Comparación de la expresión de RANKL y OPG en adolescentes y adultos tratados con ortodoncia correctiva-estudio piloto
Antecedentes: dos marcadores importantes en el metabolismo óseo son el activador del receptor para el ligando del factor nuclear k b (RANKL) y la osteoprotegerina (OPG). Algunos estudios sugieren que la edad conduce a una expresión diferencial de estos marcadores. Es importante determinar si la edad...
- Autores:
-
Bohada Martinez, Maria Camila
Del Castillo Casas, Maria Camila
- Tipo de recurso:
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- Fecha de publicación:
- 2024
- Institución:
- Universidad El Bosque
- Repositorio:
- Repositorio U. El Bosque
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- oai:repositorio.unbosque.edu.co:20.500.12495/12879
- Acceso en línea:
- https://hdl.handle.net/20.500.12495/12879
- Palabra clave:
- Adolescentes
Adultos
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Antecedentes: dos marcadores importantes en el metabolismo óseo son el activador del receptor para el ligando del factor nuclear k b (RANKL) y la osteoprotegerina (OPG). Algunos estudios sugieren que la edad conduce a una expresión diferencial de estos marcadores. Es importante determinar si la edad influye significativamente en el proceso de remodelación, inflamación y velocidad de movimiento dental. Pocos estudios han evaluado la edad de los pacientes como una variable que puede influir en la inducción y modulación del proceso inflamatorio inducido por carga mecánica, así como en la velocidad de movimiento alcanzada en estos pacientes durante fases del tratamiento de ortodoncia, como alineación, nivelación. y retracción canina. por esto, se necesitan más estudios para comprender mejor el papel del sistema OPG/RANKL en la remodelación ósea durante el movimiento dental ortodóntico en pacientes de diferentes edades y fases de tratamiento. Objetivo: Comparar los niveles de expresión de RANKL y OPG en una muestra piloto de pacientes adultos y adolescentes con tratamiento de ortodoncia. Métodos: Para estandarizar el método, se siguieron criterios de inclusión y exclusión, se analizaron cinco pacientes entre 14 y 40 años. Se tomaron muestras de fluido crevicular gingival (FCG) de la zona distal del canino superior derecho, siguiendo el protocolo establecido por Rody et al., 2014. La extracción de ARN se realizó a partir de las muestras de FCG utilizando el kit quick-RNA, según las instrucciones del fabricante. Se cuantificó el ARN obtenido y s evaluó su calidad mediante espectrofotometría. El ADNc se obtuvo mediante transcripción inversa utilizando el protocolo del kit de síntesis de ADNc de primera hebra protoscript II. La técnica (RT-PCR) se realizó utilizando el kit luna universal para determinar niveles de expresión de RANKL y OPG. La amplificación y eficiencia se analizaron utilizando el programa de PCR Linreg. Se realizaron lecturas correspondientes a RANKL y OPG de forma individual para determinar el nivel de expresión en las muestras. Como control de expresión se analizó el gen GAPDH. Resultados: Inicialmente se estandarizó la forma más adecuada y eficiente de obtener una muestra para amplificación por PCR a partir del FCG recolectado. Método 1: extracción de ARN+RT+PCR. Para obtener ARN puro de mejor calidad, se utilizó el método 1. El ARN obtenido se cuantificó y analizó su calidad y pureza mediante la evaluación de las curvas de espectrofotometría. Se logró una amplificación adecuada de genes RANKL y OPG en 5 individuos bajo tratamiento de ortodoncia. La expresión de RANKL aumentó en t1 en comparación con t0; Se observó un aumento significativo de OPG en t1. Conclusiones: Es importante realizar un control de la placa antes de tomar la muestra. Las cantidades de muestra obtenidas fueron suficientes para analizar la amplificación de RANKL y OPG. La extracción de ARN se estandarizó mediante el método 1 porque permitió obtener mayor cantidad de ARN, con calidad suficiente para realizar la PCR. |
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Pocos estudios han evaluado la edad de los pacientes como una variable que puede influir en la inducción y modulación del proceso inflamatorio inducido por carga mecánica, así como en la velocidad de movimiento alcanzada en estos pacientes durante fases del tratamiento de ortodoncia, como alineación, nivelación. y retracción canina. por esto, se necesitan más estudios para comprender mejor el papel del sistema OPG/RANKL en la remodelación ósea durante el movimiento dental ortodóntico en pacientes de diferentes edades y fases de tratamiento. Objetivo: Comparar los niveles de expresión de RANKL y OPG en una muestra piloto de pacientes adultos y adolescentes con tratamiento de ortodoncia. Métodos: Para estandarizar el método, se siguieron criterios de inclusión y exclusión, se analizaron cinco pacientes entre 14 y 40 años. Se tomaron muestras de fluido crevicular gingival (FCG) de la zona distal del canino superior derecho, siguiendo el protocolo establecido por Rody et al., 2014. La extracción de ARN se realizó a partir de las muestras de FCG utilizando el kit quick-RNA, según las instrucciones del fabricante. Se cuantificó el ARN obtenido y s evaluó su calidad mediante espectrofotometría. El ADNc se obtuvo mediante transcripción inversa utilizando el protocolo del kit de síntesis de ADNc de primera hebra protoscript II. La técnica (RT-PCR) se realizó utilizando el kit luna universal para determinar niveles de expresión de RANKL y OPG. La amplificación y eficiencia se analizaron utilizando el programa de PCR Linreg. Se realizaron lecturas correspondientes a RANKL y OPG de forma individual para determinar el nivel de