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv	Orinoquia - 2019 https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv	openAccess
dc.format.mimetype.spa.fl_str_mv	application/pdf
dc.publisher.spa.fl_str_mv	Universidad de los Llanos
dc.source.spa.fl_str_mv	https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/438
institution	Universidad de los Llanos
bitstream.url.fl_str_mv	https://repositorio.unillanos.edu.co/bitstreams/9873ca92-1013-46cd-b7f1-08e4074cc6f5/download
bitstream.checksum.fl_str_mv	f7a3e4a3b0cc963e1992965ec02d02e6
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv	MD5
repository.name.fl_str_mv	Repositorio Universidad de Los Llanos
repository.mail.fl_str_mv	repositorio@unillanos.edu.co
_version_	1812104605902831616
spelling	Burgos Rada, Cristian A.Ramírez-Merlano, Juan A.Jiménez-Forero, Javier A.2016-12-16T00:00:00Z2024-07-25T18:14:38Z2016-12-16T00:00:00Z2024-07-25T18:14:38Z2016-12-160121-3709https://repositorio.unillanos.edu.co/handle/001/391010.22579/20112629.4382011-2629https://doi.org/10.22579/20112629.438Las microalgas son microorganismos fotosintéticos reconocidos por su producción de vitaminas, carbohidratos, pigmentos y lípidos. Sin embargo, esta producción es afectada por la composición de nutrientes micro y macrominerales en el sistema de cultivo, que para algunos casos constituyen altos costos, un 70% en la producción de microalgas. El objetivo de este estudio fue evaluar un fertilizante edáfico comercial como medio de cultivo para la microalga Desmodesmus opoliensis y su efecto en la cinética celular. Para esto, se utilizó como medio comercial Remital® en cultivos estáticos, evaluando un total de cuatro concentraciones (0.5; 1.0; 1.5 y 2.0 gr/l de agua destilada), este medio de cultivo fue comprando con el medio F/2 Guillard (1 ml/l) por triplicado para cada medio de cultivo (n=3). Para determinar la curva cinética y su comportamiento, la densidad celular (cel/ml) se llevó a cabo por medio de conteo celular en cámara de Neubauer y las clorofilas totales (μg/ml) por espectrofotometría, a una tempertura de cultivo de 242 °C y un fotoperiodo de 12:12 (Luz:Oscuridad) durante 14 días. El F/2 Guillard alcanzó una densidad celular máxima de 4.33±1.96 (106 cel/ml). El tratamiento con concentraciones de 2 g/l, mostró el mayor crecimiento con un promedio de 2.9x106 cel/m, sin diferencias estadísticas significativas al ser comparado con las diferentes concentraciones del fertilizante comercial Remital® (P&gt;0.05). Estos resultados confirman y permiten el uso de fertilizantes no convencionales como el Remital® en la producción de Desmodesmus opolienis.The microalgae are photosynthetic microorganisms recognized for their production of vitamins, carbohydrates, pigments and lipids. However, this production is affected by the composition of micro and macro nutrients in the culture system,which in some cases constitute high costs, 70% in the production of microalgae. The objective of this study was to evaluate a commercial edaphic fertilizer as a culture medium for the microalgae Desmodesmus opoliensis and its effect on cell kinetics. For this, Remital® was used as a commercial medium in static cultures, evaluating a total of four concentrations (0.5, 1.0, 1.5 and 2.0 gr/l of distilled water), this culture medium was purchased with the Guillard F/2 medium (1 ml/l) in triplicate for each culture medium (n= 3). To determine the kinetic curve and its behavior, the cell density (cel/ml) was carried out by means of cell count in