Gulupa (Passiflora edulis), curuba (Passiflora tripartita), aguacate (Persea americana) y tomate de árbol (Solanum betaceum) : innovaciones
Ilustraciones y fotografías
- Autores:
-
Melgarejo, Luz Marina
Fischer, Gerhard
Cuca Suárez, Luis Enrique
Hernández Gómez, María Soledad
Hoyos Carvajal, Lilliana
Magnitskiy, Stanislav
Brochero, Helena L.
Miranda Lasprilla, Diego
Álvarez-Flórez, Fagua Virginia
Ávila Murillo, Mónica Constanza
Delgado Ávila, Wilman Antonio
Mendoza Forero, Cristina
Lizarazo Hernández, Karol
Solarte Cruz, María Elena
Hurtado Clopatosky, Stephany
Plazas Rodríguez, Erika Andrea
García Morantes, Jenny Liliana
Ramírez Soler, Claudia Helena
Márquez-Niño, Fabián Giovanny
Moreno Echeverry, Darwin Leonardo
Sandoval, Jorge Leonardo
Flechas Bejarano, Natalia
Díaz Ardila, Harold Nicholay
Cárdenas Pira, Wendy Tatiana
Torres Moya, Edwin
Cruz Ospina, Sara María
Toro Tobón, Gabriela
Paz Figueroa, Valeria
Rodríguez Castillo, Natalia
- Tipo de recurso:
- Book
- Fecha de publicación:
- 2019
- Institución:
- Universidad Nacional de Colombia
- Repositorio:
- Universidad Nacional de Colombia
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.unal.edu.co:unal/79864
- Palabra clave:
- 580 - Plantas
Guayabas
Aguacate
Tomate de árbol
Botánica
Frutas
Fenología vegetal
Agricultura
- Rights
- openAccess
- License
- Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional
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Bewley, J. D., & Black, M. (2012). Physiology and Biochemistry of Seeds in Relation to Germination. Vol. 2: Viability, Dormancy, and Environmental Control. Berlín & Heidelberg: Springer Science & Business Media. doi:10.1007/978-3-642-68643-6 Bradbeer, J. W. (2013). Seed dormancy and germination. Nueva York: Springer Science & Business Media. doi:10.1007/978-1-4684-7747-4 Cárdenas, W., Zuluaga M. L., & Lobo, M. (2004). Latencia en semillas de lulo (Solanum quitoense Lam.) y tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Solanum betaceum) Cav. Sendt) como aspecto básico para la conservación y el monitoreo de viabilidad de las colecciones. Plant Genetic Resources Newsletter, 139, 31-41. Recuperado de: http://www.bioversityinternational.org/fileadmin/PGR/article-issue_139-art_6-lang_es.html Carranza, C., Castellanos, G., Deaza, D., & Miranda, D. (2016). Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento sobre la germinación de semillas de badea (Passiflora quadrangularis L.) en condiciones de invernadero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 284-291. doi:10.17584/rcch.2016v10i2.5791 Delanoy, M., van Damme, P., Scheldeman, X., & Beltrán, J. (2006). Germination of Passiflora mollissima (Kunth) LH Bailey, Passiflora tricuspis Mast. and Passiflora nov sp. seeds. Scientia Horticulturae, 110(2), 198-203. doi:10.1016/j.scienta.2006.07.007 Ellis, R. H., Hong, T. D., & Roberts, E. H. (1985). Handbook of seed technology for genebanks. Volume I. Principles and methodology. International Board for Plant Genetic Resources. Handbooks for Genebanks. Finch-Savage, W. E., & Leubner-Metzger, G. (2006). Seed dormancy and the control of germination. New Phytologist, 171(3), 501-523. doi:10.1111/j.1469-8137.2006.01787.x Fischer, G., Casierra-Posada, F., & Piedrahíta, W. (2009). Ecofisiología de las especies las especies pasifloráceas cultivadas en Colombia. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza et al. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 46-68). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Maciel, K. S., De Lima, P. A. M., Madalon, F. Z., Moraes, S. P. C. B., Cabanez, P. A., . . . Lopes, J. C. (2018). Characterization of Fruits in Contrasting Environments and Germination of Tamarillo Seeds at Different Temperatures. American Journal of Plant Sciences, 9, 23-33. doi:10.4236/ ajps.2018.91003 Mendoza, C., Celis, A., & Pachón, M. (2014). Herbicide effects of Piper extracts on a seed bank in Fusagasugá (Colombia). Acta Horticulturae, 1030, 77-82. doi:10.17660/ActaHortic.2014.1030.9 Miranda, D., Perea, M., & Magnitskiy, S. (2009). Propagación de especies pasifloráceas. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza et al. (Eds), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 69-96). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Passos, I. R. S., Matos, G. V. C., Meletti, L. M. M., Scott, M. D. S., Bernacci, L. C., Vieira, M. A. R. (2004). Utilização do ácido giberélico para a quebra de dormência de sementes de Passiflora nitida Kunth germinadas in vitro. Revista Brasileira de Fruticultura, 26(2), 380-381. Pringle, G. J., & Murray, B. G. (1991). Reproductive biology of the tamarillo, Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (Solanaceae), and some wild relatives. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 19(3), 263-273. doi:10.1080/01140671.1991.10421810 Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y germinación de semillas. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología vegetal (pp. 13-24). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http:// ciencias.bogota.unal.edu.co/fileadmin/content/laboratorios/fisiologiavegetal/documentos/Libro_experimentos_en_fisiologia_y_bioquimica_vegetal__Reparado_.pdf Taiz, L., & Zeiger, E. (2006). Plant physiology. Sunderland: Sianuer Associates. Velásquez, J. D., Melgarejo, L. M., & Magnitskiy, S. (2012). Tratamientos pregerminativos en semillas de gulupa Passiflora edulis Sims. En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la Gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 81-90). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/ Agustí, M. (2008). Crecimiento y maduración del fruto. En J. Azcón-Bieto y M. Talon (Eds.), Fundamentos de Fisiología Vegetal (pp. 523-28). Barcelona: McGraw-Hill/Interamericana. Baskin, C., Baskin, J., & Li, X. (2000). Taxonomy, anatomy and evolution of physical dormancy in seeds. Plant Species Biology, 15(2), 139-152. doi:10.1046/j.1442-1984.2000.00034.x Beckles, D. M. (2012). Factors affecting the postharvest soluble solids and sugar content of tomato (Solanum lycopersicum L.) fruit. Postharvest Biology and Technology, 63(1), 129-140. doi:10.1016/j.postharvbio.2011.05.016 De Souza, D., Fernandes dos Santos, D. C., dos Santos, D., Branco, F., & Bhering, M. C. (2006). Qualidade Fisiológica De Sementes De Tomate Em Função Da Idade E Doarmazenamento Pós-Colheita Dos Frutos. Revista Brasileira de Sementes, 28(3), 87-93. doi:10.1590/ S0101-31222006000300013 De Souza, D., Fernandes, D. C., dos Santos Dias, L. A., & Finger, F. L. (2011). Changes in seed quality during fruit maduration of sweet pepper. Scientia Agricola, 68(5), 535-539. doi:10.1590/S0103-90162011000500004 Fischer, G., & Martínez, O. (1999). Calidad y madurez de la uchuva (Physalis peruviana L.) en relación con la coloración del fruto. Agronomía Colombiana, 16(1-3), 35-39. International Seed Testing Association (ista). (1999). International rules for Seed Testing: Rules 1999. Seed Science and Technology, 27, 15-28. Lee, T. (1988). Patterns of fruit and seed production. En J. Lovett Doust & L. Lovett Doust (Eds.), Plant reproductive ecology: patterns and strategies (p. 344). Nueva York: Oxford University Press. Manera, F. J., Legua, P., Melgarejo, P., Brotons, J. M., Hernández, F., & Martínez, J. J. (2013). Determination of a colour index for fruit of pomegranate varietal group “Mollar de Elche”. Scientia Horticulturae, 150(4), 360-364. doi:10.1016/j.scienta.2012.11.036 Marín, L. S., Arcila, P. J., Montoya, R. E., & Oliveros, T. C. (2003). Cambios físicos y químicos durante la maduración del fruto del café (Coffea arabica L. var. Colombia). Cenicafé, 54(3), 208-225. Molina, C., Tapias, R., & Gil, L. (1997). Influencia de la posición en la copa y el año de maduración en la germinación de las semillas de Pinus pinaster ait. De la sierra del Teleno (León, Noroeste de España). Investigación agraria, Sistemas y recursos forestales, 6(1), 53-65. Organización para la Cooperación y el Desarrollo Económico (ocde). (2005). Régimen de la ocde para la aplicación de normas internacionales relacionadas con frutas y hortalizas: traducción oficiosa de guía de pruebas objetivas para determinar la madurez de la fruta. Recuperado de http:// www.oecd.org/tad/code/32022743.pdf Pérez, L. V., Rojas, Y. A., & Melgarejo, L. M. (2010). Agua. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología y bioquímica vegetal (pp. 63-77). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Portela, S. (1999). Fisiología y manejo de postcosecha del tamarillo (Cyphomandra betacea). Avances en Horticultura, 4(1), 33-43. Schmidt, L. (2000). Guide to Handling of Tropical and Subtropical Forest Seed. Humlebaek: Danida Forest Seed Centre. Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y Germinación de Semillas. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología y bioquímica vegetal (pp. 13-24). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Vadillo, G., Suni, M., & Cano, A. (2004). Viabilidad y germinación de semillas de Puya raimondii Harms (Bromeliaceae). Revista Peruana de Biología, 11(1), 71-78. doi:10.15381/rpb.v11i1.2435 Welbaum, G. B. (1999). Cucurbit Seed Development and Production. HorTechnology, 9(3), 341-348. Aramendiz, H., Sudré, C., Espitia, M., Cardona, C., & Correa, A. (2009). Caracterización morfoagronómica de la berenjena (Solanum melongena L.). Revista udca Actualidad y Divulgación Científica, 12(2), 101-111. Recuperado de http://www.scielo.org.co/pdf/rudca/v12n2/v12n2a11.pdf Balaguera, H. E., Álvarez, J. G., & Cárdenas, J. (2010). Efecto de la estratificación fría y la cobertura plástica en semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.) para la obtención de plántulas. Revista udca Actualidad y Divulgación Científica, 13(2), 89-97. Bernal, N., Ocampo, J., & Hernández, J. (2014). Caracterización y análisis de la variabilidad genética de la granadilla (Passiflora ligularis Juss.) en Colombia empleando marcadores microsatélites. Revista Brasileira de Fruticultura, 36(3), 586-597. doi:10.1590/0100-2945-251/13. Cárdenas, J. (2011). Morfología y tratamientos pregerminativos de semillas de granadilla (Passiflora ligularis Juss), tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Carranza, C., Castellanos, G., Deaza, D., & Miranda, D. (2016). Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento sobre la germinación de semillas de badea (Passiflora quadrangularis L.) en condiciones de invernadero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 284-291. doi:10.17584/rcch.2016v10i2.5791. Castro, J. (2015). Caracterización morfo-agronómica de 119 introducciones pertenecientes a la colección colombiana de arroz (Oryza sativa L.), tesis de pregrado no publicada. Universidad de Tolima, Ibagué, Colombia. Cerqueira, C., Moreira, C., Figueira, A., Correa, R., & Oliveira, A. (2008). Detection of a resistance gradient to Passion fruit woodiness virus and selection of ‘yellow’ passion fruit plants under field conditions. Genetics and Molecular Research, 7(4), 1209-1216. Checa, O., Rosero, E., & Eraso, I. (2011). Colección y caracterización morfoagronómica del subgénero Tacsonia en la zona Andina del departamento de Nariño, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 64(1), 5893-5907. Recuperado de http://www.scielo.org.co/pdf/rfnam/ v64n1/a14v64n01.pdf Coppens, G., Ocampo, J., Restrepo, M., Garcin, F., Olaya, C., Farfán, L., . . . Caetano, C. (2002). Diversidad morfológica en Passiflora subgéneros Tacsonia y Manicata. En viii Congreso Latinoamericano de Botánica y 2° Congreso Colombiano de Botánica, Cartagena, Colombia. Crochemore, M., Molinari, B., & Colauto, N. (2003). Caracterização agromorfológica do maracujazeiro (Passiflora spp.). Revista Brasileira de Fruticultura, 25(1), 5-10. doi:10.1590/S0100-29452003000100004. Faleiro, F. G., Junqueira, N. T. V., Braga, M. F., Bellon, G., & Peixoto, J. R. (2006). Diversidade genética de variedades comerciais de maracujazeiro-azedo com base em marcadores moleculares. Iv Reunião Técnica de Pesquisas em Maracujazeiro, pp. 105-109. Faleiro, F. G., Vilela, N., Fideles, M., Olivera, E., Peixoto, J., & Costa. A. (2011). Germoplasma e melhoramento genético do Maracujazeiro – histórico e perspectivas. Brasilia, Brasil: Empraba Cerrados. Fonseca, N., Márquez, M., Moreno, J., Terán, W., & Schuler, I. (2009). Caracterización molecular de materiales cultivados de gulupa (Passiflora edulis f. edulis). Universitas Scientiarum, 14(2-3), 135-140. doi:10.11144/ javeriana.SC14-2-3.cmdm Franco, T. L., & Hidalgo, R. (2003). Análisis Estadístico de Datos de Caracterización Morfológica de Recursos Fitogenéticos. Boletín técnico n.º 8. Cali, Colombia: Instituto Internacional de Recursos Fitogenéticos (ipgri). Guisande, C., Vaamonde, A., & Barreiro, A. (2018). Package StatR, [software]. Versión 1.4, p. 351. Gutiérrez, M., Miranda, D., & Cárdenas, J. (2011). Efecto de tratamientos pregerminativos sobre la germinación de semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.), granadilla (Passiflora ligularis Juss.) y cholupa (Passiflora maliformis L.). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 5(2), 209-219. doi:10.17584/rcch.2011v5i2.1268 Marín, M., Caetano, C., & Posada, C. (2009). Caracterización morfológica de especies del género Passiflora de Colombia. Acta Agronómica, 58(3), 117-125. Meier, U. (2001). Estadios de las plantas mono y dicotiledóneas: bbch Monografía. Edición 2. Limburherhof: Centro Federal de Investigaciones Biológicas para Agricultura y Silvicultura. Miranda, D., Perea, M., & Magnitskiy, S. (2009). Propagación de especies pasifloráceas. En D. Miranda et al. (Ed.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 69-96). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Ocampo, J. (2007). Study of the genetic diversity of genus Passiflora L. (Passifloraceae) and its distribution in Colombia (tesis de doctorado no publicada). Ecole Nationale Supérieure Agronomique de Montpellier, Montpellier, Francia. Ocampo, J. (2013). Diversidad y distribución de las Passifloraceae en el departamento del Huila en Colombia. Acta Biológica Colombiana, 18(3), 511-516. Ocampo, J., Arias, J., & Urrea, R. (2015). Colecta e identificación de genotipos élite de granadilla (Passiflora ligularis Juss.) en Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 9(1), 9-23. doi:10.17584/ rcch.2015v9i1.3742. Ocampo, J., & Coppens, G. (2017). Morphological characterization in the genus Passiflora L.: an approach to understanding its complex variability. Plant Systematics and Evolution, 303(4), 531-558. doi:10.1007/ s00606-017-1390-2. Orantes, C., Pérez, M. Á., Rioja, T. M., & Garrido, E. R. (2013). Viabilidad y germinación de semillas de tres especies arbóreas nativas de la selva tropical. Polibotánica, 36, 117-127. Ortiz, D. (2010). Estudio de la variabilidad genética en materiales comerciales de gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia, Tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Parra, M. (2011). Cadena Productiva de Pasifloras. Informe de gestión y desempeño resumen ejecutivo. Bogotá: Secretaría Técnica Nacional Cadena de Pasifloras, Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Pereira, T. S., & Andrade, A. C. S. (1994). Germinação de Psidium guajava L. e Passiflora edulis Sims – Efeito da temperatura, substrato e morfologia do desenvolvimento pós-seminal. Revista Brasileira de Sementes, 16(1), 58-62. Pires, M. V., Almeida, A. A. F. D., Figueiredo, A. L. D., Gomes, F. P., & Souza, M. M. (2012). Germination and seedling growth of ornamental species of Passiflora under artificial shade. Acta Scientiarum Agronomy, 34(1), 67-75. doi:10.4025/actasciagron.v34i1.11623. Posada, P. (2012). Estudios del comportamiento fisiológico de la semilla del maracuyá (P. edulis f. flavicarpa Degener), la granadilla (P. ligularis Juss.) y la gulupa (P. edulis f. edulis Sims) y zonificación agroecológica como estrategia para una agricultura Eco-eficiente y de conservación, tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Palmira, Colombia. Primot, S., Coppens, G., Rioux, V., Ocampo, J., & Garcin, F. (2005). Variación morfológica de tres especies de curubas (Passiflora tripartita var. mollissima, P. tarminiana y P. mixta) y sus híbridos en el Valle del Cauca (Colombia). Revista Brasileña de Fruticultura, 27(3), 467-471. doi:10.1590/S0100-29452005000300030 Ramírez, G., Muñoz, M., Osorno, L., Osorio, N. W., & Morales, J. G. (2015). Germination and growth of purple passion fruit seedlings under pre-germination treatments and mycorrhizal inoculation. Pesquisa Agropecuaria Tropical, 45(3), 257-265. doi:10.1590/1983-40632015v4533273. Rodríguez, A. K., Rodríguez, A., Melgarejo, L. M., Miranda, D., Fischer, G., & Martínez, O. (2015). Caracterización fenológica de granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. En L. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 53-90). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial. net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/ Granadilla.pdf Schmidt, L. H. (2000). Guide to handling of tropical and subtropical forest seed. Danida Forest Seed Centre. Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y germinación de semillas. En L. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología vegetal (pp. 13-24). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://ciencias.bogota.unal.edu.co/fileadmin/content/laboratorios/ fisiologiavegetal/documentos/Libro_experimentos_en_fisiologia_y_bioquimica_vegetal__Reparado_.pdf Tozzi, H., & Takaki, M. (2011). Histochemical analysis of seed reserve mobilization in Passiflora edulis Sims fo. flavicarpa O. Deg. (yellow passion fruit) during germination. Brazilian Journal of Biology, 71(3), 701-108. doi:10.1590/S1519-69842011000400015. Trentacoste, E., & Puertas, C. M. (2011). Preliminary characterization and morpho-agronomic evaluation of the olive germplasm collection of the Mendoza province (Argentina). Euphytica, 177(1), 99-109. doi:10.1007/s10681-010-0270-4. United Nations Environmental Programme (unep). (1992). Convention on Biological Diversity. Environmental Law and Institutions Programme Activity Centre. unep. Valencia, R., Lobo, M., & Ligarreto, G. (2010). Estado del arte de los recursos genéticos vegetales en Colombia: Sistema de Bancos de Germoplasma. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 11(1), 85-94. doi:10.21930/ rcta.vol11_num1_art:198. Velásquez, J. D., Melgarejo, L. M., & Magnitskiy, S. (2012). Tratamientos pregerminativos en semillas de gulupa, Passiflora edulis Sims. En L.Melgarejo & L. Pérez (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 81-89). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/ Viana, A. P., Pereira, T. N. S., Pereira, M. G., Souza, M. D., Maldonado, J. F. M., & Amaral, A. (2003). Diversidade genética entre genótipos comerciais de maracujazeiro amarelo (Passiflora edulis f. flavicarpa) e entre espécies de passifloras nativas determinada por marcadores rapd. Revista Brasileira de fruticultura, 25(3), 489-493. doi:10.1590/ S0100-29452003000300032 Alcaraz, M. L., Thorp, T. G., & Hormaza, J. I. (2013). Phenological growth stages of avocado (Persea amricana) according to the bbch scale. Scientia Horticulturae, 164, 434-439. doi:10.1016/j.scienta.2013.09.051 Aubert, B., & Lossois, P. (1972). Considerations sur la phenologie des spéces frutieres arbustives. Fruits, 27(4), 269-286. Avilán, L., Soto, E., Pérez, M., Marín, C., Rodríguez, M., & Ruiz, J. (2005). Comportamiento fenológico híbridos guatemalteca por antillana de aguacate en la región centro-norte costera de Venezuela. Agronomía Tropical, 56(4), 535-551. Cossio, L. E., Hernández, L. M., López, J. G., Gómez, R., & Sánchez, R. (2011). Flujos de crecimiento vegetativo y reproductivo del aguacate ‘Hass-Méndez’ en Nayarit, México. Actas VII Congreso Mundial del Aguacate, Cairns, Australia. Cutter, E. G. (1978). Plant Anatomy: Cells and Tissues Part I. Londres, Reino Unido: Edward Arnold Publisher. Dörken, V. M., & Lepetit, B. (2018). Morpho-anatomical and physiological differences between sun and shade leaves in Abies alba Mill. (Pinaceae, Coniferales): a combined approach. Plant, Cell and Environment, 41(7), 1683-1697. doi:10.1111/pce.13213 González, V. M., Barriento, A. F., Núñez, C. A., Ramírez, S. P., Hofshi, R., & Arpaia, M. L. (2011). Anatomía de la lámina de hoja en ocho cultivares de Aguacate. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 2(5), 733-744. Gregoriou, C., & Kumar, D. (1982). Some aspects of shoot and root growth of avocado under lowland tropical conditions. California Avocado Society Yearboock, 66, 129-144. Heisman, P. (1939). Notes on avocado anatomy. California Avocado Society Yearbook, 87-91. Johansen, D. A. (1940). Plant microtechnique. 1.ª edición. Nueva York, EE. UU.: McGraw-Hill. Kadman, A. (1965). Influence of transpiration and some other factors on the uptake, transport and accumulation of chlorine and sodium in avocado seedlings. Proceedings of the Symposium on the Use of Isotopes and Radiation in Soil Plant Nutrition Studies, Ankara, Turkey. International Atomic Energy Agency. Viena, Austria, 539-562. Kubínová, L. (1991). Stomata and mesophyll characteristics of barley leaf as affected by light: Stereological analysis. Journal of experimental Botany, 42(241), 995-1001. doi:10.1093/jxb/42.8.995 Mandemaker. A. J. (2007). Review: Photosynthesis of avocado. New Zealand Avocado Growers’ Association Annual Research Report, 7, 1-10. Recuperado de http://www.avocadosource.com/Journals/NZAGA/NZAGA_2007/ NZAGA_2007_01.pdf Meier, U. (2001). Estadios de las plantas mono y dicotiledóneas: bbch Monografia. Edición 2. Limburherhof, Alemania: Centro Federal de Investigaciones Biológicas para Agricultura y Silvicultura. Mickelbart, M. V., Miller, R., Parry, S., Arpaia, M. L., & Heath, R. (2000). Review: Photosynthesis of avocado. California Avocado Society 2000 Yearbook, 84, 139-150. Morales, L., Barrientos, A. F., & Martínez, M. T. (1992). Obtención de poliploides en aguacate (Persea americana Mill.) mediante el uso de colchicina. Coatepec Harinas, México: Memoria de la Fundación Salvador Sánchez Colín-CICTAMEX. Pérez, L. V., Rojas, Y. A., & Melgarejo, L. M. (2010). Agua. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en Fisiología Vegetal (pp. 63-77). Bogotá, Colombia: Departamento de Biología, Universidad Nacional de Colombia. Rocha, J., Salazar, S., Bárcenas, A. E., González, I. J., & Cossio, L. E. (2011). Fenología del aguacate ‘Hass’ en Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 2(3), 303-316. Rodrigo, V. H. L., Stirling, C. M., Teklehaimanot, Z., & Nugawela, A. (1997). The effect of planting density on growth and development of component crops in rubber/banana intercropping systems. Field Crops Research, 52(1-2), 95-108. doi:10.1016/S0378-4290(96)01069-6 Rodrigo, V. H. L., Stirling, C. M., Teklehaimanot, Z., & Nugawela, A. (2001). Intercropping with banana to improve fractional interception and radiation-use efficiency of immature rubber plantations. Field Crops Research, 69(3), 237-249. doi:10.1016/S0378-4290(00)00147-7 Rojas, E., & Bautista, D. (1989). Estudio fenológico de seis variedades de aguacate durante dos ciclos anuales en el Valle de Temerla. IV Congreso Nacional de Fruticultura, Maracaibo, Venezuela, p. 7. Romero, M. A. (2012). Comportamiento fisiológico del aguacate (Persea americana Mill.) Variedad Lorena en la zona de Mariquita, Tolima, tesis de doctorado. Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Saavedra, G., Vásquez, H. D., & Mejía, E. (2012). Aguacate (Persea americana Mill.) En Gerard Fischer (Ed.), Manual para el cultivo de frutales en el trópico (pp. 319-348). Bogotá, Colombia: Produmedios. Salazar, S., Lord, E., & Lovatt, C. (1999). Inflorescence development of the ‘Hass’ avocado: Commitment to flowering. Journal American Society Horticultural Science, 124(5), 478- 482. doi:10.21273/JASHS.124.5.478 Sousa, E. A., dos Santos, I. R., Aguiar, V. F., & Senna, C. J. (2003). The Influence of Light Intensity on Anatomical Structure and Pigment Contents of Tradescantia pallida (Rose) Hunt. cv. purpurea Boom (Commelinaceae) Leaves. Brazilian Archives of Biology and Technology, 46(4), 617-624. doi:10.1590/S1516-89132003000400017 Thorp, T. G., Aspinall, D., & Sedgley, M. (1994). Preformation of node number in vegetative and reproductive proleptic shoot modules of Persea (Lauraceae). Annals of Botany, 73(1), 13-22. Thorp, T. G., & Sedgley, M. (1993). Architectural analysis of tree form in a range of avocado cultivars. Scientia Horticulturae, 53(1-2), 85-98. doi:10.1016/0304-4238(93)90140-L Vogelmann, T. C., & Martin, G. (1993). The functional significance of palisade tissue: penetration of directional versus diffuse light. Plant, Cell and Environment, 16(1), 65-72. doi:10.1111/j.1365-3040.1993.tb00845.x Whiley, A. W., & Schaffer, B. (1994). Avocado. En B. Schaffer & P Andersen (Eds.), CRC Handbook of Environmental Physiology of Fruit Crops. Vol. i. Subtropical and Tropical Crops (pp. 3-35). Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press Inc. Wolstenholme, B. N., & Whiley, A. W. (1999). Ecophysiology of the avocado (persea americana mill.) tree as a basis for pre-harvest management. Revista Chapingo Serie Horticultura, 5, 77-88. Agronet. (2018). Estadísticas. Agrícola. Área, producción, rendimiento y participación. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/ default.aspx Almendros-García, P., Rico-Selas, M. I., López-Valdivia, L. M., & Álvarez-Álvarez, J. M. (2008). Deficiencia de zinc en los cultivos y correctores de carencia del micronutriente. Vida Rural, 19(280), 12-16. Recuperado de http://oa.upm.es/2472/2/INVE_MEM_2008_56367.pdf Ángel-Coca, C., Nates, G., Ospina, R., & Melo, C. (2011). Biología floral y reproductiva de la gulupa Passiflora edulis Sims f. edulis. Caldasia, 33(2), 433-451. doi:10.15446/caldasia Avilán, L. (1974). Efectos de la deficiencia de macronutrientes sobre el crecimiento y la composición química de la parcha granadina (Passiflora quadrangularis L.) cultivada en soluciones nutritivas. Agronomía Tropical, 24(2), 133-140. Barker, A., & Pilbeam, D. (2015). