Caracterización genómica de los virus que infectan los cultivos de gulupa (Passiflora edulis f. edulis) en Antioquia para el apoyo de los programas de certificación de semilla

ilustraciones, diagramas

Autores:: Cardona Mejia, Daniela

Tipo de recurso:

Fecha de publicación:: 2022

Institución:: Universidad Nacional de Colombia

Repositorio:: Universidad Nacional de Colombia

Idioma:: spa

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Cochabamba, Bolivia: Universidad Mayor de San Simón, Facultad de Ciencias Agrícolas, Pecuarias, Forestales y Veterinarias. Angel, C., Nates, G., Ospina, R., Melo, C. D., & Amaya, M. (2011). Floral and reproductive biology of the" gulupa" Passiflora edulis Sims f. edulis. Caldasia, 33(2), 433-451. Angulo , R. (2009). Gulupa (Passiflora edulis var. edulis Sims.). Bogotá, Colombia: Bayer Crop Science. Andrade, S., Fonseca, L., Silvia, M., Faleiro, F., & Junqueira N. (2010). Estudos preliminares para o uso de termoterapia ex vitro em maracujazeiro-azedo visando a eliminacao de virus-do-endurecimento-dos-frutos- Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento (Embrapa Cerrados) 267, 1-18. Arya, M., Shergill, I. S., Williamson, M., Gommersall, L., Arya, N., & Patel, H. R. (2005). Basic principles of real-time quantitative PCR. Expert Review Of Molecular Diagnostics, 5(2), 209-219. Aslam, S., Tahir, A., Aslam, M. F., Alam, M. W., Shedayi, A. A., & Sadia, S. (2017). Recent advances in molecular techniques for the identification of phytopathogenic fungi–a mini review. Journal of Plant Interactions, 12(1), 493-504. Azcón-Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de fisiología vegetal. 2ª Edición. Madrid: McGRAW-HILL - Interamericana De España, S. L. Badali, H., & Nabili, M. (2012). Molecular Tools in Medical Mycology; Where We Are!. Jundishapur Journal of Microbiology, 6(1), 1-3. doi: 10.5812/jjm.8566. Balaguera, H.E., Álvarez, J.G., & Cárdenas, J. (2010). Efecto de la estratificación fría y la cobertura plástica en semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.) para la obtención de plántulas Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. 13(2), 89-97. Bandte, M., Rodriguez, M. H., Schuch, I., Schmidt, U., & Buettner, C. (2016). Plant viruses in irrigation water: reduced dispersal of viruses using sensor-based disinfection. Irrigation Science, 34(3), 221-229. Benscher, D., Pappu, S., Niblett, C., Varón de Agudelo, F., Morales, F., Hodson, E., Alvarez, E., Acosta, O., & Lee, R.F. (1996). A strain of Soybean mosaic virus infecting Passiflora spp. in Colombia. Plant disease, 80, 258-262. Bentley, D. R., Balasubramanian, S., Swerdlow, H. P., Smith, G. P., Milton, J., Brown, C. G., Boutell, J. M. & et al. (2008). Accurate whole human genome sequencing using reversible terminator chemistry. Nature, 456(7218), 53-59. Bernal, R., Gradstein, S.R., & Celis, M. (2015). Catálogo de plantas y líquenes de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. Recuperado de http://catalogoplantasdecolombia.unal.edu.co/es/ Bharagava, R. N., Purchase, D., Saxena, G., & Mulla, S. I. (2019). Chapter 26 - Applications of Metagenomics in Microbial Bioremediation of Pollutants: From Genomics to Environmental Cleanup. Microbial Diversity in the Genomic Era, (pp. 459-477). Oxford, UK. Elsevier Bio-Rad Laboratories Inc. (2020) Recuperado de https://www.bio-rad-antibodies.com/elisa-types-direct-indirect-sandwich-competition-elisa-formats.html Bolaños, M. (2017). Micropropagación in vitro de meristemos para control del virus del amarillamiento foliar (SCYLV) en variedades de caña de azúcar. Facultad De Ciencias Ambientales Y Agrícolas. Universidad Rafael Landívar. Guatemala de la Asunción. Boonham, N., Kreuze, J., Winter, S., Van der Vlugt, R., Bergervoet, J., Tomlinson, J., & Mumford, R. (2014). Methods in virus diagnostics: from ELISA to next generation sequencing. Virus Research, 186, 20-31. Boratyn, G. M., Thierry-Mieg, J., Thierry-Mieg, D., Busby, B., & Madden, T. L. (2019). Magic-BLAST, an accurate RNA-seq aligner for long and short reads. BMC bioinformatics, 20(1), 1-19. Burrows-Wheeler Aligner. (28 de Febrero de 2010). Obtenido de http://bio-bwa.sourceforge.net/. Büttner, C., von Bargen, S., & Bandte, M. (2015). Phytopathogenic Viruses. En Principles of Plant-Microbe Interactions (pp. 115-122). Springer, Cham. Brandes, J., & Wetter, C. (1963). Untersuchungen über Eigenschaften und Verwandtschaftsbeziehungen des Latenten Passiflora‐Virus (Passiflora latent virus). Journal of Phytopathology, 49(1), 61-70. Bronzato Badial, A., Sherman, D., Stone, A., Gopakumar, A., Wilson, V., Schneider, W., & King, J. (2018). Nanopore sequencing as a surveillance tool for plant pathogens in plant and insect tissues. Plant disease, 102(8), 1648-1652. Brunt, A., Crabtree, K., Dallwitz, M. J., & Gibbs, A. J.