Neubauer chamber and total chlorophylls (μg/ml) by spectrophotometry, at a culture temperature of 24 ± 2 °C and a photoperiod of 12:12 (light:dark) for 14 days. The Guillard F/2 reached a maximum cell density of 4.33±1.96 (106 cells/ml). The treatment with concentrations of 2 g/l, showed the highest growth with an average of 2.9x106 cel/ml, without significant statistical differences when compared with the different concentrations of the commercial fertilizer Remital® (P&gt;0.05). These results confirm and allow the use of unconventional fertilizers such as Remital® in the production of Desmodesmus opolienis.application/pdfspaUniversidad de los LlanosOrinoquia - 2019https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/view/438chlorophyllcell densityedaphicmicroalgaepigmentsclorofiladensidade celularedáficasmicroalgaspigmentosclorofiladensidad celularedáficomicroalgapigmentosUso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminarUse of commercial fertilizer in the cell kinetics of Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), preliminary reportArtículo de revistainfo:eu-repo/semantics/articleJournal articleinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Texthttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85An JY, Sim SJ, Lee JS, Kim BW. Hydrocarbon production from secondarily treated piggery wastewater by the green alga Botryococcus braunii. Appl Phycol. 2003;15(2-3):185-191.Aslan S, Kapdan IK. Batch kinetics of nitrogen and phosphorus removal from synthetic wastewater by algae. Ecol Eng. 2006;28:64-70.Belay A, Ota Y, Miyakawa K, Shimamatsu H. Current knowledge on potential health benefits of Spirulina. J Appl Phycol. 1993;5:235-241.Bhatnagar A, Chinnasamy S, Singh M, Das KC. Renewable biomass production by mixotrophic algae in the presence of various carbon sources and wastewaters. Appl Energy. 2011;88:3425-3431.Chong AMY, Wong YS, Tam NFY. Performance of different microalgal species in removing nickel and zinc from industrial waste water. Chemosphere. 2000; 41:251-257.Domínguez-Bocanegra AR, Legarreta IG, Jeronimo FM, Campocosio AT. Influence of environmental and nutritional factors in the production of astaxanthin from Haematococcus pluvialis. Bioresource Technol. 2004.92(2): 209-214.Espinosa I, Lorenzo M, Riverón Y, Álvarez E, Villoch A. Evaluación de diferentes medios líquidos para el cultivo de Gardnerella vaginalis y caracterización del perfil de proteína por electroforesis PAGE-SDS. Rev Cubana Med Trop. 2003;5(2):69-75.Estrada CA, Noguera YC, Lopez JE. 2010. Desarrollo tecnológico prototipo para la producción de biodiesel a partir de microalgas en sistemas cerrados, como biocombustible de segunda generación. In Eighth LACCEI Latin American and Caribbean Conference for Engineering and Technology, Arequipa.Faria de ACE, Hayashi C, Soares CM, Furuya WM. Dinâmica da comunidade fitoplanctônica e variáveis físicas e químicas em tanques experimentais submetidos a diferentes adubações orgânicas. Acta Scientiarum. 2001;23:291-297.Fernández C, Gauna MC, Croce ME, Parodi ER. Primer registro de Spermatozopsis similis (Chlorophyta) en un ambiente marino. Rev Mex Biodivers. 2014;85(2):606-609.Ferrera-Cerrato R, Rojas-Avelizapa NG, Poggi-Varaldo HM, Alarcón A, Cañizares-Villanueva RO. Procesos de biorremediación de suelo y agua contaminados por hidrocarburos del petróleo y otros compuestos orgánicos. Rev Latinoam Microbiol. 2006;48(2):179-187.Gärtner G. Algal Culturing Techniques. Andersen R.A. (Eds.). Academic Press, Burlington, San Diego, London, (2005), ISBN: 0-12-088426-7. J Plant Physiol. 