Aumento de semillas de Phaseolus albicarminus (Leguminosae, Phaseoleae) mediante técnicas de propagación asexual
Ilustraciones, fotografías, tablas
- Autores:
-
Sabogal Carvajal, Ramiro Andrés
- Tipo de recurso:
- Fecha de publicación:
- 2024
- Institución:
- Universidad Nacional de Colombia
- Repositorio:
- Universidad Nacional de Colombia
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.unal.edu.co:unal/86418
- Palabra clave:
- 630 - Agricultura y tecnologías relacionadas::635 - Cultivos hortícolas (Horticultura)
Producción de semillas
Seed production
Multiplicación de semillas
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Propagación vegetativa
Vegetative propagation
Acodo
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Abanto Rodriguez, C., Alves Chagas, E., Paes de Almeida, L. F., Mathews Delgado, J. P., Del Castillo Torres, D., Pinedo Panduro, M., Correa da Silva, V. E., & Choy Sanchez, J. (2015). Genotype and Grafting Techniques Effects on Survival and Growth of Camu Camu Plants. Journal of Agricultural Science, 7(6), 160–170. https://doi.org/10.5539/jas.v7n6p160 Abd-Alla, M. H. (2011). Nodulation and nitrogen fixation in interspecies grafts of soybean and common bean is controlled by isoflavonoid signal molecules translocated from shoot. Plant, Soil and Environment, 57(10), 453–458. https://doi.org/10.17221/379/2010-PSE Alliance Bioversity International - CIAT. (2022). Colombia Genebank | Alliance Bioversity International - CIAT. Sitio Web. https://alliancebioversityciat.org/services/genebanks/colombia-genebank Álvarez Hernández, J. C. (2012). Comportamiento agronómico e incidencia de enfermedades en plantas de tomate (Solanum lycopersicum L.) injertadas. Acta Agronómica, 61(2), 117–125. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=169925874007 Álvarez López, H. (2019). Manual de Injertación en frutales: Contribucción en Fisiología Vegetal. Repositorio Institucional Digital - Universidad Nacional de Jaén. http://m.repositorio.unj.edu.pe/bitstream/UNJ/389/1/MANUAL%20DE%20INJERTACION.pdf Andrade Júnior, S., Sobreira Alexandre, R., Romais Schmildt, E., Partelli, F. L., Gava Ferrão, M. A., & Mauri, A. L. (2013). Comparison between grafting and cutting as vegetative propagation methods for conilon coffee plants. Acta Scientiarum. Agronomy, 35(4), 461–469. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v35i4.16917 Araya Villalobos, R., Toro Chica, O., Martínez Umaña, K., & Debouck, D. G. (2014). Phaseolus albicarminus, a new and rare wild bean species from Costa Rica (Poster). PCCMCA - 59 Reunión Anual, Programa Coperativo Centroamericano Para El Mejoramiento de Cultivos y Animales. Managua, Nicaragua, 28 April-3 May 2014).Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT); Universidad de Costa Rica (UCR); Centro Internacional de Agricultura Tropica (CIAT). http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/biblioteca/Phaseolus_albicarminus_a_new_and_rare_wild_bean_species_from_Costa_Rica.pdf Arrieta Ramos, B. G., Ramírez Guerrero, L. G., & Navarrete Valencia, A. L. (2017). Manual de Prácticas de la Unidad de Aprendizaje Propagación de Plantas (María. RAMOS-ESCAMILLA, Ed.; Primera Edición). ECORFAN. www.ecorfan.org Azcón Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de Fisiología Vegetal (Universidad de Barcelona, Ed.; 2.a Edició). McGRAW -Hill interamericana. Bernal Alzate, J., Grimaldo Juarez, O., Gonzalez Mendoza, D., Cervantes Díaz, L., Rueda Puente, E. O., & Ceceña Durán, C. (2016). El injerto como alternativa para mejorar el rendimiento en la producción de frijol ejotero (Phaseoulus vulgaris L.). Idesia, 34(2), 43–46. https://doi.org/10.4067/s0718-34292016005000006 Bidwell, R., 1998, Fisiología vegetal, AGT Editor, México. Bogoescu, M., Doltu, M., & Sora, D. (2014). Prevention and control of soilborne diseases and nematodes in eggplants crop by grafting plants combined with soil fumigation. Acta Horticulturae, 1044, 331–336. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1044.43 Boutelou, C. (1817). Tratado del injerto. https://bibdigital.rjb.csic.es/medias/3a/a8/bb/d2/3aa8bbd2-f3bd-4035-98de-af73b6aaffd7/files/BOU_Trat_Injer.pdf Cartagena Valenzuela, J. R. (1994). Aspectos fisiológicos de la propagación de plantas. Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA. https://repository.agrosavia.co/handle/20.500.12324/32720 Centro Internacional de Agricultura Tropical - CIAT. (2019). Conservación y uso de cultivos -CIAT. Sitio Web. https://ciat.cgiar.org/lo-que-hacemos/conservacion-y-uso-de-cultivos/?lang=es CGIAR Genebank Platform. (2022). Genebanks | CGIAR Genebank Platform. Sitio Web. https://www.genebanks.org/genebanks/ CIAT - Programa de Recursos Genéticos, Gereda, J. M., Sabogal Carvajal, R., Debouck, D. G., Wenzl, P., & van Beem, J. (2017). Regeneración y caracterización de los recursos genéticos de Frijol en el CIAT (SOP-REG-001-ES-v.20181025.docx; 2.0). https://ciatshare.ciat.cgiar.org/sites/grp/qms/science/regeneration/_layouts/15/WopiFrame.aspx?sourcedoc={6E159279-9642-44FD-89A1-BB617D38E3F1}&file=SOP-REG-001-ES-v.20181025.docx&action=default CROP TRUST. (2019). Crop Trust - Securing our food, forever. Sitio Web. https://www.croptrust.org/ Crop Wild Relatives. (2019). Bean - Crop Wild Relatives. Sitio Web. https://www.cwrdiversity.org/crop/bean/ Crop Wild Relatives. (2022). Crop Wild Relatives. Sitio Web. https://www.cwrdiversity.org/about/why-are-cwr-important/ Cuervo, M., Ramírez, J. C., & Dorado, F. (2022). Anlisis Fitosanitario No. 01 - Fríjol Laboratorio de Sanidad de Germoplasma Programa de Recursos Genéticos (01). Debouck, D. G. (1978). Diversidad del frijol en Mexico y actividades de recoleccion de germoplasma (p. 13p). International Center for Tropical Agriculture. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/71919 Debouck, D. G. (1986). La búsqueda de diversidad genética de Phaseolus en los tres centros americanos como servicio al fitomejoramiento del cultivo. https://cgspace.cgiar.org/bitstream/handle/10568/71360/CIAT_COLOMBIA_000094_La_búsqueda_de_diversidad_genética_de_Phaseolus_en_los_tres_centros_american.pdf?sequence=1&isAllowed=y Debouck, D. G. (1988). Patrones de diversidad genetica en Phaseolus : hechos, ideas e implicaciones. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/71936 Debouck, D. G. (1992). Views on variability in Phaseolus beans. Bean Improvement Cooperative. Annual Report (USA), 35:9-10. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/65754 Debouck, D. G. (1999). Diversity in Phaseolus Species in Relation to the Common Bean (pp. 25–52). https://doi.org/10.1007/978-94-015-9211-6_2 Debouck, D. G. (2009). Flow chart of CIAT genebank operations. https://hdl.handle.net/10568/49631 Debouck, D. G. (2015a). Hacia el entendimiento: con conservación sí hay desarrollo. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). https://hdl.handle.net/10568/110114 Debouck, D. G. (2015b). Observations about Phaseolus Lignosus (Leguminosae: Papilionoideae: Phaseoleae), a bean species from the Bermuda Islands. Journal of the Botanical Research Institute of Texas, 9(1), 107–119. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/68451 Debouck, D. G. (2017, November 17). Successful seed increase of Phaseolus filiformis Benthan. Poster - International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Cali. CO. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/89651 Debouck, D. G. (2021). Phaseolus beans (Leguminosae, Phaseoleae): a checklist and notes on their taxonomy and ecology. Journal of the Botanical Research Institute of Texas, 15(1), 73–111. https://doi.org/10.17348/JBRIT.V15.I1.1052 Debouck, D. G., Chaves Barrantes, N., & Araya Villalobos, R. (2020). Phaseolus albicarminus (Leguminosae, Phaseoleae), a new wild bean species from the subhumid forests of southern central Costa Rica. Phytotaxa, 449(1), 1–14. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.449.1.1 Debouck, D. G., & Hidalgo, R. (1985). Morfología de la Planta de fríjol Común (Segunda). https://books.google.com.co/books?id=AtOLF2NhJogC&printsec=frontcover&hl=es&source=gbs_ge_summary_r&cad=0#v=onepage&q&f=false Debouck, D. G., Santaella, M., & Sabogal Carvajal, R. (2018, December 18). Successful seed increase of Phaseolus zimapanensis A. Delgado. Poster - International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Cali. CO. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/99106 Debouck, D. G., & Santos Meléndez, L. G. (2019). Las semillas de Phaseolus hygrophilus de Costa Rica no muestran comportamiento ortodoxo. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). https://hdl.handle.net/10568/103513 Debouck, D. G., & Tohme, J. M. (1989). Implications for bean breeders of studies on the origins of common beans, Phaseolus vulgaris L. In S. Beebe (Ed.), Current topics in breeding of common bean (pp. 3–42). International Center for Tropical Agriculture. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/88245 Delgado-Salinas, A., Bibler, R., & Lavin, M. (2006). Phylogeny of the genus Phaseolus (Leguminosae): A recent diversification in an ancient landscape. Systematic Botany, 31(4), 779–791. https://doi.org/10.1600/036364406779695960 Delgado-Salinas, A., Bruneau, A., & Doyle, J. J. (1993). Chloroplast DNA Phylogenetic Studies in New World Phaseolinae (Leguminosae: Papilionoideae: Phaseoleae). Systematic Botany, 18(1), 17. https://doi.org/10.2307/2419784 Dickson, M. H., & Boettger, M. A. (1977). Breeding for Multiple Root Rot Resistance in Snap Beans1. Journal of the American Society for Horticultural Science, 102(4), 373–377. https://doi.org/10.21273/JASHS.102.4.373 Dirección de Escuelas Agrarias - MINAGRO. (2008). Manual de Vivero. https://aulavirtual.agro.unlp.edu.ar/pluginfile.php/40611/mod_resource/content/1/020000_Manual_de_Vivero.pdf Dohle, S., Berny Mier y Teran, J. C., Egan, A., Kisha, T., & Khoury, C. K. (2019). Wild Beans (Phaseolus L.) of North America. In North American Crop Wild Relatives, Volume 2 (pp. 99–127). Springer International Publishing. https://doi.org/10.1007/978-3-319-97121-6_4 Editorial Agro Cultivos. (2019). Métodos de Propagación Vegetativa . Revista AgroSíntesis. https://www.agrosintesis.com/metodos-de-propagacion-vegetativa/ Engels, J. M. M., & Visser, L. (2007). Guía para el manejo eficaz de un banco de germoplasma. Manuales para Bancos de Germoplasma No. 6. www.bioversityinternational.org Equipo de regeneración- PRG - CIAT. (2022). Regeneración de germoplasma de fríjol. Escobar Acevedo, C. J., Zuluaga Peláez, J. J., & Osorio Moreno, V. E. (2002). Manual técnicas de propagación 12 de especies vegetales leñosas promisorias para el piedemonte de Caquetá (GRÁFICAS FLORENCIA, Ed.). Corpoica Regional 10. Feng, M., Augstein, F., Kareem, A., & Melnyk, C. W. (2024). Plant grafting: Molecular mechanisms and applications. Molecular Plant, 17(1), 75–91. https://doi.org/10.1016/J.MOLP.2023.12.006 Flores Montes De Oca, A. (2010, August). Manual agroclimático, para la realización de injertos en árboles frutales caducifolios de clima frío-templado, para principiantes. Huerto Fenológico Del Colegio de Geografía, de La Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM). http://huertofenologico.filos.unam.mx/files/2017/05/Manual_agroclimatico_injertos.pdf Frey, C., Encina García, A. E., & Acebes Arranz, J. L. (2022, March 15). Plantas quimera: arte y ciencia de los injertos. The Conversation: Academic Rigour, Journalistic Flair. https://theconversation.com/plantas-quimera-arte-y-ciencia-de-los-injertos-175853 Freytag, G. F., & Debouck, D. G. (2002). Taxonomy, distribution, and ecology of the genus phaseolus (Leguminosae-papilionoideae) in North America, Mexico and Central America (B. Lipscomb, Ed.). Botanical Research Institute of Texas. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/54291 Gaiji, S., & Debouck, D. G. (2008). Flujos de germoplasma en las Américas. 30 años de distribución de muestras de frijol por parte del Centro Internacional de Agricultura Tropical. Recursos Naturales y Ambiente (Costa Rica), 53, 54–61. www.cgiar.org Gallego Acuña, L. (2022). Mecasnismos celulares y moleculares del injerto en plantas [Universidad de Leon]. https://buleria.unileon.es/bitstream/handle/10612/15587/Gallego_Acu%c3%b1a_Lara.pdf?sequence=1&isAllowed=y Gautier, A. T., Chambaud, C., Brocard, L., Ollat, N., Gambetta, G. A., Delrot, S., & Cookson, S. J. (2019). Merging genotypes: graft union formation and scion-rootstock interactions. Journal of Experimental Botany, 70(3), 747–755. https://doi.org/10.1093/jxb/ery422 Gepts, Paul., & Debouck, D. G. (1991). Origin, domestication and evolution of the common bean (Phaseolus vulgaris L.). In A. van Schoonhoven & O. Voysest (Eds.), Common beans: Research for crop improvement (pp. 7–53). Commonwealth Agricultural Bureaux International. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/88263 Gereda, J., Mestizo, A., Ypiales, J., Sabogal Carvajal, R., Santaella, M., Santos, L. G., & Debouck, D. G. (2021, December 3). Successful seed increase of Phaseolus chiapasanus Piper. Póster- XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC), Noviembre 30 a Diciembre 3 de 2021. Alliance of Bioversity International and CIAT. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/110071 Google.(2023).GoogleEarth.https://earth.google.com/web/search/Semillas+del+Futuro,+Cali,+Valle+del+Cauca/ Grozeff-Gergoff, G. E., Ruscitti, M. F., & Gimenez, D. O. (2023). Introducción a la propagación vegetal De la fisiología a la práctica integrada (Editorial de la Universidad de La Plata, Ed.; 1st ed.). Universidad Nacional de La Plata. https://core.ac.uk/download/597602003 Gul, A., Cengiz, O., & Tepecik, M. (2017). The effect of grafting on salinity tolerance in cucumber plants grown in perlite. Acta Horticulturae, 1170(1170), 1165–1172. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2017.1170.150 Gurusamy, V., Bett, K. E., & Vandenberg, A. (2010). Grafting as a tool in common bean breeding. Canadian Journal of Plant Science, 90(3), 299–304. https://doi.org/10.4141/CJPS09077 Hamaguchi, H., Kokubun, M., Yoneyama, T., Hansen, A. P., & Akao, S. (1993). Control of Supernodulation in Intergeneric Grafts of Soybean and Common Bean. Crop Science, 33(4), 794–797. https://doi.org/10.2135/CROPSCI1993.0011183X003300040033X Hartmann H.T., Kester D.E., Davies F.T., Geneve R.L. (1997). Plant propagation: principles andpractices, 6th ed., Prentice Hall, EUA. Heywood, V., Casas, A., Ford-Lloyd, B., Kell, S., & Maxted, N. (2007). Conservation and sustainable use of crop wild relatives. Agriculture, Ecosystems & Environment, 121(3), 245–255. https://doi.org/10.1016/J.AGEE.2006.12.014 Hu, B., Ling, P., & Kleinhenz, M. (2016). Grafted tomato propagation: Effects of light intensity and temperature on graft healing and plant regrowth. Acta Horticulturae, 1140, 327–330. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1140.72 Hunter, D., & Heywood, V. (2011). Parientes Silvestres de los Cultivos Manual para la Conservación In Situ (D. Hunter & V. Heywood, Eds.; Primera). Bioversity Internacional 2012. https://www.bioversityinternational.org/fileadmin/_migrated/uploads/tx_news/Parientes_silvestres_de_los_cultivos_1641.pdf Izquierdo, J. A., & Hosfield, G. L. (1982). A simplified procedure for making cleft grafts and the evaluation of grafting effects on common bean. HortScience., 17, 750–752. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058986 Izquierdo, J. A., & Hosfield, G. L. (1982). A simplified procedure for making cleft grafts and the evaluation of grafting effects on common bean. HortScience., 17, 750–752. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058986 Jimenez Vazquez, K. R. (2020). Participación del transporte de auxinas en el crecimiento direccional de la raiz de Arabidopsis thaliana en interacción con Achromobacter sp. 5B1 [Univerdidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo]. http://bibliotecavirtual.dgb.umich.mx:8083/xmlui/bitstream/handle/DGB_UMICH/3981/IIQB-M-2020-1044.pdf?sequence=1&isAllowed=y Karunakaran, R., & Ilango R, V. J. (2020). Graft success, growth, and early flowering onset, as affected by grafting time in topworked tea plants. Journal of Crop Improvement, 34(3), 397–403. https://doi.org/10.1080/15427528.2020.1723768 Lee, J.-M., Kubota, C., Tsao, S. J., Bie, Z., Hoyos Echevarria, P., Morra, L., & Oda, M. (2010). Current status of vegetable grafting: Diffusion, grafting techniques, automation. Scientia Horticulturae, 127, 93–105. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2010.08.003 Linnaeus, C. von. (1753). Species plantarum Tomus II. A facsimile (1957–1959) of the first edition. (Tomo II, Vol. 2). Ray Society; sold by B. Quaritch,. http://www.botanicus.org/bibliography/b12069590 López Pérez, D., & Carazo Nuria. (2005). La producción de esquejes. Horticultura Internacional, 1,22–29. https://www.researchgate.net/publication/28280218_La_produccion_de_esquejes López Serrano, L., Canet Sanchis, G., Selak, G. V., Penella, C., San Bautista, A., López Galarza, S., & Calatayud, Á. (2020). Physiological characterization of a pepper hybrid rootstock designed to cope with salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry, 148, 207–219. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2020.01.016 Loupit, G., Brocard, L., Ollat, N., & Cookson, S. J. (2023). Grafting in plants: recent discoveries and new applications. Journal of Experimental Botany, 74(8), 2433–2447. https://doi.org/10.1093/JXB/ERAD061 Martínez Rodríguez, M. del C., Pérez Fernández, J. Enrique., & Loureiro Rodríguez, M. Dolores. (1999). La vid en el occidente del Principado de Asturias : descripción ampelográfica de las variedades. Consejo Superior de Investigaciones Científicas. Millán Ramos, C. C., & Salvador Pardo, M. I. (2018). Evaluación de cuatro tipos de injertros, bajo la influencia de las fases lunares para la especie forestal Sapindus saponaria L [Universidad Distrital Francisco José de Caldas]. https://repository.udistrital.edu.co/bitstream/handle/11349/13080/MillanRamosCri;jsessionid=326D0CB8A2038C315B8C35F6A8A22068?sequence=1 Ministerio de Agricultura Alimentación y Medio Ambiente Gobierno de España. (2014). Guía de gestión integrada de plagas para el cultivo de cítricos (A. y M. A. Ministerio de Agricultura, Ed.). http://publicacionesoficiales.boe.es/ Mudge, K., Janick, J., Scofield, S., & Goldschmidt, E. E. (2009). A History of Grafting. In J. Janick (Ed.), Horticultural Reviews (Vol. 35, pp. 437–493). John Wiley & Sons, Inc. https://onlinelibrary.wiley.com/doi/book/10.1002/9780470593776 Muralidhara, B. M., & Doreyappa Gowda, I. N. (2019). Soft wood grafting-A novel and rapid multiplication technique in Coorg mandarin (Citrus reticulate Blanco). Journal of Horticultural Sciences, 14(1), 7–12. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=577061293003 Naciones Unidas. (1992). Convenio sobre la diversidad biológica. https://www.cbd.int/doc/legal/cbd-es.pdf Nawaz, M. A., Imtiaz, M., Kong, Q., Cheng, F., Ahmed, W., Huang, Y., & Bie, Z. (2016). Grafting: A technique to modify ion accumulation in horticultural crops. Frontiers in Plant Science, 7, 1. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.01457 Nguyen, V. H., & Yen, C. R. (2018). Rootstock age and grafting season affect graft success and plant growth of papaya (Carica papaya L.) In greenhouse. Chilean Journal of Agricultural Research, 78(1), 59–67. https://doi.org/10.4067/S0718-58392018000100059 Nie, W., & Wen, D. (2023). Study on the Applications and Regulatory Mechanisms of Grafting on Vegetables. In Plants (Vol. 12, Issue 15). https://doi.org/10.3390/plants12152822 Orrala Borbor, N., Herrera Isla, L., & Balmaseda Espinosa, C. (2018). Watermelon yield and fruit quality under different graft patterns and NPK doses. Cultivos Tropicales, 39(3), 25–30. Orton, T. J. (2020). Breeding Methods for Outcrossing Plant Species: III. Asexual Propagation. In C. Cockle (Ed.), Horticultural Plant Breeding (pp. 309–326). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-815396-3.00017-2 Osuna Fernández, H. R., Osuna Fernández, A. M., & Fierro Álvarez, A. (2016). Manual de propagación de plantas superiores. Universidad Nacional Autónoma de México Universidad Autónoma Metropolitana. http://www.casadelibrosabiertos.uam.mx/contenido/contenido/Libroelectronico/manual_plantas.pdf Pérez Moreno, I. (2002). La filoxera o el invasor que vino de América. In Bol. S.E.A. (Vol. 30). http://sea-entomologia.org/PDF/BOLETIN_30/B30-044-218.pdf Porch, T., Beaver, J., Debouck, D., Jackson, S., Kelly, J., & Dempewolf, H. (2013). Use of Wild Relatives and Closely Related Species to Adapt Common Bean to Climate Change. Agronomy, 3(2), 433–461. https://doi.org/10.3390/agronomy3020433 PRG - CIAT. (2022). Accesiones de fríjol criticas (menos de 100 semillas). Programa de Recursos Genéticos (PRG) - CIAT. (2022). Colección de fríjol. Sitio Web. . https://genebank.ciat.cgiar.org/genebank/beancollection.do Reyes Quiñones, J. (2015). Guía de técnicas, métodos y procedimientos de reproducción asexual o vegetativa de las plantas. http://www.competitividad.org.do/wp-content/uploads/2016/05/Guía-de-técnicas-métodos-y-procedimientos-de-reproducción-asexual-o-vegetativa-de-las-plantas.pdf Rojas González, S., García Lozano, J., & Alarcón Rojas, M. (2004). Propagación asexual de plantas (Produmedios, Ed.). CORPOICA. www.produmedios.com Sabogal-Carvajal, R., Escobar-Guzman, E. H., Gereda, J. M., Santaella, M., & Debouck, D. (2023a). Propagación asexual de Phaseolus albicarminus Debouk & N. Chaves (Papilionoideae Phaseoleae), bajo condiciones controladas. https://hdl.handle.net/10568/131632 Sabogal-Carvajal, R., Escobar-Guzmán, H., Gereda, J. M., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2023b). Propagation of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves, by layering, cuttings, and grafting. https://hdl.handle.net/10568/135843 Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Escobar-Guzmán, H., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2023). Evaluation of rootstocks for the multiplication of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves. https://hdl.handle.net/10568/135853 Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Rosero, G., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2022). Produciendo germoplasma de fríjol, mediante injertos. Poster : XI Congreso Colombiano de Botánica, Universidad de Los Llanos, Villavicencio, Meta, Colombia, Alliance of Bioversity International and CIAT. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/125689 Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2021a). Avances en la producción de semillas de Phaseolus albicarminus Debouck y N. Chaves, mediante injerto (XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC)). https://hdl.handle.net/10568/116906 Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2021b). Progress in seed production of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves, by use of grafting. Póster - XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC), Noviembre 30 a Diciembre 3 de 2021. Alliance of Bioversity International and CIAT. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/116913 Sabogal-Carvajal, R., Mestizo, A., Ypiales, J., Gereda, J., Santaella, M., Santos, L. G., & Debouck, D. G. (2020). Successful seed increase of Phaseolus tuerckheimii Donn. Sm. Poster - Genetic Resources Program, Alliance Bioversity International – CIAT, Cali, Colombia. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/109648 Sanders, P. L., & Markhart, A. H. (1992). Interspecific Grafts Demonstrate Root System Control of Leaf Water Status in Water-Stressed Phaseolus. Journal of Experimental Botany, 43(12), 1563–1567. https://doi.org/10.1093/jxb/43.12.1563 Santalla, M., Monteagudo, A. B., González, A. M., & De Ron, A. M. (2004). Agronomical and quality traits of runner bean germplasm and implications for breeding. Euphytica, 135(2), 205–215. https://doi.org/10.1023/B:EUPH.0000014912.07993.E7/METRICS Schmit, V., & Baudoin, J. P. (1992). Screening for resistance to Ascochyta blight in populations of Phaseolus coccineus L. and P. polyanthus Greenman. Field Crops Research, 30(1–2), 155–165. https://doi.org/10.1016/0378-4290(92)90064-G Schmit, V., & Debouck, D. G. (1991). Observations on the origin of phaseolus polyanthus Greenman. Economic Botany, 45(3), 345–364. https://doi.org/10.1007/BF02887077/METRICS Sharkoff, J., & Brick, M. A. (1990). Effects of grafting roots and shoots of Phaseolus vulgaris and P. acutifolius on physiological and morphological variables (pp. 190–191). Colorado State University. http://handle.nal.usda.gov/10113/IND92013837 Sharma, A., & Zheng, B. (2019). Molecular responses during plant grafting and its regulation by auxins, cytokinins, and gibberellins. Biomolecules, 9(9), 397. https://doi.org/10.3390/biom9090397 Silva Souza, L., Diniz, R. P., Neves, R. de J., Alves, A. A. C., & Oliveira, E. J. de. (2018). Grafting as a strategy to increase flowering of cassava. Scientia Horticulturae, 240, 544–551. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2018.06.070 Singh, D. P., Singh, A. K., & Singh, A. (2021). Breeding methods used in asexual crops. In Plant Breeding and Cultivar Development (pp. 379–398). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-817563-7.00006-4 Taiz, L. (2013). Agriculture, plant physiology, and human population growth: past, present, and future. Theoretical and Experimental Plant Physiology, 167–181. https://doi.org/10.1590/s2197-00252013000300001 Tang, W., Zhang, R., Wang, M., Wang, H., Ding, F., Chen, X., Shen, X., Yin, C., & Mao, Z. (2024). Effects of two apple rootstocks on the soil microecology of replanted apple orchard soil. Scientia Horticulturae, 324, 112640. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2023.112640 Tedesco, S., Fevereiro, P., Kragler, F., & Pina, A. (2022). Plant grafting and graft incompatibility: A review from the grapevine perspective. Scientia Horticulturae, 299, 1–12. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2022.111019 The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2010). The Second Report on The State Of The World’s Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2014). Normas para bancos de germoplasma de recursos fitogenéticos para la alimentación y la agricultura. www.fao.org/ The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2019). El estado de la biodiversidad para la alimentación y la agricultura en el mundo - resumen. http://www.fao.org/3/CA3229ES/CA3229ES.pdf Umeya, K., & Imai, E. (1963). Growth response of azuki bean beetle (Callosobruchus chinensis L.) to beans harvested from the plants of grafting combination between azuki bean (Phaseolus radiatus L.) and kidney bean (P. vulgaris L.) (Preliminary report). Japanese Journal of Applied Entomology and Zoology, 7(2), 154–156. https://doi.org/10.1303/jjaez.7.154 Universidad de Florida, Universidad de Kentucky, & Universidad de Texas A&M. (2020a). Layering and Division. Sitio Web. https://irrecenvhort.ifas.ufl.edu/plant-prop-glossary/08-layering/01-layering-air.html Universidad de Florida, Universidad de Kentucky, & Universidad de Texas A&M. (2020b). Micropropagation. Sitio Web. https://irrecenvhort.ifas.ufl.edu/plant-prop-glossary/index.html Universidad Nacional del Nordeste - Argentina. (2016). Anatomía Floral. Reproducción Asexual y Sexual. Sitio Web Http://Www.Biologia.Edu.Ar/Botanica/Tema22/Index22.Htm. http://www.biologia.edu.ar/botanica/tema22/index22.htm Vallejo Cabrera, F. A., & Estrada Salazar, E. I. (2002). Mejoramiento Genético de Plantas (Primera). Universidad Nacional de Colombia - Sede Palmira. http://bdigital.unal.edu.co/46265/3/9588095115_Part01.PDF Vanderborght, T. (1983). Increasing seed of Phaseolus coccineus L. Plant Genetic Resources Newsletter, 53, 17–18. https://hdl.handle.net/10568/104405 Vázquez Yanes, C., Orozco, A., Rojas, M., Sánchez, M. E., & Cervantes, V. (1997). La reproducción de las plantas: semillas y meristemos (F. D. C. ECONÓMICA, Ed.; Primera ed).http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/lcpt157.htm Velasco Alvarado, M. de J. (2013). Anatomía y manejo agronómico de plantas injertadas en jitomate (Solanum lycopersicum L.) [Universidad Autónoma Chapingo]. http://portal.chapingo.mx/horticultura/pdf/tesis/TESISMCH2013050810128186.pdf Vince Prue, D., & Yeomans, R. (2018). Propagating plants vegetatively. In C. Bird (Ed.), The Fundamentals of Horticulture (pp. 162–185). Cambridge University Press. https://doi.org/10.1017/cbo9781139194150.011 Vougeleka, V., Savvas, D., Ntatsi, G., Ellinas, G., Zacharis, A., Iannetta, P. P. M., Mylona, P., & Saitanis, C. J. (2023). Impact of the rootstock genotype on the performance of grafted common bean (Phaseolus vulgaris L.) cultivars. Scientia Horticulturae, 311, 111821. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2022.111821 Warschefsky, E. J., Klein, L. L., Frank, M. H., Chitwood, D. H., Londo, J. P., von Wettberg, E. J. B., & Miller, A. J. (2016). Rootstocks: Diversity, Domestication, and Impacts on Shoot Phenotypes. In Trends in Plant Science (Vol. 21, Issue 5, pp. 418–437). Elsevier Ltd. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2015.11.008 White, J. W., & Castillo, J. A. (1989). Relative Effect of Root and Shoot Genotypes on Yield of Common Bean under Drought Stress. Crop Science, 29(2), 362. https://doi.org/10.2135/cropsci1989.0011183X002900020026x White, J. W., Montes, C., & Mendoza, L. Y. (1991). Use of grafting to characterize and alleviate hybrid dwarfness in common bean. Euphytica, 59(1), 19–25. https://doi.org/10.1007/BF00025357 Wright, J. W. (1976). Useful Techniques—Vegetative Propagation. In Introduction to Forest Genetics (pp. 111–133). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-765250-4.50011-3 Wulf, K. E., Reid, J. B., & Foo, E. (2020). What drives interspecies graft union success? Exploring the role of phylogenetic relatedness and stem anatomy. Physiologia Plantarum, 170(1), 132–147. https://doi.org/10.1111/PPL.13118 Yousef, A. F., Ali, M. M., Rizwan, H. M., Gad, A. G., Liang, D., Binqi, L., kalaji, H. M., Wróbel, J., Xu, Y., & Chen, F. (2021). Light quality and quantity affect graft union formation of tomato plants. Scientific Reports, 11(1). https://doi.org/10.1038/s41598-021-88971-5 Zaiter, H. Z., Coyne, D. P., & Clark, R. B. (1987). Temperature, Grafting method, and rootstock influence on iron-deficiency chlorosis of bean. Journal of the American Society for Horticultural Science., 112, 1023–1026. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058993 Zrig, A., ben Mohamed, H., Tounekti, T., Khemira, H., Serrano, M., Valero, D., & Vadel, A. M. (2016). Effect of rootstock on salinity tolerance of sweet almond (cv. Mazzetto). South African Journal of Botany, 102, 50–59. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2015.09.001 |
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Atribución-NoComercial 4.0 Internacionalhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2Vallejo Cabrera, Franco Alirio2b3121bfbbc7d2189b4046b4cec60696Debouck, Daniel Gabriel9e2c07a83441db2c5cbdcc1f7c3c98b0Sabogal Carvajal, Ramiro Andrésc38b530863eda7145e63bae5ca42dff7Alianza Bioversity – CIATBiodiversidad y ConservaciónBanco de Germoplasma Semilas del Futuro, Programa de Recursos Genéticos - CIATSabogal-Carvajal, Ramiro. [https://orcid.org/0000-0002-6023-5835]2024-07-09T14:39:36Z2024-07-09T14:39:36Z2024-05-20https://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/86418Universidad Nacional de ColombiaRepositorio Institucional Universidad Nacional de Colombiahttps://repositorio.unal.edu.co/Ilustraciones, fotografías, tablasPhaseolus albicarminus, pariente silvestre del fríjol cultivado; es endémico de Costa Rica y está en peligro de extinción. El banco de germoplasma Semillas del Futuro (Palmira - Colombia), salvaguarda una sola accesión (G40901) de este fríjol silvestre. La disponibilidad de semillas originales, la producción de semillas nuevas de P. albicarminus es limitada y escasa. Es susceptible al ataque de nemátodos y pudriciones radiculares, esto genera riesgo para la accesión. Esta investigación evaluó la propagación asexual, para identificar condiciones apropiadas para producir suficientes semillas de esta especie. Se realizaron dos experimentos bajo condiciones controladas: i. se comparó la propagación por acodos esquejes e injertos, para aumentar la cantidad plantas y semillas de P. albicarminus; ii. se evaluó la compatibilidad de 16 accesiones de fríjol como portainjertos para propagar a P. albicarminus. Los resultados del primer experimento señalan que los injertos (75% de prendimiento) son significativamente más efectivos para propagar a P. albicarminus, en comparación con los acodos (25% de prendimiento) y los esquejes (16.6% de prendimiento). En el segundo experimento se identificaron tres portainjertos (1 P. coccineus, 1 P. dumosus, 1 P. vulgaris) para la propagación exitosa de P. albicarminus. El uso de estos portainjertos contrarresta la susceptibilidad de P. albicarminus a problemas del suelo (hongos y nemátodos), también se logró acortar los días a floración. Mediante injertos se establecieron 53 plantas de P. albicarminus distribuidas en diferentes estaciones experimentales y a la fecha se han producido 7 semillas. Este método también ha permitido producir 673 semillas de P. chiapasanus (G40790) y 234 semillas de un híbrido de P. vulgaris x P. dumosus (G36387); demostrando que es una alternativa de regeneración en los bancos de germoplasma. (Texto tomado de la fuente)Phaseolus albicarminus, wild relative of the cultivated bean; It is endemic to Costa Rica and is in danger of extinction. The Future Seeds germplasm bank (Palmira - Colombia) safeguards a single accession (G40901) of this wild bean. The availability of original seeds, the production of new seeds of P. albicarminus is limited and scarce. It is susceptible to attack by nematodes and root rot, this creates a risk for the accession. This research evaluated asexual