(Eds.) (1990). Viruses of tropical plants. Oxon, UK: CAB International Press. Caleño, B.L., & Morales, G. (2019). Propagación asexual de especies endémicas y amenazadas del género Passiflora en los Andes colombianos. En Colombia Forestal 22 (2), 67-82. https://doi.org/10.14483/2256201X.14302 Camacaro, N., Pérez, D., Miranda, M., Carvajal, R., & Espinoza, M. (2005). Métodos para la ruptura de latencia de semillas de parchita (Passiflora edulis Sims. f. flavicarpa). Facultad de Agronomía U. Central de Venezuela, Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA), Aragua. Camelo, V. (2010). Detección e identificación e los virus patógenos de cultivos de gulupa (Passiflora edulis Sims) en la región de Sumapaz (Cundinamarca). Trabajo de grado de maestría en Fitopatología. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de agronomía. Bogotá. Cameron, C. E., & Castro, C. (2001). The mechanism of action of ribavirin: lethal mutagenesis of RNA virus genomes mediated by the viral RNA-dependent RNA polymerase. Current opinion in infectious diseases, 14(6), 757-764. Carstens, E. B. (2010). Ratification vote on taxonomic proposals to the International Committee on Taxonomy of Viruses (2009). Archives of virology, 155, 133-146. Carvajal., L. M. Enfermedades en gulupa. . Obtenido de Universidad Nacional De Colombia- Ministerio De Agricultura Y Desarrollo Rural- Asohofrucol : http://www.asohofrucol.com.co/archivos/biblioteca/biblioteca_135_Enfermedades_gulupa.pdf Castaño, J. (2009). Enfermedades importantes de las pasifloráceas en Colombia. pp. 223-244. En: Miranda, D., G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahíta y L.E. Flórez (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Castilla, J. (fecha de Consulta 5 de Julio de 2019). Agronegocios. Obtenido de https://www.agronegocios.co/agricultura/la-exportacion-de-gulupa-supero-las-8109-toneladas-2881324 Castillo, A. (2004). Propagación de plantas por cultivo in vitro:una biotecnología que nos acompaña hace mucho tiempo.Las Brujas, Uruguay: AR-VITRO, INIA. Obtenido de http://www.inia.uy/Publicaciones/Documentos%20compartidos/111219220807102417.pdf Fecha de consulta: Enero 21 de 2020 Castro, L. (2001). Guía básica para el establecimiento y mantenimiento del cultivo de la granadilla. Bogotá: Asociación Hortofrutícula de Colombia (ASOHOFRUCOL). Chagas, C.M., Colariccio, A., & Kitajima, E.W. (1983) Estudos de transmissibilidade do enfezamento do maracujazeiro. Fitopatologia Brasileira, 8, 620 Chang, C. A. (1992). Characterization and comparison of passionfruit mottle virus, a newly recognized potyvirus, with passionfruit woodiness virus. Phytopathology, 82(11), 1358-1363. Chellappan, P., Vanitharani, R., Ogbe, F., & Fauquet, C. M. (2005). Effect of temperature on geminivirus-induced RNA silencing in plants. Plant physiology, 138(4), 1828-1841. Chomczynski, P. (1993). A Reagent for the Single-step Simultaneous Isolation of RNA, DNA and Proteins from Cell and Tissue Samples. BioTechniques 15(3),532-536 Clark, M.F., & Adams, A.N. (1977). Characteristics of the microplate method of enzymelinked immunosorbent assay for the detection of plant viruses, Journal of General Virology, 34(3), 475-483 Clark, D.P,Pazdernik, N., & McGehee, M. (2019) Chapter 8 - DNA Sequencing. Molecular Biology (Third Edition), (pp. 240-269). Academic Cell. Cobo, F. (2012). Application of molecular diagnostic techniques for viral testing. The Open Virology Journal, 6, 104-114. doi: 10.2174/1874357901206010104 Conci, V. (2004). Obtención de plantas libres de virus. Biotecnología y Mejoramiento Vegetal, 8(5), 303-312. Conci, V. (2010). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Argentina: INTA. Crotty, S., Maag, D., Arnold, J. J., Zhong, W., Lau, J. Y., Hong, Z., Andino, R., & Cameron, C. E. (2000). The broad-spectrum antiviral ribonucleoside ribavirin is an RNA virus mutagen. Nature medicine, 6(12), 1375-1379. Cox, J.E. (1957). Flowering and pollination of passion fruit. Agri. Gaz. N.S. Wales, 68, 573-576. Crestani, O. A., Kitajima, E. W., Lin, M. T., & Marinho, V. L. A. (1986). Passion fruit yellow mosaic virus, a new tymovirus found in Brazil. Phytopathology, 76(9), 951-955. Dasmahapatra, K. K., & Mallet, J. (2006). DNA barcodes: recent successes and future prospects. Heredity, 97(4), 254-255. Dawson, W. (1984). Effects of animal antiviral chemicals on plant viruses. Phytopathology 74(2),211-213. de Andrade, S. R., Fonseca, L., Silva, M., Faleiro, F., & Junqueira, N. (2010). Estudos preliminares para o uso de termoterapia ex vitro em maracujazeiro-azedo visando à eliminação de vírus-do-endurecimento-dos-frutos. Embrapa Cerrados-Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento (INFOTECA-E). Dellaporta, S., Wood, J., & Hicks, J. (1983). A plant DNA minipreparation: Version II. Plant Molecular Biology Reporter, pp. 19-21. Deshmukh, N. A., Patel, R. K., Okram, S., Rymbai, H., Roy, S. S., & Jha, A. K. (2017). Passion fruit (Passiflora spp.). Magnesium (mg/litre), 100, 200. Dhawan, K., Dhawan, S., & Sharma, K. (2004). Passiflora: A review update. Journal of Ethnopharmacology, 94(1), 1-23. Didier, C. (2001). Growing passion fruit. Tropical Fruits Newsletter. Djikeng, A., & Spiro, D. (2009). Advancing full length genome sequencing for human RNA viral pathogens. Future Virology. https://doi.org/10.2217/17460794.4.1.47 Doyle, J. (1987). A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, (pp. 1-15). Drew, R. (1991). In vitro culture of