2008;165(3):350-352.Goldberg IK, Cohen Z. The effect of phosphate starvation on the lipid and fatty acid composition of the fresh water eustigmatophyte Monodus subterraneus. Phytochemistry. 2006;67:696-701.Guiry MD, Guiry GM. 2016. AlgaeBase. World-wide electronic publication, National University of Ireland, Galway. Available at: http://www.algaebase.org [Accessed September 30, 2016].Guillard R, Ryther J. Studies of marine planktonic diatoms. I. Cyclotella nana Hustedt and Detonula confervacea (Cleve) Gran. Can J Microbiol. 1962;8(2):229-239.Humberto GP, Román DLVS. 2008. Analisís y diseño de experimentos Second Edi., Mexico D.F.John DM, Whitton BA, Brook AJ. 2002. The freshwater algal flora of the British Isles: an identification guide to freshwater and terrestrial algae, Vol. 1, Cambridge University Press.John DM, Whitton BA, Brook AJ. 2011. The freshwater algal flora of the British Isles: an identification guide to freshwater and terrestrial algae (Eds.). (Vol. 2). Cambridge University Press.Kim MK, Giraud G. Characters of neutral lipids of Detonula sp. in culture. Korean. J Phycol. 1989;4:55-61.Kim MK, Smith RE. Effect of ionic copper toxicity on the growth of green alga. J Microbiol Biotechnol. 2001;11(2):211-216.Kim MK, Park JW, Park CS, Kim SJ, Jeune KH, Chang MU, Acreman J. Enhanced production of Scenedesmus spp. (green microalgae) using a new medium containing fermented swine wastewater. Bioresour Technol. 2007;98(11):2220-2228.Koller M, Alerno A, Tuffner P , Koinigg M, Böchzelt H , Schober S, Pieber S, Schnitzer H, Mittelbach M, Braunegg G. “Characteristics and Potential of Micro Algal Cultivation Strategies: A Review.” J Clean Prod. 2012;37:377-88.Li Y, Zhou W, Hu B, Min M, Chen P, Ruan RR. Integration of algae cultivation as biodiesel production feedstock with municipal wastewater treatment: Strains screening and significance evaluation of environmental factors. Bioresour Technol. 2011;102(23):10861-10867.Lim CY, Yoo YH, Sidharthan M, Ma CW, Bang IC, Kim JM, Lee KS, Park NS, Shin HW. Effects of copper (I) oxide on growth and biochemical compositions of two marine microalgae. J Environ Biol. 2006;27:461-466.Mata MT, Martins AA, Caetano NS. Microalgae for biodiesel production and other applications: a review. Renew Sust Energ Rev. 2010;14(1):217-232.McLachlan J. 1973. Growth media – marine. In: Stein, J.R. (Ed.), Handbook of Phycological Methods – Culture Methods and Growth Measurements. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 25–51.Morris-Quevedo HJ, Quintana-Cabrales MM, Almarales-Arceo A, Hernandez- Nazario L. Composición bioquímica y evaluación de la calidad proteica de la biomasa autotrófica de Chlorella vulgaris. Revista Cubana de Alimentación y Nutrición. 1999;13:123-128.Muñoz-Peñuela M, Ramirez-Merlano J, Otero-Paternina A, Medina-Robles V M, Cruz-Casallas PE, Velasco-Santamaria Y. Effect of culture medium on growth and protein content of Chlorella vulgaris. Rev Colomb Cienc Pec. 2012;25:438-449.Nichols HW. 1973. Growth media – freshwater. In: Stein, J.R. (Ed.), Handbook of Phycological Methods – Culture Methods and Growth Measurements. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 7–24.Nieves-Soto M, Cortes-Altamirano R, Gutiérrez-Corona C, Pacheco-Marges M. Producción de fitoplancton a bajo costo. 1. Aislamiento y cultivo de Monoraphidium sp. (Chlorophyceae) en un sistema estático en medio F y cuatro a base de fertilizantes agrícolas. An Inst Cienc Mar Limnol. 