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Cabezas, M., & Sánchez, A. (2008). Effect of nutrient elements deficiencies on the dry matter partitioning in nursery plants of curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(2), 197-204. Castaño, C., Morales, C., & Obando, F. (2008). Evaluación de las deficiencias nutricionales en el cultivo de la mora (Rubus glaucus) en condiciones controladas para bosque montano bajo. Agronomía, 16(1), 75-88. Clark, R. B., Flores, C. I., & Gourley, L. M. (1987). Mineral element concentrations in acid soil tolerant and susceptible sorghum genotypes. Communications in soil science and plant analysis, 19(7-12), 1003-1017. doi:10.1080/00103628809367990. Conde, N., Jiménez, A., Schieberle, P., Sinuco, D., & Osorio, C. (2013). Key aroma volatile compounds of gulupa (Passiflora edulis Sims to edulis) fruit. European Food Research and Technology, 236(6), 1085-1091. doi:10.1007/s00217-013-1979-9 Díaz, O.; Moreno, L., Pinilla, R.; Carrillo, W.; Melgarejo, L. M.; . . . Fernández-Trujillo, J. (2012). Postharvest behavior of purple passion fruit in Xtend® bags during low temperature storage. Acta Horticulturae, 934, 727-731. doi:10.17660/ActaHortic.2012.934.95 Fageria, N. (2009). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Fageria, N. (2016). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC press. Fischer, G., Melgarejo, L. M., & Cutler, J. (2018). Pre-harvest factors that influence the quality of passion fruit: A review. Agronomía Colombiana, 36(3), 217-226. doi:10.15446/agron.colomb.v36n3.71751. Galindo, J., & Gómez, S. (2010). Gulupa (Passiflora edulis Sims) producción y manejo poscosecha. Colombia. Corredor Tecnológico Agroindustrial. Bogotá, Colombia: Cámara de Comercio de Bogotá. García-Cruz, E., Sandoval-Villa, M., Carrillo-Salazar, J. A., Valdéz-Carrasco, J. M., & González-Fierro, P. H. (2015). Identificación con redes neuronales probabilísticas de las deficiencias de hierro y manganeso, usando imágenes digitales de hojas de frijol (Phaseolus vulgaris L.). Agrociencia, 49(4), 395-409. Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 123-144). Bogotá, Colombia: Produmedios. Recuperado de http://www.bdigital.unal. edu.co/8547/ Gutiérrez, M. V. (1997). Nutrición mineral de las plantas: avances y aplicaciones. Agronomía Costarricense, 21(1), 127-137. Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., White, P. (2012). Functions of Macronutrients. En P. Marschner (2012). Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135- 189). Elsevier Ltd:. doi:10.1016/ B978-0-12-384905-2.00006-6 Jiménez, A., Sierra, C., Rodríguez, F., González, M., Heredia, F., & Osorio, C. (2011). Physicochemical characterization of gulupa (Passiflora edulis Sims f edulis) fruits from Colombian during the ripening. Food Research International, 44(7), 1912-1918. doi:10.1016/j.foodres.2010.11.007 Johnson, C. M., Stout, P. R., Broyer, T. C., & Carlton, A. B. (1957). Comparative chorine requirements of different plant species. Plant and Soil, 8(4), 337-357. doi:10.1007/BF01666323 Li, W., & Lan, P. (2017). The understanding of the plant iron deficiency responses in Strategy I plants and the role of ethylene in this process by omic approaches. Frontiers in Plant Science, 8(40), 1-15. doi:10.3389/ fpls.2017.00040 Marschner, P. (2011). Marschner’s mineral nutrition of higher plants. 3.ª Edition. San Diego, EE. UU.: Academic Press. Martínez, F. E., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2009). Síntomas de deficiencia de macronutrientes y boro en plantas de uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombiana, 27(2), 169-178. Mendonça-Freitas, M. S., Monnerat, P. H., Pinho, L. G., & Cordeiro de Carvalho, A. J. (2006). Deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro doce: qualidade dos frutos. Revista Brasileira de Fruticultura, 28(3), 492-496. doi:10.1590/S0100-29452006000300033 Moreno, D., Quiroga, I., Balaguera, H., & Magnitskiy, S. (2016). El estrés por boro afecta la fotosíntesis y el metabolismo de pigmentos en plantas. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(1), 137-148. doi:10.17584/rcch.2015v9i2.4189. Osman, T. (2013). Plant nutrients and soil fertility management. En T. Osman (Ed.), Soils pp. 129-159. Dordrecht, Netherlands: Springer. doi:10.1007/978-94-007-5663-2_10 Rao, I. M. (2009). Essential plant nutrients and their functions. París: Francia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (ciat). Taiz, L., & Zeiger, E. (2006). Fisiología vegetal, 3.ª edición en castellano. Castellón de la Plana, España: Universitat Jaume I. Uchida, R. (2000). Essential nutrients for plant growth: nutrient functions and deficiency symptoms. En J. A. Silva & R. Uchida (Eds.), Plant nutrient management in Hawaii’s soils (pp. 31-55). Hawai, EE. UU.: University of Hawaii at Manoa. Yockteng, R., D’Eeckengbrugge, G. C., & Souza-Chies, T. T. (2011). Passiflora. En C. Kole (Ed.), Wild crop relatives: Genomic and breeding resources (pp. 129-171). Berlín, Alemania: Springer. Arbona, V., & Gómez-Cardenas, A. (2012). Antioxidant System in Citrus Under Nutrient Stress Conditions: Latest Development. En A. Kumar (Ed.), Advances in Citrus Nutrition (pp. 13-24), 1.ª edición. Springer. doi:10.1007 / 978-94-007-4171-3_2 Barker, A. V., & Pilbeam, D. J. (2007). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Cabezas, M., & Sánchez, A. (2008). Efecto de las deficiencias nutricionales en la distribución de la materia seca en plantas de vivero de curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(1), 197-204. Da Silva, R., Da Silva, J. G., De Souza, M. A., Monteiro, M., & Cavalcante, I. (2015). Nutrient Concentrations and Leaf Chlorophyll of Yellow Passion Fruit Seedlings as a Function of Substrate Composition and Boron. Journal of Plant Nutrition, 38(13), 1984-1994. doi:10.1080/ 01904167.2015.1061545 Espinal-Ruiz, M., Restrepo-Sánchez, L. P., Narváez-Cuenca, C. E., & Mcclements, D. (2016). Impact of pectin properties on lipid digestion under simulated gastrointestinal conditions: Comparison of citrus and banana passion fruit (Passiflora tripartita var. mollissima) pectins. Food Hydrocolloids, 52(2), 329-342. doi:10.1016/j.foodhyd.2015.05.042 Fageria, N. K. (2009). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de gulupa (Passiflora edulis Sims) (p. 123-144). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Hoagland, D. R., & Arnon, D. I. (1950). The water culture method for growing plants without soils. Berkeley: California Agricultural Experimental Station. Hoyos, V., Rodríguez, M., Cárdenas-Hernández, J. F., & Balaguera-López, H. E. (2009). Análisis del crecimiento de espinaca (Spinacia oleracea L.) bajo el efecto de diferentes fuentes y dosis de nitrógeno. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 3(2), 175-187. doi:10.17584/ rcch.2009v3i2.1211 Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013a). Response of the banana passion fruit (Passiflora tripartita var. mollissima) to different levels of nitrogen, potassium and magnesium. Agronomía Colombiana, 31(2), 184-194. Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013b). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45. Malavolta, E. (1994). Nutrición y fertilización del maracuyá. Quito: Potafos. Marschner, H. (2012). Mineral Nutrition of Higher Plants. 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Academic Press. Martínez, F., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2009). Sintomas de deficiencia de macronutrients y boro en plantas de uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombianai 27(2), 169-178. McCarthy, M. C., & Enquist, B. J. (2007). Consistency between an allometric approach and optimal partitioning theory in global patterns of plant biomass allocation. Functional Ecology, 21(4), 713-720. doi:10.1111/j.1365-2435.2007.01276.x Mendoça-Freitas, M., Monnerat, P., Cordeiro de Carvalho, A., & Da Silva-Vasconcellos, M. (2011). Sintomas visuais de deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro-doce. Revista Brasileira de Fruticultura, 33(4), 1329-1341. doi:10.1590/S0100-29452011000400034 Mengel, K., Kirkby, E. A., Kosegarten, H., & Appel, T. (2001). Plant Nutrient. En K. Mengel & E. A. Krikby (Ed.), Principles of Plant Nutrition (pp. 1-13), 5.ª edición. Springer. doi:10.1007/978-94-010-1009-2 Miranda, D., Moreno, N., & Carranza, C. (2015). Un modelo para el manejo de la nutrición en el cultivo de la granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss.): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 119-152). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Corporación Centro de Desarrollo Tecnológico de las Passifloras de Colombia (Cepass). Quiroga-Ramos, I. A., Fischer, G., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de la aplicación foliar de boro en el desarrollo fenológico y cuajado de fruto de Passiflora edulis f. edulis sims “gulupa” (passifloraceae) en condiciones de campo”. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 20-30. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7457. Ruuhola, T., Leppänen, T., Julkunen, T., Rantala, M., & Lehto, T. (2011). Boron Fertilization enhances the induced defense of silver birch. Journal of Chemical Ecology, 37(5), 460-471. doi:10.1007/s10886-011-9948-x Taiz, L., & Zeiger, E. (2010). Photosynthesis, The light reactions. En L. Taiz & E. Zeiger (Ed.), Plant physiology (pp. 111-143), 5.ª edición. Sunderlan, EE. UU.: Sinauer Associates Inc. Uraguchi, S., Kato, Y., Hanaoka, H., Miwa, K., & Fujiwara, T. (2014). Generation of boron-deficiency-tolerant tomato by overexpressing an Arabidopsis thaliana borate transporter AtBOR1. Frontiers Plant Science, 125(5), 1-125. doi:10.3389/fpls.2014.00125 Zhao, Z., Shi, H., Wang, M., Cui, L., Zhao, H., & Zhao, Y. (2015). Effect of nitrogen and phosphorus deficiency on transcriptional regulation of genes encoding key enzymes of starch metabolism in duckweed (Landoltia punctata). Plant Physiology and Biochemistry, 86, 72-81. doi:10.1016 / j.plaphy.2014.11.007 Agronet. (2017). Estadísticas de área, producción y rendimiento nacional por cultivo “aguacate”. Evaluaciones agropecuarias municipales-EVA- Oficina de planeación y prospectiva- Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/default. aspx Barnard, R. O., Cillié, G. E., & Kotzé, J. M. (1991). Deficiency symptoms in avocados. South African Avocado Growers’ Association Yearbook, 14, 67-71. doi:10.1.1.604.5212 Cabezas, M., & Sánchez, C. A. (2008). Efecto de las deficiencias nutricionales en la distribución de la materia seca en plantas de vivero de curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(2), 197-204. Cardoso, P. F., Scarpassa, J. A., Pretto-Giordano, L. G., Otaguiri, E. S., Yamada-Ogatta, S. F., . . . Vilas-Bôas, G. T. (2016). Antibacterial activity of avocado extracts (Persea americana Mill.) against Streptococcus agalactiae. Phyton, International Journal of Experimental Botany, 85, 218-224. Castaño, C. A., Morales, C. S., & Obando, F. H. (2008). Evaluación de las deficiencias nutricionales en el cultivo de la mora (Rubus glaucus) en condiciones controladas para bosque montano bajo. Agronomía, 16(1), 75-88. cbi. (2018). Exporting fresh avocados to Europe. Centre for the Promotion of Imports from Developing Countries. Recuperado de https://www.cbi. eu/market-information/fresh-fruit-vegetables/avocados/europe/ Combatt, C., Pérez, J. D., & Jarma-Orozco, A. (2018). Efecto del nitrógeno y el potasio sobre el intercambio gaseoso y la distribución de biomasa en albahaca (Ocimum basillicum L). Revista Colombiana de Ciencias Hortícola, 12(1), 192-201. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7871 Dussán, S. L., Villegas, D. A., & Miranda, D. (2016). Efecto de la deficiencia de N, P, K, Mg, Ca y B sobre la acumulación y distribución de la masa seca en plantas de guayaba (Psidium guajava L.) var. ica Palmira ii en fase de vivero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(1), 40-52. doi:10.17584/rcch.2016v10i1.4277 Fageria, N. K., Baligar, V. C., & Jones, C. A. (2011). Growth and Mineral Nutrition of Field Crops, 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Taylor and Francis Group. Furr, J. R., Reece, P. C., & Gardner, F. E. (1946). Symptoms exhibited by avocado trees grown in outdoor sand cultures deprived of various mineral nutrients. Florida State Horticultural Society, 59, 138-145. Granja, F., & Covarrubias, J. I. (2018). Evaluation of acidifying nitrogen fertilizers in avocado trees with iron deficiency symptoms. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 18(1), 157-172. doi:10.4067/ S0718-95162018005000702 Guzmán-Rodríguez, J. J., López-Gómez, R., Salgado-Garciglia, R., Ochoa-Zarzosa, A., & López-Meza, J. E. (2016). The defensin from avocado (Persea americana var. drymifolia) induces apoptosis in the human breast cancer cell line MCF-7. Biomedicine and Pharmacotherapy, 82, 620-627. doi:10.1016 / j.biopha.2016.05.048 Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., . . . White, P. (2012). Functions of macronutrients. En P. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135-189). Elsevier Ltd. doi:10.1016/ B978-0-12-384905-2.00006-6 Hurtado-Fernández, E., Pacchiarotta, T., Gómez-Romero, M., Schoenmaker, B., Derks, R., . . . Fernández-Gutiérrez, A. (2011). Ultra high performance liquid chromatography-time of flight mass spectrometry for analysis of avocado fruit metabolites: Method evaluation and applicability to the analysis of ripening degrees. Journal of Chromatography, 1218(42), 7723-7738. doi:10.1016/j.chroma.2011.08.059 Kirkby, E. (2012). Introduction, definition and classification of nutrients. En P. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 3-6). Elsevier Ltd. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00001-7 Lahav, E., Bar, Y., & Kalmar, D. (2008). Effect of nitrogenous fertilization on the annual variations in nutrients in avocado leaves. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 21(13-16), 1353-1365. doi:10.1080/00103629009368309 Lee, E. A., Angka, L., Rota, S. G., Hanlon, T., Mitchell, A., Spagnuolo, P. A. (2015). Targeting mitochondria with avocatin B induces selective leukemia cell death. Cancer Research, 75(12), 2478-2488. doi:10.1158/0008- 5472.CAN-14-2676. Lovatt, C. (2013). Hass avocado nutrition research in California. Avocado Society Yearbook, 96, 74-105. Marschner, H. (1995). Functions of mineral nutrients: Macronutrients. En H. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 229-299), 2.ª edición. Cambridge, EE. UU.: Academic Press. Novoa, M. A., Miranda, D., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de las deficiencias y excesos de fósforo, potasio y boro en la fisiología y el crecimiento de plantas de aguacate (Persea americana, cv. Hass). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(2), 293-307. doi:10.17584/rcch.2018v12i2.8092 Procolombia. (2017). El mercado del aguacate en Estados Unidos. Recuperado de http://www.procolombia.co/memorias/acceso-y-oportunidades-para-la-exportacion-del-aguacate-hass-al-mercado-de-estados-unidos-0 Saavedra, R., Vásquez, H. D., & Mejía, E. (2012). Aguacate (Persea americana Mill.). En G. Fischer (Ed.), Manual para el Cultivo de Frutales en el Trópico (pp. 319-348). Bogotá, Colombia: Produmedios. Salazar, S., & Lazcano, I. (2001). Identifying fruit mineral removal differences in four avocado cultivars. Better Crops International, 15(1), 28-31. Salvo, J. E., & Lovatt, C. J. (2016). Nitrogen fertilization strategies for the ‘Hass’ avocado that increase total yield without reducing fruit size. HortTechnology, 26(4), 426-435. doi:10.21273/HORTTECH.26.4.426 Santana-Rojas, J. A., Cayón-Salinas, D. G., & Torres-Bazurto, J. (2015). Efecto de la deficiencia de potasio sobre parámetros foliares de palma de aceite. Palmas, 36(4), 31-37. Recuperado de https://publicaciones.fedepalma. org/index.php/palmas/article/download/11643/11635/ Smith, T. E. (2003). Boron nutrition of Hass avocado (Persea americana Mill.), tesis de doctorado. The University of Queensland, Brisbane, Australia. Uchida, R. (2000). Essential nutrients for plant growth: nutrient functions and deficiency symptoms. En J. A. Silva & R. Uchida (Eds.), Plant nutrient management in Hawaii’s soils (pp. 31-55). Hawai, EE. UU.: University of Hawaii at Manoa. Villa-Rodríguez, J. A., Molina-Corral, F. J., Ayala-Zavala, J. F., Olivas Guadalupe, I., & González-Aguilar, G. A. (2011). Effect of maturity stage on the content of fatty acids and antioxidant activity of ‘Hass’ avocado. Food Research Internationali 44(5), 1231-1237. doi:10.1016/j. foodres.2010.11.012 Wang, W., Bostic, T. R., & Gu, L. (2010). Antioxidant capacities, procyanidins and pigments in avocados of different strains and cultivars. Food Chemistry, 122(4), 1193-1198. doi:10.1016/j.foodchem.2010.03.114 Acosta-Quezada, P., Raigónb, M., Riofrío-Cuenca, T., García-Martínez, M., Plazas, M., Prohens, J. (2015). Diversity for chemical composition in a collection of different varietal types of tree tomato (Solanum betaceum Cav.), an Andean exotic fruit. Food Chemistry, 169(15), 327-335. doi:10.1016/j.foodchem.2014.07.152 Almeida, E., Paiva, P., de Carvalho, J., Frazão, J., & Oliveira, N. (2015). Descriptive analyses of deficiency symptoms in calla lily plants. Journal of Plant Nutrition, 38(5), 663-674. doi:10.1080/01904167.2014.934468 Azcón-Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de fisiología vegetal. Nueva York, EE. UU.: McGraw Hill. Barker, A. V., & Pilbeam, D. J. (2007). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Bernal, J., & Tamayo, P. (2003). Tecnología para el cultivo del tomate de árbol, Manual técnico N.º 3. Rionegro, Colombia: Corpoica. Bonnet, J., & Cárdenas, J. (2012). Tomate de árbol (Cyphomandra betacea Sendt). En G. Fischer (Ed.), Manual para el cultivo de frutales en el trópico (pp. 825-850). Bogotá, Colombia: Produmedios. Botía, T., & Medina, L. (2002). Determinación de síntomas por deficiencias Inducida de nutrientes en lulo (Solanum quitoense Lam y Uchuva Physalis peruviana L). Bogotá, Colombia: Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales (udca). Cao, M., Yu, H., & Yan, H. (2007). Difference in Tolerance to Potassium Deficiency between Two Maize Inbred Lines. Plant Production Science, 10(1), 42-46. doi:10.1626/pps.10.42 Casson, S., & Lindsey, K. (2003). Genes and signalling in root development. New Phytologist, 158(1), 11-38. doi:10.1046/j.1469-8137.2003.00705.x Cámara de Comercio de Bogotá (ccb). (2015). Manual: tomate de árbol. Programa de apoyo agrícola y agroindustrial vicepresidencia de fortalecimiento empresarial cámara de comercio de Bogotá. Bogotá: Cámara de Comercio de Bogotá. Recuperado de http://bibliotecadigital.ccb.org. co/handle/11520/14308 Departamento de administración Nacional (dane). (2015). Resultados encuesta nacional agropecuaria. Recuperado de https://www.dane.gov.co/files/ investigaciones/agropecuario/enda/ena/2015/boletin_ena_2015.pdf (23/07/18) Díaz, A., Cañón, G., & Mira, J. (2007). Metabolismo del calcio y su relación con la “mancha de madurez” del fruto de banano. Una revisión. Agronomía Colombiana, 25(2), 280-287. Enciso, F. (2007). Caracterización molecular de lulo (Solanum quitoense) y tomate de árbol (Solanum betaceum) del banco de germoplasma de Corpoica mediante el empleo de marcadores cos ii, tesis de grado. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia, Tunja, Colombia. Fischer, G. (2012). Manual para el cultivo de frutales en el trópico. Bogotá, Colombia: Produmedios. García-Álzate, J., Navia-Estrada, J., & Castillo-Franco, J. (2001). Respuesta del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav sedent) a la aplicación de fertilizantes situados a dos profundidades de suelo. Revista de Ciencias Agrícolas, 18(2), 99-106. doi:10.22267/ Garcia Giorgi, A., Mingozzi, M., Made, M., Speranza, G., & Cocucci, M. (2009). Effect of nitrogen starvation on the phenolic metabolism and antioxidant properties of yarrow (Achillea collina Becker ex Rchb.). Food Chemistry, 114(1), 204-211. doi:10.1016/j.foodchem.2008.09.039 Hoagland, D. R., & Arnon, D. I. (1950). The water-culture method for growing plants without soil. Circular California Agricultural Experiment Station, 347(2), 4-32. Recuperado de watercultureme3450hoag León, J., Viteri, P., & Negrete, S. (2004). Guía de bolsillo para determinación de deficiencias nutricionales en tomate de árbol, Boletín divulgativo n.° 139. Quito, Ecuador: Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (iniap). Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45. doi:10.17584/ rcch.2013v7i1.2033 Lobo, M. (2006). Recursos genéticos y mejoramiento de frutales andinos: una visión conceptual. Revista Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 7(2), 40-54. doi:10.21930/rcta.vol7_num2_art:68 Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (madr). (2005). Observatorio Agrocadenas Colombia. La cadena de los frutales de exportación en Colombia una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. Bogotá: madr. Marschner, P. (2012). Mineral nutrition of higher plants, 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Elsevier. Martínez, A. (2001). Estudio de la condición nutricional en cuatro provincias (Imbabura, Pichincha, Tungurahua y Azuay) y caracterización del sistema radicular del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.), tesis de grado. Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas, Quito, Ecuador. Martínez, F., & Garcés, G. (2010). Crecimiento y producción de lechuga (Lactuca sativa L.var.romana) bajo diferentes niveles de potasio. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 4(2), 185-198. doi:10.17584/ rcch.2010v4i2.1239 Martínez, F., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2008). Efecto de la deficiencia de N, P, K, Ca, Mg y B en componentes de producción y calidad de la uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombiana, 26(3), 389-398. Monge, E., Sanz, J., Blanco, A., & Montañés, L. (1994). El calcio nutriente para las plantas. Bitter pit en manzano. Anales de de la Estación Experimental de Aula Dei 21, 21(3), 189-201. Recuperado de http://exa.unne.edu. ar/biologia/fisiologia.vegetal/El_calcio_nutriente.pdf Osorio, G. (1992). Advances in the culture of the tree tomato (Solanum betaceum). Acta Horticulturae, 310, 199-205. Prohens, J., Rodríguez-Burruezo, A., & Nuez, F. (2004). Breeding Andean Solanaceae fruit crops for adaptation to subtropical climates. Acta Horticulturae, 662, 129-137. doi:10.17660/ActaHortic.2004.662.15 Ramírez-Soler, C., Magnitskiy, S., Melo, S., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de dosis de nitrógeno, fósforo y potasio sobre el crecimiento del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en etapa vegetativa. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 31-40. doi:10.17584/ rcch.2018v12i1.7469 Riascos, J., Yaluzan, L., & Unigarro, A. (2009). Síntomas de deficiencia de elementos mayores y secundarios, en tomate de árbol Cyphomandra betacea (Cav.) sendt, bajo condiciones controladas. Revista de Ciencias Agrícolas, 26(1), 186-204. Sepúlveda, Y., Díez, M., Osorio, N., Moreno, F., & León, J. (2014). Caracterización de los síntomas visuales de deficiencias nutricionales de plántulas del roble andino en invernadero. Agronomía Costarricense, 38(1), 161-173. Stewart, A., Chapman, W., Jenkins, G., Graham, I., Martin, T., & Crozier, A. (2001). The effect of nitrogen and phosphorus deficiency on flavonol accumulation in plant tissues. Plant, Cell and Environment, 24(11), 1189-1197. doi:10.1046/j.1365-3040.2001.00768.x Torres, A. (2012). Caracterización física, química y compuestos bioactivos de pulpa madura de tomate de árbol (Solanum betaceum) (Cav.) Sendtn. Archivos latinoamericanos de nutrición, 62(4), 318 -388. Vargas, M., Calderón, L., & Pérez, M. (2009). Effect of some nutrient deficiencies on lulo plants (Solanum quitoense var. quitoense) en stage pond. Revista Facultad de Ciencias Básicas, 5(1), 64-81. doi:10.18359/rfcb.2122 Ye-Chun, L., Yue-Gao, Y., Chang-Zhong, R., Lai-Chun, G., Chun-Long, W., Zhao-Hai, Z. (2013). Effects of Nitrogen Application on Chlorophyll Fluorescence Parameters and Leaf Gas Exchange in Naked Oat. Journal of Integrative Agriculture, 12(12), 2164-2171. doi:10.1016/ S2095-3119(13)60346-9 Xiao-Lin, J., Cui-Lan, M., Lin-Tong, Y., & Li-Song, C. (2016). Alterations of physiology and gene expression due to long-term magnesium-deficiency differ between leaves and roots of Citrus reticulata. Journal of plant physiology, 128(1), 103-115. doi:10.1016/j.jplph.2016.04.011 Yeh, D., Lin, L., & Wright, C. (2000). Effects of mineral nutrient deficiencies on leaf development, visual symptoms and shoot–root ratio of Spathiphyllum. Scientia Horticulturae, 86(3), 223-233. doi:10.1016/ S0304-4238(00)00152-7 Zambrano, E., & Naranjo, E. (2004). Encuestas a productores sobre procedimientos de propagación de tomate de árbol (Solanum betaceum Send), Informe Técnico Anual. Quito, Ecuador: Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (iniap). Botella, M. Á., Arévalo, L., Mestre, T. C., Rubio, F., García-Sánchez, F., Martínez, V. (2017). Potassium fertilization enhances pepper fruit quality. Journal of Plant Nutrition, 40(2), 145-155. doi:10.1080/01904167. 2016.1201501 Carvajal, L., Turbay, S., Álvarez, L., Rodríguez, A., Álvarez, M., Restrepo, S. (2014). Propiedades funcionales y nutricionales de seis especies de Passiflora (Passifloraceae) del departamento del Huila, Colombia. Caldasia, 36, 1-15 Checa-Coral, O., Rosero-Álvarez, E., & Eraso-Cultid, I. (2011). Colección y caracterización morfoagronómica del subgénero tacsonia en la zona andina del departamento de Nariño, colombia. Revista de la Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 64(1), 5893- 5907. Criado, M. V., Roberts, I. N., Veliz, C. G., Echeverria, M., Boem, F. H. G., & Caputo, C. (2018). Phloem transport of assimilates in relation to flowering time and senescence in barley grown with different availabilities of nitrogen and phosphorus. Archives of Agronomy and Soil Science, 64(4), 492-504. doi:10.1080/03650340.2017.1367093 Davarpanah, S., Tehranifar, A., Davarynejad, G., Abadía, J., & Khorasani, R. (2016). Effects of foliar applications of zinc and boron nano-fertilizers on pomegranate (Punica granatum cv. Ardestani) fruit yield and quality. Scientia Horticulturae, 210, 57-64. doi:10.1016/J. SCIENTA.2016.07.003 De Oliveira, A. B., De Almeida-Lopes, M. M., Moura, C. F. H., De Siqueira Oliveira, L., De Souza, K. O., . . . De Miranda, M. R. A. (2017). Effects of organic vs. conventional farming systems on quality and antioxidant metabolism of passion fruit during maturation. Scientia Horticulturae, 222, 84-89. doi:10.1016/J.SCIENTA.2017.05.021 Díaz, O., Moreno, L., Pinilla, R., Carrillo, W., Melgarejo, L. M., . . . Fernández-Trujillo, J. (2012). Postharvest behavior of purple passion fruit in Xtend® bags during low temperature storage. Acta Horticulturae, 934, 727-731. doi:10.17660/ActaHortic.2012.934.95 Engels, C., Kirkby, E., & White, P. (2012). Mineral Nutrition, Yield and Source–Sink Relationships. En P. Marschner (Ed.), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (Third Edition) (pp. 85-133). San Diego, EE. UU.: Academic Press. Flórez, L. M., Pérez, L. V., Melgarejo, L. M., & Hernández, S. (2012). Caracterización fisicoquímica, fisiológica y bioquímica del fruto de gulupa (Passiflora edulis Sims) como indicadores para el punto óptimo de cosecha. Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http:// bdigital.unal.edu.co/8547/9/05_Cap03.pdf Flórez, L. M., Pérez, L. V., & Melgarejo, L. M. (2012). Manual calendario fenológico y fisiología del crecimiento y desarrollo del fruto de gulupa (Passiflora edulis Sims) de tres localidades del departamento de Cundinamarca. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://bdigital.unal.edu.co/8547/7/04_Cap02.pdf Fujita, Y., Venterink, H. O., Bodegom, P. M., Van Douma, J. C., Heil, G. W., Hölzel, N., . . . Wassen, M. J. (2014). Low investment in sexual reproduction threatens plants adapted to phosphorus limitation. Nature, 505(7481), 82-86. doi:10.1038/nature12733 Guerrero-López, E., Potosí-Guampe, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (BPA). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 123-144). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/ Guilbaud, C. S. E., Dalchau, N., Purves, D. W., & Turnbull, L. A. (2015). Is “peak N” key to understanding the timing of flowering in annual plants? New Phytologist, 205(2), 918-927. doi:10.1111/nph.13095 Haag, H. P., Oliveira, G. D., De Borducchi, A. S., & Sarruge, J. R. (1973). Absorção de nutrientes por duas variedades de maracujá. Anais Da Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, 30(1), 267-279. doi:10.1590/ S0071-12761973000100020 Ipek, M., Aras, S., Arikan, Ş., Eşitken, A., Pirlak, L., Turan, M. (2017). Root plant growth promoting rhizobacteria inoculations increase ferric chelate reductase (fc-r) activity and Fe nutrition in pear under calcareous soil conditions. Scientia Horticulturae, 219, 144-151. doi:10.1016/J. SCIENTA.2017.02.043 Jagadish, S. V. K., Bahuguna, R. N., Djanaguiraman, M., Gamuyao, R., Prasad, P. V. V., & Craufurd, P. Q. (2016). Implications of High Temperature and Elevated CO2 on Flowering Time in Plants. Frontiers in Plant Science, 7, 913. doi:10.3389/fpls.2016.00913 Janzantti, N. S., & Monteiro, M. (2014). Changes in the aroma of organic passion fruit (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) during ripeness. LWT- Food Science and Technogoly, 59, 612-620. doi:10.1016/j. lwt.2014.07.044. Janzantti, N. S., Santos, G. C., & Monteiro, M. (2012). Shelf Life of Fresh and Pasteurized Organic Passion Fruit (Passiflora Edulis F. Flavicarpa Deg.) Pulp. Journal of Food Processing and Preservation, 38, 262–270. doi:10.1111/j.1745-4549.2012.00772.x Khan, A. S., Nasir, M., Malik, A. U., Basra, S. M. A., & Jaskani, M. J. (2015). Combined Application of Boron and Zinc Influence the Leaf Mineral Status, Growth, Productivity and Fruit Quality of ‘Kinnow’ Mandarin (Citrus nobilis Lour × Citrus deliciosa Tenora). Journal of Plant Nutrition, 38(6), 821-838. doi:10.1080/01904167.2015.1009100 Lindström, B. E. M., Frankow-Lindberg, B. E., Dahlin, A. S., Wivstad, M., & Watson, C. A. (2014). Micronutrient concentrations in relation to phenological development of red clover (Trifolium pratense L.), perennial ryegrass (Lolium perenne L.) and timothy (Phleum pratense L.). Grass and Forage Science, 69(2), 276-284. doi:10.1111/gfs.12068 Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45. Malavolta, E. (1994). Nutrición y fertilización del maracuyá. Quito: POTAFOS. Mendoça, M., Monnerat, P., Phino, L., & Carvalho, A. (2006). Deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro doce: qualidade dos frutos. Revista Brasileira de Fruticultura, 28(3), 492-496. doi:10.1590/ S0100-29452006000300033. Milla, R., Castro-Díez, P., Maestro-Martínez, M., & Montserrat-Martí, G. (2005). Relationships between phenology and the remobilization of nitrogen, phosphorus and potassium in branches of eight Mediterranean evergreens. New Phytologist, 168(1), 167-178. doi:10.1111/j.1469-8137.2005.01477.x Muschner, V. C., Zamberlan, P. M., Bonatto, S. L., & Freitas, L. B. (2012). Phylogeny, biogeography and divergence times in Passiflora (Passifloraceae). Genetics and Molecular Biology, 35(4 suppl.), 1036-1043. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23412994 Quiroga-Ramos, I. A., Fischer, G., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de la aplicación foliar de boro en el desarrollo fenológico y cuajado de fruto de Passiflora edulis f. edulis Sims “gulupa” (Passifloraceae) en condiciones de campo. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 20-30. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7457 Rodríguez-León, A. K., Rodríguez-Carlosama, A., Melgarejo, L. M., Miranda-Lasprilla, D., & Martínez-Wilches, O. (2015). Caracterización fenológica de la granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 53-90). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/ pubData/source/Granadilla.pdf Reig, G., Font, I., Forcada, C., Mestre, L., Jiménez, S., Betrán, J. A., Moreno, M. Á. (2018). Horticultural, leaf mineral and fruit quality traits of two ‘Greengage’ plum cultivars budded on plum based rootstocks in Mediterranean conditions. Scientia Horticulturae, 232, 84-91. doi:10.1016/J. SCIENTA.2017.12.052 Soil Survey Staff. (1999). Soil taxonomy: A basic system of soil classification for making and interpreting soil surveys. 2.ª edición. Natural Resources Conservation Service. U.S. Department of Agriculture Handbook, 436. Zegbe, J. A., Serna-Pérez, A., & Mena-Covarrubias, J. (2014). Mineral nutrition enhances yield and affects fruit quality of ‘Cristalina’ cactus pear. Scientia Horticulturae, 167, 63-70. doi:10.1016/J.SCIENTA.2013.12.023 Bernal, J., Díaz, C., Osorio, C., Tamayo, A., Osorio, W., & Kondo, T. (2014). Actualización Tecnológica y Buenas Prácticas Agrícolas (BPA) en el Cultivo de Aguacate. Medellín, Colombia: Corpoica. Dreher, M., & Davenport, A. (2013). Hass avocado composition and potential health effects. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 7, 738-50. doi:10.1080/10408398.2011.556759 Flitsanov, U., Mizrach, A., Liberzon, A., Akerman, M., Zauberman, G., Itsanov, U., & Zauberman, G. (2000). Measurement of avocado softening at various temperatures using ultrasound. Postharvest Biology and Technology, 20, 279.286. doi:10.1016/S0925-5214(00)00138-1 Hofman, J., Bower, J., & Woolf, A. (2013). Harvesting, packing, post-hasvest technology, transport and processing. En B. Schaffer, B. N. Wolstenholme & A. W. Whiley (Eds.), The avocado: Botany, production and uses (pp. 489-540). Wallingford, EE. UU.: cabi. Gamble, J., Harker, F. R., Jaeger, S. R., White, A., Bava, C., Woolf, A. (2010). The impact of dry matter, ripeness and internal defects on consumer perceptions of avocado quality and intentions to purchase. Postharvest Biology and Technology, 57(1), 35-43. doi:10.1016/j.postharvbio.2010.01.001 Henao, J., & Rodríguez, P. (2016). Evaluación del color durante la maduración del aguacate (Persea americana Mill. cv. Hass). Agronomía Colombiana, 5, 876-879. doi:10.15446/agron.colomb.v34n1supl.58092. Insituto Colombiano Agropecuario (ica). (2011). El cultivo de aguacate Hass. Bogotá, Colombia: ica. Kader, A. (1999). Fruit maturity, ripening, and quality relationships. Acta Horticulturae, 485, 203-208. doi:10.17660/ActaHortic.1996.434.30 Kassim, A., Workneh, T., & Bezuidenhout, C. (2013). A review on postharvest handling of avocado fruit. African Journal of Agricultural Research, 8(21), 2385–2402. doi:10.5897/AJAR12.1248 Lee, S., Young, R., Schiffman, P., & Coggins, C. (1983). Maturity studies of avocado fruit based on picking dates and dry weight. Journal of the American Society for Horticultural Science, 108(3), 390-394. Márquez, C., Yepes, D., & Sánchez, L. (2014). Changes physical-chemical of avocado (Persea americana Mill. cv. “Hass”) in postharvest for two municipalities of Antioquia. Temas Agrarios, 19(1), 32-47. doi:10.21897/ rta.v19i1.723 Massaro, C. (2010). Características generales de las paltas. Boletín de los Consumidores. Santiago de Chile: Ministerio de Agrigultura. Mateos, M., Del Río, M., Martínez, J., & Navarro, P. (1988). Efecto de las envolturas plásticas individuales, calentamientos intermitentes y pretratamientos con CO2 en la conservación de aguacate “Hass.” En Actas del III congreso de la Sociedad Española de Ciencias Hortícolas, p. 3. Ozdemir, F., & Topuz, A. (2004). Changes in dry matter, oil content and fatty acids composition of avocado during harvesting time and post-harvesting ripening period. Food Chemistry, 86, 79-83. doi:10.1016/j. foodchem.2003.08.012 Ríos, D., Corrales, D., Daza, G., & Aristizábal, A. (2005). Aguacate, variedades y patrones importantes para Colombia. Cali, Colombia: Feriva SA. Salcedo, R., Quiñones, Y., Melgarejo, L. M., Hernández, M. S., & Fernández-Trujillo, J. P. (2018). Variation in the fatty acid profile and quality of ‘Hass’ avocados preserved during cold storage. Acta Horticulturae, 1194, 1007-1010. doi:10.17660/ActaHortic.2018.1194.143 Téliz, D., & Mora, A. (2008). El aguacate y su manejo integrado, 2.ª edición. Ciudad de México, México: Mundiprensa. Villa, J., Molina, F., Ayala, J., Olivas, G., & González, G. (2011). Effect of maturity stage on the content of fatty acids and antioxidant activity of “Hass” avocado. Food Research International, 44(5), 1231-1237. doi:10.1016/j.foodres.2010.11.012 Wolstenholme, B., & Whiley, A. (1995). Prospects for increasing Hass fruit size: A Southern Hemisphere Perspective. Proceedings of Australian Avocado Growers Federation Inc., pp. 89-102. Amaya, R. J., Castro, M. J., Paredes, R. C., & Muñoz, A. D. (2009). “El cultivo de maracuyá” Passiflora edulis form. Flavicarpa. Trujillo, Perú: Gerencia Regional Agraria. Arias-Suárez, J. C., Ocampo-Pérez, J. A., & Urrea-Gómez, R. (2014). La polinización natural en el maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa Degener) como un servicio reproductivo y ecosistémico. Agronomía Mesoamericana, 25(1), 73-83. Recuperado de http://www.redalyc.org/ articulo.oa?id=43730495008 Benson, W. W., Brown, Jr. K. S., & Gilbert, L. E. (1976). Coevolution of plants and herbivores: passion flower butterflies. Evolution, 29(4), 659-680. doi:10.2307/2407076. Bernal, J., & Díaz, C. (2005). Tecnología para el cultivo de curuba. Manual técnico N.º 6. Río Negro, Colombia: Corpoica. Campos, D. F., & Sharkey, M. J. (2006). Familia braconidae. En F. Fernández & M. J. Sharkey (Eds.), Introducción a los hymenoptera de la región neotropical (pp. 45-68). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Entomología y Universidad Nacional de Colombia. Campos, T. J. (2001). La curuba: su cultivo. Bogotá: ica. Causton, C. E., Markin, G. P., & Friesen, R. (2000). Exploratory survey in Venezuela for biological control agents of Passiflora mollissima in Hawaii. Biological Control, 18, 110-119. doi:10.1006/bcon.2000.0811 Chacón, P., & Rojas M. (1984). Entomofauna asociada a Passiflora mollissima, P. edulis f. flavicarpa y P. quadrangularis en el Departamento del Valle del Cauca. Turrialba, 34, 297-311. Daza, L. E., & De La Cruz, J. (1983). Reconocimiento entomológico en el cultivo de la curuba (Passiflora mollissima (hbk) Bailey) en la cuenca del rio Amaime-Valle. Acta Agronómica, 33(1), 37-43. Recuperado de https://revistas.unal.edu.co/index.php/acta_agronomica/article/ download/48342/49573. Espejo, D., Hidalgo, J., Santamaría, M., & Fernández, J. (2014). Insectos asociados entre un cultivo de curuba y un fragmento de bosque alto andino de la Sabana de Bogotá. Revista Inventum, 6, 9-16. doi:10.26620/ uniminuto.inventum.9.16.2014.9-16 Fonque, S., & Melo, A. (2014). Determinación de plagas de dos cultivos agroecológicos de curuba (Passiflora tripartita var. mollissima) ubicados en el municipio de Madrid, vereda Puente Piedra y municipio de Subachoque, vereda La Pradera, tesis de pregrado. Corporación Universitaria Minuto De Dios, Bogotá, Colombia. García-Robledo, C. A., Constantino, L. M., Heredia, M. D., & Kattan, G. (2002). Guía de campo. Mariposas comunes de la cordillera central. Cali, Colombia: Wildlife Conservation Society Colombia. Instituto Colombiano Agropecuario (ica). (2006). Manejo integrado del cultivo de la curuba (Passiflora tripartita var. mollissima Holm Nielsen & Jorgensen). Boletín de Sanidad Vegetal 51. Bogota, Colombia: Fondo Nacional del Fomento Hortícola, ica, Asofrucol. Mason, W. R. M. (1981). The polyphyletic nature of Apanteles Foerster (Hymenoptera: Braconidae): A phylogeny and reclassification of the Microgastrinae. The Memoirs of the Entomological Society of Canada, 113(S115), 1-147. doi:10.4039/entm113115fv Massardo, D., Fornel, R., Kronforst, M., Lopes-Gonçalves, G., & Pires-Moreira, G. R. (2014). Diversification of the silverspot butterflies (Nymphalidae) in the Neotropics inferred from multi-locus dna sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 82, 156-165. doi:10.1016/j. ympev.2014.09.018. Palomo, L. A. T., Martínez, N. B., Johansen-Naime, R., Nápoles, J. R., León, O. S.; Arroyo, H. S., & Graziano, J. V. (2015). Population fluctuations of thrips (thysanoptera) and their relationship to the phenology of vegetable crops in the central region of Mexico. Florida Entomologist, 98(2), 430-438. doi:10.1653/024.098.0206. Pemberton, R. W. (1989). Insects attacking Passiflora mollissima and other Passiflora species; Field survey in the Andes. Proceedings. Hawaiian Entomological Society, 29, 71-84. Recuperado de http://hdl.handle. net/10125/11242 Rodríguez-León, A. K., Rodríguez-Carlosama, A., Melgarejo, L. M., Miranda-Lasprilla, D., & Martínez-Wilches, O. (2015). Caracterización fenológica de la granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. 53-90. En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/Granadilla.pdf Salinas, H. (2010). Guía técnica para el cultivo de “maracuyá amarillo”. Roldanillo, Valle del Cauca, Colombia: Instituto de Educación Técnica Profesional de Roldanillo. Triplehorn, C. A., & Johnson, N. F. (2005). Borror and DeLong’s Introduction to the Study of Insects. Cole, Blemont, EE. UU.: Thomson Brooks. Turner, J. R. G. (1981). Adaptation and evolution in Heliconius: A defense of neodarwinism. Annual Review of Ecology and Systematics, 12(1), 99–121. doi:10.1146/annurev.es.12.110181.000531. Williams, D. J. M. (1985). The new world genus Lathrapanteles n. gen.: Phylogeny and placement in the Microgastrinae (Hymenoptera: Braconidae: Cotesiini). Canadian Journal of Zoology, 63(8), 1962-1981. doi:10.1139/ z85-289. Almeida, K. A., Armesto, C., Monteiro, F. P., & De Souza, J. T. (2018). Diversity of Trichoderma species isolated from dead branches and sapwood of Theobroma cacao trees. Tropical Plant Pathology, 43(1), 90-94. doi:10.1007/s40858-017-0191-z Asociación Nacional de Comercio Exterior (Analdex). (2017). Informe de exportaciones de gulupa 2016, Dirección de Asuntos Económicos. Bogotá: Analdex. Andreolli, M., Lampis, S., Zapparoli, G., Angelini, E., & Vallini, G. (2016). Diversity of bacterial endophytes in 3 and 15 year-old grapevines of Vitis vinifera cv. Corvina and their potential for plant growth promotion and phytopathogen control. Microbiological research, 183, 42-52. doi:10.1016/j.micres.2015.11.009 Bae, H., Roberts, D. P., Lim, H. S., Strem, M. D., Park, S. C., . . . Bailey, B. A. (2011). Endophytic Trichoderma isolates from tropical environments delay disease onset and induce resistance against Phytophthora capsici in hot pepper using multiple mechanisms. Molecular Plant-Microbe Interactions, 24(3), 336-351. doi:10.1094/MPMI-09-10-0221. Bae, H., Sicher, R. C., Kim, M. S., Kim, S. H., Strem, M. D., . . . Bailey, B. A. (2009). The beneficial endophyte Trichoderma hamatum isolate DIS 219b promotes growth and delays the onset of the drought response in Theobroma cacao. Journal of Experimental Botany, 60(11), 3279-3295. doi:10.1093 / jxb / erp165 Barra, P. J., Inostroza, N. G., Acuña, J. J., Mora, M. L., Crowley, D. E., & Jorquera, M. A. (2016). Formulation of bacterial consortia from avocado (Persea americana Mill.) and their effect on growth, biomass and superoxide dismutase activity of wheat seedlings under salt stress. Applied soil ecology, 102, 80-91. doi:10.1016/j.apsoil.2016.02.014 Bourguignon, M., Nelson, J. A., Carlisle, E., Dinkins, R. D., Phillips, T. D, & Mcculley, R. L. (2015). Ecophysiological responses of tall fescue genotypes to fungal endophyte infection, elevated temperature, and precipitation. Crop Science, 55(6), 2895-2909. doi:10.2135/ cropsci2015.01.0020 Cueva-Yesquén, L. G., Goulart, M., Attili-Angelis, D., & Fantinatti-Garboggini, F. (2015). Analysis of endophytic bacterial diversity associated to p. incarnata. Memorias del 29º Congresso Brasileiro de Microbiologia, Paraná, Brazil, pp. 148-218 Ding, T., & Melcher, U. (2016). Influences of plant species, season and location on leaf endophytic bacterial communities of non-cultivated plants. PloS one, 11(3), e0150895. doi:10.1371/journal.pone.0150895 Droby, S., & Wisniewski, M. (2018). The fruit microbiome: A new frontier for postharvest biocontrol and postharvest biology. Postharvest Biology and Technology, 140, 107-112. doi:10.1016/j.postharvbio.2018.03.004 El-Fattah, A., Dababat, A., & Sikora, A. (2007). Induced resistance by the mutualistic endophyte, Fusarium oxysporum strain 162, toward Meloidogyne incognita on tomato. Biocontrol Science and Technology, 17(9), 969-975. doi:10.1080/09583150701582057 Fatima, N., Mukhtar, U., Ihsan, M., Jadoon, M., & Ahmed, S. (2016). Biological Evaluation of Endophytic Fungus Chaetomium sp. NF15 of Justicia adhatoda L.: A Potential Candidate for Drug Discovery. Jundishapur journal of microbiology, 9(6), 1-12, e29978. doi:10.5812/jjm.29978 Fierro-Cruz, J. E., Jiménez, P., & Coy-Barrera, E. (2017). Fungal endophytes isolated from Protium heptaphyllum and Trattinnickia rhoifolia as antagonists of Fusarium oxysporum. Revista Argentina de microbiologia, 49(3), 255-263. doi:10.1016/j.ram.2016.12.009 Franco, G., Cartagena, J. R., Correa, G. L., Rojano, B., & Piedrahita, A. M. (2014). Actividad antioxidante del jugo de Passiflora edulis Sims (Gulupa) durante la poscosecha. Revista Cubana de Plantas Medicinales, 19(3), 154-166. Gherbawy, Y. A., & Gashgari, R. M. (2014). Molecular characterization of fungal endophytes from Calotropis procera plants in Taif region (Saudi Arabia) and their antifungal activities. Plant Biosystems, 148(6), 1085- 1092. doi:10.1080/11263504.2013.819043 Gouda, S., Das, G., Sen, S. K., Shin, H. S., & Patra, J. K. (2016). Endophytes: a treasure house of bioactive compounds of medicinal importance. Frontiers in Microbiology, 7(1538), 1-8. doi:10.3389 / fmicb.2016.01538 Gutiérrez-Yansaguano, C. A., & Pomaquiza-Balvoa, L. F. (2018). Evaluación de 4 cepas de hongos endófitos rizosféricos de solanáceas en la germinación y desarrollo de plántulas de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.), tesis de grado. Universidad de Cuenca, Cuenca, Ecuador. Hakizimana, J. D., Gryzenhout, M., Coutinho, T. A., & van den Berg, N. (2011). Endophytic diversity in Persea americana (avocado) trees and their ability to display biocontrol activity against Phytophthora cinnamomi. Proceedings VII World Avocado Congress, Australian. pp. 1-10. Hardoim, P. R., Van Overbeek, L. S., Berg, G., Pirttilä, A. M., Compant, S., Sessitsch, A. (2015). The hidden world within plants: ecological and evolutionary considerations for defining functioning of microbial endophytes. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 79(3), 293- 320. doi:10.1128 / MMBR.00050-14. Hosseyni-Moghaddam, M. S., & Soltani, J. (2014). Bioactivity of endophytic Trichoderma fungal species from the plant family Cupressaceae. Annals of microbiology, 64(2), 753-761. doi:10.1007/s13213-013-0710-1 Jiménez, A. M., Sierra, C. A., Rodríguez-Pulido, F. J., González-Miret, M. L., . . . Osorio, C. (2011). Physicochemical characterisation of gulupa (Passiflora edulis Sims. fo edulis) fruit from Colombia during the ripening. Food Research International, 44(7), 1912-1918. doi:10.1016/j. foodres.2010.11.007 Jiménez, A., & Hortal, J. (2000). Las curvas de acumulación de especies y la necesidad de evaluar los inventarios biológicos. Revista Iberoamericana de Aracnología, 8, 151-161. Katoch, M., Bindu, K., Phull, S., & Verma, M. K. (2017). An endophytic Fusarium sp. isolated from Monarda citriodora produces the industrially important plant-like volatile organic compound hexanal. Microbiology, 163(6), 840-847. doi:10.1099 / mic.0,000479 Khondoker, M. G., Dastogeer, H. L., Krishnapillai, S. M., & Wylie, L. (2017). A simple and rapid in vitro test for largescale screening of fungal endophytes from droughtadapted Australian wild plants for conferring water deprivation tolerance and growth promotion in Nicotiana benthamiana seedlings. Archives of Microbiology, 199, 1357-1370. doi:10.1007/s00203-017-1411-0 Koide, R. T., Ricks, K. D., & Davis, E. R. (2017). Climate and dispersal influence the structure of leaf fungal endophyte communities of Quercus gambelii in the eastern Great Basin, USA. Fungal Ecology, 30, 19-28. doi:10.1016/j.funeco.2017.08.002 Kuldau, G. A., & Yates, I. E. (2000). Evidence for Fusarium Endophytes. En C. W. Bacon & J. F. White (Ed.), Microbial endophytes (pp. 85-120). Nueva York, EE. UU.: Marcel Dekker, Inc. Kumar, A., Patil, D., Rajamohanan, P. R., & Ahmad, A. (2013). Isolation, purification and characterization of vinblastine and vincristine from endophytic fungus Fusarium oxysporum isolated from Catharanthus roseus. PloS one, 8(9), e71805. doi:10.1371/journal.pone.0071805 Liu, X. H., Miao, F. P., Liang, X. R., & Ji, N. Y. (2014). Ergosteroid derivatives from an algicolous strain of Aspergillus ustus. Natural product research, 28(15), 1182-1186. doi:10.1080/14786419.2014.923996 Liu, Y., Li, Y., Yao, S., Wang, H., Cao, Y., . . . Cheng, C. (2015). Diversity and distribution of endophytic bacterial community in the Noni (Morinda citrifolia L.) plant. African Journal of Microbiology Research, 9(25), 1649-1657. doi:10.5897/AJMR2015.7443 Machungo, C., Losenge, T., Kahangi, E., Coyne, D., Dubois, T., & Kimenju, J. W. (2009). Effect of endophytic Fusarium oxysporum on growth of tissue-cultured banana plants. African Journal of Horticultural Science, 2, 160-167 Marshall, D., Tunali, B., & Nelson, L. R. (1999). Occurrence of Fungal Endophytes in Species of Wild. Crop Science, 39(5), 1507-1512. doi:10.2135 / cropsci1999.3951507x Medina, S., Collado-González, J., Ferreres, F., Londoño-Londoño, J., Jiménez-Cartagena, C., . . . Gil-Izquierdo, A. (2017). Quantification of phytoprostanes–bioactive oxylipins–and phenolic compounds of Passiflora edulis Sims shell using UHPLC-QqQ-MS/MS and LC-IT-DAD-MS/ MS. Food chemistry, 229, 1-8. doi:10.1016/j.foodchem.2017.02.049 Mishra, V. K., Passari, A. K., Chandra, P., Leo, V. V., . . . Singh, B. P. (2017). Determination and production of antimicrobial compounds by Aspergillus clavatonanicus strain MJ31, an endophytic fungus from Mirabilis jalapa. using UPLC and TD-GC-MS analysis. PloS one, 12(10), e0186234. doi:10.1371/journal.pone.0186234 Morsy, M. R., Oswald, J., He, J., Tang, Y., & Roossinck, M. J. (2010). Teasing apart a three-way symbiosis: transcriptome analyses of Curvularia protuberata in response to viral infection and heat stress. Biochemical and biophysical research communications, 401(2), 225-230. doi:10.1016/j. bbrc.2010.09.034 Osuna-Avila, P., & Barrow, J. (2009). In vitro system to determine the role of Aspergillus ustus on Daucus carota roots. Terra Latinoamericana, 27(4), 363-372. Paez-Redondo, A., & Hoyos-Carvajal, L. (2017). Metodologías para la inducción de infecciones procedentes de inóculo quiescente de la interacción Manguifera indica-Colletotrichum. Fitopatología Colombiana, 41(1), 55. Park, Y. H., Mishra, R. C., Yoon, S., Kim, H., . . . Bae, H. (2018). Endophytic Trichoderma citrinoviride isolated from mountain-cultivated ginseng (Panax ginseng) has great potential as a biocontrol agent against ginseng pathogens. Journal of Ginseng Research, (en prensa), e2093-4947: 1226-8453. doi:10.1016/j.jgr.2018.03.002 Parra-Huertas, R. A. (2012). Caracterización fisicoquímica y sensorial de una compota a partir de Gulupa (Passiflora edulis) Almidón de sagu (Canna edulis) y stevia. Vitae, 19(1), S219-S221. Photita, W., Lumyong, S., Lumyong, P., Mckenzie, E. H., & Hyde, K. D. (2004). Are some endophytes of Musa acuminata latent pathogens? Fungal Divers, 16, 131-140. Pinheiro, E. A., Carvalho, J. M., Dos Santos, D. C., Feitosa, A. O., Marinho, P. S., . . . Marinho, A. M. (2013). Chemical constituents of Aspergillus sp EJC08 isolated as endophyte from Bauhinia guianensis and their antimicrobial activity. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 85(4), 1247-125. doi:10.1590/0001-3765201395512 Priyadharsini, P., & Muthukumar, T. (2017). The root endophytic fungus Curvularia geniculata from Parthenium hysterophorus roots improves plant growth through phosphate solubilization and phytohormone production. Fungal Ecology, 27, 69-77. doi:10.1016/j.funeco.2017.02.007 Ramírez-Restrepo, S. (2016). Evaluación de extractos microbianos frente a pudriciones radiculares en aguacate generados por Phytophthora cinnamomi, tesis de doctorado, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia. Rathnayake, G. N., Kumar, N. S., Jayasinghe, L., Araya, H., & Fujimoto, Y. (2017). Chemical investigation of metabolites produced by an endophytic fungi Phialemonium curvatum from the leaves of Passiflora edulis. Natural product research, 32(20), 2483-2486. doi:10. 1080/14786419.2017.1416373 Ríos, M. (2010). Control Biológico de la Antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides Penz) en tomate de árbol (Solanum betaceum), en el ecotipo: Amarillo punton, mediante hongos endófitos antagonistas, tesis de grado. Universidad Politecnica Salesiana. Sede Cuenca, Cuenca, Ecuador. Robl, D., Da Silva Delabona, P., Mergel, C. M., Rojas, J. D., Dos Santos Costa, P., . . . Padilla, G. (2013). The capability of endophytic fungi for production of hemicellulases and related enzymes. BMC biotechnology, 13(94), 1-13. doi:10.1186/1472-6750-13-94 Rodríguez, R. J., White Jr, J. F., Arnold, A. E., & Redman, A. R. A. (2009). Fungal endophytes: diversity and functional roles. New Phytologist, 182(2), 314-330. doi:10.1111 / j.1469-8137.2009.02773.x Sagar, R., & Sharma, G. P. (2012). Measurement of alpha diversity using Simpson index (1/λ): the jeopardy. Environmental Skeptics and Critics, 1(1), 23-24. Sanches, M. S., Orlandelli, R. C., Polonio, J. C., Dos Santos, M. A., Sarragiotto, M. H., . . . Pamphile, J. A. (2017). Endophytes isolated from passion fruit plants: molecular identification, chemical characterization and antibacterial activity of secondary metabolites. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 7(4), 038-043. doi:10.7324/JAPS.2017.70405 Sanches, M. S., Orlandelli, R. C., Specian, V., Garcia, A., Dos Santos, M. C., Pamphile, J. A. (2013). Bioprospecção de Fungo Endofítico Isolado de Passiflora sp. com Potencial Biotecnológico. Biochemistry and Biotechnology Reports, 2(3), 130-133. doi:10.5433/2316-5200.2013v2n3espp130 Seetharaman, P., Gnanasekar, S., Chandrasekaran, R., Chandrakasan, G., Kadarkarai, M., & Sivaperumal, S. (2017). Isolation and characterization of anticancer flavone chrysin (5, 7-dihydroxy flavone)-producing endophytic fungi from Passiflora incarnata L. leaves. Annals of Microbiology, 67(4), 321-331. doi:10.1007/s13213-017-1263-5 Shahzad, R., Khan, A. L., Bilal, S., Asaf, S., & Lee, I. J. (2018). What Is There in Seeds? Vertically Transmitted Endophytic Resources for Sustainable Improvement in Plant Growth. Frontiers in Plant Science, 9(24), 1-10. doi:10.3389/fpls.2018.00024 Silva, L. J., Silva, R. L., Barbosa, E., & Cavalcante, U. M. (2006). Atividade enzimática de fungos endofíticos e efeito na promoção do crescimento de mudas de maracujazeiro-amarelo. Revista Caatinga, 19(2), 128-134. Silva, M. H. (2017). Fungos endofíticos associados à Passiflora incarnata e avaliação de seu potencial biotecnológico, Tesis de maestría. Universidad Estatal Paulista, São Paulo, Brasil. Simpson, E. H. (1949). Measurement of diversity. Nature, 163(4148), 688. doi:10.1038/163688a0 Stone, J. K., Polishook, J. D., & White, J. F. (2004). Endophytic fungi. En: Elsevier Academic Press (Ed.) Biodiversity of Fungi (pp. 241-270). Burlington, EE. UU.: ElSevier. doi:10.13140/RG.2.1.2497.0726 Suhandono, S., Kusumawardhani, M. K., & Aditiawati, P. (2016). Isolation and molecular identification of endophytic bacteria from Rambutan fruits (Nephelium lappaceum L.) cultivar Binjai. HAYATI Journal of Biosciences, 23(1), 39-44. doi:10.1016/j.hjb.2016.01.005 Ting, A., Sariah, M., Kadir, J., & Gurmit, S. (2009). Field evaluation of non-pathogenic Fusarium oxysporum isolates UPM31P1 and UPM39B3 for the control of Fusarium wilt in ‘Pisang Berangan’ (Musa, AAA). Acta horticulturae, 828, 139-144. doi:10.17660/ActaHortic.2009.828.13 Vélez, S., & Fresneda, B. (1992). Diversidad florística, en las comunidades robledal y rastrojo alto, en la cuenca de la quebrada piedras blancas, antioquia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 45(2), 3-25. Wani, Z. A., Ashraf, N., Mohiuddin, T., & Riyaz, S. (2015). Plant-endophyte symbiosis, an ecological perspective. Applied microbiology and biotechnology, 99(7), 2955-2965. doi:10.1007/s00253-015-6487-3 Zaher, A. M., Makboul, M. A., Moharram, A. M., Tekwani, B. L., & Calderón, A. I. (2015). A new enniatin antibiotic from the endophyte Fusarium tricinctum Corda. The Journal of antibiotics, 68(3), 197-200. doi:10.1038 / ja.2014.129 Zhou, W. N., White, J. F., Soares, M. A., Torres, M. S., Zhou, Z. P., & Li, H. Y. (2015). Diversity of fungi associated with plants growing in geothermal ecosystems and evaluation of their capacities to enhance thermotolerance of host plants. Journal of plant interactions, 10(1), 305-314. doi:10.1080/17429145.2015.1101495 Zhou, W., Starr, J. L., Krumm, J. L., & Sword, G. A. (2016). The fungal endophyte Chaetomium globosum negatively affects both above-and belowground herbivores in cotton. FEMS microbiology ecology, 92(10), 1-22. doi:10.1093/femsec/fiw158 Adikaram, N., Ewing, D., Karunaratne, A., & Wijeratne, E. (1992). Antifungal compounds from immature avocado fruit peel. Phytochemistry, 31, 93-96. doi:10.1016/031-9422(91)83013-B Agius, B., Setzer, M., Stokes, S., Walker, T., Haber, W., & Setzer, W. (2007). Composition and bioactivity of essential oils of Lauraceae from Monteverde, Costa Rica. International Journal Essential Oil Therapeutics, 1, 167-171. doi:10.4103/0974-8490.60585 Agronet. (2015). Red de información y comunicación del sector agropecuario. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/Paginas/default.aspx. Albarracín, L. T. (2017). Estudio fitoquímico bioguiado de los extractos de corteza de las especies Endlicheria oreocola y Endlicheria arenosa (Lauraceae), en busca de fuentes para el control del hongo fitopatógeno Colletotrichum tamarilloi, Tesis de Maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Andrade, P., De León, C., Molina, E., Espíndola, M., Alvarado, D., & López, A. (2015). Totipotencialidad en plántulas de aguacate en la resistencia a Phytophthora cinnamomi. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 6(2): 361-373. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo. oa?id=263138086011 Chanderbali, A. S., van der Werff, H., & Renner, S. (2001). Phylogeny and historical biogeography of Lauraceae: evidence from the chloroplast and nuclear genomes. Annals of the Missouri Botanical Garden, 88, 104-134. doi:10.2307/2666133 Chang, H. T., Cheng, Y. H., Wu, C. L., Chang, S. T., Chang, T. T., & Su, Y. C. (2009). Antifungal activity of essential oil and its constituents from Calocedrus macrolepis var. formosana. Florin Leaf Against Plant Pathogenic Fungi. Bioresource Technology, 99, 6266-6270. doi:10.1016/j. biortech.2007.12.005. Demo, M., Oliva, M. D., López, M. L., Zunino, M. P., & Zygadlo, J. A. (2005). Antimicrobial activity of essential oils obtained from aromatic plants of Argentina. Pharmaceutical Biology, 43, 129-134. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=85612108005 Fierro, D. (2011). Etiología y manejo de Phytophthora cinnamomi (Rands) en aguacate en Michoacán, tesis de maestría. Colegio de posgraduados, Montecillo, México. Granados-Echegoyen, C., Pérez-Pacheco, R., Alonso-Hernández, N., Vásquez-López, A., Lagunez-Rivera, L., & Rojas-Olivos, A. (2015). Chemical characterization and mosquito larvicidal activity of essential oil from leaves of Persea americana Mill (Lauraceae) against Culex quinquefasciatus (Say). Asian Pacific Journal of Tropical Disease, 5, 463- 467. doi:10.1016/S2222-1808(15)60816-7 Guzmán, J. D., Evangelopoulos, D., Gupta, A., Birchall, K., Mwaigwisya, S.; Bhakta, S. (2013). Antitubercular specific activity of ibuprofen and the other 2-arylpropanoic acids using the HT-SPOTi whole-cell phenotypic assay. British Medical Journal Open, 6, 1-13. doi:10.1136/ bmjopen-2013-002672 Homolka L. (2013). Methods of Cryopreservation in Fungi. En V. Gupta et al. (Eds.), Laboratory Protocols in Fungal Biology (pp. 9-17). Nueva York, EE. UU.: Springer. doi:10.1007/978-1-4614-2356-0_2 Jantan, I. B., Yalvema, M. F., Ahmad, N. W., & Jamal, J. A. (2005). Insecticidal activities of the leaf oils of eight Cinnamomum. species against Aedes aegypti and Aedes albopictus. Pharmaceutical Biology, 43, 526-532. doi:10.1080/13880200500220771 Jemâa, J. M. B., Tersim, N., Toudert, K. T., & Khouja, M. L. (2012). Insecticidal activities of essential oils from leaves of Laurus nobilis L. from Tunisia, Algeria and Morocco, and comparative chemical composition. Journal of Stored Products Research, 48, 97-104. doi:10.1016/j.jspr.2011.10.003 Mollataghi, A., Coudiere, E., Hadi, A. H. A., Mukhtar, M. R., Awang, K. . . . Ata, A. (2012). Anti-acetylcholinesterase, anti-α-glucosidase, anti-leishmanial and anti-fungal activities of chemical constituents of Beilschmiedia species. Fitoterapia, 83(2), 298-302. doi:10.1016/j.fitote.2011.11.009 Pabón, L. C., & Cuca, L. E. (2010). Aporphine alkaloids from Ocotea macrophylla (Lauraceae). Química Nova, 33, 875-879. doi:10.1590/ S0100-40422010000400021 Patiño, O., Prieto, J., & Moreno, P. (2012). Protocolos de actividad antifúngica sobre hongos fitopatógenos. Laboratorio de productos Naturales Vegetales. Bogotá, Colombia: Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia. Pandey, A., Mishra, A., & Mishra, A. (2012). Antifungal and antioxidative potential of oil and extracts derived from leaves of Indian spice plant Cinnamomum tamala. Cell Molecular Biology, 58, 142-147. doi:10.1170/ T933 Perfetti, J. J., & Cortés, S. (2013). La agricultura y el desarrollo de los territorios rurales. En: Políticas para el desarrollo de la agricultura en Colombia. Bogotá, Colombia: Sociedad de Agricultores de Colombia y Fedesarrollo. Prieto, J., Pabón, L., Patiño, O., Delgado, W., & Cuca, L. (2010). Constituyentes químicos, actividad insecticida y antifúngica de los aceites esenciales de las hojas de dos especies del género Ocotea (Lauraceae). Revista Colombiana de Química, 39, 199-209. Recuperado de http:// www.redalyc.org/articulo.oa?id=309026684004 Prieto, J. A., Patiño, O. J., Plazas, E. A., Pabón, L. C., Ávila, M. C., . . . Cuca, L. E. (2013). Natural products from plants as potential source agents for controlling Fusarium. En M. Nita (Ed.), Fungicides. Showcases of Integrated Plant Disease Management from Around the World (pp. 233- 78). Croacia: Intech. doi:10.5772/52338 Rashmi, S., & Rajkumar, H. (2011). Phytochemical Analysis and In Vitro Evaluation of Antifungal Activity of Five Invasive Plant Species against Macrophomina Phaseolina (Tassi) Goid. International Journal of Plant Research, 1, 11-15. doi:10.5923/j.plant.20110101.02 Reeksting, B., Taylor, N., & van den Berg, N. (2014). Flooding and Phytophthora cinnamomi: Effects on photosynthesis and chlorophyll fluorescence in shoots of non-grafted Persea americana (Mill.) rootstocks differing in tolerance to Phytophthora root rot. South African Journal of Botany, 95, 40-53. doi:10.1016/j.sajb.2014.08.004 Romero, L. (2014). Estudio de la asociación entre algunas propiedades físicas y químicas del suelo y el comportamiento de la pudrición radical del aguacate causada por Phytophthora cinnamomi, tesis de maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Recuperado de http://www. bdigital.unal.edu.co/45124/#sthash.KGD4C5Pj.dpuf Saleem, M., Bhatti, H. N., Jilani, M. I., & Hanif, M. A. (2015). Bioanalytical evaluation of Cinnamomum zeylanicum essential oil. Natural Product Research, 29(19), 1857-1859. doi:10.1080/14786419.2014.1002088 Sharanappa, R., & Vidyasagar, G. (2015). Preliminary screening of ethnomedicinal plants for antibacterial activity. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 6(9), 3928-3935. doi:10.13040/ IJPSR.0975-8232.6(9).3928-35 Terreaux, C., Maillard, M., Hostettmann, K., Lodi, G., & Hakizamungu, E. (1994). Analysis of the fungicidal constituents from the bark of Ocotea usambarensis Engl. (Lauraceae). Phytochemical Analysis, 5, 233-238. doi:10.1002/pca.2800050503 Zhang, W., Hu, J. F., Lv, W.W., Zhao, Q. C., & Shi, G. B. (2012). Antibacterial, antifungal and cytotoxic isoquinoline alkaloids from Litsea cubeba. Molecules, 17, 12950-12960. doi:10.3390/molecules171112950 Avila-Quezada, G. D., Téliz-Ortiz, D., González-Hernández, H., Vaquera-Huerta, H., Mojica-Guzmán, A. (2002). Dinámica espacio-temporal de la roña (Elsinoe perseae), el daño asociado a trips y antracnosis (Glomerella cingulata) del aguacate en Michoacán, México. Revista Mexicana de Fitopatología, 20, 77-87. Azam-Ali, S. N., & Squire, G. R. (2002). Principles of Tropical Agronomy. cabi. Baíza-Avelar, V. H. (2003). Guía técnica del cultivo del aguacate. San Salvador, El Salvador: Ministerio de Agricultura y Ganadería, Programa Nacional de Frutas de El Salvador, Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura. Barbosa, R. J. F., & Meza, C. L. S. (2009). Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium oxysporum Schlecht f. sp passiflorae en maracuyá (Passiflora edulis Sims var. flavicarpa) del municipio zona bananera colombiana. Revista Facultad Nacional de Agronomía, 62(1), 4743-4748. Barragán, C. E., & Guzmán, M. (2014). Molecular detection of Potato yellow vein virus in the natural whitefly vector Trialeurodes vaporariorum, Westwood. Revista de Protección Vegetal, 29(3), 168-176. Barrett, S., & Rathbone, D. (2018). Long-term phosphite application maintains species assemblages, richness and structure of plant communities invaded by Phytophthora cinnamomi. Austral Ecology, 43(4), 360-374. doi: 10.1111/aec.12574 Bernal, J. A. (2016). Estudios ecofisiológicos en aguacate cv. Hass en diferentes ambientes como alternativa productiva en Colombia, tesis doctoral. Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia. Bernal, J. A., & Díaz, C. A. (2014). Manejo del cultivo. En Bernal et al. (Eds.), Actualización Tecnológica y Buenas Prácticas Agrícolas (BPA) en el Cultivo de Aguacate. Medellín, Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica). Bernal, J. A., & Díaz, C. A. (2005). Tecnología para el cultivo de la Curuba. Manual Técnico 6. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. Rionegro, Antioquia (Colombia): Corpoica. Board, J. E., Kamal, M., & Harville, B. G. (1992). Temporal importance of greater light interception to increased yield in narrow-row soybean. Agronomy Journal, 84(4), 575-579. doi:10.2134/agronj1992.000219 62008400040006x Bosco, L., Giacometto, E., & Tavella, L. (2008). Colonization and Predation of Trips (Thysanoptera: Thripidae) by Orius spp. (Heteroptera: Anthocoridae) in Sweet Pepper Greenhouses in Northwest Italy. Biological Control, 44(3), 331-340. doi:10.1016/j.biocontrol.2007.10.027 Broadley, M., Brown, P., Cakmak, I., Ma, J. F., Rengel, Z., & Zhao, F. (2012). Beneficial elements. En P. Marschner (Ed), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 249-269). 3.ª edición. Nueva York, EE. UU.: Academic Press. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00008-X Cámara de Comercio de Bogotá. (2015). Manual de tomate de árbol. Programa de apoyo agrícola y agroindustrial, Vicepresidencia de fortalecimiento empresarial. Bogotá, Colombia: Cámara de Comercio de Bogotá. Cardillo, E., Acedo, A., & Abad, E. (2018). Topographic effects on dispersal patterns of Phytophthora cinnamomi at a stand scale in a Spanish heathland. Plos One, 13(3), 1-23. doi:10.1371/journal.pone.0195060 Cerón-González, C., Rodríguez-Leyva, E., Lomeli-Flores, J. R., Hernández-Olmos, C. E., Peña-Martínez, R., & Mora-Aguilera, G. (2012). Evaluación de insecticidas sintéticos sobre adultos de Metamasius spinolae (Coleoptera: Curculionidae) procedentes de Tlalnepantla, Morelos. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 3(2), 217-229. Clark, C. J., & Richardson, A. C. (2002). Biomass and mineral nutrient partitioning in a developing tamarillo (Cyphomandra betacea) crop. Scientia Horticulturae, 94(1), 41-51. Díaz, A. (2008). Buenas Prácticas Agrícolas: Guía para pequeños y medianos agroempresarios. Serie de Agronegocios, Cuadernos para la Exportación. San José, Costa Rica: Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (iica). Dong, L. Q., & Zhang, K. Q. (2006). Microbial control of plant-parasitic nematodes: a five-party interaction. Plant and Soil, 288(1/2), 31-45. doi:10.1007/s11104-006-9009-3 Eraso, B. (s. f.). El cultivo de Curuba. Pasto, Colombia: Instituto Colombiano Agropecuario (ica). Espejo, D., Hidalgo, J., Santamarñia, M., & Fernández, J. (2014). Insectos asociados entre un cultivo de curuba y un fragmento de bosque Alto Andino de la Sabana de Bogotá. Revista Inventum, 6, 9-16. Ferreira, E. M., Alfenas, A. C., Maffia, L. A., & Mafia, R. G. (2006). Efficiency of systemic fungicides for control of Cylindrocladium candelabrum in eucalypt. Fitopatologia Brasileira, 31(5), 468-475. Fischer, G., & Miranda, D. (2012). Manual para el Cultivo de Frutales en el Trópico. Bogotá, Colombia: Produmedios. Fischer, G., Casierra-Posada, F., & Piedrahíta, W. (2009). Ecofisiología de las especies pasifloráceas cultivadas en Colombia. En D. Miranda et al. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 45-67). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Forero, R., Ortiz, E., De León, W., Gómez, J. C., & Hoyos-Carvajal, L. (2015). Analysis of resistance to Fusarium oxysporum in Passiflora maliformis L. plants. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 9(2), 197-208. doi:10.17584/rcch.2015v9i2.4174 Gálvez, N. C. (2003). Conservación de biodiversidad: propuesta metodológica y estudio de caso para el cumplimiento de las Buenas Prácticas Agrícolas eurep y tesco. Tesis de Ingeniería Agronómica. Santiago, Chile: Universidad Católica de Chile. García-Morantes, J. (2016). Fenología y herbívoros plaga del cultivo de curuba en Pasca, Cundinamarca, tesis de maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Garza, U. E. (2001). El minador de la hoja Liriomyza spp y su manejo en la Planicie Huasteca. INIFAP. CIRNE. Campo Experimental Ebano. Folleto técnico (5). Guerrero-López, E., Potosí-Guampe, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo Agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 123-144). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/ Gutiérrez, N., Serra, J. A., & Dussan, S. (2012). Priorización de factores críticos para implantar buenas prácticas agrícolas en pequeños productores. Cuadernos de Desarrollo Rural, 9(69), 221-237. Haag, H. P., de Oliveira, G. D., Borducchi, A. S., & Sarruge, J. R. (1973). Absorção de nutrientes por duas variedades de maracujá. Anais da Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, 30, 267-279. Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., White, P. (2012). Functions of macronutrients. En P. Marschner (Ed.), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135-189). 3.ª Edition. Nueva York, EE. UU.: Academic Press. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00006-6 Hoyos, L., & Castillo, S. Y. (2015). Enfermedades en granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 153-176). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Instituto Colombiano Agropecuario (ica). (2017). Resolución 30021 de 2017, por medio del cual se establecen los requisitos para la certificación en buenas prácticas agrícolas en producción primaria de vegetales y otras especies para consumo humano. Bogotá, Colombia. Insecticide Resistance Action Committee (irac). (2011). Mechanisms of insecticide resistance in Western Flower Thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande) IRAC Sucking Pest WG, Poster Ver. 2. Recuperado de http://www. irac-online.org/documents/frankliniella-occidentalis-irm-poster/ Jaramillo, M. M., Gutiérrez, P. A., Cotes, J. M., González, E. P., & Marín, M. (2011). Detección de los virus AMV, CMV y PLRV en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en Antioquia, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía-Medellín, 64(1), 5831-5844. Jaramillo, M. M., Álvarez, J. A., & Montoya, M. M. (2013). Características de los virus asociados a la virosis del tomate de árbol (Solanum betaceum) en Colombia. Revista Lasallista de Investigación, 9(1), 115-127. Lemos, J. P. D., & Paiva, É. A. S. (2006). The effects of sooty mold on photosynthesis and mesophyll structure of mahogany (Swietenia macrophylla King., Meliaceae). Bragantiai 65(1), 11-17. Lizarazo, M. Á., Hernández, C. A., Fischer, G., & Gómez, M. I. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45. Llanos, C. A. H., Arango, D. L., & Giraldo, M. C. (2008). Actividad insecticida de extractos de semilla de Annona muricata (Anonaceae) sobre Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae). Revista Colombiana de Entomología, 34(1), 76-82. Malpartida-Zevallos, J., Narrea-Cango, M., & Dale-Larraburre, W. (2013). Patogenicidad de Beauveria bassiana (Bals) Vuill., sobre el gusano defoliador del maracuyá Dione juno (Cramer) (Lepidoptera: Nymphalidae) en laboratorio. Ecología Aplicada, 12(2), 75-81. Moya, J., & García, C. (2010). Determinación de la incidencia e identificación de nematodos fitoparásitos en un cultivo comercial de gulupa Passiflora edulis Sims, tesis de grado. Universidad de Cundinamarca, Fusagasugá, Colombia. Ocampo, J., Marín, C., Posada, C., López, N., & Solano, N. (2012). Establecimiento y zonas productoras del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims). En J. Ocampo & K. Wickhuys (Ed.), Tecnología para el Cultivo de Gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia (pp. 33 – 37). Bogotá, Colombia: Centro de Biosistemas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano, Centro Internacional de Agricultura Tropical (ciat), Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Organización Mundial de la Salud (oms). (2017). Inocuidad de los alimentos. Nota descriptiva. Recuperado de http://www.who.int/mediacentre/ factsheets/fs399/es/ Pardo-Locarno, L. C., & Montoya-Lerma, J. (2007). Ciclo de vida, importancia agrícola y manejo integrado de la chisa rizófaga Phyllophaga menetriesi Blanchard (Coleoptera: Melolonthidae), en Cauca y Quindío, Colombia. Acta Agronómica, 56(4), 195-202 Patil, J., Goel, S., & Yadav, S. (2017). Bio-management of cucumber wilt complex caused byroot-knot nematode, Meloidogyne incognita and Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum in polyhouse under protected cultivation. Journal of Pure and Applied Microbiology, 11(4), 1909-1917. doi:10.22207/JPAM.11.4.31 Peñaloza, M. C., & Díaz, G. (2004). Así se maneja y controla el picudo de los cítricos Compsus sp. Bogotá, Colombia: Instituto Colombiano Agropecuario. Pérez, L. V., & Melgarejo, L. M. (2012). Caracterización ecofisiológica de la gulupa (Passiflora edulis Sims) bajo tres condiciones ambientales en el departamento de Cundinamarca. En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 11-32). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Procolombia. (2015). Atrévase a exportar. El periódico de las oportunidades. Sexta edición. Recuperado de http://www.procolombia.co/sites/default/files/ periodico_oportunidades_sexta_edicion_-_marzo_2015.pdf Quiroga-Rojas, L. F., Ruiz-Quiñones, N., Muñoz-Motta, G., & Lozano-Tovar, M. D. (2012). Microorganismos rizosféricos, potenciales antagonistas de Fusarium sp. causante de la pudrición radicular de maracuyá (Passiflora edulis Sims). Acta Agronómica, 61(3), 265-272. Ramírez, G., & Morales, J. G. (2013). Primer informe de Cylindrocarpon destructans (Zinss) Scholten afectando plántulas de aguacate (Persea americana Mill.) en Colombia. Revista de Protección Vegetal, 28(1), 27-35. Reitz, S. R., Gao, Y., & Lei, Z. (2013). Insecticide use and the ecology of invasive Liriomyza leafminer management. En S. Trdan (Ed.), Insecticides-Development of Safer and More Effective Technologies (pp. 235-255). Croacia: Intech. doi:10.5772/53874 Ríos, P., González, M., Obregón, S., Carbonero, M. D., Leal, J. R., Sánchez, M. E. (2018). Brassica-based seedmeal biofumigation to control Phytophthora cinnamomi in the Spanish “dehesa” oak trees. Phytopathologia Mediterranea, 56(3), 392-399. doi:10.14601/Phytopathol_Mediterr-20771 Ríos, D., & Tafur, R. (2003). Variedades de aguacate para el trópico: caso Colombia. Actas del V Congreso Mundial del Aguacate, Málaga, España. pp. 143-147. Robledo-Buriticá, J., Ángel-García, C., & Castaño-Zapata, J. (2017). Microscopía electrónica de barrido ambiental del proceso de infección de Fusarium solani f. sp. passiflorae en plántulas de maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa). Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, 41(159), 213-220. doi:10.18257/raccefyn.471 Rodríguez, A., & Rodríguez, A. K. (2015). Buenas Prácticas Agrícolas (bpa) en el cultivo de granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 197-230). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/Granadilla.pdf Rodríguez-Henao, E., Caicedo-Arana, A., Enríquez-Valencia, A. L., & Muñoz-Flórez, J. E. (2017). Evaluation of tolerance to Phytophthora cinnamomi Rands in avocado (Persea americana Miller.) germplasm. Acta Agronómica, 66(1), 128-134. doi:10.15446/acag.v66n1.50705 Rondón, O., Sanabria de Albarracín, N., & Rondón, A. (2006). Respuesta in vitro a la acción de fungicidas para el control de antracnosis, Colletotrichum gloeosporioides Penz, en frutos de mango. Agronomía Tropical, 56(2), 219-235. Salamanca, J., Varón, E. H., & Santos, O. (2010). Cría y evaluación de la capacidad de depredación de Chrysoperla externa sobre Neohydatothrips signifer, trips plaga del cultivo de maracuyá. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 11(1), 31-40. Santos, L. O., Macamo, E. I. D., Haddad, F., & Silva, H. S. A. (2017). Activity of rhizobacteria antagonistic to Fusarium oxysporum f. sp. passiflorae in soils cultivated with monocotyledonous plants. Pesquisa Agropecuária Tropical, 47(4), 472-479. doi:10.1590/1983-40632017v4749752 Toapanta-Gallegos, D. E., Morillo-Velastegui, L. E., & Viera-Arroyo, W. F. (2017). Diagnóstico molecular de Phytophthora cinnamomi asociado a la pudrición radicular en zonas productoras de aguacate en Ecuador. Revista Corpoica: Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 18(2), 285-294. doi:10.21930/rcta.vol18_num2_art:628 Vallejo, F., Morón, M. A., & Orduz, S. (2007). Biología de Phyllophaga obsoleta Blanchard (Coleóptera: Melolonthidae), especie rizófaga del complejo “chisa” de Colombia. Boletín científico-Centro de Museos-Museo de Historia Natural, 11, 188-204. Villegas, N. P., Gaigl, A., & Vallejo, L. F. (2006). Reconocimiento de especies del complejo chisa (Coleoptera: Melolonthidae) asociadas al cultivo de cebolla y pasto kikuyo del departamento de Risaralda, Colombia. Agronomía, 14, 51-63. Zachrisson, B. (2005). El Control Biológico Aplicado (cba) de Insectos-Plagas, en la Agricultura: Utopía o Realidad. Ecos del Agro-8. doi:10.13140/ RG.2.1.1042.8246 Zapata, M. J., Sánchez, P. A. G., Torres, J. M. C., Jaimes, E. P. G., & Montoya, M. M. (2011). Detección de los virus AMV, CMV y PLRV en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en Antioquia, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía-Medellín, 64(1), 5831-5844. |