adult and juvenile bud explant of passiflora species. Plant cell, Tissue and organ culture, 26, 23-27. Drew, R. A. (1997). Micropropagation of Passiflora species (passionfruit). In High-tech and micropropagation (pp. 135-149). Berlin, Heidelberg: Springer. Droege, M., & Hill, B. (2008). The Genome Sequencer FLX™ System—Longer reads, more applications, straight forward bioinformatics and more complete data sets. Journal of biotechnology, 136(1-2), 3-10. El-Araby, W. S., Ibrahim, I. A., Hemeida, A. A., Mahmoud, A., Soliman, A. M., El-Attar, A. K., & Mazyad, H. M. (2009). Biological, serological and molecular diagnosis of three major potato viruses in Egypt. International Journal of Virology, 5(2), 77-88. doi: 10.3923/ijv.2009.77.88 Escobar, L. (1988). En Passifloraceae. Flora de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá.10, 1-138. Ferreira, S. S., Barros, D. R., De Almeida, M. R., & Zerbini, F. M. (2010). Characterization of Passionfruit severe leaf distortion virus, a novel begomovirus infecting passionfruit in Brazil, reveals a close relationship with tomato‐infecting begomoviruses. Plant Pathology, 59(2), 221-230. Fischer, G. (2000). Efecto de las condiciones en precosecha sobre la calidad poscosecha de los frutos. Revista Comalfi 27(1-2), 39-50. Fischer, I., & Rezende, J. (2008). Diseases of Passion Flower (Passiflora spp.). Pest Technology, 2, 1–19. Fischer, G. (Noviembre, 2010). Condiciones ambientales que afectan crecimiento, desarrollo y calidad de las pasifloráceas. En Primer Congreso Latinoamericano de Passiflora. Corporación Centro de Investigación para la Gestión Tecnológica de Passiflora del departamento de Huila CEPASS y La Asociación Hortofrutícola de Colombia ASOHOFRUCOL, Huila. Forero, A.; Becerra, N.; Fischer, G.; Miranda, D. (2008). Propagación de gulupa (Passiflora edulis Sims) por estacas. Seminario Nacional sobre Pasifloráceas. Programa científico y libro de resúmenes. Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Bogotá. Gallard, A., Mallet, R., Chevalier, M., & Grapin, A. (2011). Limited elimination of two viruses by cryotherapy of pelargonium apices related to virus distribution. CryoLetters, 32(2), 111-122. Gallo, Y. (2017). Caracterización molecular del viroma de plantas solanáceas de importancia económica en Antioquia. Tesis doctoral en Biotecnología. Universidad Nacional de Colombia. Medellín, Antioquia, Colombia. Garrido, C., Carbú, M., Fernández‐Acero, F. J., Boonham, N., Colyer, A., Cantoral, J. M., & Budge, G. (2009). Development of protocols for detection of Colletotrichum acutatum and monitoring of strawberry anthracnose using real‐time PCR. Plant Pathology, 58(1), 43-51. Garrido, C., Acero, F. G. F., Carbú, M., Rodriguez, V. E. G., Liniero, E., & Cantoral, J. M. (2012). Molecular microbiology applied to the study of phytopathogenic fungi. Biochemistry, Genetics and Molecular Biology. Rijeka, InTech, 139-156. Gawad, C., Koh, W., & Quake, S. R. (2016). Single-cell genome sequencing: current state of the science. Nature Reviews Genetics, 17(3), 175. Gella, R., & ERREA, P. (1998). Application of In Vitro Therapy for Ilarvirus Elimination in Three Prunus Species. Journal of Phytopathology, 445-449. Gioria, R., Espinha, L., Rezende , J., Gaspar, J., & Kitajima, E. (2002). Limited movement of Cucumber mosaic virus (CMV) in yellow passion flower in Brazil. Plant Pathology., 51, 127-133. Giulietti, A., Overbergh, L., Valckx, D., Decallonne, B., Bouillon, R., & Mathieu, C. (2001). An overview of real-time quantitative PCR: applications to quantify cytokine gene expression. Methods, 25(4), 386-401. Gomes, A., & Korf, B., (2018) Genetic Testing Techniques. In N. Robin, Farmer, M. (Eds.) Pediatric Cancer Genetics. (pp 350). Alabama: Elsevier. González, R. (2017). Evolution of diagnostic technics for plant viruses. Revista Mexicana de Fitopatología, 35(3), 591-610. doi:10.18781/R.MEX.FIT.1706-1 Gosalvez, B., Garcia, S., Pallas, V., & Sanchez, M. A. (2006). Distribution of carnation viruses in the shoot tip: exclusion from the shoot apical meristem. Physiological and molecular plant pathology, 69(1-3), 43-51. Goulter, K. C., & Randles, J. W. (1997). Serological and molecular techniques to detect and identify plant pathogens, (pp. 172-188). Grabherr, M. G., Haas, B. J., Yassour, M., Levin, J. Z., Thompson, D. A., Amit, I., Adiconis, X., Fan, L., Raychowdhury, R., Zeng, Q., Chen, Z., Mauceli, E., Hacohen, N., Gnirke, A., Rhind, N., Palma, F., Birren, B., Nusbaum, C., Lindblad-Toh, K., Friedman, N., & Regev, A., (2011). Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature biotechnology, 29(7), 644.doi: 10.1038 / nbt.1883. PubMed PMID: 21572440 . Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L.M., & Hoyos, L. (2011). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las Buenas Prácticas Agrícolas (BPA). En L.M. Melgarejo (Ed.) Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 123). Bogotá, Colombia: Produmedios. Ha, C., Coombs, S., Revill, P., Harding, R., Vu , M., & Dale, J. (2008). Design and application of two novel degenerate primer pairs for the detection and complete genomic characterization of potyviruses. Archives of Virology. 