propagation, to identify appropriate conditions to produce enough seeds of this species. Two experiments were carried out under controlled conditions: i. Propagation by layering cuttings and grafts was compared to increase the number of plants and seeds of P. albicarminus; ii. The compatibility of 16 bean accessions as rootstocks to propagate P. albicarminus was evaluated. The results of the first experiment indicate that grafts (75% budding) are significantly more effective in propagating P. albicarminus, compared to layering (25% budding) and cuttings (16.6% budding). In the second experiment, three rootstocks (1 P. coccineus, 1 P. dumosus, 1 P. vulgaris) were identified for the successful propagation of P. albicarminus. The use of these rootstocks counteracts the susceptibility of P. albicarminus to soil problems (fungi and nematodes), and it was also possible to shorten the days of flowering. Using grafts, 53 P. albicarminus plants were established distributed in different experimental stations and to date 7 seeds have been produced. This method has also allowed the production of 673 seeds of P. chiapasanus (G40790) and 234 seeds of a hybrid of P. vulgaris x P. dumosus (G36387); demonstrating that it is an alternative for regeneration in germplasm banks.Banco de Germoplasma Semillas del Futuro, Programa de Recursos Genéticos del CIATMaestríaMagíster en Ciencias AgrariasEsta investigación evaluó la propagación asexual, para identificar condiciones apropiadas para producir suficientes semillas de esta especie. Se realizaron dos experimentos bajo condiciones controladas: i. se comparó la propagación por acodos esquejes e injertos, para aumentar la cantidad plantas y semillas de P. albicarminus; ii. se evaluó la compatibilidad de 16 accesiones de fríjol como portainjertos para propagar a P. albicarminus.Fisiología de cultivosCiencias Agropecuarias.Sede Palmiraxii, 108 páginas + anexosapplication/pdfspaUniversidad Nacional de ColombiaPalmira - Ciencias Agropecuarias - Maestría en Ciencias AgrariasFacultad de Ciencias AgropecuariasPalmira, Valle del Cauca, ColombiaUniversidad Nacional de Colombia - Sede Palmira630 - Agricultura y tecnologías relacionadas::635 - Cultivos hortícolas (Horticultura)Producción de semillasSeed productionMultiplicación de semillasSeed multiplicationPropagación vegetativaVegetative propagationAcodoEsquejeInjertoFríjol SilvestreRecursos GenéticosCuttingGraftingLayeringGenetic ResourcesWild BeanAumento de semillas de Phaseolus albicarminus (Leguminosae, Phaseoleae) mediante técnicas de propagación asexualIncrease in seeds of Phaseolus albicarminus (Leguminosae, Phaseoleae), through asexual propagation techniques.Trabajo de grado - Maestríainfo:eu-repo/semantics/masterThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionTexthttp://purl.org/redcol/resource_type/TMAbanto Rodriguez, C., Alves Chagas, E., Paes de Almeida, L. F., Mathews Delgado, J. P., Del Castillo Torres, D., Pinedo Panduro, M., Correa da Silva, V. E., & Choy Sanchez, J. (2015). Genotype and Grafting Techniques Effects on Survival and Growth of Camu Camu Plants. Journal of Agricultural Science, 7(6), 160–170. https://doi.org/10.5539/jas.v7n6p160Abd-Alla, M. H. (2011). Nodulation and nitrogen fixation in interspecies grafts of soybean and common bean is controlled by isoflavonoid signal molecules translocated from shoot. Plant, Soil and Environment, 57(10), 453–458. https://doi.org/10.17221/379/2010-PSEAlliance Bioversity International - CIAT. (2022). Colombia Genebank | Alliance Bioversity International - CIAT. Sitio Web. https://alliancebioversityciat.org/services/genebanks/colombia-genebankÁlvarez Hernández, J. C. (2012). Comportamiento agronómico e incidencia de enfermedades en plantas de tomate (Solanum lycopersicum L.) injertadas. Acta Agronómica, 61(2), 117–125. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=169925874007Álvarez López, H. (2019). Manual de Injertación en frutales: Contribucción en Fisiología Vegetal. Repositorio Institucional Digital - Universidad Nacional de Jaén. http://m.repositorio.unj.edu.pe/bitstream/UNJ/389/1/MANUAL%20DE%20INJERTACION.pdfAndrade Júnior, S., Sobreira Alexandre, R., Romais Schmildt, E., Partelli, F. L., Gava Ferrão, M. A., & Mauri, A. L. (2013). Comparison between grafting and cutting as vegetative propagation methods for conilon coffee plants. Acta Scientiarum. Agronomy, 35(4), 461–469. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v35i4.16917Araya Villalobos, R., Toro Chica, O., Martínez Umaña, K., & Debouck, D. G. (2014). Phaseolus albicarminus, a new and rare wild bean species from Costa Rica (Poster). PCCMCA - 59 Reunión Anual, Programa Coperativo Centroamericano Para El Mejoramiento de Cultivos y Animales. Managua, Nicaragua, 28 April-3 May 2014).Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT); Universidad de Costa Rica (UCR); Centro Internacional de Agricultura Tropica (CIAT). http://ciat-library.ciat.cgiar.org/Articulos_Ciat/biblioteca/Phaseolus_albicarminus_a_new_and_rare_wild_bean_species_from_Costa_Rica.pdfArrieta Ramos, B. G., Ramírez Guerrero, L. G., & Navarrete Valencia, A. L. (2017). Manual de Prácticas de la Unidad de Aprendizaje Propagación de Plantas (María. RAMOS-ESCAMILLA, Ed.; Primera Edición). ECORFAN. www.ecorfan.orgAzcón Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de Fisiología Vegetal (Universidad de Barcelona, Ed.; 2.a Edició). McGRAW -Hill interamericana.Bernal Alzate, J., Grimaldo Juarez, O., Gonzalez Mendoza, D., Cervantes Díaz, L., Rueda Puente, E. O., & Ceceña Durán, C. (2016). El injerto como alternativa para mejorar el rendimiento en la producción de frijol ejotero (Phaseoulus vulgaris L.). Idesia, 34(2), 43–46. https://doi.org/10.4067/s0718-34292016005000006Bidwell, R., 1998, Fisiología vegetal, AGT Editor, México.Bogoescu, M., Doltu, M., & Sora, D. (2014). Prevention and control of soilborne diseases and nematodes in eggplants crop by grafting plants combined with soil fumigation. Acta Horticulturae, 1044, 331–336. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2014.1044.43Boutelou, C. (1817). Tratado del injerto. https://bibdigital.rjb.csic.es/medias/3a/a8/bb/d2/3aa8bbd2-f3bd-4035-98de-af73b6aaffd7/files/BOU_Trat_Injer.pdfCartagena Valenzuela, J. R. (1994). Aspectos fisiológicos de la propagación de plantas. Corporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA. https://repository.agrosavia.co/handle/20.500.12324/32720Centro Internacional de Agricultura Tropical - CIAT. (2019). Conservación y uso de cultivos -CIAT. Sitio Web. https://ciat.cgiar.org/lo-que-hacemos/conservacion-y-uso-de-cultivos/?lang=esCGIAR Genebank Platform. (2022). Genebanks | CGIAR Genebank Platform. Sitio Web. https://www.genebanks.org/genebanks/CIAT - Programa de Recursos Genéticos, Gereda, J. M., Sabogal Carvajal, R., Debouck, D. G., Wenzl, P., & van Beem, J. (2017). Regeneración y caracterización de los recursos genéticos de Frijol en el CIAT (SOP-REG-001-ES-v.20181025.docx; 2.0). https://ciatshare.ciat.cgiar.org/sites/grp/qms/science/regeneration/_layouts/15/WopiFrame.aspx?sourcedoc={6E159279-9642-44FD-89A1-BB617D38E3F1}&file=SOP-REG-001-ES-v.20181025.docx&action=defaultCROP TRUST. (2019). Crop Trust - Securing our food, forever. Sitio Web. https://www.croptrust.org/Crop Wild Relatives. (2019). Bean - Crop Wild Relatives. Sitio Web. https://www.cwrdiversity.org/crop/bean/Crop Wild Relatives. (2022). Crop Wild Relatives. Sitio Web. https://www.cwrdiversity.org/about/why-are-cwr-important/Cuervo, M., Ramírez, J. C., & Dorado, F. (2022). Anlisis Fitosanitario No. 01 - Fríjol Laboratorio de Sanidad de Germoplasma Programa de Recursos Genéticos (01).Debouck, D. G. (1978). Diversidad del frijol en Mexico y actividades de recoleccion de germoplasma (p. 13p). International Center for Tropical Agriculture. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/71919Debouck, D. G. (1986). La búsqueda de diversidad genética de Phaseolus en los tres centros americanos como servicio al fitomejoramiento del cultivo. https://cgspace.cgiar.org/bitstream/handle/10568/71360/CIAT_COLOMBIA_000094_La_búsqueda_de_diversidad_genética_de_Phaseolus_en_los_tres_centros_american.pdf?sequence=1&isAllowed=yDebouck, D. G. (1988). Patrones de diversidad genetica en Phaseolus : hechos, ideas e implicaciones. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/71936Debouck, D. G. (1992). Views on variability in Phaseolus beans. Bean Improvement Cooperative. Annual Report (USA), 35:9-10. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/65754Debouck, D. G. (1999). Diversity in Phaseolus Species in Relation to the Common Bean (pp. 25–52). https://doi.org/10.1007/978-94-015-9211-6_2Debouck, D. G. (2009). Flow chart of CIAT genebank operations. https://hdl.handle.net/10568/49631Debouck, D. G. (2015a). Hacia el entendimiento: con conservación sí hay desarrollo. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). https://hdl.handle.net/10568/110114Debouck, D. G. (2015b). Observations about Phaseolus Lignosus (Leguminosae: Papilionoideae: Phaseoleae), a bean species from the Bermuda Islands. Journal of the Botanical Research Institute of Texas, 9(1), 107–119. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/68451Debouck, D. G. (2017, November 17). Successful seed increase of Phaseolus filiformis Benthan. Poster - International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Cali. CO. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/89651Debouck, D. G. (2021). Phaseolus beans (Leguminosae, Phaseoleae): a checklist and notes on their taxonomy and ecology. Journal of the Botanical Research Institute of Texas, 15(1), 73–111. https://doi.org/10.17348/JBRIT.V15.I1.1052Debouck, D. G., Chaves Barrantes, N., & Araya Villalobos, R. (2020). Phaseolus albicarminus (Leguminosae, Phaseoleae), a new wild bean species from the subhumid forests of southern central Costa Rica. Phytotaxa, 449(1), 1–14. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.449.1.1Debouck, D. G., & Hidalgo, R. (1985). Morfología de la Planta de fríjol Común (Segunda). https://books.google.com.co/books?id=AtOLF2NhJogC&printsec=frontcover&hl=es&source=gbs_ge_summary_r&cad=0#v=onepage&q&f=falseDebouck, D. G., Santaella, M., & Sabogal Carvajal, R. (2018, December 18). Successful seed increase of Phaseolus zimapanensis A. Delgado. Poster - International Center for Tropical Agriculture (CIAT). Cali. CO. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/99106Debouck, D. G., & Santos Meléndez, L. G. (2019). Las semillas de Phaseolus hygrophilus de Costa Rica no muestran comportamiento ortodoxo. Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). https://hdl.handle.net/10568/103513Debouck, D. G., & Tohme, J. M. (1989). Implications for bean breeders of studies on the origins of common beans, Phaseolus vulgaris L. In S. Beebe (Ed.), Current topics in breeding of common bean (pp. 3–42). International Center for Tropical Agriculture. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/88245Delgado-Salinas, A., Bibler, R., & Lavin, M. (2006). Phylogeny of the genus Phaseolus (Leguminosae): A recent diversification in an ancient landscape. Systematic Botany, 31(4), 779–791. https://doi.org/10.1600/036364406779695960Delgado-Salinas, A., Bruneau, A., & Doyle, J. J. (1993). Chloroplast DNA Phylogenetic Studies in New World Phaseolinae (Leguminosae: Papilionoideae: Phaseoleae). Systematic Botany, 18(1), 17. https://doi.org/10.2307/2419784Dickson, M. H., & Boettger, M. A. (1977). Breeding for Multiple Root Rot Resistance in Snap Beans1. Journal of the American Society for Horticultural Science, 102(4), 373–377. https://doi.org/10.21273/JASHS.102.4.373Dirección de Escuelas Agrarias - MINAGRO. (2008). Manual de Vivero. https://aulavirtual.agro.unlp.edu.ar/pluginfile.php/40611/mod_resource/content/1/020000_Manual_de_Vivero.pdfDohle, S., Berny Mier y Teran, J. C., Egan, A., Kisha, T., & Khoury, C. K. (2019). Wild Beans (Phaseolus L.) of North America. In North American Crop Wild Relatives, Volume 2 (pp. 99–127). Springer International Publishing. https://doi.org/10.1007/978-3-319-97121-6_4Editorial Agro Cultivos. (2019). Métodos de Propagación Vegetativa . Revista AgroSíntesis. https://www.agrosintesis.com/metodos-de-propagacion-vegetativa/Engels, J. M. M., & Visser, L. (2007). Guía para el manejo eficaz de un banco de germoplasma. Manuales para Bancos de Germoplasma No. 6. www.bioversityinternational.orgEquipo de regeneración- PRG - CIAT. (2022). Regeneración de germoplasma de fríjol.Escobar Acevedo, C. J., Zuluaga Peláez, J. J., & Osorio Moreno, V. E. (2002). Manual técnicas de propagación 12 de especies vegetales leñosas promisorias para el piedemonte de Caquetá (GRÁFICAS FLORENCIA, Ed.). Corpoica Regional 10.Feng, M., Augstein, F., Kareem, A., & Melnyk, C. W. (2024). Plant grafting: Molecular mechanisms and applications. Molecular Plant, 17(1), 75–91. https://doi.org/10.1016/J.MOLP.2023.12.006Flores Montes De Oca, A. (2010, August). Manual agroclimático, para la realización de injertos en árboles frutales caducifolios de clima frío-templado, para principiantes. Huerto Fenológico Del Colegio de Geografía, de La Universidad Nacional Autónoma de México (UNAM). http://huertofenologico.filos.unam.mx/files/2017/05/Manual_agroclimatico_injertos.pdfFrey, C., Encina García, A. E., & Acebes Arranz, J. L. (2022, March 15). Plantas quimera: arte y ciencia de los injertos. The Conversation: Academic Rigour, Journalistic Flair. https://theconversation.com/plantas-quimera-arte-y-ciencia-de-los-injertos-175853Freytag, G. F., & Debouck, D. G. (2002). Taxonomy, distribution, and ecology of the genus phaseolus (Leguminosae-papilionoideae) in North America, Mexico and Central America (B. Lipscomb, Ed.). Botanical Research Institute of Texas. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/54291Gaiji, S., & Debouck, D. G. (2008). Flujos de germoplasma en las Américas. 30 años de distribución de muestras de frijol por parte del Centro Internacional de Agricultura Tropical. Recursos Naturales y Ambiente (Costa Rica), 53, 54–61. www.cgiar.orgGallego Acuña, L. (2022). Mecasnismos celulares y moleculares del injerto en plantas [Universidad de Leon]. https://buleria.unileon.es/bitstream/handle/10612/15587/Gallego_Acu%c3%b1a_Lara.pdf?sequence=1&isAllowed=yGautier, A. T., Chambaud, C., Brocard, L., Ollat, N., Gambetta, G. A., Delrot, S., & Cookson, S. J. (2019). Merging genotypes: graft union formation and scion-rootstock interactions. Journal of Experimental Botany, 70(3), 747–755. https://doi.org/10.1093/jxb/ery422Gepts, Paul., & Debouck, D. G. (1991). Origin, domestication and evolution of the common bean (Phaseolus vulgaris L.). In A. van Schoonhoven & O. Voysest (Eds.), Common beans: Research for crop improvement (pp. 7–53). Commonwealth Agricultural Bureaux International. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/88263Gereda, J., Mestizo, A., Ypiales, J., Sabogal Carvajal, R., Santaella, M., Santos, L. G., & Debouck, D. G. (2021, December 3). Successful seed increase of Phaseolus chiapasanus Piper. Póster- XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC), Noviembre 30 a Diciembre 3 de 2021. Alliance of Bioversity International and CIAT. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/110071Google.(2023).GoogleEarth.https://earth.google.com/web/search/Semillas+del+Futuro,+Cali,+Valle+del+Cauca/Grozeff-Gergoff, G. E., Ruscitti, M. F., & Gimenez, D. O. (2023). Introducción a la propagación vegetal De la fisiología a la práctica integrada (Editorial de la Universidad de La Plata, Ed.; 1st ed.). Universidad Nacional de La Plata. https://core.ac.uk/download/597602003Gul, A., Cengiz, O., & Tepecik, M. (2017). The effect of grafting on salinity tolerance in cucumber plants grown in perlite. Acta Horticulturae, 1170(1170), 1165–1172. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2017.1170.150Gurusamy, V., Bett, K. E., & Vandenberg, A. (2010). Grafting as a tool in common bean breeding. Canadian Journal of Plant Science, 90(3), 299–304. https://doi.org/10.4141/CJPS09077Hamaguchi, H., Kokubun, M., Yoneyama, T., Hansen, A. P., & Akao, S. (1993). Control of Supernodulation in Intergeneric Grafts of Soybean and Common Bean. Crop Science, 33(4), 794–797. https://doi.org/10.2135/CROPSCI1993.0011183X003300040033XHartmann H.T., Kester D.E., Davies F.T., Geneve R.L. (1997). Plant propagation: principles andpractices, 6th ed., Prentice Hall, EUA.Heywood, V., Casas, A., Ford-Lloyd, B., Kell, S., & Maxted, N. (2007). Conservation and sustainable use of crop wild relatives. Agriculture, Ecosystems & Environment, 121(3), 245–255. https://doi.org/10.1016/J.AGEE.2006.12.014Hu, B., Ling, P., & Kleinhenz, M. (2016). Grafted tomato propagation: Effects of light intensity and temperature on graft healing and plant regrowth. Acta Horticulturae, 1140, 327–330. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2016.1140.72Hunter, D., & Heywood, V. (2011). Parientes Silvestres de los Cultivos Manual para la Conservación In Situ (D. Hunter & V. Heywood, Eds.; Primera). Bioversity Internacional 2012. https://www.bioversityinternational.org/fileadmin/_migrated/uploads/tx_news/Parientes_silvestres_de_los_cultivos_1641.pdfIzquierdo, J. A., & Hosfield, G. L. (1982). A simplified procedure for making cleft grafts and the evaluation of grafting effects on common bean. HortScience., 17, 750–752. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058986Izquierdo, J. A., & Hosfield, G. L. (1982). A simplified procedure for making cleft grafts and the evaluation of grafting effects on common bean. HortScience., 17, 750–752. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058986Jimenez Vazquez, K. R. (2020). Participación del transporte de auxinas en el crecimiento direccional de la raiz de Arabidopsis thaliana en interacción con Achromobacter sp. 5B1 [Univerdidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo]. http://bibliotecavirtual.dgb.umich.mx:8083/xmlui/bitstream/handle/DGB_UMICH/3981/IIQB-M-2020-1044.pdf?sequence=1&isAllowed=yKarunakaran, R., & Ilango R, V. J. (2020). Graft success, growth, and early flowering onset, as affected by grafting time in topworked tea plants. Journal of Crop Improvement, 34(3), 397–403. https://doi.org/10.1080/15427528.2020.1723768Lee, J.-M., Kubota, C., Tsao, S. J., Bie, Z., Hoyos Echevarria, P., Morra, L., & Oda, M. (2010). Current status of vegetable grafting: Diffusion, grafting techniques, automation. Scientia Horticulturae, 127, 93–105. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2010.08.003Linnaeus, C. von. (1753). Species plantarum Tomus II. A facsimile (1957–1959) of the first edition. (Tomo II, Vol. 2). Ray Society; sold by B. Quaritch,. http://www.botanicus.org/bibliography/b12069590López Pérez, D., & Carazo Nuria. (2005). La producción de esquejes. Horticultura Internacional, 1,22–29. https://www.researchgate.net/publication/28280218_La_produccion_de_esquejesLópez Serrano, L., Canet Sanchis, G., Selak, G. V., Penella, C., San Bautista, A., López Galarza, S., & Calatayud, Á. (2020). Physiological characterization of a pepper hybrid rootstock designed to cope with salinity stress. Plant Physiology and Biochemistry, 148, 207–219. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2020.01.016Loupit, G., Brocard, L., Ollat, N., & Cookson, S. J. (2023). Grafting in plants: recent discoveries and new applications. Journal of Experimental Botany, 74(8), 2433–2447. https://doi.org/10.1093/JXB/ERAD061Martínez Rodríguez, M. del C., Pérez Fernández, J. Enrique., & Loureiro Rodríguez, M. Dolores. (1999). La vid en el occidente del Principado de Asturias : descripción ampelográfica de las variedades. Consejo Superior de Investigaciones Científicas.Millán Ramos, C. C., & Salvador Pardo, M. I. (2018). Evaluación de cuatro tipos de injertros, bajo la influencia de las fases lunares para la especie forestal Sapindus saponaria L [Universidad Distrital Francisco José de Caldas]. https://repository.udistrital.edu.co/bitstream/handle/11349/13080/MillanRamosCri;jsessionid=326D0CB8A2038C315B8C35F6A8A22068?sequence=1Ministerio de Agricultura Alimentación y Medio Ambiente Gobierno de España. (2014). Guía de gestión integrada de plagas para el cultivo de cítricos (A. y M. A. Ministerio de Agricultura, Ed.). http://publicacionesoficiales.boe.es/Mudge, K., Janick, J., Scofield, S., & Goldschmidt, E. E. (2009). A History of Grafting. In J. Janick (Ed.), Horticultural Reviews (Vol. 35, pp. 437–493). John Wiley & Sons, Inc. https://onlinelibrary.wiley.com/doi/book/10.1002/9780470593776Muralidhara, B. M., & Doreyappa Gowda, I. N. (2019). Soft wood grafting-A novel and rapid multiplication technique in Coorg mandarin (Citrus reticulate Blanco). Journal of Horticultural Sciences, 14(1), 7–12. http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=577061293003Naciones Unidas. (1992). Convenio sobre la diversidad biológica. https://www.cbd.int/doc/legal/cbd-es.pdfNawaz, M. A., Imtiaz, M., Kong, Q., Cheng, F., Ahmed, W., Huang, Y., & Bie, Z. (2016). Grafting: A technique to modify ion accumulation in horticultural crops. Frontiers in Plant Science, 7, 1. https://doi.org/10.3389/fpls.2016.01457Nguyen, V. H., & Yen, C. R. (2018). Rootstock age and grafting season affect graft success and plant growth of papaya (Carica papaya L.) In greenhouse. Chilean Journal of Agricultural Research, 78(1), 59–67. https://doi.org/10.4067/S0718-58392018000100059Nie, W., & Wen, D. (2023). Study on the Applications and Regulatory Mechanisms of Grafting on Vegetables. In Plants (Vol. 12, Issue 15). https://doi.org/10.3390/plants12152822Orrala Borbor, N., Herrera Isla, L., & Balmaseda Espinosa, C. (2018). Watermelon yield and fruit quality under different graft patterns and NPK doses. Cultivos Tropicales, 39(3), 25–30.Orton, T. J. (2020). Breeding Methods for Outcrossing Plant Species: III. Asexual Propagation. In C. Cockle (Ed.), Horticultural Plant Breeding (pp. 309–326). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-815396-3.00017-2Osuna Fernández, H. R., Osuna Fernández, A. M., & Fierro Álvarez, A. (2016). Manual de propagación de plantas superiores. Universidad Nacional Autónoma de México Universidad Autónoma Metropolitana. http://www.casadelibrosabiertos.uam.mx/contenido/contenido/Libroelectronico/manual_plantas.pdfPérez Moreno, I. (2002). La filoxera o el invasor que vino de América. In Bol. S.E.A. (Vol. 30). http://sea-entomologia.org/PDF/BOLETIN_30/B30-044-218.pdfPorch, T., Beaver, J., Debouck, D., Jackson, S., Kelly, J., & Dempewolf, H. (2013). Use of Wild Relatives and Closely Related Species to Adapt Common Bean to Climate Change. Agronomy, 3(2), 433–461. https://doi.org/10.3390/agronomy3020433PRG - CIAT. (2022). Accesiones de fríjol criticas (menos de 100 semillas).Programa de Recursos Genéticos (PRG) - CIAT. (2022). Colección de fríjol. Sitio Web. . https://genebank.ciat.cgiar.org/genebank/beancollection.doReyes Quiñones, J. (2015). Guía de técnicas, métodos y procedimientos de reproducción asexual o vegetativa de las plantas. http://www.competitividad.org.do/wp-content/uploads/2016/05/Guía-de-técnicas-métodos-y-procedimientos-de-reproducción-asexual-o-vegetativa-de-las-plantas.pdfRojas González, S., García Lozano, J., & Alarcón Rojas, M. (2004). Propagación asexual de plantas (Produmedios, Ed.). CORPOICA. www.produmedios.comSabogal-Carvajal, R., Escobar-Guzman, E. H., Gereda, J. M., Santaella, M., & Debouck, D. (2023a). Propagación asexual de Phaseolus albicarminus Debouk & N. Chaves (Papilionoideae Phaseoleae), bajo condiciones controladas. https://hdl.handle.net/10568/131632Sabogal-Carvajal, R., Escobar-Guzmán, H., Gereda, J. M., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2023b). Propagation of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves, by layering, cuttings, and grafting. https://hdl.handle.net/10568/135843Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Escobar-Guzmán, H., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2023). Evaluation of rootstocks for the multiplication of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves. https://hdl.handle.net/10568/135853Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Rosero, G., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2022). Produciendo germoplasma de fríjol, mediante injertos. Poster : XI Congreso Colombiano de Botánica, Universidad de Los Llanos, Villavicencio, Meta, Colombia, Alliance of Bioversity International and CIAT. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/125689Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2021a). Avances en la producción de semillas de Phaseolus albicarminus Debouck y N. Chaves, mediante injerto (XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC)). https://hdl.handle.net/10568/116906Sabogal-Carvajal, R., Gereda, J. M., Mestizo, A., Ypiales, J., Santaella, M., & Debouck, D. G. (2021b). Progress in seed production of Phaseolus albicarminus Debouck & N. Chaves, by use of grafting. Póster - XIII Simposio Internacional de Recursos Genéticos Para Las Américas y El Caribe (SIRGEAC), Noviembre 30 a Diciembre 3 de 2021. Alliance of Bioversity International and CIAT. https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/116913Sabogal-Carvajal, R., Mestizo, A., Ypiales, J., Gereda, J., Santaella, M., Santos, L. G., & Debouck, D. G. (2020). Successful seed increase of Phaseolus tuerckheimii Donn. Sm. Poster - Genetic Resources Program, Alliance Bioversity International – CIAT, Cali, Colombia. . https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/109648Sanders, P. L., & Markhart, A. H. (1992). Interspecific Grafts Demonstrate Root System Control of Leaf Water Status in Water-Stressed Phaseolus. Journal of Experimental Botany, 43(12), 1563–1567. https://doi.org/10.1093/jxb/43.12.1563Santalla, M., Monteagudo, A. B., González, A. M., & De Ron, A. M. (2004). Agronomical and quality traits of runner bean germplasm and implications for breeding. Euphytica, 135(2), 205–215. https://doi.org/10.1023/B:EUPH.0000014912.07993.E7/METRICSSchmit, V., & Baudoin, J. P. (1992). Screening for resistance to Ascochyta blight in populations of Phaseolus coccineus L. and P. polyanthus Greenman. Field Crops Research, 30(1–2), 155–165. https://doi.org/10.1016/0378-4290(92)90064-GSchmit, V., & Debouck, D. G. (1991). Observations on the origin of phaseolus polyanthus Greenman. Economic Botany, 45(3), 345–364. https://doi.org/10.1007/BF02887077/METRICSSharkoff, J., & Brick, M. A. (1990). Effects of grafting roots and shoots of Phaseolus vulgaris and P. acutifolius on physiological and morphological variables (pp. 190–191). Colorado State University. http://handle.nal.usda.gov/10113/IND92013837Sharma, A., & Zheng, B. (2019). Molecular responses during plant grafting and its regulation by auxins, cytokinins, and gibberellins. Biomolecules, 9(9), 397. https://doi.org/10.3390/biom9090397Silva Souza, L., Diniz, R. P., Neves, R. de J., Alves, A. A. C., & Oliveira, E. J. de. (2018). Grafting as a strategy to increase flowering of cassava. Scientia Horticulturae, 240, 544–551. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2018.06.070Singh, D. P., Singh, A. K., & Singh, A. (2021). Breeding methods used in asexual crops. In Plant Breeding and Cultivar Development (pp. 379–398). Elsevier. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-817563-7.00006-4Taiz, L. (2013). Agriculture, plant physiology, and human population growth: past, present, and future. Theoretical and Experimental Plant Physiology, 167–181. https://doi.org/10.1590/s2197-00252013000300001Tang, W., Zhang, R., Wang, M., Wang, H., Ding, F., Chen, X., Shen, X., Yin, C., & Mao, Z. (2024). Effects of two apple rootstocks on the soil microecology of replanted apple orchard soil. Scientia Horticulturae, 324, 112640. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2023.112640Tedesco, S., Fevereiro, P., Kragler, F., & Pina, A. (2022). Plant grafting and graft incompatibility: A review from the grapevine perspective. Scientia Horticulturae, 299, 1–12. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2022.111019The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2010). The Second Report on The State Of The World’s Plant Genetic Resources for Food and Agriculture. Plant Genetic Resources for Food and Agriculture.The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2014). Normas para bancos de germoplasma de recursos fitogenéticos para la alimentación y la agricultura. www.fao.org/The Food and Agriculture Organization of the United Nations - FAO. (2019). El estado de la biodiversidad para la alimentación y la agricultura en el mundo - resumen. http://www.fao.org/3/CA3229ES/CA3229ES.pdfUmeya, K., & Imai, E. (1963). Growth response of azuki bean beetle (Callosobruchus chinensis L.) to beans harvested from the plants of grafting combination between azuki bean (Phaseolus radiatus L.) and kidney bean (P. vulgaris L.) (Preliminary report). Japanese Journal of Applied Entomology and Zoology, 7(2), 154–156. https://doi.org/10.1303/jjaez.7.154Universidad de Florida, Universidad de Kentucky, & Universidad de Texas A&M. (2020a). Layering and Division. Sitio Web. https://irrecenvhort.ifas.ufl.edu/plant-prop-glossary/08-layering/01-layering-air.htmlUniversidad de Florida, Universidad de Kentucky, & Universidad de Texas A&M. (2020b). Micropropagation. Sitio Web. https://irrecenvhort.ifas.ufl.edu/plant-prop-glossary/index.htmlUniversidad Nacional del Nordeste - Argentina. (2016). Anatomía Floral. Reproducción Asexual y Sexual. Sitio Web Http://Www.Biologia.Edu.Ar/Botanica/Tema22/Index22.Htm. http://www.biologia.edu.ar/botanica/tema22/index22.htmVallejo Cabrera, F. A., & Estrada Salazar, E. I. (2002). Mejoramiento Genético de Plantas (Primera). Universidad Nacional de Colombia - Sede Palmira. http://bdigital.unal.edu.co/46265/3/9588095115_Part01.PDFVanderborght, T. (1983). Increasing seed of Phaseolus coccineus L. Plant Genetic Resources Newsletter, 53, 17–18. https://hdl.handle.net/10568/104405Vázquez Yanes, C., Orozco, A., Rojas, M., Sánchez, M. E., & Cervantes, V. (1997). La reproducción de las plantas: semillas y meristemos (F. D. C. ECONÓMICA, Ed.; Primera ed).http://bibliotecadigital.ilce.edu.mx/sites/ciencia/volumen3/ciencia3/157/htm/lcpt157.htmVelasco Alvarado, M. de J. (2013). Anatomía y manejo agronómico de plantas injertadas en jitomate (Solanum lycopersicum L.) [Universidad Autónoma Chapingo]. http://portal.chapingo.mx/horticultura/pdf/tesis/TESISMCH2013050810128186.pdfVince Prue, D., & Yeomans, R. (2018). Propagating plants vegetatively. In C. Bird (Ed.), The Fundamentals of Horticulture (pp. 162–185). Cambridge University Press. https://doi.org/10.1017/cbo9781139194150.011Vougeleka, V., Savvas, D., Ntatsi, G., Ellinas, G., Zacharis, A., Iannetta, P. P. M., Mylona, P., & Saitanis, C. J. (2023). Impact of the rootstock genotype on the performance of grafted common bean (Phaseolus vulgaris L.) cultivars. Scientia Horticulturae, 311, 111821. https://doi.org/10.1016/J.SCIENTA.2022.111821Warschefsky, E. J., Klein, L. L., Frank, M. H., Chitwood, D. H., Londo, J. P., von Wettberg, E. J. B., & Miller, A. J. (2016). Rootstocks: Diversity, Domestication, and Impacts on Shoot Phenotypes. In Trends in Plant Science (Vol. 21, Issue 5, pp. 418–437). Elsevier Ltd. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2015.11.008White, J. W., & Castillo, J. A. (1989). Relative Effect of Root and Shoot Genotypes on Yield of Common Bean under Drought Stress. Crop Science, 29(2), 362. https://doi.org/10.2135/cropsci1989.0011183X002900020026xWhite, J. W., Montes, C., & Mendoza, L. Y. (1991). Use of grafting to characterize and alleviate hybrid dwarfness in common bean. Euphytica, 59(1), 19–25. https://doi.org/10.1007/BF00025357Wright, J. W. (1976). Useful Techniques—Vegetative Propagation. In Introduction to Forest Genetics (pp. 111–133). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-765250-4.50011-3Wulf, K. E., Reid, J. B., & Foo, E. (2020). What drives interspecies graft union success? Exploring the role of phylogenetic relatedness and stem anatomy. Physiologia Plantarum, 170(1), 132–147. https://doi.org/10.1111/PPL.13118Yousef, A. F., Ali, M. M., Rizwan, H. M., Gad, A. G., Liang, D., Binqi, L., kalaji, H. M., Wróbel, J., Xu, Y., & Chen, F. (2021). Light quality and quantity affect graft union formation of tomato plants. Scientific Reports, 11(1). https://doi.org/10.1038/s41598-021-88971-5Zaiter, H. Z., Coyne, D. P., & Clark, R. B. (1987). Temperature, Grafting method, and rootstock influence on iron-deficiency chlorosis of bean. Journal of the American Society for Horticultural Science., 112, 1023–1026. http://www.sidalc.net/cgi-bin/wxis.exe/?IsisScript=catalco.xis&method=post&formato=2&cantidad=1&expresion=mfn=058993Zrig, A., ben Mohamed, H., Tounekti, T., Khemira, H., Serrano, M., Valero, D., & Vadel, A. M. (2016). Effect of rootstock on salinity tolerance of sweet almond (cv. Mazzetto). South African Journal of Botany, 102, 50–59. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2015.09.001Banco de Germoplasma Semillas del Futuro, Programa de Recursos Genéticos del CIATEstudiantesGrupos comunitariosInvestigadoresProveedores de ayuda financiera para estudiantesPúblico generalLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-85879https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/86418/1/license.txteb34b1cf90b7e1103fc9dfd26be24b4aMD51ORIGINAL1112300115.2024.pdf1112300115.2024.pdfDocumento de Tesisapplication/pdf9805211https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/86418/2/1112300115.2024.pdf9619a8898d378244af913a338a7c091dMD52THUMBNAIL1112300115.2024.pdf.jpg1112300115.2024.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg5423https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/86418/3/1112300115.2024.pdf.jpge2ab841ca6c1696315ec703fc556732cMD53unal/86418oai:repositorio.unal.edu.co:unal/864182024-07-09 23:12:14.466Repositorio Institucional Universidad Nacional de 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