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Hass y tomate de árbol, para su tecnificación y manejo. Los resultados se presentan en dos grandes temáticas: la primera, relacionada con aspectos de la germinación, morfoagronomía, fenología y nutrición mineral en etapa vegetativa, así como de calidad en poscosecha del fruto; la segunda, relacionada con avances en nuevas alternativas para manejo del cultivo y buenas prácticas agrícolas. (Texto tomado de la fuente).Libro apoyado por la Universidad de Nariño y la Universidad de Cundinamarca. El libro incluye el ISBN de su versión impresa: 9789587839340.Primera edición280 páginasapplication/pdfspaUniversidad Nacional de ColombiaSede BogotáBogotá, Colombia580 - PlantasGuayabasAguacateTomate de árbolBotánicaFrutasFenología vegetalAgriculturaGulupa (Passiflora edulis), curuba (Passiflora tripartita), aguacate (Persea americana) y tomate de árbol (Solanum betaceum) : innovacionesLibroinfo:eu-repo/semantics/bookinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionhttp://purl.org/coar/resource_type/c_2f33Texthttp://purl.org/redcol/resource_type/LIBPrimera ediciónAgrosaviaAgrovocBewley, J. D., & Black, M. (2012). Physiology and Biochemistry of Seeds in Relation to Germination. Vol. 2: Viability, Dormancy, and Environmental Control. Berlín & Heidelberg: Springer Science & Business Media. doi:10.1007/978-3-642-68643-6Bradbeer, J. W. (2013). Seed dormancy and germination. Nueva York: Springer Science & Business Media. doi:10.1007/978-1-4684-7747-4Cárdenas, W., Zuluaga M. L., & Lobo, M. (2004). Latencia en semillas de lulo (Solanum quitoense Lam.) y tomate de árbol (Cyphomandra betacea (Solanum betaceum) Cav. Sendt) como aspecto básico para la conservación y el monitoreo de viabilidad de las colecciones. Plant Genetic Resources Newsletter, 139, 31-41. Recuperado de: http://www.bioversityinternational.org/fileadmin/PGR/article-issue_139-art_6-lang_es.htmlCarranza, C., Castellanos, G., Deaza, D., & Miranda, D. (2016). Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento sobre la germinación de semillas de badea (Passiflora quadrangularis L.) en condiciones de invernadero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 284-291. doi:10.17584/rcch.2016v10i2.5791Delanoy, M., van Damme, P., Scheldeman, X., & Beltrán, J. (2006). Germination of Passiflora mollissima (Kunth) LH Bailey, Passiflora tricuspis Mast. and Passiflora nov sp. seeds. Scientia Horticulturae, 110(2), 198-203. doi:10.1016/j.scienta.2006.07.007Ellis, R. H., Hong, T. D., & Roberts, E. H. (1985). Handbook of seed technology for genebanks. Volume I. Principles and methodology. International Board for Plant Genetic Resources. Handbooks for Genebanks.Finch-Savage, W. E., & Leubner-Metzger, G. (2006). Seed dormancy and the control of germination. New Phytologist, 171(3), 501-523. doi:10.1111/j.1469-8137.2006.01787.xFischer, G., Casierra-Posada, F., & Piedrahíta, W. (2009). Ecofisiología de las especies las especies pasifloráceas cultivadas en Colombia. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza et al. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 46-68). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Maciel, K. S., De Lima, P. A. M., Madalon, F. Z., Moraes, S. P. C. B., Cabanez, P. A., . . .Lopes, J. C. (2018). Characterization of Fruits in Contrasting Environments and Germination of Tamarillo Seeds at Different Temperatures. American Journal of Plant Sciences, 9, 23-33. doi:10.4236/ ajps.2018.91003Mendoza, C., Celis, A., & Pachón, M. (2014). Herbicide effects of Piper extracts on a seed bank in Fusagasugá (Colombia). Acta Horticulturae, 1030, 77-82. doi:10.17660/ActaHortic.2014.1030.9Miranda, D., Perea, M., & Magnitskiy, S. (2009). Propagación de especies pasifloráceas. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza et al. (Eds), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 69-96). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Passos, I. R. S.,Matos, G. V. C., Meletti, L. M. M., Scott, M. D. S., Bernacci, L. C., Vieira, M. A. R. (2004). Utilização do ácido giberélico para a quebra de dormência de sementes de Passiflora nitida Kunth germinadas in vitro. Revista Brasileira de Fruticultura, 26(2), 380-381.Pringle, G. J., & Murray, B. G. (1991). Reproductive biology of the tamarillo, Cyphomandra betacea (Cav.) Sendt. (Solanaceae), and some wild relatives. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 19(3), 263-273. doi:10.1080/01140671.1991.10421810Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y germinación de semillas. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología vegetal (pp. 13-24). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http:// ciencias.bogota.unal.edu.co/fileadmin/content/laboratorios/fisiologiavegetal/documentos/Libro_experimentos_en_fisiologia_y_bioquimica_vegetal__Reparado_.pdfTaiz, L., & Zeiger, E. (2006). Plant physiology. Sunderland: Sianuer Associates. Velásquez, J. D., Melgarejo, L. M., & Magnitskiy, S. (2012). Tratamientos pregerminativos en semillas de gulupa Passiflora edulis Sims. En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la Gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 81-90). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/Agustí, M. (2008). Crecimiento y maduración del fruto. En J. Azcón-Bieto y M. Talon (Eds.), Fundamentos de Fisiología Vegetal (pp. 523-28). Barcelona: McGraw-Hill/Interamericana. Baskin, C.,Baskin, J., & Li, X. (2000). Taxonomy, anatomy and evolution of physical dormancy in seeds. Plant Species Biology, 15(2), 139-152. doi:10.1046/j.1442-1984.2000.00034.xBeckles, D. M. (2012). Factors affecting the postharvest soluble solids and sugar content of tomato (Solanum lycopersicum L.) fruit. Postharvest Biology and Technology, 63(1), 129-140. doi:10.1016/j.postharvbio.2011.05.016De Souza, D., Fernandes dos Santos, D. C., dos Santos, D., Branco, F., & Bhering, M. C. (2006). Qualidade Fisiológica De Sementes De Tomate Em Função Da Idade E Doarmazenamento Pós-Colheita Dos Frutos. Revista Brasileira de Sementes, 28(3), 87-93. doi:10.1590/ S0101-31222006000300013De Souza, D., Fernandes, D. C., dos Santos Dias, L. A., & Finger, F. L. (2011). Changes in seed quality during fruit maduration of sweet pepper. Scientia Agricola, 68(5), 535-539. doi:10.1590/S0103-90162011000500004Fischer, G., & Martínez, O. (1999). Calidad y madurez de la uchuva (Physalis peruviana L.) en relación con la coloración del fruto. Agronomía Colombiana, 16(1-3), 35-39.International Seed Testing Association (ista). (1999). International rules for Seed Testing: Rules 1999. Seed Science and Technology, 27, 15-28.Lee, T. (1988). Patterns of fruit and seed production. En J. Lovett Doust & L. Lovett Doust (Eds.), Plant reproductive ecology: patterns and strategies (p. 344). Nueva York: Oxford University Press.Manera, F. J., Legua, P., Melgarejo, P., Brotons, J. M., Hernández, F., & Martínez, J. J. (2013). Determination of a colour index for fruit of pomegranate varietal group “Mollar de Elche”. Scientia Horticulturae, 150(4), 360-364. doi:10.1016/j.scienta.2012.11.036Marín, L. S., Arcila, P. J., Montoya, R. E., & Oliveros, T. C. (2003). Cambios físicos y químicos durante la maduración del fruto del café (Coffea arabica L. var. Colombia). Cenicafé, 54(3), 208-225.Molina, C., Tapias, R., & Gil, L. (1997). Influencia de la posición en la copa y el año de maduración en la germinación de las semillas de Pinus pinaster ait. De la sierra del Teleno (León, Noroeste de España). Investigación agraria, Sistemas y recursos forestales, 6(1), 53-65.Organización para la Cooperación y el Desarrollo Económico (ocde). (2005). Régimen de la ocde para la aplicación de normas internacionales relacionadas con frutas y hortalizas: traducción oficiosa de guía de pruebas objetivas para determinar la madurez de la fruta. Recuperado de http:// www.oecd.org/tad/code/32022743.pdfPérez, L. V., Rojas, Y. A., & Melgarejo, L. M. (2010). Agua. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología y bioquímica vegetal (pp. 63-77). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.Portela, S. (1999). Fisiología y manejo de postcosecha del tamarillo (Cyphomandra betacea). Avances en Horticultura, 4(1), 33-43.Schmidt, L. (2000). Guide to Handling of Tropical and Subtropical Forest Seed. Humlebaek: Danida Forest Seed Centre.Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y Germinación de Semillas. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología y bioquímica vegetal (pp. 13-24). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.Vadillo, G., Suni, M., & Cano, A. (2004). Viabilidad y germinación de semillas de Puya raimondii Harms (Bromeliaceae). Revista Peruana de Biología, 11(1), 71-78. doi:10.15381/rpb.v11i1.2435Welbaum, G. B. (1999). Cucurbit Seed Development and Production. HorTechnology, 9(3), 341-348.Aramendiz, H., Sudré, C., Espitia, M., Cardona, C., & Correa, A. (2009). Caracterización morfoagronómica de la berenjena (Solanum melongena L.). Revista udca Actualidad y Divulgación Científica, 12(2), 101-111. Recuperado de http://www.scielo.org.co/pdf/rudca/v12n2/v12n2a11.pdfBalaguera, H. E., Álvarez, J. G., & Cárdenas, J. (2010). Efecto de la estratificación fría y la cobertura plástica en semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.) para la obtención de plántulas. Revista udca Actualidad y Divulgación Científica, 13(2), 89-97.Bernal, N., Ocampo, J., & Hernández, J. (2014). Caracterización y análisis de la variabilidad genética de la granadilla (Passiflora ligularis Juss.) en Colombia empleando marcadores microsatélites. Revista Brasileira de Fruticultura, 36(3), 586-597. doi:10.1590/0100-2945-251/13.Cárdenas, J. (2011). Morfología y tratamientos pregerminativos de semillas de granadilla (Passiflora ligularis Juss), tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.Carranza, C., Castellanos, G., Deaza, D., & Miranda, D. (2016). Efecto de la aplicación de reguladores de crecimiento sobre la germinación de semillas de badea (Passiflora quadrangularis L.) en condiciones de invernadero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(2), 284-291. doi:10.17584/rcch.2016v10i2.5791.Castro, J. (2015). Caracterización morfo-agronómica de 119 introducciones pertenecientes a la colección colombiana de arroz (Oryza sativa L.), tesis de pregrado no publicada. Universidad de Tolima, Ibagué, Colombia.Cerqueira, C., Moreira, C., Figueira, A., Correa, R., & Oliveira, A. (2008). Detection of a resistance gradient to Passion fruit woodiness virus and selection of ‘yellow’ passion fruit plants under field conditions. Genetics and Molecular Research, 7(4), 1209-1216.Checa, O., Rosero, E., & Eraso, I. (2011). Colección y caracterización morfoagronómica del subgénero Tacsonia en la zona Andina del departamento de Nariño, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 64(1), 5893-5907. Recuperado de http://www.scielo.org.co/pdf/rfnam/ v64n1/a14v64n01.pdfCoppens, G., Ocampo, J., Restrepo, M., Garcin, F., Olaya, C., Farfán, L., . . . Caetano, C. (2002). Diversidad morfológica en Passiflora subgéneros Tacsonia y Manicata. En viii Congreso Latinoamericano de Botánica y 2° Congreso Colombiano de Botánica, Cartagena, Colombia.Crochemore, M., Molinari, B., & Colauto, N. (2003). Caracterização agromorfológica do maracujazeiro (Passiflora spp.). Revista Brasileira de Fruticultura, 25(1), 5-10. doi:10.1590/S0100-29452003000100004.Faleiro, F. G., Junqueira, N. T. V., Braga, M. F., Bellon, G., & Peixoto, J. R. (2006). Diversidade genética de variedades comerciais de maracujazeiro-azedo com base em marcadores moleculares. Iv Reunião Técnica de Pesquisas em Maracujazeiro, pp. 105-109.Faleiro, F. G., Vilela, N., Fideles, M., Olivera, E., Peixoto, J., & Costa. A. (2011). Germoplasma e melhoramento genético do Maracujazeiro – histórico e perspectivas. Brasilia, Brasil: Empraba Cerrados.Fonseca, N., Márquez, M., Moreno, J., Terán, W., & Schuler, I. (2009). Caracterización molecular de materiales cultivados de gulupa (Passiflora edulis f. edulis). Universitas Scientiarum, 14(2-3), 135-140. doi:10.11144/ javeriana.SC14-2-3.cmdmFranco, T. L., & Hidalgo, R. (2003). Análisis Estadístico de Datos de Caracterización Morfológica de Recursos Fitogenéticos. Boletín técnico n.º 8. Cali, Colombia: Instituto Internacional de Recursos Fitogenéticos (ipgri).Guisande, C., Vaamonde, A., & Barreiro, A. (2018). Package StatR, [software]. Versión 1.4, p. 351.Gutiérrez, M., Miranda, D., & Cárdenas, J. (2011). Efecto de tratamientos pregerminativos sobre la germinación de semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.), granadilla (Passiflora ligularis Juss.) y cholupa (Passiflora maliformis L.). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 5(2), 209-219. doi:10.17584/rcch.2011v5i2.1268Marín, M., Caetano, C., & Posada, C. (2009). Caracterización morfológica de especies del género Passiflora de Colombia. Acta Agronómica, 58(3), 117-125.Meier, U. (2001). Estadios de las plantas mono y dicotiledóneas: bbch Monografía. Edición 2. Limburherhof: Centro Federal de Investigaciones Biológicas para Agricultura y Silvicultura.Miranda, D., Perea, M., & Magnitskiy, S. (2009). Propagación de especies pasifloráceas. En D. Miranda et al. (Ed.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 69-96). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.Ocampo, J. (2007). Study of the genetic diversity of genus Passiflora L. (Passifloraceae) and its distribution in Colombia (tesis de doctorado no publicada). Ecole Nationale Supérieure Agronomique de Montpellier, Montpellier, Francia.Ocampo, J. (2013). Diversidad y distribución de las Passifloraceae en el departamento del Huila en Colombia. Acta Biológica Colombiana, 18(3), 511-516.Ocampo, J., Arias, J., & Urrea, R. (2015). Colecta e identificación de genotipos élite de granadilla (Passiflora ligularis Juss.) en Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 9(1), 9-23. doi:10.17584/ rcch.2015v9i1.3742.Ocampo, J., & Coppens, G. (2017). Morphological characterization in the genus Passiflora L.: an approach to understanding its complex variability. Plant Systematics and Evolution, 303(4), 531-558. doi:10.1007/ s00606-017-1390-2.Orantes, C., Pérez, M. Á., Rioja, T. M., & Garrido, E. R. (2013). Viabilidad y germinación de semillas de tres especies arbóreas nativas de la selva tropical. Polibotánica, 36, 117-127.Ortiz, D. (2010). Estudio de la variabilidad genética en materiales comerciales de gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia, Tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.Parra, M. (2011). Cadena Productiva de Pasifloras. Informe de gestión y desempeño resumen ejecutivo. Bogotá: Secretaría Técnica Nacional Cadena de Pasifloras, Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural.Pereira, T. S., & Andrade, A. C. S. (1994). Germinação de Psidium guajava L. e Passiflora edulis Sims – Efeito da temperatura, substrato e morfologia do desenvolvimento pós-seminal. Revista Brasileira de Sementes, 16(1), 58-62.Pires, M. V., Almeida, A. A. F. D., Figueiredo, A. L. D., Gomes, F. P., & Souza, M. M. (2012). Germination and seedling growth of ornamental species of Passiflora under artificial shade. Acta Scientiarum Agronomy, 34(1), 67-75. doi:10.4025/actasciagron.v34i1.11623.Posada, P. (2012). Estudios del comportamiento fisiológico de la semilla del maracuyá (P. edulis f. flavicarpa Degener), la granadilla (P. ligularis Juss.) y la gulupa (P. edulis f. edulis Sims) y zonificación agroecológica como estrategia para una agricultura Eco-eficiente y de conservación, tesis de maestría no publicada. Universidad Nacional de Colombia, Palmira, Colombia.Primot, S., Coppens, G., Rioux, V., Ocampo, J., & Garcin, F. (2005). Variación morfológica de tres especies de curubas (Passiflora tripartita var. mollissima, P. tarminiana y P. mixta) y sus híbridos en el Valle del Cauca (Colombia). Revista Brasileña de Fruticultura, 27(3), 467-471. doi:10.1590/S0100-29452005000300030Ramírez, G., Muñoz, M., Osorno, L., Osorio, N. W., & Morales, J. G. (2015). Germination and growth of purple passion fruit seedlings under pre-germination treatments and mycorrhizal inoculation. Pesquisa Agropecuaria Tropical, 45(3), 257-265. doi:10.1590/1983-40632015v4533273.Rodríguez, A. K., Rodríguez, A., Melgarejo, L. M., Miranda, D., Fischer, G., & Martínez, O. (2015). Caracterización fenológica de granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. En L. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 53-90). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial. net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/ Granadilla.pdfSchmidt, L. H. (2000). Guide to handling of tropical and subtropical forest seed. Danida Forest Seed Centre.Suárez, D., & Melgarejo, L. M. (2010). Biología y germinación de semillas. En L. Melgarejo (Ed.), Experimentos en fisiología vegetal (pp. 13-24). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://ciencias.bogota.unal.edu.co/fileadmin/content/laboratorios/ fisiologiavegetal/documentos/Libro_experimentos_en_fisiologia_y_bioquimica_vegetal__Reparado_.pdfTozzi, H., & Takaki, M. (2011). Histochemical analysis of seed reserve mobilization in Passiflora edulis Sims fo. flavicarpa O. Deg. (yellow passion fruit) during germination. Brazilian Journal of Biology, 71(3), 701-108. doi:10.1590/S1519-69842011000400015.Trentacoste, E., & Puertas, C. M. (2011). Preliminary characterization and morpho-agronomic evaluation of the olive germplasm collection of the Mendoza province (Argentina). Euphytica, 177(1), 99-109. doi:10.1007/s10681-010-0270-4.United Nations Environmental Programme (unep). (1992). Convention on Biological Diversity. Environmental Law and Institutions Programme Activity Centre. unep. Valencia, R., Lobo, M., & Ligarreto, G. (2010). Estado del arte de los recursos genéticos vegetales en Colombia: Sistema de Bancos de Germoplasma. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 11(1), 85-94. doi:10.21930/ rcta.vol11_num1_art:198.Velásquez, J. D., Melgarejo, L. M., & Magnitskiy, S. (2012). Tratamientos pregerminativos en semillas de gulupa, Passiflora edulis Sims. En L.Melgarejo & L. Pérez (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 81-89). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/Viana, A. P., Pereira, T. N. S., Pereira, M. G., Souza, M. D., Maldonado, J. F. M., & Amaral, A. (2003). Diversidade genética entre genótipos comerciais de maracujazeiro amarelo (Passiflora edulis f. flavicarpa) e entre espécies de passifloras nativas determinada por marcadores rapd. Revista Brasileira de fruticultura, 25(3), 489-493. doi:10.1590/ S0100-29452003000300032Alcaraz, M. L., Thorp, T. G., & Hormaza, J. I. (2013). Phenological growth stages of avocado (Persea amricana) according to the bbch scale. Scientia Horticulturae, 164, 434-439. doi:10.1016/j.scienta.2013.09.051Aubert, B., & Lossois, P. (1972). Considerations sur la phenologie des spéces frutieres arbustives. Fruits, 27(4), 269-286.Avilán, L., Soto, E., Pérez, M., Marín, C., Rodríguez, M., & Ruiz, J. (2005). Comportamiento fenológico híbridos guatemalteca por antillana de aguacate en la región centro-norte costera de Venezuela. Agronomía Tropical, 56(4), 535-551.Cossio, L. E., Hernández, L. M., López, J. G., Gómez, R., & Sánchez, R. (2011). Flujos de crecimiento vegetativo y reproductivo del aguacate ‘Hass-Méndez’ en Nayarit, México. Actas VII Congreso Mundial del Aguacate,Cairns, Australia. Cutter, E. G. (1978). Plant Anatomy: Cells and Tissues Part I. Londres, Reino Unido: Edward Arnold Publisher.Dörken, V. M., & Lepetit, B. (2018). Morpho-anatomical and physiological differences between sun and shade leaves in Abies alba Mill. (Pinaceae, Coniferales): a combined approach. Plant, Cell and Environment, 41(7), 1683-1697. doi:10.1111/pce.13213González, V. M., Barriento, A. F., Núñez, C. A., Ramírez, S. P., Hofshi, R., & Arpaia, M. L. (2011). Anatomía de la lámina de hoja en ocho cultivares de Aguacate. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 2(5), 733-744.Gregoriou, C., & Kumar, D. (1982). Some aspects of shoot and root growth of avocado under lowland tropical conditions. California Avocado Society Yearboock, 66, 129-144.Heisman, P. (1939). Notes on avocado anatomy. California Avocado Society Yearbook, 87-91.Johansen, D. A. (1940). Plant microtechnique. 1.ª edición. Nueva York, EE. UU.: McGraw-Hill.Kadman, A. (1965). Influence of transpiration and some other factors on the uptake, transport and accumulation of chlorine and sodium in avocado seedlings. Proceedings of the Symposium on the Use of Isotopes and Radiation in Soil Plant Nutrition Studies, Ankara, Turkey. International Atomic Energy Agency. Viena, Austria, 539-562.Kubínová, L. (1991). Stomata and mesophyll characteristics of barley leaf as affected by light: Stereological analysis. Journal of experimental Botany, 42(241), 995-1001. doi:10.1093/jxb/42.8.995Mandemaker. A. J. (2007). Review: Photosynthesis of avocado. New Zealand Avocado Growers’ Association Annual Research Report, 7, 1-10. Recuperado de http://www.avocadosource.com/Journals/NZAGA/NZAGA_2007/ NZAGA_2007_01.pdfMeier, U. (2001). Estadios de las plantas mono y dicotiledóneas: bbch Monografia. Edición 2. Limburherhof, Alemania: Centro Federal de Investigaciones Biológicas para Agricultura y Silvicultura.Mickelbart, M. V., Miller, R., Parry, S., Arpaia, M. L., & Heath, R. (2000). Review: Photosynthesis of avocado. California Avocado Society 2000 Yearbook, 84, 139-150.Morales, L., Barrientos, A. F., & Martínez, M. T. (1992). Obtención de poliploides en aguacate (Persea americana Mill.) mediante el uso de colchicina. Coatepec Harinas, México: Memoria de la Fundación Salvador Sánchez Colín-CICTAMEX.Pérez, L. V., Rojas, Y. A., & Melgarejo, L. M. (2010). Agua. En L. M. Melgarejo (Ed.), Experimentos en Fisiología Vegetal (pp. 63-77). Bogotá, Colombia: Departamento de Biología, Universidad Nacional de Colombia.Rocha, J., Salazar, S., Bárcenas, A. E., González, I. J., & Cossio, L. E. (2011). Fenología del aguacate ‘Hass’ en Michoacán. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 2(3), 303-316.Rodrigo, V. H. L., Stirling, C. M., Teklehaimanot, Z., & Nugawela, A. (1997). The effect of planting density on growth and development of component crops in rubber/banana intercropping systems. Field Crops Research, 52(1-2), 95-108. doi:10.1016/S0378-4290(96)01069-6Rodrigo, V. H. L., Stirling, C. M., Teklehaimanot, Z., & Nugawela, A. (2001). Intercropping with banana to improve fractional interception and radiation-use efficiency of immature rubber plantations. Field Crops Research, 69(3), 237-249. doi:10.1016/S0378-4290(00)00147-7Rojas, E., & Bautista, D. (1989). Estudio fenológico de seis variedades de aguacate durante dos ciclos anuales en el Valle de Temerla. IV Congreso Nacional de Fruticultura, Maracaibo, Venezuela, p. 7.Romero, M. A. (2012). Comportamiento fisiológico del aguacate (Persea americana Mill.) Variedad Lorena en la zona de Mariquita, Tolima, tesis de doctorado. Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.Saavedra, G., Vásquez, H. D., & Mejía, E. (2012). Aguacate (Persea americana Mill.) En Gerard Fischer (Ed.), Manual para el cultivo de frutales en el trópico (pp. 319-348). Bogotá, Colombia: Produmedios.Salazar, S., Lord, E., & Lovatt, C. (1999). Inflorescence development of the ‘Hass’ avocado: Commitment to flowering. Journal American Society Horticultural Science, 124(5), 478- 482. doi:10.21273/JASHS.124.5.478Sousa, E. A., dos Santos, I. R., Aguiar, V. F., & Senna, C. J. (2003). The Influence of Light Intensity on Anatomical Structure and Pigment Contents of Tradescantia pallida (Rose) Hunt. cv. purpurea Boom (Commelinaceae) Leaves. Brazilian Archives of Biology and Technology, 46(4), 617-624. doi:10.1590/S1516-89132003000400017Thorp, T. G., Aspinall, D., & Sedgley, M. (1994). Preformation of node number in vegetative and reproductive proleptic shoot modules of Persea (Lauraceae). Annals of Botany, 73(1), 13-22.Thorp, T. G., & Sedgley, M. (1993). Architectural analysis of tree form in a range of avocado cultivars. Scientia Horticulturae, 53(1-2), 85-98. doi:10.1016/0304-4238(93)90140-LVogelmann, T. C., & Martin, G. (1993). The functional significance of palisade tissue: penetration of directional versus diffuse light. Plant, Cell and Environment, 16(1), 65-72. doi:10.1111/j.1365-3040.1993.tb00845.xWhiley, A. W., & Schaffer, B. (1994). Avocado. En B. Schaffer & P Andersen (Eds.), CRC Handbook of Environmental Physiology of Fruit Crops. Vol. i. Subtropical and Tropical Crops (pp. 3-35). Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press Inc.Wolstenholme, B. N., & Whiley, A. W. (1999). Ecophysiology of the avocado (persea americana mill.) tree as a basis for pre-harvest management. Revista Chapingo Serie Horticultura, 5, 77-88.Agronet. (2018). Estadísticas. Agrícola. Área, producción, rendimiento y participación. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/ default.aspxAlmendros-García, P., Rico-Selas, M. I., López-Valdivia, L. M., & Álvarez-Álvarez, J. M. (2008). Deficiencia de zinc en los cultivos y correctores de carencia del micronutriente. Vida Rural, 19(280), 12-16. Recuperado de http://oa.upm.es/2472/2/INVE_MEM_2008_56367.pdfÁngel-Coca, C., Nates, G., Ospina, R., & Melo, C. (2011). Biología floral y reproductiva de la gulupa Passiflora edulis Sims f. edulis. Caldasia, 33(2), 433-451. doi:10.15446/caldasiaAvilán, L. (1974). Efectos de la deficiencia de macronutrientes sobre el crecimiento y la composición química de la parcha granadina (Passiflora quadrangularis L.) cultivada en soluciones nutritivas. Agronomía Tropical, 24(2), 133-140.Barker, A., & Pilbeam, D. (2015). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press.Cabezas, M., & Sánchez, A. (2008). Effect of nutrient elements deficiencies on the dry matter partitioning in nursery plants of curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(2), 197-204.Castaño, C., Morales, C., & Obando, F. (2008). Evaluación de las deficiencias nutricionales en el cultivo de la mora (Rubus glaucus) en condiciones controladas para bosque montano bajo. Agronomía, 16(1), 75-88.Clark, R. B., Flores, C. I., & Gourley, L. M. (1987). Mineral element concentrations in acid soil tolerant and susceptible sorghum genotypes. Communications in soil science and plant analysis, 19(7-12), 1003-1017. doi:10.1080/00103628809367990.Conde, N., Jiménez, A., Schieberle, P., Sinuco, D., & Osorio, C. (2013). Key aroma volatile compounds of gulupa (Passiflora edulis Sims to edulis) fruit. European Food Research and Technology, 236(6), 1085-1091. doi:10.1007/s00217-013-1979-9Díaz, O.; Moreno, L., Pinilla, R.; Carrillo, W.; Melgarejo, L. M.; . . . Fernández-Trujillo, J. (2012). Postharvest behavior of purple passion fruit in Xtend® bags during low temperature storage. Acta Horticulturae, 934, 727-731. doi:10.17660/ActaHortic.2012.934.95Fageria, N. (2009). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Fageria, N. (2016). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC press.Fischer, G., Melgarejo, L. M., & Cutler, J. (2018). Pre-harvest factors that influence the quality of passion fruit: A review. Agronomía Colombiana, 36(3), 217-226. doi:10.15446/agron.colomb.v36n3.71751.Galindo, J., & Gómez, S. (2010). Gulupa (Passiflora edulis Sims) producción y manejo poscosecha. Colombia. Corredor Tecnológico Agroindustrial. Bogotá, Colombia: Cámara de Comercio de Bogotá.García-Cruz, E., Sandoval-Villa, M., Carrillo-Salazar, J. A., Valdéz-Carrasco, J. M., & González-Fierro, P. H. (2015). Identificación con redes neuronales probabilísticas de las deficiencias de hierro y manganeso, usando imágenes digitales de hojas de frijol (Phaseolus vulgaris L.). Agrociencia, 49(4), 395-409.Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 123-144). Bogotá, Colombia: Produmedios. Recuperado de http://www.bdigital.unal. edu.co/8547/Gutiérrez, M. V. (1997). Nutrición mineral de las plantas: avances y aplicaciones. Agronomía Costarricense, 21(1), 127-137.Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., White, P. (2012). Functions of Macronutrients. En P. Marschner (2012). Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135- 189). Elsevier Ltd:. doi:10.1016/ B978-0-12-384905-2.00006-6Jiménez, A., Sierra, C., Rodríguez, F., González, M., Heredia, F., & Osorio, C. (2011). Physicochemical characterization of gulupa (Passiflora edulis Sims f edulis) fruits from Colombian during the ripening. Food Research International, 44(7), 1912-1918. doi:10.1016/j.foodres.2010.11.007Johnson, C. M., Stout, P. R., Broyer, T. C., & Carlton, A. B. (1957). Comparative chorine requirements of different plant species. Plant and Soil, 8(4), 337-357. doi:10.1007/BF01666323Li, W., & Lan, P. (2017). The understanding of the plant iron deficiency responses in Strategy I plants and the role of ethylene in this process by omic approaches. Frontiers in Plant Science, 8(40), 1-15. doi:10.3389/ fpls.2017.00040Marschner, P. (2011). Marschner’s mineral nutrition of higher plants. 3.ª Edition. San Diego, EE. UU.: Academic Press.Martínez, F. E., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2009). Síntomas de deficiencia de macronutrientes y boro en plantas de uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombiana, 27(2), 169-178.Mendonça-Freitas, M. S., Monnerat, P. H., Pinho, L. G., & Cordeiro de Carvalho, A. J. (2006). Deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro doce: qualidade dos frutos. Revista Brasileira de Fruticultura, 28(3), 492-496. doi:10.1590/S0100-29452006000300033Moreno, D., Quiroga, I., Balaguera, H., & Magnitskiy, S. (2016). El estrés por boro afecta la fotosíntesis y el metabolismo de pigmentos en plantas. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(1), 137-148. doi:10.17584/rcch.2015v9i2.4189.Osman, T. (2013). Plant nutrients and soil fertility management. En T. Osman (Ed.), Soils pp. 129-159. Dordrecht, Netherlands: Springer. doi:10.1007/978-94-007-5663-2_10 Rao, I. M. (2009). Essential plant nutrients and their functions. París: Francia: Centro Internacional de Agricultura Tropical (ciat).Taiz, L., & Zeiger, E. (2006). Fisiología vegetal, 3.ª edición en castellano. Castellón de la Plana, España: Universitat Jaume I.Uchida, R. (2000). Essential nutrients for plant growth: nutrient functions and deficiency symptoms. En J. A. Silva & R. Uchida (Eds.), Plant nutrient management in Hawaii’s soils (pp. 31-55). Hawai, EE. UU.: University of Hawaii at Manoa.Yockteng, R., D’Eeckengbrugge, G. C., & Souza-Chies, T. T. (2011). Passiflora. En C. Kole (Ed.), Wild crop relatives: Genomic and breeding resources (pp. 129-171). Berlín, Alemania: Springer.Arbona, V., & Gómez-Cardenas, A. (2012). Antioxidant System in Citrus Under Nutrient Stress Conditions: Latest Development. En A. Kumar (Ed.), Advances in Citrus Nutrition (pp. 13-24), 1.ª edición. Springer. doi:10.1007 / 978-94-007-4171-3_2Barker, A. V., & Pilbeam, D. J. (2007). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press. Cabezas, M., & Sánchez, A. (2008). Efecto de las deficiencias nutricionales en la distribución de la materia seca en plantas de vivero de curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(1), 197-204.Da Silva, R., Da Silva, J. G., De Souza, M. A., Monteiro, M., & Cavalcante, I. (2015). Nutrient Concentrations and Leaf Chlorophyll of Yellow Passion Fruit Seedlings as a Function of Substrate Composition and Boron. Journal of Plant Nutrition, 38(13), 1984-1994. doi:10.1080/ 01904167.2015.1061545Espinal-Ruiz, M., Restrepo-Sánchez, L. P., Narváez-Cuenca, C. E., & Mcclements, D. (2016). Impact of pectin properties on lipid digestion under simulated gastrointestinal conditions: Comparison of citrus and banana passion fruit (Passiflora tripartita var. mollissima) pectins. Food Hydrocolloids, 52(2), 329-342. doi:10.1016/j.foodhyd.2015.05.042Fageria, N. K. (2009). The use of nutrients in crop plants. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press.Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de gulupa (Passiflora edulis Sims) (p. 123-144). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.Hoagland, D. R., & Arnon, D. I. (1950). The water culture method for growing plants without soils. Berkeley: California Agricultural Experimental Station.Hoyos, V., Rodríguez, M., Cárdenas-Hernández, J. F., & Balaguera-López, H. E. (2009). Análisis del crecimiento de espinaca (Spinacia oleracea L.) bajo el efecto de diferentes fuentes y dosis de nitrógeno. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 3(2), 175-187. doi:10.17584/ rcch.2009v3i2.1211Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013a). Response of the banana passion fruit (Passiflora tripartita var. mollissima) to different levels of nitrogen, potassium and magnesium. Agronomía Colombiana, 31(2), 184-194.Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013b). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45.Malavolta, E. (1994). Nutrición y fertilización del maracuyá. Quito: Potafos. Marschner, H. (2012). Mineral Nutrition of Higher Plants. 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Academic Press.Martínez, F., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2009). Sintomas de deficiencia de macronutrients y boro en plantas de uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombianai 27(2), 169-178.McCarthy, M. C., & Enquist, B. J. (2007). Consistency between an allometric approach and optimal partitioning theory in global patterns of plant biomass allocation. Functional Ecology, 21(4), 713-720. doi:10.1111/j.1365-2435.2007.01276.xMendoça-Freitas, M., Monnerat, P., Cordeiro de Carvalho, A., & Da Silva-Vasconcellos, M. (2011). Sintomas visuais de deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro-doce. Revista Brasileira de Fruticultura, 33(4), 1329-1341. doi:10.1590/S0100-29452011000400034Mengel, K., Kirkby, E. A., Kosegarten, H., & Appel, T. (2001). Plant Nutrient. En K. Mengel & E. A. Krikby (Ed.), Principles of Plant Nutrition (pp. 1-13), 5.ª edición. Springer. doi:10.1007/978-94-010-1009-2Miranda, D., Moreno, N., & Carranza, C. (2015). Un modelo para el manejo de la nutrición en el cultivo de la granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss.): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 119-152). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia, Corporación Centro de Desarrollo Tecnológico de las Passifloras de Colombia (Cepass).Quiroga-Ramos, I. A., Fischer, G., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de la aplicación foliar de boro en el desarrollo fenológico y cuajado de fruto de Passiflora edulis f. edulis sims “gulupa” (passifloraceae) en condiciones de campo”. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 20-30. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7457.Ruuhola, T., Leppänen, T., Julkunen, T., Rantala, M., & Lehto, T. (2011). Boron Fertilization enhances the induced defense of silver birch. Journal of Chemical Ecology, 37(5), 460-471. doi:10.1007/s10886-011-9948-xTaiz, L., & Zeiger, E. (2010). Photosynthesis, The light reactions. En L. Taiz & E. Zeiger (Ed.), Plant physiology (pp. 111-143), 5.ª edición. Sunderlan, EE. UU.: Sinauer Associates Inc. Uraguchi, S., Kato, Y., Hanaoka, H., Miwa, K., & Fujiwara, T. (2014). Generation of boron-deficiency-tolerant tomato by overexpressing an Arabidopsis thaliana borate transporter AtBOR1. Frontiers Plant Science, 125(5), 1-125. doi:10.3389/fpls.2014.00125Zhao, Z., Shi, H., Wang, M., Cui, L., Zhao, H., & Zhao, Y. (2015). Effect of nitrogen and phosphorus deficiency on transcriptional regulation of genes encoding key enzymes of starch metabolism in duckweed (Landoltia punctata). Plant Physiology and Biochemistry, 86, 72-81. doi:10.1016 / j.plaphy.2014.11.007Agronet. (2017). Estadísticas de área, producción y rendimiento nacional por cultivo “aguacate”. Evaluaciones agropecuarias municipales-EVA- Oficina de planeación y prospectiva- Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/default. aspxBarnard, R. O., Cillié, G. E., & Kotzé, J. M. (1991). Deficiency symptoms in avocados. South African Avocado Growers’ Association Yearbook, 14, 67-71. doi:10.1.1.604.5212Cabezas, M., & Sánchez, C. A. (2008). Efecto de las deficiencias nutricionales en la distribución de la materia seca en plantas de vivero de curuba (Passiflora mollissima Bailey). Agronomía Colombiana, 26(2), 197-204.Cardoso, P. F., Scarpassa, J. A., Pretto-Giordano, L. G., Otaguiri, E. S., Yamada-Ogatta, S. F., . . . Vilas-Bôas, G. T. (2016). Antibacterial activity of avocado extracts (Persea americana Mill.) against Streptococcus agalactiae. Phyton, International Journal of Experimental Botany, 85, 218-224.Castaño, C. A., Morales, C. S., & Obando, F. H. (2008). Evaluación de las deficiencias nutricionales en el cultivo de la mora (Rubus glaucus) en condiciones controladas para bosque montano bajo. Agronomía, 16(1), 75-88.cbi. (2018). Exporting fresh avocados to Europe. Centre for the Promotion of Imports from Developing Countries. Recuperado de https://www.cbi. eu/market-information/fresh-fruit-vegetables/avocados/europe/Combatt, C., Pérez, J. D., & Jarma-Orozco, A. (2018). Efecto del nitrógeno y el potasio sobre el intercambio gaseoso y la distribución de biomasa en albahaca (Ocimum basillicum L). Revista Colombiana de Ciencias Hortícola, 12(1), 192-201. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7871Dussán, S. L., Villegas, D. A., & Miranda, D. (2016). Efecto de la deficiencia de N, P, K, Mg, Ca y B sobre la acumulación y distribución de la masa seca en plantas de guayaba (Psidium guajava L.) var. ica Palmira ii en fase de vivero. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 10(1), 40-52. doi:10.17584/rcch.2016v10i1.4277Fageria, N. K., Baligar, V. C., & Jones, C. A. (2011). Growth and Mineral Nutrition of Field Crops, 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Taylor and Francis Group.Furr, J. R., Reece, P. C., & Gardner, F. E. (1946). Symptoms exhibited by avocado trees grown in outdoor sand cultures deprived of various mineral nutrients. Florida State Horticultural Society, 59, 138-145.Granja, F., & Covarrubias, J. I. (2018). Evaluation of acidifying nitrogen fertilizers in avocado trees with iron deficiency symptoms. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 18(1), 157-172. doi:10.4067/ S0718-95162018005000702Guzmán-Rodríguez, J. J., López-Gómez, R., Salgado-Garciglia, R., Ochoa-Zarzosa, A., & López-Meza, J. E. (2016). The defensin from avocado (Persea americana var. drymifolia) induces apoptosis in the human breast cancer cell line MCF-7. Biomedicine and Pharmacotherapy, 82, 620-627. doi:10.1016 / j.biopha.2016.05.048Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., . . . White, P. (2012). Functions of macronutrients. En P. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135-189). Elsevier Ltd. doi:10.1016/ B978-0-12-384905-2.00006-6Hurtado-Fernández, E., Pacchiarotta, T., Gómez-Romero, M., Schoenmaker, B., Derks, R., . . . Fernández-Gutiérrez, A. (2011). Ultra high performance liquid chromatography-time of flight mass spectrometry for analysis of avocado fruit metabolites: Method evaluation and applicability to the analysis of ripening degrees. Journal of Chromatography, 1218(42), 7723-7738. doi:10.1016/j.chroma.2011.08.059Kirkby, E. (2012). Introduction, definition and classification of nutrients. En P. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 3-6). Elsevier Ltd. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00001-7Lahav, E., Bar, Y., & Kalmar, D. (2008). Effect of nitrogenous fertilization on the annual variations in nutrients in avocado leaves. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 21(13-16), 1353-1365. doi:10.1080/00103629009368309Lee, E. A., Angka, L., Rota, S. G., Hanlon, T., Mitchell, A., Spagnuolo, P. A. (2015). Targeting mitochondria with avocatin B induces selective leukemia cell death. Cancer Research, 75(12), 2478-2488. doi:10.1158/0008- 5472.CAN-14-2676.Lovatt, C. (2013). Hass avocado nutrition research in California. Avocado Society Yearbook, 96, 74-105. Marschner, H. (1995). Functions of mineral nutrients: Macronutrients. En H. Marschner (Ed.), Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 229-299), 2.ª edición. Cambridge, EE. UU.: Academic Press.Novoa, M. A., Miranda, D., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de las deficiencias y excesos de fósforo, potasio y boro en la fisiología y el crecimiento de plantas de aguacate (Persea americana, cv. Hass). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(2), 293-307. doi:10.17584/rcch.2018v12i2.8092Procolombia. (2017). El mercado del aguacate en Estados Unidos. Recuperado de http://www.procolombia.co/memorias/acceso-y-oportunidades-para-la-exportacion-del-aguacate-hass-al-mercado-de-estados-unidos-0Saavedra, R., Vásquez, H. D., & Mejía, E. (2012). Aguacate (Persea americana Mill.). En G. Fischer (Ed.), Manual para el Cultivo de Frutales en el Trópico (pp. 319-348). Bogotá, Colombia: Produmedios.Salazar, S., & Lazcano, I. (2001). Identifying fruit mineral removal differences in four avocado cultivars. Better Crops International, 15(1), 28-31.Salvo, J. E., & Lovatt, C. J. (2016). Nitrogen fertilization strategies for the ‘Hass’ avocado that increase total yield without reducing fruit size. HortTechnology, 26(4), 426-435. doi:10.21273/HORTTECH.26.4.426Santana-Rojas, J. A., Cayón-Salinas, D. G., & Torres-Bazurto, J. (2015). Efecto de la deficiencia de potasio sobre parámetros foliares de palma de aceite. Palmas, 36(4), 31-37. Recuperado de https://publicaciones.fedepalma. org/index.php/palmas/article/download/11643/11635/Smith, T. E. (2003). Boron nutrition of Hass avocado (Persea americana Mill.), tesis de doctorado. The University of Queensland, Brisbane, Australia.Uchida, R. (2000). Essential nutrients for plant growth: nutrient functions and deficiency symptoms. En J. A. Silva & R. Uchida (Eds.), Plant nutrient management in Hawaii’s soils (pp. 31-55). Hawai, EE. UU.: University of Hawaii at Manoa.Villa-Rodríguez, J. A., Molina-Corral, F. J., Ayala-Zavala, J. F., Olivas Guadalupe, I., & González-Aguilar, G. A. (2011). Effect of maturity stage on the content of fatty acids and antioxidant activity of ‘Hass’ avocado. Food Research Internationali 44(5), 1231-1237. doi:10.1016/j. foodres.2010.11.012Wang, W., Bostic, T. R., & Gu, L. (2010). Antioxidant capacities, procyanidins and pigments in avocados of different strains and cultivars. Food Chemistry, 122(4), 1193-1198. doi:10.1016/j.foodchem.2010.03.114Acosta-Quezada, P., Raigónb, M., Riofrío-Cuenca, T., García-Martínez, M., Plazas, M., Prohens, J. (2015). Diversity for chemical composition in a collection of different varietal types of tree tomato (Solanum betaceum Cav.), an Andean exotic fruit. Food Chemistry, 169(15), 327-335. doi:10.1016/j.foodchem.2014.07.152Almeida, E., Paiva, P., de Carvalho, J., Frazão, J., & Oliveira, N. (2015). Descriptive analyses of deficiency symptoms in calla lily plants. Journal of Plant Nutrition, 38(5), 663-674. doi:10.1080/01904167.2014.934468Azcón-Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de fisiología vegetal. Nueva York, EE. UU.: McGraw Hill.Barker, A. V., & Pilbeam, D. J. (2007). Handbook of Plant Nutrition, 1.ª edición. Boca Ratón, EE. UU.: CRC Press.Bernal, J., & Tamayo, P. (2003). Tecnología para el cultivo del tomate de árbol, Manual técnico N.º 3. Rionegro, Colombia: Corpoica.Bonnet, J., & Cárdenas, J. (2012). Tomate de árbol (Cyphomandra betacea Sendt). En G. Fischer (Ed.), Manual para el cultivo de frutales en el trópico (pp. 825-850). Bogotá, Colombia: Produmedios.Botía, T., & Medina, L. (2002). Determinación de síntomas por deficiencias Inducida de nutrientes en lulo (Solanum quitoense Lam y Uchuva Physalis peruviana L). Bogotá, Colombia: Universidad de Ciencias Aplicadas y Ambientales (udca).Cao, M., Yu, H., & Yan, H. (2007). Difference in Tolerance to Potassium Deficiency between Two Maize Inbred Lines. Plant Production Science, 10(1), 42-46. doi:10.1626/pps.10.42Casson, S., & Lindsey, K. (2003). Genes and signalling in root development. New Phytologist, 158(1), 11-38. doi:10.1046/j.1469-8137.2003.00705.xCámara de Comercio de Bogotá (ccb). (2015). Manual: tomate de árbol. Programa de apoyo agrícola y agroindustrial vicepresidencia de fortalecimiento empresarial cámara de comercio de Bogotá. Bogotá: Cámara de Comercio de Bogotá. Recuperado de http://bibliotecadigital.ccb.org. co/handle/11520/14308Departamento de administración Nacional (dane). (2015). Resultados encuesta nacional agropecuaria. Recuperado de https://www.dane.gov.co/files/ investigaciones/agropecuario/enda/ena/2015/boletin_ena_2015.pdf (23/07/18)Díaz, A., Cañón, G., & Mira, J. (2007). Metabolismo del calcio y su relación con la “mancha de madurez” del fruto de banano. Una revisión. Agronomía Colombiana, 25(2), 280-287.Enciso, F. (2007). Caracterización molecular de lulo (Solanum quitoense) y tomate de árbol (Solanum betaceum) del banco de germoplasma de Corpoica mediante el empleo de marcadores cos ii, tesis de grado. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia, Tunja, Colombia.Fischer, G. (2012). Manual para el cultivo de frutales en el trópico. Bogotá, Colombia: Produmedios.García-Álzate, J., Navia-Estrada, J., & Castillo-Franco, J. (2001). Respuesta del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav sedent) a la aplicación de fertilizantes situados a dos profundidades de suelo. Revista de Ciencias Agrícolas, 18(2), 99-106. doi:10.22267/Garcia Giorgi, A., Mingozzi, M., Made, M., Speranza, G., & Cocucci, M. (2009). Effect of nitrogen starvation on the phenolic metabolism and antioxidant properties of yarrow (Achillea collina Becker ex Rchb.). Food Chemistry, 114(1), 204-211. doi:10.1016/j.foodchem.2008.09.039Hoagland, D. R., & Arnon, D. I. (1950). The water-culture method for growing plants without soil. Circular California Agricultural Experiment Station, 347(2), 4-32. Recuperado de watercultureme3450hoagLeón, J., Viteri, P., & Negrete, S. (2004). Guía de bolsillo para determinación de deficiencias nutricionales en tomate de árbol, Boletín divulgativo n.° 139. Quito, Ecuador: Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (iniap).Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45. doi:10.17584/ rcch.2013v7i1.2033Lobo, M. (2006). Recursos genéticos y mejoramiento de frutales andinos: una visión conceptual. Revista Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 7(2), 40-54. doi:10.21930/rcta.vol7_num2_art:68Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural (madr). (2005). Observatorio Agrocadenas Colombia. La cadena de los frutales de exportación en Colombia una mirada global de su estructura y dinámica 1991-2005. Bogotá: madr.Marschner, P. (2012). Mineral nutrition of higher plants, 3.ª edición. Londres, Reino Unido: Elsevier. Martínez, A. (2001). Estudio de la condición nutricional en cuatro provincias (Imbabura, Pichincha, Tungurahua y Azuay) y caracterización del sistema radicular del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.), tesis de grado. Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas, Quito, Ecuador.Martínez, F., & Garcés, G. (2010). Crecimiento y producción de lechuga (Lactuca sativa L.var.romana) bajo diferentes niveles de potasio. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 4(2), 185-198. doi:10.17584/ rcch.2010v4i2.1239Martínez, F., Sarmiento, J., Fischer, G., & Jiménez, F. (2008). Efecto de la deficiencia de N, P, K, Ca, Mg y B en componentes de producción y calidad de la uchuva (Physalis peruviana L.). Agronomía Colombiana, 26(3), 389-398.Monge, E., Sanz, J., Blanco, A., & Montañés, L. (1994). El calcio nutriente para las plantas. Bitter pit en manzano. Anales de de la Estación Experimental de Aula Dei 21, 21(3), 189-201. Recuperado de http://exa.unne.edu. ar/biologia/fisiologia.vegetal/El_calcio_nutriente.pdfOsorio, G. (1992). Advances in the culture of the tree tomato (Solanum betaceum). Acta Horticulturae, 310, 199-205.Prohens, J., Rodríguez-Burruezo, A., & Nuez, F. (2004). Breeding Andean Solanaceae fruit crops for adaptation to subtropical climates. Acta Horticulturae, 662, 129-137. doi:10.17660/ActaHortic.2004.662.15Ramírez-Soler, C., Magnitskiy, S., Melo, S., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de dosis de nitrógeno, fósforo y potasio sobre el crecimiento del tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en etapa vegetativa. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 31-40. doi:10.17584/ rcch.2018v12i1.7469Riascos, J., Yaluzan, L., & Unigarro, A. (2009). Síntomas de deficiencia de elementos mayores y secundarios, en tomate de árbol Cyphomandra betacea (Cav.) sendt, bajo condiciones controladas. Revista de Ciencias Agrícolas, 26(1), 186-204.Sepúlveda, Y., Díez, M., Osorio, N., Moreno, F., & León, J. (2014). Caracterización de los síntomas visuales de deficiencias nutricionales de plántulas del roble andino en invernadero. Agronomía Costarricense, 38(1), 161-173.Stewart, A., Chapman, W., Jenkins, G., Graham, I., Martin, T., & Crozier, A. (2001). The effect of nitrogen and phosphorus deficiency on flavonol accumulation in plant tissues. Plant, Cell and Environment, 24(11), 1189-1197. doi:10.1046/j.1365-3040.2001.00768.xTorres, A. (2012). Caracterización física, química y compuestos bioactivos de pulpa madura de tomate de árbol (Solanum betaceum) (Cav.) Sendtn. Archivos latinoamericanos de nutrición, 62(4), 318 -388.Vargas, M., Calderón, L., & Pérez, M. (2009). Effect of some nutrient deficiencies on lulo plants (Solanum quitoense var. quitoense) en stage pond. Revista Facultad de Ciencias Básicas, 5(1), 64-81. doi:10.18359/rfcb.2122Ye-Chun, L., Yue-Gao, Y., Chang-Zhong, R., Lai-Chun, G., Chun-Long, W., Zhao-Hai, Z. (2013). Effects of Nitrogen Application on Chlorophyll Fluorescence Parameters and Leaf Gas Exchange in Naked Oat. Journal of Integrative Agriculture, 12(12), 2164-2171. doi:10.1016/ S2095-3119(13)60346-9Xiao-Lin, J., Cui-Lan, M., Lin-Tong, Y., & Li-Song, C. (2016). Alterations of physiology and gene expression due to long-term magnesium-deficiency differ between leaves and roots of Citrus reticulata. Journal of plant physiology, 128(1), 103-115. doi:10.1016/j.jplph.2016.04.011Yeh, D., Lin, L., & Wright, C. (2000). Effects of mineral nutrient deficiencies on leaf development, visual symptoms and shoot–root ratio of Spathiphyllum. Scientia Horticulturae, 86(3), 223-233. doi:10.1016/ S0304-4238(00)00152-7Zambrano, E., & Naranjo, E. (2004). Encuestas a productores sobre procedimientos de propagación de tomate de árbol (Solanum betaceum Send), Informe Técnico Anual. Quito, Ecuador: Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (iniap).Botella, M. Á., Arévalo, L., Mestre, T. C., Rubio, F., García-Sánchez, F., Martínez, V. (2017). Potassium fertilization enhances pepper fruit quality. Journal of Plant Nutrition, 40(2), 145-155. doi:10.1080/01904167. 2016.1201501Carvajal, L., Turbay, S., Álvarez, L., Rodríguez, A., Álvarez, M., Restrepo, S. (2014). Propiedades funcionales y nutricionales de seis especies de Passiflora (Passifloraceae) del departamento del Huila, Colombia. Caldasia, 36, 1-15Checa-Coral, O., Rosero-Álvarez, E., & Eraso-Cultid, I. (2011). Colección y caracterización morfoagronómica del subgénero tacsonia en la zona andina del departamento de Nariño, colombia. Revista de la Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 64(1), 5893- 5907.Criado, M. V., Roberts, I. N., Veliz, C. G., Echeverria, M., Boem, F. H. G., & Caputo, C. (2018). Phloem transport of assimilates in relation to flowering time and senescence in barley grown with different availabilities of nitrogen and phosphorus. Archives of Agronomy and Soil Science, 64(4), 492-504. doi:10.1080/03650340.2017.1367093Davarpanah, S., Tehranifar, A., Davarynejad, G., Abadía, J., & Khorasani, R. (2016). Effects of foliar applications of zinc and boron nano-fertilizers on pomegranate (Punica granatum cv. Ardestani) fruit yield and quality. Scientia Horticulturae, 210, 57-64. doi:10.1016/J. SCIENTA.2016.07.003De Oliveira, A. B., De Almeida-Lopes, M. M., Moura, C. F. H., De Siqueira Oliveira, L., De Souza, K. O., . . . De Miranda, M. R. A. (2017). Effects of organic vs. conventional farming systems on quality and antioxidant metabolism of passion fruit during maturation. Scientia Horticulturae, 222, 84-89. doi:10.1016/J.SCIENTA.2017.05.021Díaz, O., Moreno, L., Pinilla, R., Carrillo, W., Melgarejo, L. M., . . . Fernández-Trujillo, J. (2012). Postharvest behavior of purple passion fruit in Xtend® bags during low temperature storage. Acta Horticulturae, 934, 727-731. doi:10.17660/ActaHortic.2012.934.95Engels, C., Kirkby, E., & White, P. (2012). Mineral Nutrition, Yield and Source–Sink Relationships. En P. Marschner (Ed.), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (Third Edition) (pp. 85-133). San Diego, EE. UU.: Academic Press.Flórez, L. M., Pérez, L. V., Melgarejo, L. M., & Hernández, S. (2012). Caracterización fisicoquímica, fisiológica y bioquímica del fruto de gulupa (Passiflora edulis Sims) como indicadores para el punto óptimo de cosecha. Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http:// bdigital.unal.edu.co/8547/9/05_Cap03.pdfFlórez, L. M., Pérez, L. V., & Melgarejo, L. M. (2012). Manual calendario fenológico y fisiología del crecimiento y desarrollo del fruto de gulupa (Passiflora edulis Sims) de tres localidades del departamento de Cundinamarca. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://bdigital.unal.edu.co/8547/7/04_Cap02.pdfFujita, Y., Venterink, H. O., Bodegom, P. M., Van Douma, J. C., Heil, G. W., Hölzel, N., . . . Wassen, M. J. (2014). Low investment in sexual reproduction threatens plants adapted to phosphorus limitation. Nature, 505(7481), 82-86. doi:10.1038/nature12733Guerrero-López, E., Potosí-Guampe, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (BPA). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 123-144). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/Guilbaud, C. S. E., Dalchau, N., Purves, D. W., & Turnbull, L. A. (2015). Is “peak N” key to understanding the timing of flowering in annual plants? New Phytologist, 205(2), 918-927. doi:10.1111/nph.13095Haag, H. P., Oliveira, G. D., De Borducchi, A. S., & Sarruge, J. R. (1973). Absorção de nutrientes por duas variedades de maracujá. Anais Da Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, 30(1), 267-279. doi:10.1590/ S0071-12761973000100020Ipek, M., Aras, S., Arikan, Ş., Eşitken, A., Pirlak, L., Turan, M. (2017). Root plant growth promoting rhizobacteria inoculations increase ferric chelate reductase (fc-r) activity and Fe nutrition in pear under calcareous soil conditions. Scientia Horticulturae, 219, 144-151. doi:10.1016/J. SCIENTA.2017.02.043Jagadish, S. V. K., Bahuguna, R. N., Djanaguiraman, M., Gamuyao, R., Prasad, P. V. V., & Craufurd, P. Q. (2016). Implications of High Temperature and Elevated CO2 on Flowering Time in Plants. Frontiers in Plant Science, 7, 913. doi:10.3389/fpls.2016.00913Janzantti, N. S., & Monteiro, M. (2014). Changes in the aroma of organic passion fruit (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Deg.) during ripeness. LWT- Food Science and Technogoly, 59, 612-620. doi:10.1016/j. lwt.2014.07.044.Janzantti, N. S., Santos, G. C., & Monteiro, M. (2012). Shelf Life of Fresh and Pasteurized Organic Passion Fruit (Passiflora Edulis F. Flavicarpa Deg.) Pulp. Journal of Food Processing and Preservation, 38, 262–270. doi:10.1111/j.1745-4549.2012.00772.xKhan, A. S., Nasir, M., Malik, A. U., Basra, S. M. A., & Jaskani, M. J. (2015). Combined Application of Boron and Zinc Influence the Leaf Mineral Status, Growth, Productivity and Fruit Quality of ‘Kinnow’ Mandarin (Citrus nobilis Lour × Citrus deliciosa Tenora). Journal of Plant Nutrition, 38(6), 821-838. doi:10.1080/01904167.2015.1009100Lindström, B. E. M., Frankow-Lindberg, B. E., Dahlin, A. S., Wivstad, M., & Watson, C. A. (2014). Micronutrient concentrations in relation to phenological development of red clover (Trifolium pratense L.), perennial ryegrass (Lolium perenne L.) and timothy (Phleum pratense L.). Grass and Forage Science, 69(2), 276-284. doi:10.1111/gfs.12068Lizarazo, M., Hernández, C., Fischer, G., & Gómez, M. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45.Malavolta, E. (1994). Nutrición y fertilización del maracuyá. Quito: POTAFOS.Mendoça, M., Monnerat, P., Phino, L., & Carvalho, A. (2006). Deficiência de macronutrientes e boro em maracujazeiro doce: qualidade dos frutos. Revista Brasileira de Fruticultura, 28(3), 492-496. doi:10.1590/ S0100-29452006000300033.Milla, R., Castro-Díez, P., Maestro-Martínez, M., & Montserrat-Martí, G. (2005). Relationships between phenology and the remobilization of nitrogen, phosphorus and potassium in branches of eight Mediterranean evergreens. New Phytologist, 168(1), 167-178. doi:10.1111/j.1469-8137.2005.01477.xMuschner, V. C., Zamberlan, P. M., Bonatto, S. L., & Freitas, L. B. (2012). Phylogeny, biogeography and divergence times in Passiflora (Passifloraceae). Genetics and Molecular Biology, 35(4 suppl.), 1036-1043. Recuperado de http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/23412994Quiroga-Ramos, I. A., Fischer, G., & Melgarejo, L. M. (2018). Efecto de la aplicación foliar de boro en el desarrollo fenológico y cuajado de fruto de Passiflora edulis f. edulis Sims “gulupa” (Passifloraceae) en condiciones de campo. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 12(1), 20-30. doi:10.17584/rcch.2018v12i1.7457Rodríguez-León, A. K., Rodríguez-Carlosama, A., Melgarejo, L. M., Miranda-Lasprilla, D., & Martínez-Wilches, O. (2015). Caracterización fenológica de la granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 53-90). Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/ pubData/source/Granadilla.pdfReig, G., Font, I., Forcada, C., Mestre, L., Jiménez, S., Betrán, J. A., Moreno, M. Á. (2018). Horticultural, leaf mineral and fruit quality traits of two ‘Greengage’ plum cultivars budded on plum based rootstocks in Mediterranean conditions. Scientia Horticulturae, 232, 84-91. doi:10.1016/J. SCIENTA.2017.12.052Soil Survey Staff. (1999). Soil taxonomy: A basic system of soil classification for making and interpreting soil surveys. 2.ª edición. Natural Resources Conservation Service. U.S. Department of Agriculture Handbook, 436.Zegbe, J. A., Serna-Pérez, A., & Mena-Covarrubias, J. (2014). Mineral nutrition enhances yield and affects fruit quality of ‘Cristalina’ cactus pear. Scientia Horticulturae, 167, 63-70. doi:10.1016/J.SCIENTA.2013.12.023Bernal, J., Díaz, C., Osorio, C., Tamayo, A., Osorio, W., & Kondo, T. (2014). Actualización Tecnológica y Buenas Prácticas Agrícolas (BPA) en el Cultivo de Aguacate. Medellín, Colombia: Corpoica.Dreher, M., & Davenport, A. (2013). Hass avocado composition and potential health effects. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 7, 738-50. doi:10.1080/10408398.2011.556759Flitsanov, U., Mizrach, A., Liberzon, A., Akerman, M., Zauberman, G., Itsanov, U., & Zauberman, G. (2000). Measurement of avocado softening at various temperatures using ultrasound. Postharvest Biology and Technology, 20, 279.286. doi:10.1016/S0925-5214(00)00138-1Hofman, J., Bower, J., & Woolf, A. (2013). Harvesting, packing, post-hasvest technology, transport and processing. En B. Schaffer, B. N. Wolstenholme & A. W. Whiley (Eds.), The avocado: Botany, production and uses (pp. 489-540). Wallingford, EE. UU.: cabi.Gamble, J., Harker, F. R., Jaeger, S. R., White, A., Bava, C., Woolf, A. (2010). The impact of dry matter, ripeness and internal defects on consumer perceptions of avocado quality and intentions to purchase. Postharvest Biology and Technology, 57(1), 35-43. doi:10.1016/j.postharvbio.2010.01.001Henao, J., & Rodríguez, P. (2016). Evaluación del color durante la maduración del aguacate (Persea americana Mill. cv. Hass). Agronomía Colombiana, 5, 876-879. doi:10.15446/agron.colomb.v34n1supl.58092.Insituto Colombiano Agropecuario (ica). (2011). El cultivo de aguacate Hass. Bogotá, Colombia: ica.Kader, A. (1999). Fruit maturity, ripening, and quality relationships. Acta Horticulturae, 485, 203-208. doi:10.17660/ActaHortic.1996.434.30Kassim, A., Workneh, T., & Bezuidenhout, C. (2013). A review on postharvest handling of avocado fruit. African Journal of Agricultural Research, 8(21), 2385–2402. doi:10.5897/AJAR12.1248Lee, S., Young, R., Schiffman, P., & Coggins, C. (1983). Maturity studies of avocado fruit based on picking dates and dry weight. Journal of the American Society for Horticultural Science, 108(3), 390-394.Márquez, C., Yepes, D., & Sánchez, L. (2014). Changes physical-chemical of avocado (Persea americana Mill. cv. “Hass”) in postharvest for two municipalities of Antioquia. Temas Agrarios, 19(1), 32-47. doi:10.21897/ rta.v19i1.723Massaro, C. (2010). Características generales de las paltas. Boletín de los Consumidores. Santiago de Chile: Ministerio de Agrigultura.Mateos, M., Del Río, M., Martínez, J., & Navarro, P. (1988). Efecto de las envolturas plásticas individuales, calentamientos intermitentes y pretratamientos con CO2 en la conservación de aguacate “Hass.” En Actas del III congreso de la Sociedad Española de Ciencias Hortícolas, p. 3.Ozdemir, F., & Topuz, A. (2004). Changes in dry matter, oil content and fatty acids composition of avocado during harvesting time and post-harvesting ripening period. Food Chemistry, 86, 79-83. doi:10.1016/j. foodchem.2003.08.012Ríos, D., Corrales, D., Daza, G., & Aristizábal, A. (2005). Aguacate, variedades y patrones importantes para Colombia. Cali, Colombia: Feriva SA.Salcedo, R., Quiñones, Y., Melgarejo, L. M., Hernández, M. S., & Fernández-Trujillo, J. P. (2018). Variation in the fatty acid profile and quality of ‘Hass’ avocados preserved during cold storage. Acta Horticulturae, 1194, 1007-1010. doi:10.17660/ActaHortic.2018.1194.143Téliz, D., & Mora, A. (2008). El aguacate y su manejo integrado, 2.ª edición. Ciudad de México, México: Mundiprensa.Villa, J., Molina, F., Ayala, J., Olivas, G., & González, G. (2011). Effect of maturity stage on the content of fatty acids and antioxidant activity of “Hass” avocado. Food Research International, 44(5), 1231-1237. doi:10.1016/j.foodres.2010.11.012Wolstenholme, B., & Whiley, A. (1995). Prospects for increasing Hass fruit size: A Southern Hemisphere Perspective. Proceedings of Australian Avocado Growers Federation Inc., pp. 89-102.Amaya, R. J., Castro, M. J., Paredes, R. C., & Muñoz, A. D. (2009). “El cultivo de maracuyá” Passiflora edulis form. Flavicarpa. Trujillo, Perú: Gerencia Regional Agraria.Arias-Suárez, J. C., Ocampo-Pérez, J. A., & Urrea-Gómez, R. (2014). La polinización natural en el maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa Degener) como un servicio reproductivo y ecosistémico. Agronomía Mesoamericana, 25(1), 73-83. Recuperado de http://www.redalyc.org/ articulo.oa?id=43730495008Benson, W. W., Brown, Jr. K. S., & Gilbert, L. E. (1976). Coevolution of plants and herbivores: passion flower butterflies. Evolution, 29(4), 659-680. doi:10.2307/2407076.Bernal, J., & Díaz, C. (2005). Tecnología para el cultivo de curuba. Manual técnico N.º 6. Río Negro, Colombia: Corpoica.Campos, D. F., & Sharkey, M. J. (2006). Familia braconidae. En F. Fernández & M. J. Sharkey (Eds.), Introducción a los hymenoptera de la región neotropical (pp. 45-68). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Entomología y Universidad Nacional de Colombia.Campos, T. J. (2001). La curuba: su cultivo. Bogotá: ica. Causton, C. E., Markin, G. P., & Friesen, R. (2000). Exploratory survey in Venezuela for biological control agents of Passiflora mollissima in Hawaii. Biological Control, 18, 110-119. doi:10.1006/bcon.2000.0811Chacón, P., & Rojas M. (1984). Entomofauna asociada a Passiflora mollissima, P. edulis f. flavicarpa y P. quadrangularis en el Departamento del Valle del Cauca. Turrialba, 34, 297-311.Daza, L. E., & De La Cruz, J. (1983). Reconocimiento entomológico en el cultivo de la curuba (Passiflora mollissima (hbk) Bailey) en la cuenca del rio Amaime-Valle. Acta Agronómica, 33(1), 37-43. Recuperado de https://revistas.unal.edu.co/index.php/acta_agronomica/article/ download/48342/49573.Espejo, D., Hidalgo, J., Santamaría, M., & Fernández, J. (2014). Insectos asociados entre un cultivo de curuba y un fragmento de bosque alto andino de la Sabana de Bogotá. Revista Inventum, 6, 9-16. doi:10.26620/ uniminuto.inventum.9.16.2014.9-16Fonque, S., & Melo, A. (2014). Determinación de plagas de dos cultivos agroecológicos de curuba (Passiflora tripartita var. mollissima) ubicados en el municipio de Madrid, vereda Puente Piedra y municipio de Subachoque, vereda La Pradera, tesis de pregrado. Corporación Universitaria Minuto De Dios, Bogotá, Colombia.García-Robledo, C. A., Constantino, L. M., Heredia, M. D., & Kattan, G. (2002). Guía de campo. Mariposas comunes de la cordillera central. Cali, Colombia: Wildlife Conservation Society Colombia.Instituto Colombiano Agropecuario (ica). (2006). Manejo integrado del cultivo de la curuba (Passiflora tripartita var. mollissima Holm Nielsen & Jorgensen). Boletín de Sanidad Vegetal 51. Bogota, Colombia: Fondo Nacional del Fomento Hortícola, ica, Asofrucol.Mason, W. R. M. (1981). The polyphyletic nature of Apanteles Foerster (Hymenoptera: Braconidae): A phylogeny and reclassification of the Microgastrinae. The Memoirs of the Entomological Society of Canada, 113(S115), 1-147. doi:10.4039/entm113115fvMassardo, D., Fornel, R., Kronforst, M., Lopes-Gonçalves, G., & Pires-Moreira, G. R. (2014). Diversification of the silverspot butterflies (Nymphalidae) in the Neotropics inferred from multi-locus dna sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 82, 156-165. doi:10.1016/j. ympev.2014.09.018.Palomo, L. A. T., Martínez, N. B., Johansen-Naime, R., Nápoles, J. R., León, O. S.; Arroyo, H. S., & Graziano, J. V. (2015). Population fluctuations of thrips (thysanoptera) and their relationship to the phenology of vegetable crops in the central region of Mexico. Florida Entomologist, 98(2), 430-438. doi:10.1653/024.098.0206.Pemberton, R. W. (1989). Insects attacking Passiflora mollissima and other Passiflora species; Field survey in the Andes. Proceedings. Hawaiian Entomological Society, 29, 71-84. Recuperado de http://hdl.handle. net/10125/11242Rodríguez-León, A. K., Rodríguez-Carlosama, A., Melgarejo, L. M., Miranda-Lasprilla, D., & Martínez-Wilches, O. (2015). Caracterización fenológica de la granadilla (Passiflora ligularis Juss) crecida a diferentes altitudes en el departamento del Huila. 53-90. En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo. Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/Granadilla.pdfSalinas, H. (2010). Guía técnica para el cultivo de “maracuyá amarillo”. Roldanillo, Valle del Cauca, Colombia: Instituto de Educación Técnica Profesional de Roldanillo.Triplehorn, C. A., & Johnson, N. F. (2005). Borror and DeLong’s Introduction to the Study of Insects. Cole, Blemont, EE. UU.: Thomson Brooks.Turner, J. R. G. (1981). Adaptation and evolution in Heliconius: A defense of neodarwinism. Annual Review of Ecology and Systematics, 12(1), 99–121. doi:10.1146/annurev.es.12.110181.000531.Williams, D. J. M. (1985). The new world genus Lathrapanteles n. gen.: Phylogeny and placement in the Microgastrinae (Hymenoptera: Braconidae: Cotesiini). Canadian Journal of Zoology, 63(8), 1962-1981. doi:10.1139/ z85-289.Almeida, K. A., Armesto, C., Monteiro, F. P., & De Souza, J. T. (2018). Diversity of Trichoderma species isolated from dead branches and sapwood of Theobroma cacao trees. Tropical Plant Pathology, 43(1), 90-94. doi:10.1007/s40858-017-0191-zAsociación Nacional de Comercio Exterior (Analdex). (2017). Informe de exportaciones de gulupa 2016, Dirección de Asuntos Económicos. Bogotá: Analdex.Andreolli, M., Lampis, S., Zapparoli, G., Angelini, E., & Vallini, G. (2016). Diversity of bacterial endophytes in 3 and 15 year-old grapevines of Vitis vinifera cv. Corvina and their potential for plant growth promotion and phytopathogen control. Microbiological research, 183, 42-52. doi:10.1016/j.micres.2015.11.009Bae, H., Roberts, D. P., Lim, H. S., Strem, M. D., Park, S. C., . . . Bailey, B. A. (2011). Endophytic Trichoderma isolates from tropical environments delay disease onset and induce resistance against Phytophthora capsici in hot pepper using multiple mechanisms. Molecular Plant-Microbe Interactions, 24(3), 336-351. doi:10.1094/MPMI-09-10-0221.Bae, H., Sicher, R. C., Kim, M. S., Kim, S. H., Strem, M. D., . . . Bailey, B. A. (2009). The beneficial endophyte Trichoderma hamatum isolate DIS 219b promotes growth and delays the onset of the drought response in Theobroma cacao. Journal of Experimental Botany, 60(11), 3279-3295. doi:10.1093 / jxb / erp165Barra, P. J., Inostroza, N. G., Acuña, J. J., Mora, M. L., Crowley, D. E., & Jorquera, M. A. (2016). Formulation of bacterial consortia from avocado (Persea americana Mill.) and their effect on growth, biomass and superoxide dismutase activity of wheat seedlings under salt stress. Applied soil ecology, 102, 80-91. doi:10.1016/j.apsoil.2016.02.014Bourguignon, M., Nelson, J. A., Carlisle, E., Dinkins, R. D., Phillips, T. D, & Mcculley, R. L. (2015). Ecophysiological responses of tall fescue genotypes to fungal endophyte infection, elevated temperature, and precipitation. Crop Science, 55(6), 2895-2909. doi:10.2135/ cropsci2015.01.0020Cueva-Yesquén, L. G., Goulart, M., Attili-Angelis, D., & Fantinatti-Garboggini, F. (2015). Analysis of endophytic bacterial diversity associated to p. incarnata. Memorias del 29º Congresso Brasileiro de Microbiologia, Paraná, Brazil, pp. 148-218Ding, T., & Melcher, U. (2016). Influences of plant species, season and location on leaf endophytic bacterial communities of non-cultivated plants. PloS one, 11(3), e0150895. doi:10.1371/journal.pone.0150895Droby, S., & Wisniewski, M. (2018). The fruit microbiome: A new frontier for postharvest biocontrol and postharvest biology. Postharvest Biology and Technology, 140, 107-112. doi:10.1016/j.postharvbio.2018.03.004El-Fattah, A., Dababat, A., & Sikora, A. (2007). Induced resistance by the mutualistic endophyte, Fusarium oxysporum strain 162, toward Meloidogyne incognita on tomato. Biocontrol Science and Technology, 17(9), 969-975. doi:10.1080/09583150701582057Fatima, N., Mukhtar, U., Ihsan, M., Jadoon, M., & Ahmed, S. (2016). Biological Evaluation of Endophytic Fungus Chaetomium sp. NF15 of Justicia adhatoda L.: A Potential Candidate for Drug Discovery. Jundishapur journal of microbiology, 9(6), 1-12, e29978. doi:10.5812/jjm.29978Fierro-Cruz, J. E., Jiménez, P., & Coy-Barrera, E. (2017). Fungal endophytes isolated from Protium heptaphyllum and Trattinnickia rhoifolia as antagonists of Fusarium oxysporum. Revista Argentina de microbiologia, 49(3), 255-263. doi:10.1016/j.ram.2016.12.009Franco, G., Cartagena, J. R., Correa, G. L., Rojano, B., & Piedrahita, A. M. (2014). Actividad antioxidante del jugo de Passiflora edulis Sims (Gulupa) durante la poscosecha. Revista Cubana de Plantas Medicinales, 19(3), 154-166.Gherbawy, Y. A., & Gashgari, R. M. (2014). Molecular characterization of fungal endophytes from Calotropis procera plants in Taif region (Saudi Arabia) and their antifungal activities. Plant Biosystems, 148(6), 1085- 1092. doi:10.1080/11263504.2013.819043Gouda, S., Das, G., Sen, S. K., Shin, H. S., & Patra, J. K. (2016). Endophytes: a treasure house of bioactive compounds of medicinal importance. Frontiers in Microbiology, 7(1538), 1-8. doi:10.3389 / fmicb.2016.01538Gutiérrez-Yansaguano, C. A., & Pomaquiza-Balvoa, L. F. (2018). Evaluación de 4 cepas de hongos endófitos rizosféricos de solanáceas en la germinación y desarrollo de plántulas de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.), tesis de grado. Universidad de Cuenca, Cuenca, Ecuador.Hakizimana, J. D., Gryzenhout, M., Coutinho, T. A., & van den Berg, N. (2011). Endophytic diversity in Persea americana (avocado) trees and their ability to display biocontrol activity against Phytophthora cinnamomi. Proceedings VII World Avocado Congress, Australian. pp. 1-10.Hardoim, P. R., Van Overbeek, L. S., Berg, G., Pirttilä, A. M., Compant, S., Sessitsch, A. (2015). The hidden world within plants: ecological and evolutionary considerations for defining functioning of microbial endophytes. Microbiology and Molecular Biology Reviews, 79(3), 293- 320. doi:10.1128 / MMBR.00050-14.Hosseyni-Moghaddam, M. S., & Soltani, J. (2014). Bioactivity of endophytic Trichoderma fungal species from the plant family Cupressaceae. Annals of microbiology, 64(2), 753-761. doi:10.1007/s13213-013-0710-1Jiménez, A. M., Sierra, C. A., Rodríguez-Pulido, F. J., González-Miret, M. L., . . . Osorio, C. (2011). Physicochemical characterisation of gulupa (Passiflora edulis Sims. fo edulis) fruit from Colombia during the ripening. Food Research International, 44(7), 1912-1918. doi:10.1016/j. foodres.2010.11.007Jiménez, A., & Hortal, J. (2000). Las curvas de acumulación de especies y la necesidad de evaluar los inventarios biológicos. Revista Iberoamericana de Aracnología, 8, 151-161.Katoch, M., Bindu, K., Phull, S., & Verma, M. K. (2017). An endophytic Fusarium sp. isolated from Monarda citriodora produces the industrially important plant-like volatile organic compound hexanal. Microbiology, 163(6), 840-847. doi:10.1099 / mic.0,000479Khondoker, M. G., Dastogeer, H. L., Krishnapillai, S. M., & Wylie, L. (2017). A simple and rapid in vitro test for largescale screening of fungal endophytes from droughtadapted Australian wild plants for conferring water deprivation tolerance and growth promotion in Nicotiana benthamiana seedlings. Archives of Microbiology, 199, 1357-1370. doi:10.1007/s00203-017-1411-0Koide, R. T., Ricks, K. D., & Davis, E. R. (2017). Climate and dispersal influence the structure of leaf fungal endophyte communities of Quercus gambelii in the eastern Great Basin, USA. Fungal Ecology, 30, 19-28. doi:10.1016/j.funeco.2017.08.002Kuldau, G. A., & Yates, I. E. (2000). Evidence for Fusarium Endophytes. En C. W. Bacon & J. F. White (Ed.), Microbial endophytes (pp. 85-120). Nueva York, EE. UU.: Marcel Dekker, Inc.Kumar, A., Patil, D., Rajamohanan, P. R., & Ahmad, A. (2013). Isolation, purification and characterization of vinblastine and vincristine from endophytic fungus Fusarium oxysporum isolated from Catharanthus roseus. PloS one, 8(9), e71805. doi:10.1371/journal.pone.0071805Liu, X. H., Miao, F. P., Liang, X. R., & Ji, N. Y. (2014). Ergosteroid derivatives from an algicolous strain of Aspergillus ustus. Natural product research, 28(15), 1182-1186. doi:10.1080/14786419.2014.923996Liu, Y., Li, Y., Yao, S., Wang, H., Cao, Y., . . . Cheng, C. (2015). Diversity and distribution of endophytic bacterial community in the Noni (Morinda citrifolia L.) plant. African Journal of Microbiology Research, 9(25), 1649-1657. doi:10.5897/AJMR2015.7443Machungo, C., Losenge, T., Kahangi, E., Coyne, D., Dubois, T., & Kimenju, J. W. (2009). Effect of endophytic Fusarium oxysporum on growth of tissue-cultured banana plants. African Journal of Horticultural Science, 2, 160-167Marshall, D., Tunali, B., & Nelson, L. R. (1999). Occurrence of Fungal Endophytes in Species of Wild. Crop Science, 39(5), 1507-1512. doi:10.2135 / cropsci1999.3951507xMedina, S., Collado-González, J., Ferreres, F., Londoño-Londoño, J., Jiménez-Cartagena, C., . . . Gil-Izquierdo, A. (2017). Quantification of phytoprostanes–bioactive oxylipins–and phenolic compounds of Passiflora edulis Sims shell using UHPLC-QqQ-MS/MS and LC-IT-DAD-MS/ MS. Food chemistry, 229, 1-8. doi:10.1016/j.foodchem.2017.02.049Mishra, V. K., Passari, A. K., Chandra, P., Leo, V. V., . . . Singh, B. P. (2017). Determination and production of antimicrobial compounds by Aspergillus clavatonanicus strain MJ31, an endophytic fungus from Mirabilis jalapa. using UPLC and TD-GC-MS analysis. PloS one, 12(10), e0186234. doi:10.1371/journal.pone.0186234Morsy, M. R., Oswald, J., He, J., Tang, Y., & Roossinck, M. J. (2010). Teasing apart a three-way symbiosis: transcriptome analyses of Curvularia protuberata in response to viral infection and heat stress. Biochemical and biophysical research communications, 401(2), 225-230. doi:10.1016/j. bbrc.2010.09.034Osuna-Avila, P., & Barrow, J. (2009). In vitro system to determine the role of Aspergillus ustus on Daucus carota roots. Terra Latinoamericana, 27(4), 363-372.Paez-Redondo, A., & Hoyos-Carvajal, L. (2017). Metodologías para la inducción de infecciones procedentes de inóculo quiescente de la interacción Manguifera indica-Colletotrichum. Fitopatología Colombiana, 41(1), 55.Park, Y. H., Mishra, R. C., Yoon, S., Kim, H., . . . Bae, H. (2018). Endophytic Trichoderma citrinoviride isolated from mountain-cultivated ginseng (Panax ginseng) has great potential as a biocontrol agent against ginseng pathogens. Journal of Ginseng Research, (en prensa), e2093-4947: 1226-8453. doi:10.1016/j.jgr.2018.03.002Parra-Huertas, R. A. (2012). Caracterización fisicoquímica y sensorial de una compota a partir de Gulupa (Passiflora edulis) Almidón de sagu (Canna edulis) y stevia. Vitae, 19(1), S219-S221.Photita, W., Lumyong, S., Lumyong, P., Mckenzie, E. H., & Hyde, K. D. (2004). Are some endophytes of Musa acuminata latent pathogens? Fungal Divers, 16, 131-140.Pinheiro, E. A., Carvalho, J. M., Dos Santos, D. C., Feitosa, A. O., Marinho, P. S., . . . Marinho, A. M. (2013). Chemical constituents of Aspergillus sp EJC08 isolated as endophyte from Bauhinia guianensis and their antimicrobial activity. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 85(4), 1247-125. doi:10.1590/0001-3765201395512Priyadharsini, P., & Muthukumar, T. (2017). The root endophytic fungus Curvularia geniculata from Parthenium hysterophorus roots improves plant growth through phosphate solubilization and phytohormone production. Fungal Ecology, 27, 69-77. doi:10.1016/j.funeco.2017.02.007Ramírez-Restrepo, S. (2016). Evaluación de extractos microbianos frente a pudriciones radiculares en aguacate generados por Phytophthora cinnamomi, tesis de doctorado, Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia.Rathnayake, G. N., Kumar, N. S., Jayasinghe, L., Araya, H., & Fujimoto, Y. (2017). Chemical investigation of metabolites produced by an endophytic fungi Phialemonium curvatum from the leaves of Passiflora edulis. Natural product research, 32(20), 2483-2486. doi:10. 