153, 25-36. Hadidi, A. R. (1998). Plant virus disease control. APS Press, USA. 684. Hakkaart, F. A., & Quak, F. (1964). Effect of heat treatment of young plants on freeing chrysanthemums from virus B by means of meritem culture. Neth. J. Plant Path., 70, 154-157. Hakkaart, F. A., & Jordanota, J. (1968). Heat treatment experiments with carnations for elimination of Carnation mottle and etched ring virases. Neth. J. Plant Path, 74, 146-149. Hanley-Bowdoin, L., Settlage, S. B., Orozco, B. M., Nagar, S., & Robertson, D. (2000). Geminiviruses: models for plant DNA replication, transcription, and cell cycle regulation. Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology, 35(2), 105-140 Hechenleitner, V.P., Gardner, M.F., Thomas, P.I., Echeverría, C., Escobar, B., Brownless, P., & Martínez, C. (2005). Plantas amenazadas del Centro-Sur de Chile. Distribución, Conservación y Propagación. 1ª Ed. Recuperado de http://dspace.utalca.cl/bitstream/1950/10294/1/Hechenleitner%20%20V..pdf Helliot, B, Panis, B., Poumay, Y., Swennen, R., Lepoivre, P., & Frison, E. (2002). Cryopreservation for the elimination of Cucumber mosaic and Banana streak viruses from banana (Musa spp.). Plant Cell Report, 20,1117-1122 doi:https://doi.org/10.1007/s00299-002-0458-8 Hernández, A., & Bernal, R. (2000). Lista de Especies de Passifloraceae de Colombia. Biota Colombiana, 1(3),320-335. ISSN: 0124-5376. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=491/49110302 Hicks, R.G.T., Mohamed, M.E., & Blakesley, D. (1996) Passiflora latent carlavirus in European collections of ornamental Passiflora. Journal of Phytopathology 144, 203-205 Ho, T., & Tzanetakis, I. E. (2014). Development of a virus detection and discovery pipeline using next generation sequencing. Virology, 471, 54-60. Hodson, E. (2005). Transformación genética de plantas para resistencia a virus. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias 29(110), 5-24. Hong, C., G.W. Moorman, W. Wohanka y C. Büttner (Eds.). (2014). Biology, detection, and management of plant pathogens in irrigation water. St. Paul, MN: APS Press. Houten, J. G. (1968). Heat treatment and meristem culture for the production of virus-free plant material. Neth. J. Pl. Path., v. 74, p. 17-24. Houten, J. G., Quak, F., & Van der Meer, F. A. (1968). Heat treatment and meristem culture for the production of virus-free plant material. Netherlands Journal of Plant Pathology., 74, 17. Igarza Castro, J., Hernández Pérez, H., & Cruz Castellanos, B. (2001). electroterapia como alternativa para la eliminación del virus LMV en malanga. Técnica. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica), 60, 57-60. Iwai, H., Ohmori, T., Kurokawa, Y., Muta, T., & Arai, K. (1996) New report of pas- sionfruit woodiness virus in Japan. Annals of the Phytopathological Society of Japan. 62, 459-465. Jan, F. J., & Yeh, S. D. (1995). Purification, in situ localization, and comparative serological properties of Passionfruit woodiness virus-encoded amorphous inclusion protein and two other virus proteins. Phytopathology, 85, 64-71. Jaramillo, H. (2016). Análisis del transcriptoma y viroma de Passiflora edulis f. edulis en cultivos de Antioquia utilizando métodos de secuenciación de nueva generación. Tesis de Maestría en Ciencias-Biotecnología. Universidad Nacional de Colombia. Medellín, Antioquia, Colombia. Jaramillo, H., Marín, M., & Gutiérrez, P. A. (2018). Molecular characterization of Soybean mosaic virus (SMV) infecting Purple passion fruit (Passiflora edulis f. edulis) in Antioquia, Colombia. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 51(11-12), 617-636. Jaramillo, H., Marín, M., & Gutiérrez Sánchez, P. A. (2019). Complete genome sequence of a Passion fruit yellow mosaic virus (PFYMV) isolate infecting purple passion fruit (Passiflora edulis f. edulis). Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 72(1), 8643-8654. Jiménez, Y. (2006). El cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims. (Trabajo final especialización en Horticultura). Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá. Jimenez, Y., Carranza, C., & RodrÍguez, M. (2009). Manejo integrado del cultivo de gulupa (Passiflora edulis Sims.) En Miranda, D., G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahita y L.E. Flórez (Eds). Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. (pp. 159-190) Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Jo, H., & Koh, G. (2015). Faster single-end alignment generation utilizing multi-thread for BWA. Bio-medical materials and engineering, 26(1), 1791-1796. Jones, S., Baizan-Edge, A., MacFarlane, S., & Torrance, L. (2017). Viral diagnostics in plants using next generation sequencing: computational analysis in practice. Frontiers in plant science, 8, 1770. Khan, J., & Dijkstra, J. (2006). Handbook of plant virology. The Haworth Press, Inc. Knapp, E., Hanzer, V., Mendonca, D., da Câmara Machado, A., Katinger, H., & da Câmara Machado, M. L. (1997). Improved virus detection in rosaceous fruit trees in vitro. In Pathogen and Microbial Contamination Management in Micropropagation (pp. 23-29). Dordrecht: Springer. Killip, E. (1938). The American Species of Passifloraceae Field Museum of Natural History Publication. Botanical Series, 19(1,2), 1-613. King, A., Adams, M., Cartens, E., & Lefkowitz, E. (2012). Viral taxonomy. Virology Journal. Elsevier Academic Press. Kitajima, E., Chagas, C., & Crestani, O. (1986) Enfermidades de etiologia viral e associadas a organismos do tipo micoplasma em maracujazeiros no Brasil. Fitopatologia Brasileira 11, 409-432. Kitajima, E., Rezende, J., & Rodrigues, J. (2003). Passion fruit green spot virus vectored by Brevipalpus phoenicis (Acari: Tenuipalpidae) on passion fruit in Brazil. Experimental and Applied Acarology, 30, 225-31. Kitajima, E., Rezende, J., Rodrigues, J., Chiavegato, L., Piza-Junior, C., & Morozini, W. (1997). Green spot of passion fruit, a possible viral disease associated with infestation by the mite Brevipalpus phoenicis. Fitopatologia Brasileira, 22, 555–559. Kreuze, J. F., Perez, A., Untiveros, M., Quispe, D., Fuentes, S., Barker, I., & Simon, R. (2009). Complete viral genome sequence and discovery of novel viruses by deep sequencing of small RNAs: a generic method for diagnosis, discovery and sequencing of viruses. Virology, 388(1), 1-7. Kreuze, J. (2014). siRNA deep sequencing and assembly: piecing together viral infections. In Detection and diagnostics of plant pathogens (pp. 21-38). Springer, Dordrecht. Kumar, S., Khan, M., Raj, S. K., & Sharma, A. (2009). Elimination of mixed infection of Cucumber mosaic and Tomato aspermy virus from Chrysanthemum morifolium Ramat. cv. Pooja by shoot meristem culture. Scientia Horticulturae, 119,108-112. Laboratorio de servicios genómicos LANGEBIO, México. (2016). Obtenido de http://labsergen.langebio.cinvestav.mx/genomics/?services=sbssequencing Lan, H., Lai, B., Zhao, P., Dong, X., Wei, W., Ye, Y., & Wu, Z. (2020). Cucumber mosaic virus infection modulated the phytochemical contents of Passiflora edulis. Microbial pathogenesis, 138, 103828. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2019.103828 Lekeu, J.-P. (2001). Passion fruit. En Raemaekers, R.H. (ed.). (págs. pp. 626-631). Crop production. Li, Y., Zhou, X., & Ye, D. (2008). Molecular beacons: an optimal multifunctional biological probe. Biochemical and Biophysical Research Communications, 373(4), 457-461. Liu, W., Huang, S., Liu, N., Dong, D., Yang, Z., Tang, Y., Ma, W., He, X., Ao, D., Xu, Y., & Zou, D. (2017). Establishment of an accurate and fast detection method using molecular beacons in loop-mediated isothermal amplification assay. Scientific reports, 7(1), 1-9. Liberato, J.R., & Zerbini, F.M. (2003). Diseases of Passionfruit (Passiflora spp.). The American Phytopathological Society. Liberato, J.R., & Zerbini, F.M. (2016). Diseases of Passionfruit (Passiflora spp.). The American Phytopathological Society. Lim, S., Wong, S., & Goh, C. (1993). Elimination of Cymbidium mosaic virus and Odontoglossum ringspot virus from orchids by meristem culture and thin section culture with chemotherapy. Annals of Applied. Biology , 122(2),289-297. Lima, J. A. A., Nascimento, A. K. Q., Radaelli, P., & Purcifull, D. E. (2012). Serology applied to plant virology. Serological diagnosis of certain human, animal and plant diseases. Rijeka: InTech, 71-94. Litardo, A. C., Korneva, S. B., Fischer, F. C., Tola, N. A., Leal, M. R., & Flores, A. P. (2015). Obtención de semilla biotecnológica de caña de azúcar (Saccharum spp. híbrido) de alta calidad genética y fitosanitaria en el Ecuador. Revista Colombiana de Biotecnología, 17(1), 101-110. Lobo, M., & Medina, C. I. (2009). Recursos genéticos de pasifloráceas en Colombia. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitski, F. Casierra-Posada, W. Piedrahíta, & L. E. Flórez. Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa (pp. 7-15). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. López, C., & Cazorla , J. Saneamiento del material vegetal: cultivo de meristemos. Obtenido de http://www.encuentros.uma.es/encuentros41/meristemos. Citado el 21 de Enero de 2020 Lüdders, P. (2003). Granadilla (Passiflora edulis Sims.) a multiple useful tropical fruit. Erwerbs Obstbau, 45, 186-191. Macaulay, I. C., Teng, M. J., Haerty, W., Kumar, P., Ponting, C. P., & Voet, T. (2016). Separation and parallel sequencing of the genomes and transcriptomes of single cells using G&T-seq. Nature protocols, 11(11), 2081. Makałowski, W., & Shabardina, V. (2020). Bioinformatics of nanopore sequencing. Journal of Human Genetics, 65, 61–67. https://doi.org/10.1038/s10038-019-0659-4 Manicom , B., Ruggiero, C., Ploetz , R., & Goes, A. (2003). Diseases of Passion Fruit. Diseases of Tropical Fruit Crops (pp. 413-441). Wallingford: CAB International. Manjarrés, E.H., & Perea, M. (2012). Establecimiento de un protocolo de propagación de gulupa (Passifl ora edulis SIMS.) a partir de embriones cigóticos y yemas axilares. Agronomía, 20(2), 53-64. Marcel, S., Sawers, R., Oakeley, E., Angliker, H., & Paszkowski, U. (2010). Tissue-adapted invasion strategies of the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. The Plant Cell, 22(9), 3177-3187. Marín, M., & Gutiérrez, P. (2016). Principios de virología