1994;21:119-127.Ortiz-Moreno ML, Cortés-Castillo CE, Sánchez-Villarraga J, Padilla J, Otero-Paternina AM. Evaluación del crecimiento de la microalga Chlorella sorokiniana en diferentes medios de cultivo en condiciones autotróficas y mixotróficas. Orinoquia. 2012;16(1):12-20.Pacheco-Ruíz I, Zertuche-González JA, Arroyo-Ortega E, Valenzuela-Espinoza E. Agricultural fertilizers as alternative culture media for biomass production of Chondracanthus squarrulosus (Rhodophyta, Gigartinales) under semi-controlled conditions. Aquaculture. 2004;240(1-4):201-209.Piña P, Medina MA, Nieves M, Leal S, López-Elías JA, Guerrero MA. Cultivo de cuatro especies de microalgas con diferentes fertilizantes utilizados en acuicultura. Rev Invest Mar. 2007;28(3):225-236.Ritchie RJ. Universal chlorophyll equations for estimating chlorophylls a, b, c and d and total chlorophylls in natural assemblages of photosynthetic organisms using acetone, methanol, or ethanol solvents. Photosynthetica. 2008;46(1):115-126.Rodolfi L, Zittelli GC, Bassi N, Padovani G, Biondi N, Bonini G, Tredici MR. Microalgae for oil: strain selection, induction of lipid synthesis and outdoor mass cultivation in a low-cost photobioreactor. Biotechnol Bioeng. 2009;102(1):100-112.Sánchez-Torres H, Juscamaita-Morales J, Vargas-Cárdenas J, Oliveros-Ramos R. Producción de la microalga Nannochloropsis oculata (Droop) Hibberd en medios enriquecidos con ensilado biológico de pescado. Ecología Aplicada. 2008;7(1-2):149-158.Scott SA, Davey, MP, Dennis JS, Horst I, Howe CJ, Lea-Smith DJ, Smith AG, Biodiesel from algae: challenges and prospects. Curr Opin Biotechnol. 2010;21: 277-286.Silveira ST, Daroit DJ, Brandelli A. Pigment production by Monascus purpureus in grape waste using factorial design. LWT-Food Sci Technol. 2008;41(1):170-174.Sipauba-Tavares LH, Rocha O. 2003. Produção de Plancton (Fitoplancton e Zooplancton) para alimentação de Organismos Aquáticos. São Carlos, Brasil: RiMa editora.Soletto D, Binaghi L, Ferrari L, Lodi A, Carvalho JCM, Zilli M, Converti A. Effects of carbon dioxide feeding rate and light intensity on the fed-batch pulse feeding cultivation of Spirulina platensis in helical photobioreactor. Biochem Eng J. 2008;39(2):369-375.Valenzuela-Espinoza E, Lafarga-de la Cruz F, Millán-Núñez R, Núñez-Cebrero F. Crecimiento, consumo de nutrientes y composición proximal de Rhodomonas sp. cultivada con medio f/2 y fertilizantes agrÌcolas. Cienc Mar. 2005;31:79-89.Xenopoulos MA, Frost PC, Elser JJ. Joint effects of UV radiation and phosphours supply on algal growth rate and elemental composition. Ecology. 2002;83(2):423-435.Xin L, Hong-ying H, Ke G, Ying-xue S. Effects of different nitrogen and phosphorus concentrations on the growth, nutrient uptake, and lipid accumulation of a freshwater microalga Scenedesmus sp. Bioresour Technol. 2010;101(14):5494-5500.https://orinoquia.unillanos.edu.co/index.php/orinoquia/article/download/438/1028252 Sup1820OrinoquiaPublicationOREORE.xmltext/xml2708https://repositorio.unillanos.edu.co/bitstreams/9873ca92-1013-46cd-b7f1-08e4074cc6f5/downloadf7a3e4a3b0cc963e1992965ec02d02e6MD51001/3910oai:repositorio.unillanos.edu.co:001/39102024-07-25 13:14:38.155https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Orinoquia - 2019metadata.onlyhttps://repositorio.unillanos.edu.coRepositorio Universidad de Los Llanosrepositorio@unillanos.edu.co

Uso de fertilizante comercial en la cinética celular de Desmodesmus opoliensis (Chlorophyceae), reporte preliminar

Publicaciones similares