1080/14786419.2017.1416373Ríos, M. (2010). Control Biológico de la Antracnosis (Colletotrichum gloeosporioides Penz) en tomate de árbol (Solanum betaceum), en el ecotipo: Amarillo punton, mediante hongos endófitos antagonistas, tesis de grado. Universidad Politecnica Salesiana. Sede Cuenca, Cuenca, Ecuador.Robl, D., Da Silva Delabona, P., Mergel, C. M., Rojas, J. D., Dos Santos Costa, P., . . . Padilla, G. (2013). The capability of endophytic fungi for production of hemicellulases and related enzymes. BMC biotechnology, 13(94), 1-13. doi:10.1186/1472-6750-13-94Rodríguez, R. J., White Jr, J. F., Arnold, A. E., & Redman, A. R. A. (2009). Fungal endophytes: diversity and functional roles. New Phytologist, 182(2), 314-330. doi:10.1111 / j.1469-8137.2009.02773.xSagar, R., & Sharma, G. P. (2012). Measurement of alpha diversity using Simpson index (1/λ): the jeopardy. Environmental Skeptics and Critics, 1(1), 23-24.Sanches, M. S., Orlandelli, R. C., Polonio, J. C., Dos Santos, M. A., Sarragiotto, M. H., . . . Pamphile, J. A. (2017). Endophytes isolated from passion fruit plants: molecular identification, chemical characterization and antibacterial activity of secondary metabolites. Journal of Applied Pharmaceutical Science, 7(4), 038-043. doi:10.7324/JAPS.2017.70405Sanches, M. S., Orlandelli, R. C., Specian, V., Garcia, A., Dos Santos, M. C., Pamphile, J. A. (2013). Bioprospecção de Fungo Endofítico Isolado de Passiflora sp. com Potencial Biotecnológico. Biochemistry and Biotechnology Reports, 2(3), 130-133. doi:10.5433/2316-5200.2013v2n3espp130Seetharaman, P., Gnanasekar, S., Chandrasekaran, R., Chandrakasan, G., Kadarkarai, M., & Sivaperumal, S. (2017). Isolation and characterization of anticancer flavone chrysin (5, 7-dihydroxy flavone)-producing endophytic fungi from Passiflora incarnata L. leaves. Annals of Microbiology, 67(4), 321-331. doi:10.1007/s13213-017-1263-5Shahzad, R., Khan, A. L., Bilal, S., Asaf, S., & Lee, I. J. (2018). What Is There in Seeds? Vertically Transmitted Endophytic Resources for Sustainable Improvement in Plant Growth. Frontiers in Plant Science, 9(24), 1-10. doi:10.3389/fpls.2018.00024Silva, L. J., Silva, R. L., Barbosa, E., & Cavalcante, U. M. (2006). Atividade enzimática de fungos endofíticos e efeito na promoção do crescimento de mudas de maracujazeiro-amarelo. Revista Caatinga, 19(2), 128-134.Silva, M. H. (2017). Fungos endofíticos associados à Passiflora incarnata e avaliação de seu potencial biotecnológico, Tesis de maestría. Universidad Estatal Paulista, São Paulo, Brasil. Simpson, E. H. (1949). Measurement of diversity. Nature, 163(4148), 688. doi:10.1038/163688a0Stone, J. K., Polishook, J. D., & White, J. F. (2004). Endophytic fungi. En: Elsevier Academic Press (Ed.) Biodiversity of Fungi (pp. 241-270). Burlington, EE. UU.: ElSevier. doi:10.13140/RG.2.1.2497.0726Suhandono, S., Kusumawardhani, M. K., & Aditiawati, P. (2016). Isolation and molecular identification of endophytic bacteria from Rambutan fruits (Nephelium lappaceum L.) cultivar Binjai. HAYATI Journal of Biosciences, 23(1), 39-44. doi:10.1016/j.hjb.2016.01.005Ting, A., Sariah, M., Kadir, J., & Gurmit, S. (2009). Field evaluation of non-pathogenic Fusarium oxysporum isolates UPM31P1 and UPM39B3 for the control of Fusarium wilt in ‘Pisang Berangan’ (Musa, AAA). Acta horticulturae, 828, 139-144. doi:10.17660/ActaHortic.2009.828.13Vélez, S., & Fresneda, B. (1992). Diversidad florística, en las comunidades robledal y rastrojo alto, en la cuenca de la quebrada piedras blancas, antioquia. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 45(2), 3-25.Wani, Z. A., Ashraf, N., Mohiuddin, T., & Riyaz, S. (2015). Plant-endophyte symbiosis, an ecological perspective. Applied microbiology and biotechnology, 99(7), 2955-2965. doi:10.1007/s00253-015-6487-3Zaher, A. M., Makboul, M. A., Moharram, A. M., Tekwani, B. L., & Calderón, A. I. (2015). A new enniatin antibiotic from the endophyte Fusarium tricinctum Corda. The Journal of antibiotics, 68(3), 197-200. doi:10.1038 / ja.2014.129Zhou, W. N., White, J. F., Soares, M. A., Torres, M. S., Zhou, Z. P., & Li, H. Y. (2015). Diversity of fungi associated with plants growing in geothermal ecosystems and evaluation of their capacities to enhance thermotolerance of host plants. Journal of plant interactions, 10(1), 305-314. doi:10.1080/17429145.2015.1101495Zhou, W., Starr, J. L., Krumm, J. L., & Sword, G. A. (2016). The fungal endophyte Chaetomium globosum negatively affects both above-and belowground herbivores in cotton. FEMS microbiology ecology, 92(10), 1-22. doi:10.1093/femsec/fiw158Adikaram, N., Ewing, D., Karunaratne, A., & Wijeratne, E. (1992). Antifungal compounds from immature avocado fruit peel. Phytochemistry, 31, 93-96. doi:10.1016/031-9422(91)83013-BAgius, B., Setzer, M., Stokes, S., Walker, T., Haber, W., & Setzer, W. (2007). Composition and bioactivity of essential oils of Lauraceae from Monteverde, Costa Rica. International Journal Essential Oil Therapeutics, 1, 167-171. doi:10.4103/0974-8490.60585Agronet. (2015). Red de información y comunicación del sector agropecuario. Recuperado de http://www.agronet.gov.co/Paginas/default.aspx. Albarracín, L. T. (2017). Estudio fitoquímico bioguiado de los extractos de corteza de las especies Endlicheria oreocola y Endlicheria arenosa (Lauraceae), en busca de fuentes para el control del hongo fitopatógeno Colletotrichum tamarilloi, Tesis de Maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.Andrade, P., De León, C., Molina, E., Espíndola, M., Alvarado, D., & López, A. (2015). Totipotencialidad en plántulas de aguacate en la resistencia a Phytophthora cinnamomi. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 6(2): 361-373. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo. oa?id=263138086011Chanderbali, A. S., van der Werff, H., & Renner, S. (2001). Phylogeny and historical biogeography of Lauraceae: evidence from the chloroplast and nuclear genomes. Annals of the Missouri Botanical Garden, 88, 104-134. doi:10.2307/2666133Chang, H. T., Cheng, Y. H., Wu, C. L., Chang, S. T., Chang, T. T., & Su, Y. C. (2009). Antifungal activity of essential oil and its constituents from Calocedrus macrolepis var. formosana. Florin Leaf Against Plant Pathogenic Fungi. Bioresource Technology, 99, 6266-6270. doi:10.1016/j. biortech.2007.12.005.Demo, M., Oliva, M. D., López, M. L., Zunino, M. P., & Zygadlo, J. A. (2005). Antimicrobial activity of essential oils obtained from aromatic plants of Argentina. Pharmaceutical Biology, 43, 129-134. Recuperado de http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=85612108005Fierro, D. (2011). Etiología y manejo de Phytophthora cinnamomi (Rands) en aguacate en Michoacán, tesis de maestría. Colegio de posgraduados, Montecillo, México.Granados-Echegoyen, C., Pérez-Pacheco, R., Alonso-Hernández, N., Vásquez-López, A., Lagunez-Rivera, L., & Rojas-Olivos, A. (2015). Chemical characterization and mosquito larvicidal activity of essential oil from leaves of Persea americana Mill (Lauraceae) against Culex quinquefasciatus (Say). Asian Pacific Journal of Tropical Disease, 5, 463- 467. doi:10.1016/S2222-1808(15)60816-7Guzmán, J. D., Evangelopoulos, D., Gupta, A., Birchall, K., Mwaigwisya, S.; Bhakta, S. (2013). Antitubercular specific activity of ibuprofen and the other 2-arylpropanoic acids using the HT-SPOTi whole-cell phenotypic assay. British Medical Journal Open, 6, 1-13. doi:10.1136/ bmjopen-2013-002672Homolka L. (2013). Methods of Cryopreservation in Fungi. En V. Gupta et al. (Eds.), Laboratory Protocols in Fungal Biology (pp. 9-17). Nueva York, EE. UU.: Springer. doi:10.1007/978-1-4614-2356-0_2Jantan, I. B., Yalvema, M. F., Ahmad, N. W., & Jamal, J. A. (2005). Insecticidal activities of the leaf oils of eight Cinnamomum. species against Aedes aegypti and Aedes albopictus. Pharmaceutical Biology, 43, 526-532. doi:10.1080/13880200500220771Jemâa, J. M. B., Tersim, N., Toudert, K. T., & Khouja, M. L. (2012). Insecticidal activities of essential oils from leaves of Laurus nobilis L. from Tunisia, Algeria and Morocco, and comparative chemical composition. Journal of Stored Products Research, 48, 97-104. doi:10.1016/j.jspr.2011.10.003Mollataghi, A., Coudiere, E., Hadi, A. H. A., Mukhtar, M. R., Awang, K. . . . Ata, A. (2012). Anti-acetylcholinesterase, anti-α-glucosidase, anti-leishmanial and anti-fungal activities of chemical constituents of Beilschmiedia species. Fitoterapia, 83(2), 298-302. doi:10.1016/j.fitote.2011.11.009Pabón, L. C., & Cuca, L. E. (2010). Aporphine alkaloids from Ocotea macrophylla (Lauraceae). Química Nova, 33, 875-879. doi:10.1590/ S0100-40422010000400021Patiño, O., Prieto, J., & Moreno, P. (2012). Protocolos de actividad antifúngica sobre hongos fitopatógenos. Laboratorio de productos Naturales Vegetales. Bogotá, Colombia: Departamento de Química, Universidad Nacional de Colombia.Pandey, A., Mishra, A., & Mishra, A. (2012). Antifungal and antioxidative potential of oil and extracts derived from leaves of Indian spice plant Cinnamomum tamala. Cell Molecular Biology, 58, 142-147. doi:10.1170/ T933Perfetti, J. J., & Cortés, S. (2013). La agricultura y el desarrollo de los territorios rurales. En: Políticas para el desarrollo de la agricultura en Colombia. Bogotá, Colombia: Sociedad de Agricultores de Colombia y Fedesarrollo.Prieto, J., Pabón, L., Patiño, O., Delgado, W., & Cuca, L. (2010). Constituyentes químicos, actividad insecticida y antifúngica de los aceites esenciales de las hojas de dos especies del género Ocotea (Lauraceae). Revista Colombiana de Química, 39, 199-209. Recuperado de http:// www.redalyc.org/articulo.oa?id=309026684004Prieto, J. A., Patiño, O. J., Plazas, E. A., Pabón, L. C., Ávila, M. C., . . . Cuca, L. E. (2013). Natural products from plants as potential source agents for controlling Fusarium. En M. Nita (Ed.), Fungicides. Showcases of Integrated Plant Disease Management from Around the World (pp. 233- 78). Croacia: Intech. doi:10.5772/52338Rashmi, S., & Rajkumar, H. (2011). Phytochemical Analysis and In Vitro Evaluation of Antifungal Activity of Five Invasive Plant Species against Macrophomina Phaseolina (Tassi) Goid. International Journal of Plant Research, 1, 11-15. doi:10.5923/j.plant.20110101.02Reeksting, B., Taylor, N., & van den Berg, N. (2014). Flooding and Phytophthora cinnamomi: Effects on photosynthesis and chlorophyll fluorescence in shoots of non-grafted Persea americana (Mill.) rootstocks differing in tolerance to Phytophthora root rot. South African Journal of Botany, 95, 40-53. doi:10.1016/j.sajb.2014.08.004Romero, L. (2014). Estudio de la asociación entre algunas propiedades físicas y químicas del suelo y el comportamiento de la pudrición radical del aguacate causada por Phytophthora cinnamomi, tesis de maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia. Recuperado de http://www. bdigital.unal.edu.co/45124/#sthash.KGD4C5Pj.dpufSaleem, M., Bhatti, H. N., Jilani, M. I., & Hanif, M. A. (2015). Bioanalytical evaluation of Cinnamomum zeylanicum essential oil. Natural Product Research, 29(19), 1857-1859. doi:10.1080/14786419.2014.1002088Sharanappa, R., & Vidyasagar, G. (2015). Preliminary screening of ethnomedicinal plants for antibacterial activity. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research, 6(9), 3928-3935. doi:10.13040/ IJPSR.0975-8232.6(9).3928-35Terreaux, C., Maillard, M., Hostettmann, K., Lodi, G., & Hakizamungu, E. (1994). Analysis of the fungicidal constituents from the bark of Ocotea usambarensis Engl. (Lauraceae). Phytochemical Analysis, 5, 233-238. doi:10.1002/pca.2800050503Zhang, W., Hu, J. F., Lv, W.W., Zhao, Q. C., & Shi, G. B. (2012). Antibacterial, antifungal and cytotoxic isoquinoline alkaloids from Litsea cubeba. Molecules, 17, 12950-12960. doi:10.3390/molecules171112950Avila-Quezada, G. D., Téliz-Ortiz, D., González-Hernández, H., Vaquera-Huerta, H., Mojica-Guzmán, A. (2002). Dinámica espacio-temporal de la roña (Elsinoe perseae), el daño asociado a trips y antracnosis (Glomerella cingulata) del aguacate en Michoacán, México. Revista Mexicana de Fitopatología, 20, 77-87.Azam-Ali, S. N., & Squire, G. R. (2002). Principles of Tropical Agronomy. cabi. Baíza-Avelar, V. H. (2003). Guía técnica del cultivo del aguacate. San Salvador, El Salvador: Ministerio de Agricultura y Ganadería, Programa Nacional de Frutas de El Salvador, Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura.Barbosa, R. J. F., & Meza, C. L. S. (2009). Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium oxysporum Schlecht f. sp passiflorae en maracuyá (Passiflora edulis Sims var. flavicarpa) del municipio zona bananera colombiana. Revista Facultad Nacional de Agronomía, 62(1), 4743-4748.Barragán, C. E., & Guzmán, M. (2014). Molecular detection of Potato yellow vein virus in the natural whitefly vector Trialeurodes vaporariorum, Westwood. Revista de Protección Vegetal, 29(3), 168-176.Barrett, S., & Rathbone, D. (2018). Long-term phosphite application maintains species assemblages, richness and structure of plant communities invaded by Phytophthora cinnamomi. Austral Ecology, 43(4), 360-374. doi: 10.1111/aec.12574Bernal, J. A. (2016). Estudios ecofisiológicos en aguacate cv. Hass en diferentes ambientes como alternativa productiva en Colombia, tesis doctoral. Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia.Bernal, J. A., & Díaz, C. A. (2014). Manejo del cultivo. En Bernal et al. (Eds.), Actualización Tecnológica y Buenas Prácticas Agrícolas (BPA) en el Cultivo de Aguacate. Medellín, Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica).Bernal, J. A., & Díaz, C. A. (2005). Tecnología para el cultivo de la Curuba. Manual Técnico 6. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. Rionegro, Antioquia (Colombia): Corpoica.Board, J. E., Kamal, M., & Harville, B. G. (1992). Temporal importance of greater light interception to increased yield in narrow-row soybean. Agronomy Journal, 84(4), 575-579. doi:10.2134/agronj1992.000219 62008400040006xBosco, L., Giacometto, E., & Tavella, L. (2008). Colonization and Predation of Trips (Thysanoptera: Thripidae) by Orius spp. (Heteroptera: Anthocoridae) in Sweet Pepper Greenhouses in Northwest Italy. Biological Control, 44(3), 331-340. doi:10.1016/j.biocontrol.2007.10.027Broadley, M., Brown, P., Cakmak, I., Ma, J. F., Rengel, Z., & Zhao, F. (2012). Beneficial elements. En P. Marschner (Ed), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 249-269). 3.ª edición. Nueva York, EE. UU.: Academic Press. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00008-XCámara de Comercio de Bogotá. (2015). Manual de tomate de árbol. Programa de apoyo agrícola y agroindustrial, Vicepresidencia de fortalecimiento empresarial. Bogotá, Colombia: Cámara de Comercio de Bogotá.Cardillo, E., Acedo, A., & Abad, E. (2018). Topographic effects on dispersal patterns of Phytophthora cinnamomi at a stand scale in a Spanish heathland. Plos One, 13(3), 1-23. doi:10.1371/journal.pone.0195060Cerón-González, C., Rodríguez-Leyva, E., Lomeli-Flores, J. R., Hernández-Olmos, C. E., Peña-Martínez, R., & Mora-Aguilera, G. (2012). Evaluación de insecticidas sintéticos sobre adultos de Metamasius spinolae (Coleoptera: Curculionidae) procedentes de Tlalnepantla, Morelos. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 3(2), 217-229.Clark, C. J., & Richardson, A. C. (2002). Biomass and mineral nutrient partitioning in a developing tamarillo (Cyphomandra betacea) crop. Scientia Horticulturae, 94(1), 41-51.Díaz, A. (2008). Buenas Prácticas Agrícolas: Guía para pequeños y medianos agroempresarios. Serie de Agronegocios, Cuadernos para la Exportación. San José, Costa Rica: Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (iica).Dong, L. Q., & Zhang, K. Q. (2006). Microbial control of plant-parasitic nematodes: a five-party interaction. Plant and Soil, 288(1/2), 31-45. doi:10.1007/s11104-006-9009-3Eraso, B. (s. f.). El cultivo de Curuba. Pasto, Colombia: Instituto Colombiano Agropecuario (ica). Espejo, D., Hidalgo, J., Santamarñia, M., & Fernández, J. (2014). Insectos asociados entre un cultivo de curuba y un fragmento de bosque Alto Andino de la Sabana de Bogotá. Revista Inventum, 6, 9-16.Ferreira, E. M., Alfenas, A. C., Maffia, L. A., & Mafia, R. G. (2006). Efficiency of systemic fungicides for control of Cylindrocladium candelabrum in eucalypt. Fitopatologia Brasileira, 31(5), 468-475.Fischer, G., & Miranda, D. (2012). Manual para el Cultivo de Frutales en el Trópico. Bogotá, Colombia: Produmedios.Fischer, G., Casierra-Posada, F., & Piedrahíta, W. (2009). Ecofisiología de las especies pasifloráceas cultivadas en Colombia. En D. Miranda et al. (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba (pp. 45-67). Bogotá, Colombia: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.Forero, R., Ortiz, E., De León, W., Gómez, J. C., & Hoyos-Carvajal, L. (2015). Analysis of resistance to Fusarium oxysporum in Passiflora maliformis L. plants. Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 9(2), 197-208. doi:10.17584/rcch.2015v9i2.4174Gálvez, N. C. (2003). Conservación de biodiversidad: propuesta metodológica y estudio de caso para el cumplimiento de las Buenas Prácticas Agrícolas eurep y tesco. Tesis de Ingeniería Agronómica. Santiago, Chile: Universidad Católica de Chile.García-Morantes, J. (2016). Fenología y herbívoros plaga del cultivo de curuba en Pasca, Cundinamarca, tesis de maestría. Universidad Nacional de Colombia, Bogotá, Colombia.Garza, U. E. (2001). El minador de la hoja Liriomyza spp y su manejo en la Planicie Huasteca. INIFAP. CIRNE. Campo Experimental Ebano. Folleto técnico (5).Guerrero-López, E., Potosí-Guampe, C., Melgarejo, L. M., & Hoyos-Carvajal, L. (2012). Manejo Agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las buenas prácticas agrícolas (bpa). En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 123-144). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8547/Gutiérrez, N., Serra, J. A., & Dussan, S. (2012). Priorización de factores críticos para implantar buenas prácticas agrícolas en pequeños productores. Cuadernos de Desarrollo Rural, 9(69), 221-237.Haag, H. P., de Oliveira, G. D., Borducchi, A. S., & Sarruge, J. R. (1973). Absorção de nutrientes por duas variedades de maracujá. Anais da Escola Superior de Agricultura Luiz de Queiroz, 30, 267-279.Hawkesford, M., Horst, W., Kichey, T., Lambers, H., Schjoerring, J., White, P. (2012). Functions of macronutrients. En P. Marschner (Ed.), Marschner’s Mineral Nutrition of Higher Plants (pp. 135-189). 3.ª Edition. Nueva York, EE. UU.: Academic Press. doi:10.1016/B978-0-12-384905-2.00006-6Hoyos, L., & Castillo, S. Y. (2015). Enfermedades en granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 153-176). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.Instituto Colombiano Agropecuario (ica). (2017). Resolución 30021 de 2017, por medio del cual se establecen los requisitos para la certificación en buenas prácticas agrícolas en producción primaria de vegetales y otras especies para consumo humano. Bogotá, Colombia.Insecticide Resistance Action Committee (irac). (2011). Mechanisms of insecticide resistance in Western Flower Thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande) IRAC Sucking Pest WG, Poster Ver. 2. Recuperado de http://www. irac-online.org/documents/frankliniella-occidentalis-irm-poster/Jaramillo, M. M., Gutiérrez, P. A., Cotes, J. M., González, E. P., & Marín, M. (2011). Detección de los virus AMV, CMV y PLRV en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en Antioquia, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía-Medellín, 64(1), 5831-5844.Jaramillo, M. M., Álvarez, J. A., & Montoya, M. M. (2013). Características de los virus asociados a la virosis del tomate de árbol (Solanum betaceum) en Colombia. Revista Lasallista de Investigación, 9(1), 115-127.Lemos, J. P. D., & Paiva, É. A. S. (2006). The effects of sooty mold on photosynthesis and mesophyll structure of mahogany (Swietenia macrophylla King., Meliaceae). Bragantiai 65(1), 11-17.Lizarazo, M. Á., Hernández, C. A., Fischer, G., & Gómez, M. I. (2013). Biomasa, parámetros foliares y sintomatología en respuesta a diferentes niveles de manganeso, zinc y boro en curuba (Passiflora tripartita var. mollissima). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 7(1), 31-45.Llanos, C. A. H., Arango, D. L., & Giraldo, M. C. (2008). Actividad insecticida de extractos de semilla de Annona muricata (Anonaceae) sobre Sitophilus zeamais (Coleoptera: Curculionidae). Revista Colombiana de Entomología, 34(1), 76-82.Malpartida-Zevallos, J., Narrea-Cango, M., & Dale-Larraburre, W. (2013). Patogenicidad de Beauveria bassiana (Bals) Vuill., sobre el gusano defoliador del maracuyá Dione juno (Cramer) (Lepidoptera: Nymphalidae) en laboratorio. Ecología Aplicada, 12(2), 75-81.Moya, J., & García, C. (2010). Determinación de la incidencia e identificación de nematodos fitoparásitos en un cultivo comercial de gulupa Passiflora edulis Sims, tesis de grado. Universidad de Cundinamarca, Fusagasugá, Colombia.Ocampo, J., Marín, C., Posada, C., López, N., & Solano, N. (2012). Establecimiento y zonas productoras del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims). En J. Ocampo & K. Wickhuys (Ed.), Tecnología para el Cultivo de Gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia (pp. 33 – 37). Bogotá, Colombia: Centro de Biosistemas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano, Centro Internacional de Agricultura Tropical (ciat), Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural.Organización Mundial de la Salud (oms). (2017). Inocuidad de los alimentos. Nota descriptiva. Recuperado de http://www.who.int/mediacentre/ factsheets/fs399/es/Pardo-Locarno, L. C., & Montoya-Lerma, J. (2007). Ciclo de vida, importancia agrícola y manejo integrado de la chisa rizófaga Phyllophaga menetriesi Blanchard (Coleoptera: Melolonthidae), en Cauca y Quindío, Colombia. Acta Agronómica, 56(4), 195-202Patil, J., Goel, S., & Yadav, S. (2017). Bio-management of cucumber wilt complex caused byroot-knot nematode, Meloidogyne incognita and Fusarium oxysporum f. sp. cucumerinum in polyhouse under protected cultivation. Journal of Pure and Applied Microbiology, 11(4), 1909-1917. doi:10.22207/JPAM.11.4.31Peñaloza, M. C., & Díaz, G. (2004). Así se maneja y controla el picudo de los cítricos Compsus sp. Bogotá, Colombia: Instituto Colombiano Agropecuario. Pérez, L. V., & Melgarejo, L. M. (2012). Caracterización ecofisiológica de la gulupa (Passiflora edulis Sims) bajo tres condiciones ambientales en el departamento de Cundinamarca. En L. M. Melgarejo (Ed.), Ecofisiología del cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims (pp. 11-32). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia.Procolombia. (2015). Atrévase a exportar. El periódico de las oportunidades. Sexta edición. Recuperado de http://www.procolombia.co/sites/default/files/ periodico_oportunidades_sexta_edicion_-_marzo_2015.pdfQuiroga-Rojas, L. F., Ruiz-Quiñones, N., Muñoz-Motta, G., & Lozano-Tovar, M. D. (2012). Microorganismos rizosféricos, potenciales antagonistas de Fusarium sp. causante de la pudrición radicular de maracuyá (Passiflora edulis Sims). Acta Agronómica, 61(3), 265-272.Ramírez, G., & Morales, J. G. (2013). Primer informe de Cylindrocarpon destructans (Zinss) Scholten afectando plántulas de aguacate (Persea americana Mill.) en Colombia. Revista de Protección Vegetal, 28(1), 27-35.Reitz, S. R., Gao, Y., & Lei, Z. (2013). Insecticide use and the ecology of invasive Liriomyza leafminer management. En S. Trdan (Ed.), Insecticides-Development of Safer and More Effective Technologies (pp. 235-255). Croacia: Intech. doi:10.5772/53874Ríos, P., González, M., Obregón, S., Carbonero, M. D., Leal, J. R., Sánchez, M. E. (2018). Brassica-based seedmeal biofumigation to control Phytophthora cinnamomi in the Spanish “dehesa” oak trees. Phytopathologia Mediterranea, 56(3), 392-399. doi:10.14601/Phytopathol_Mediterr-20771Ríos, D., & Tafur, R. (2003). Variedades de aguacate para el trópico: caso Colombia. Actas del V Congreso Mundial del Aguacate, Málaga, España. pp. 143-147.Robledo-Buriticá, J., Ángel-García, C., & Castaño-Zapata, J. (2017). Microscopía electrónica de barrido ambiental del proceso de infección de Fusarium solani f. sp. passiflorae en plántulas de maracuyá (Passiflora edulis f. flavicarpa). Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, 41(159), 213-220. doi:10.18257/raccefyn.471Rodríguez, A., & Rodríguez, A. K. (2015). Buenas Prácticas Agrícolas (bpa) en el cultivo de granadilla (Passiflora ligularis Juss). En L. M. Melgarejo (Ed.), Granadilla (Passiflora ligularis Juss): caracterización ecofisiológica del cultivo (pp. 197-230). Bogotá, Colombia: Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://uneditorial.net/uflip/granadilla-caracterizacion-ecofisiologica/pubData/source/Granadilla.pdfRodríguez-Henao, E., Caicedo-Arana, A., Enríquez-Valencia, A. L., & Muñoz-Flórez, J. E. (2017). Evaluation of tolerance to Phytophthora cinnamomi Rands in avocado (Persea americana Miller.) germplasm. Acta Agronómica, 66(1), 128-134. doi:10.15446/acag.v66n1.50705Rondón, O., Sanabria de Albarracín, N., & Rondón, A. (2006). Respuesta in vitro a la acción de fungicidas para el control de antracnosis, Colletotrichum gloeosporioides Penz, en frutos de mango. Agronomía Tropical, 56(2), 219-235.Salamanca, J., Varón, E. H., & Santos, O. (2010). Cría y evaluación de la capacidad de depredación de Chrysoperla externa sobre Neohydatothrips signifer, trips plaga del cultivo de maracuyá. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 11(1), 31-40.Santos, L. O., Macamo, E. I. D., Haddad, F., & Silva, H. S. A. (2017). Activity of rhizobacteria antagonistic to Fusarium oxysporum f. sp. passiflorae in soils cultivated with monocotyledonous plants. Pesquisa Agropecuária Tropical, 47(4), 472-479. doi:10.1590/1983-40632017v4749752Toapanta-Gallegos, D. E., Morillo-Velastegui, L. E., & Viera-Arroyo, W. F. (2017). Diagnóstico molecular de Phytophthora cinnamomi asociado a la pudrición radicular en zonas productoras de aguacate en Ecuador. Revista Corpoica: Ciencia y Tecnología Agropecuaria, 18(2), 285-294. doi:10.21930/rcta.vol18_num2_art:628Vallejo, F., Morón, M. A., & Orduz, S. (2007). Biología de Phyllophaga obsoleta Blanchard (Coleóptera: Melolonthidae), especie rizófaga del complejo “chisa” de Colombia. Boletín científico-Centro de Museos-Museo de Historia Natural, 11, 188-204.Villegas, N. P., Gaigl, A., & Vallejo, L. F. (2006). Reconocimiento de especies del complejo chisa (Coleoptera: Melolonthidae) asociadas al cultivo de cebolla y pasto kikuyo del departamento de Risaralda, Colombia. Agronomía, 14, 51-63.Zachrisson, B. (2005). El Control Biológico Aplicado (cba) de Insectos-Plagas, en la Agricultura: Utopía o Realidad. Ecos del Agro-8. doi:10.13140/ RG.2.1.1042.8246Zapata, M. J., Sánchez, P. A. G., Torres, J. M. C., Jaimes, E. P. G., & Montoya, M. M. (2011). Detección de los virus AMV, CMV y PLRV en cultivos de tomate de árbol (Solanum betaceum Cav.) en Antioquia, Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía-Medellín, 64(1), 5831-5844.GeneralLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-83964https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/79864/1/license.txtcccfe52f796b7c63423298c2d3365fc6MD51ORIGINALGulupa 9789587839357.pdfGulupa 9789587839357.pdfLibro del Departamento de Biologíaapplication/pdf16222607https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/79864/2/Gulupa%209789587839357.pdfede12b65abed73db69b7312e136e2a22MD52THUMBNAILGulupa 9789587839357.pdf.jpgGulupa 9789587839357.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg9198https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/79864/3/Gulupa%209789587839357.pdf.jpg712775295f76c15b3b31fa59567143f1MD53unal/79864oai:repositorio.unal.edu.co:unal/798642023-11-13 15:58:46.027Repositorio Institucional Universidad Nacional de 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