molecular de plantas tropicales. Mosquera, Colombia: (Corpoica) Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria. Martini, C. K. H. (1962). Some properties of the virus causing ‘woodiness' of passion fruit in Western Nigeria. Annals of Applied Biology, 50(1), 163-168. Matthews, R. (1951). Effect of some substituted purines on the development of plant virus infection. Nature , 167, 892-893. Matthews, R. E. F., & Hull, R. (2002). Matthews' plant virology. San Diego: Gulf Professional Publishing. Melgarejo, L.M., Pérez, L., Florez, L., Aguilar, M., Hoyos, L., Guerrero, E., & Medina, J. (2012). Ecofisiología del cultivo de Gulupa (Passiflora edulis Sims). Bogota: Universidad Nacional de Colombia. Melgarejo, L.M. (Ed.) (2019). Gulupa (Passiflora edulis), curuba (Passiflora tripartita),aguacate (Persea americana) y tomate de árbol (Solanum betaceum). Bogota: Centro editorial Facultad de Ciencias Universidad Nacional de Colombia. Menzel, C. M., Simpson, D. R., & Dowling, A. J. (1986). Water relations in passionfruit: Effect of moisture stress on growth, flowering and nutrient uptake. Scientia Horticulturae, 29(3), 239-249. https://doi.org/10.1016/0304-4238(86)90067-1 Mezzonato-Pires, A.C., & Milward-de-Azevedo, M.A. (2017). Lectotypes for species of Passiflora L. (Passifloraceae) described by João Barbosa Rodrigues. Acta Botanica Brasilica, 31(1), 134-136. doi: 10.1590/0102-33062016abb0330 Michael, T. P., & VanBuren, R. (2020). Building near-complete plant genomes. Current Opinion in Plant Biology, 54, 26-33. Miranda, D., Fischer, G., Carranza, C., Magnitskiy, S., Casierra, F., Piedrahíta, W., & Flórez, L. E. (2009). Ciencias Hortícolas.Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Mirmajlessi, S. M., Loit, E., Maend, M., & Mansouripour, S. M. (2015). Real-time PCR applied to study on plant pathogens: potential applications in diagnosis-a review. Plant Protection Science, 51(4), 177-190. Molina, L., & Melgar, M. (2014). Biotecnología aplicada al cultivo de la caña de Azúcar. El cultivo de la Caña de Azúcar en Guatemala. Cengicaña, 79-106. Montiel-Martinez, O., Pastelín-Solano, M., Ventura-Zapata, E., Castañeda-Castro, O., Gozalez-Arnao, M., Guevara-Valencia, M., & Diaz-Ramos, C. (2011). Alargamiento y enraizamiento de vitroplantas de cereza del perú (Physalis peruviana L.). Tropical and Subtropical Agroecosystems,, 537-542. Morales, F.J., Lozano, I., Muñoz, C., Castaño, M., Arroyave, J.A., Varón de Agudelo, F., Chávez, B., & Castillo, G. (2001). Caracterización molecular de los virus que afectan al maracuyá (Passiflora edulis Sims) y otras pasifloras en Colombia. Fitopatología Colombiana, 25(2), 99-102. Morales, F.J., Lozano, I., Castaño, M., Arroyave, J.A., Velasco A.C., & Varon F. (2002). Partial characterization of a tymovirus infecting passion fruit in Colombia, South America. Journal of Phytopathology 150(4-5), 292-296. doi: 10.1046/j.1439-0434.2002.00740.x Morales, F., Belo, W., Morales, G., & Kitajima, E. (2006). Occurrence of passion fruit green spot virus in the passion fruit crop in the State of Maranhão, Brazil. Fitopatologia Brasileira, 31,100. Morel, G., & Martin, C. (1952). Guerison de daphlias atteints d´une maladie a virus. C.R. Acad. Sci., 235, 1324-1325. Morley-Bunker, M. (1999). Passionfruit. En Jackson, D.I. y N.E. Looney (Eds.) Temperate and subtropical fruit production. 2a ed. (pp. 252-255). Wallingford, UK: CABI Publishing. Moroni, A., & Cordes, G. (2010). Producción de material libre de virus. Laboratorio de Fitopatología - Cátedra de Fitopatología. Universidad Nacional de Córdoba- Argentina. Obtenido de http://agro.unc.edu.ar/~fito/teoricos/viruslibrevirus.pdf Fecha de consulta: Enero 23 de 2020 Morton, J. (1987). Passionfruit. In J. Morton (Ed.), Fruits of warm climates. (pp. 320–328). Miami, Florida. Echo Point Books & Media. Muñoz, M. (2012). Biotecnología. Segunda Edición. Argentina: Universidad Nacional de Quilmes. Nascimento, A., Santana, E., Braz, A., Alfenas, P., Pio-Ribeiro, G., Andrade, G., de Carvalho, M., & Zerbini, F. (2006). Cowpea aphid-borne mosaic virus (CABMV) is widespread in passionfruit in Brazil and causes passionfruit woodiness disease. Archives of Virology, 151(9), 1797-1809. https://doi.org/10.1007/s00705-006-0755-6. Nakasone, H. Y., & Paull, R. E. (1998). Tropical fruits. Wallingford, UK. CAB International (CABI). NCBI Magic-BLAST. (s.f.). Obtenido : Enero 27 de 2020: https://ncbi.github.io/magicblast/ Noueiry, A. O., Lucas, W. J., & Gilbertson, R. L. (1994). Two proteins of a plant DNA virus coordinate nuclear and plasmodesmal transport. Cell, 76(5), 925-932. Nyanzi, S. A., Carstensen, B., & Schwack, W. (2005). A comparative study of fatty acid profiles of Passiflora seed oils from Uganda. Journal of the American Oil Chemists' Society, 82(1), 41-44. Ocampo, J., Coppens d'Eeckenbrugge, G., Restrepo, M., Salazar, M., Jarvis, A., & Caetano, C. (2007). Diversity of Colombian Passifloraceae: biogeography and an updatet list for conservation. Biota Colombiana, 8(1), 1-45. Ocampo, J., Coppens d'Eeckenbrugge, G., & Jarvis, A. (2010). Distribution of the Genus Passiflora L. diversity in Colombia and its potential as an indicator for diversity management in the Coffee Growing Zone. Diversity, 2, 1158-1180. doi:10.3390/d2111158 Ocampo, J., & Wyckhuys, K. (2012). Tecnología para el cultivo de la gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia. Bogotá: Centro de Bio-sistemas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano, Centro Internacional de Agricultura Tropical -CIAT y Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, República de Colombia. O'Herlihy, E., Croke, J., & Cassells, A. (2003). Influence of in vitro factors on titre and elimination of model fruit tree viruses. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 72(1), 33-42. https://doi.org/10.1023/A:1021260202876 Olmos, S., Luciani, G., & Galdeano, E. (2010). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. (pp. 353-362) Otahola, V. A., & VIidal G. (2010). Efecto de las características de la estaca y la utilización de ANA en la propagación de parchita (Passiflora edulis f. flavicarpa Deg.) Revista Científica UDO Agrícola 10 (1), 29-35 Oxford Nanopore technologies. (Busqueda en: Enero 26 de 2020). Obtenido de https://nanoporetech.com/applications/dna-nanopore-sequencing Ozarowski, M., & Thiem, B. (2013). Progress in micropropagation of Passiflora spp. to produce medicinal plants: a mini-review. Revista Brasileira de Farmacognosia, 23(6), 937-947. Pares, R., Gunn, L., Keskula, E., Martin, A., & Teakle, D. (1997). Occurrence of Passiflora latent carlavirus in cultivated and wild Passiflora species in Australia. Plant Disease, 81, 248–350. Peña, H., Vázquez-Juárez, R., Mejia, H., & Garzon-Tiznado, J. (2003). Geminivirus en Tomate (Lycopersicon esculentum Mill.) y Rango de Hospedantes en Baja California Sur, México. Revista Mexicana de fitopatología, 107-116. Pierik, L. (1990). Cultivo in vitro de las plantas superiores. Madrid: Mundi-Prensa. Porter, K., & Kuehnle, A. (1997). Using Dithiouracil and Ribavirin to eliminate Cymbidium mosaic virus during micropropagation of ‘Uniwai mist’ Dendrobium orchid. HortTechnology, 7,161-164. Prabha, K., Baranwal, V. K., & Jain, R. K. (2013). Applications of next generation high throughput sequencing technologies in characterization, discovery and molecular interaction of plant viruses. Indian Journal of Virology, 24(2), 157-165. Quevedo, E. (1989). Análisis de la floración y fructificación bajo tres sistemas de soporte en la gulupa. Trabajo de grado. Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. Ram, R., Verma, N., Singh, A. K., Singh, L., Hallan, V., & Zaidi, A. A. (2005). Indexing and production of virus-free chrysantemums. Biología Plantarum, 49 (1), 149-152. Rigden, P., & Newett, S. (2005). Passionfruit problem solver field guide. Natural library of Australia, Queensland, Australia., (pp. 132). Rivera, B., Miranda, D., Ávila , L. A., & Nieto, A. M. (2008). Manejo integral del cultivo del cultivo de la granadilla (Passiflora ligularis Juss.). Ed. Litoas, Manizales, Colombia. Robinson, T. S., Scherm, H., Brannen, P., Allen, R., & Deom, C. M. (2016). Blueberry necrotic ring blotch virus in southern highbush blueberry: Insights into in planta and in-field movement. Plant Disease, 100, 1575-1579. Rodríguez Sánchez, I. P., & Barrera Saldaña, H. A. (2004). La reacción en cadena de la polimerasa a dos décadas de su invención. Ciencia UANL, 7(3). Rodríguez, M. H., Niño, N., Cutler, J., Langer, J., Casierra-Posada, F., Miranda, D., Bandte, M. & Büttner, C. (2016). Certificación de material vegetal sano en Colombia: un análisis crítico de oportunidades y retos para controlar enfermedades ocasionadas por virus. Revista Colombiana De Ciencias Hortícolas , 10(1), 164-175. doi: 10.17584/rcch.2016v10i1.4921. Rojas, M. (1993). Use of degenerate primers in the polymerase chain reaction to detect whitefly transmitted geminiviruses. Plant Disease, pp. 340-347. Rojas, M. R., Hagen, C., Lucas, W. J., & Gilbertson, R. L. (2005). Exploiting chinks in the plant's armor: evolution and emergence of geminiviruses. Annual Review of Phytopathology., 43, 361-394. doi: 10.1146/annurev.phyto.43.040204.135939 Ruggiero, C., São José, A.R., Volpe, C.A., Oliveira, J.C., Duringan, J.F., Baumgartner, J.G., Silva, J.R., Nakamura, K., Ferreira, M.E., Kavati, R., & Pereira, V.P. (1996). Maracujá para expotação: Aspectos técnicos da Produção. Brasília: Publicações Técnicas FRUPEX 19, 64. Sanabria, N.M. (2010) Reconocimiento de enfermedades en gulupa (Passiflora edulis Sims.) en el departamento de Boyacá. (Tesis de maestría) Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá Recuperado de https://repository.javeriana.edu.co/bitstream/handle/10554/8664/tesis617.pdf?sequence=1&isAllowed=y Sanderfoot, A. A., & Lazarowitz, S. G. (1996). Getting it together in plant virus movement: cooperative interactions between bipartite geminivirus movement proteins. Trends in cell biology, 6(9), 353-358. Sastry, K. S., & Zitter, T. A. (2014). Management of virus and viroid diseases of crops in the tropics. Plant virus and viroid diseases in the tropics., (pp. 149-480). Shabardina, V., Kashima, Y., Suzuki, Y., & Makalowski, W. (2020). Emergence and evolution of ERM proteins