expresión en las muestras. Como control de expresión se analizó el gen GAPDH. Resultados: Inicialmente se estandarizó la forma más adecuada y eficiente de obtener una muestra para amplificación por PCR a partir del FCG recolectado. Método 1: extracción de ARN+RT+PCR. Para obtener ARN puro de mejor calidad, se utilizó el método 1. El ARN obtenido se cuantificó y analizó su calidad y pureza mediante la evaluación de las curvas de espectrofotometría. Se logró una amplificación adecuada de genes RANKL y OPG en 5 individuos bajo tratamiento de ortodoncia. La expresión de RANKL aumentó en t1 en comparación con t0; Se observó un aumento significativo de OPG en t1. Conclusiones: Es importante realizar un control de la placa antes de tomar la muestra. Las cantidades de muestra obtenidas fueron suficientes para analizar la amplificación de RANKL y OPG. La extracción de ARN se estandarizó mediante el método 1 porque permitió obtener mayor cantidad de ARN, con calidad suficiente para realizar la PCR.Grupo de Investigación UMIMC - Unidad de Manejo Integral de Malformaciones CraneofacialesEspecialista en OrtodonciaEspecializaciónBackground: Two important metabolism markers are nuclear factor k B (RANKL) and osteoprotegerin (OPG), some studies suggest age may lead to different expressions, however few have studies have assessed patient age as a variable as well as movement pace such as alignment, leveling and canine retraction during orthodontic treatment. Objective: to compare RANKL and OPG levels in a pilot sample of adult and adolescent patients with orthodontic treatment. Methods: Five patients between 14 and 40 years of age were assessed, gingival crevicular fluid (GCF) samples were taken from the right upper canine distal area as per Rody et al., in 2014. RNA samples were taken from GCF with Quick-RNA, quantified and quality measured with spectrophotometry. DNAc was obtained by reverse transcription with first strand ProtoScript II, the technique (RT-PCR) was performed with Luna Universal in order to determine the RANKL and OPG expressions. Amplification and efficiency were analysed with PCR Linreg, individual readings of RANKL and OPG were taken in order to determine expression and control was with GAPDH gene. Results: Standardisation for samples was by method 1 extraction of RNA+RT+PCR. This RNA was quantified and analysed with spectrophotometry curves. Adequate amplification of RANKL and OPG from five individuals were obtained, RANKL increased in T1 compared to T0 and OPG increased in T1. Conclusions: A plaque control is important before taking a sample and sample quantities were enough for RANKL and OPG analysis. RNA extraction was standardized with method 1 allowing more quantity in order to test with PCR.application/pdfAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacionalhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/Acceso abiertoinfo:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2AdolescentesAdultosRANKLOPGOrtodonciaFluido crevicularAdolescentsAdultsRANKLOPGOrthodonticsCrevicular fluidWU400Comparación de la expresión de RANKL y OPG en adolescentes y adultos tratados con ortodoncia correctiva-estudio pilotoComparison of RANKL and OPG expression in adolescents and adults with corrective orthodontics-pilot studyEspecialización en OrtodonciaUniversidad El BosqueFacultad de OdontologíaTesis/Trabajo de grado - Monografía - Especializaciónhttps://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fhttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1finfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aaAlikhani M, Chou MY, Khoo E, Alansari S, Kwal R, Elfersi T, et al. Age-dependent biologic response to orthodontic forces. Am J Orthod Dentofacial Orthop [Internet]. 2018;153(5):632–44. DOI en: http://dx.doi.org/10.1016/j.ajodo.2017.09.016Atkins GJ, Kostakis P, Pan B, Farrugia A, Gronthos S, Evdokiou A, et al. RANKL expression is related to the differentiation state of human osteoblasts. J Bone Miner Res [Internet]. 2003;18(6):1088–98. DOI: 10.1359/jbmr.2003.18.6.1088Belibasakis GN, Bostanci N. The RANKL‐OPG system in clinical periodontology. J Clin Periodontol [Internet]. 2012;39(3):239–48. DOI en: http://dx.doi.org/10.1111/j.1600-051x.2011.01810.xFlorencio-Silva R, Sasso GR da S, Sasso-Cerri E, Simões MJ, Cerri PS. Biology of bone tissue: Structure, function, and factors that influence bone cells. Biomed Res Int [Internet]. 2015;2015:421746. DOI en:http://dx.doi.org/10.1155/2015/421746Grant M, Wilson J, Rock P, Chapple I. Induction of cytokines, MMP9, TIMPs, RANKLand OPG during orthodontic tooth movement. Eur J Orthod [Internet].2013;35(5):644–51. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1093/ejo/cjs057Jablonski. Diccionario ilustrado de odontologia. Editorial Medica Panamericana; 1995.Kawasaki K, Takahashi T, Yamaguchi M, Kasai K. Effects of aging on RANKL and OPG levels in gingival crevicular fluid during orthodontic tooth movement. OrthodCraniofac Res [Internet]. 2006;9(3):137–42. DOI en:http://dx.doi.org/10.1111/j.1601-6343.2006.00368.xKrishnan V, Kuijpers-Jagtman AM, Davidovitch Z. Biological mechanisms of tooth movement. 3a ed. Krishnan V, Kuijpers-Jagtman AM, Davidovitch Z, editores. Standards Information Network; 2021.Li Y, Jacox LA, Little SH, Ko C-C. Orthodontic tooth movement: The biology and clinical implications. Kaohsiung J Med Sci [Internet]. 2018;34(4):207–14. DOI en: http://dx.doi.org/10.1016/j.kjms.2018.01.007Lu, H. K., Chen, Y. L., Chang, H. C., Li, C. L., & Kuo, M. Y. Identification of the OPG/ RANKL system in gingival crevicular fluid and tissue of patients with chronic perio- dontitis. 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