and merlin in metazoans. Genome biology and evolution, 12(1), 3710-3724. Shapiro, E. M., Sharer, K., Skrtic, S., & Koretsky, A. P. (2006). In vivo detection of single cells by MRI. Magnetic Resonance in Medicine: An Official Journal of the International Society for Magnetic Resonance in Medicine, 55(2), 242-249. Shcherbakova, L. A. (2007). Advanced methods of plant pathogen diagnostics. In Comprehensive and Molecular Phytopathology (pp. 75-116). Elsevier. Schena, L., Nigro, F., Ippolito, A., & Gallitelli, D. (2004). Real-time quantitative PCR: a new technology to detect and study phytopathogenic and antagonistic fungi. European Journal of plant pathology, 110(9), 893-908. Shoyinka, S.A., Thottappilly, G., Adebayo, G.G., Anno-Nyako, F.O. (1997). Survey on cowpea virus incidence and distribution in Nigeria. International Journal of Pest Management, 43(2),127-132. Shukla, D., Ward, C., Brunt, A., & Berger, P. (1998). Potyviridae family. CMI/AAB Descriptions of plant viruses N° 366. Recuperado de Association of Applied Biologists: http://www.dpvweb.net/dpv/showdpv.php?dpvno=366 Sierra, J.C., Gómez, C., Sánchez, E.E., & Pinilla, M. (2013). Viabilidad financiera para la producción y exportación de gulupa (Passiflora edulis Sims) hacia el mercado español. Corpoica. Ciencia y tecnología Agropecuaria, 14(1), 17-26. Recuperado de https://www.redalyc.org/pdf/4499/449945181003.pdf Sierra, J.C.; Gómez, C.; Sánchez E.E.; Pinilla, M. (2013). Viabilidad financiera para la producción y exportación de gulupa (Passiflora edulis Sims) hacia el mercado español. Corpoica. Ciencia y tecnología Agropecuaria, 14(1), 17-26. Singh, S.J. (2004). Virus and Phytoplasma Diseases of Passion Fruit. En: Diseases of Fruits and Vegetables, Diagnosis and Management, 11, 269-300 Simpkins, I., Walkey, D. G. A., & NEELY, H. A. (1981). Chemical suppression of virus in cultured plant tissues. Annals of Applied Biology, 99(2), 161-169. SOAP de novo: short-read assembly. (s.f.). Obtenido de https://www.animalgenome.org/bioinfo/resources/manuals/SOAP.html The complete genome sequence and genome structure of passion fruit mosaic virus. Arch Virol 156, 1093–1095 (2011). https://doi.org/10.1007/s00705-011-0961-8 Spiegel, S., Zeidan, M., Sobolev, I., Beckelman, Y., Holdengreber, V., Tam, Y., Bar Joseph, M., Lipsker, Z., & Gera, A. (2007). The complete nucleotide sequence of Passiflora latent virus and its phylogenetic relationship to other carlaviruses. Archies Virology, 152, 181-189. Stark, R., Grzelak, M., & Hadfield, J. (2019). RNA sequencing: the teenage years. 20, 631–656 https://doi.org/10.1038/s41576-019-0150-2. Nature Reviews \| Genetics, 20, 631–656. St. Hill, A.A., Zettler, F.W., Elliot, M.S., Peterson, M.A., Li, R.H., & Bird, J. (1992). Presence of Passiflora Latent Virus and a Serologically Distinct Strain of Maracuja mosaic virus in Passiflora spp in Florida. The American Phytophatological Society. Plant Disease 76,843-847. Swiss Institute of Bioinformatics SIB. (s.f.). Obtenido de https://www.sib.swiss/ Thien, H., & T., I. E. (2014). Development of a virus detection and discovery pipeline using next generation sequencing. Virology, 473,54–60. Toussaint, A., Kummert, J., Maroquin, C., Lebrun, A., & Roggemans, J. (1993). Use of Virazole® to eradicate Odontoglossum ringspot virus from in vitro cultures of Cymbidium Sw. Plant Cell, Tissue an Organ Culture, 32(3):303-309. Ulmer, T., & MacDougal, J.M. (2004). Passiflora: Passionflowers of the world. Timber Press Portland, Oregon, 430. Vaca, J. C. V., Carrasco-Lozano, E. C., Rodríguez-Rodríguez, M., Pérez, J. F. B., & López-López, K. (2016). Primer reporte de un begomovirus presente en maracuyá amarillo [Passiflora edulis f. flavicarpa (Degener)] en Valle del Cauca, Colombia. Revista Colombiana de Biotecnología, 18(2), 56-65. Valverde, R., Nameth, S., & Jordan, R. (1990). Analysis of double-stranded RNA for plant virus diagnosis. 74:255-258. Plant Disease. doi:10.1094/PD-74-0255 Vemulapati, B., Druffel, K. L., Husebye, D., Eigenbrode, S. D. & Pappu, H. R. (2014). Development and application of ELISA assays for the detection of two members of the family Luteoviridae infecting legumes: Pea enation mosaic virus (genus Enamovirus) and Bean leafroll virus (genus Luteovirus). Annu. Appl. Biol. 165, 130-136. Verma, N., Ram, R., & Zaidi, A. A. (2005). In vitro production of Prunus necrotic ringspot virus-free begonias through chemo and termotherapy. Scientia Horticulturae, 103, 239-247. Vijan, L. E., & Topală, C. M. (2016). Study of Ribavirin–Nucleic Acids Interaction. Chemical Engineering Communications, 203(12), 1562-1571. Villalobos, V. (1979). Obtención de plantas de clavel (Dianthus caryophyllus) libres de virus por cultivo in vitro de meristemos y ápices vegetativos. México: Secretaria de Agricultura y Recursos Hidráulicos. Wang, Q., Mawassi, M., Li, P., Gafny, R., I., S., & Tanne, E. (2003). Elimination of grapevine virus A (GVA) by cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of Vitis vinifera L. Plant Science, pp. 312-327. Wang, Q., & Valkonen, J. (2008). Elimination of two viruses which interact synergistically from sweetpotato by shoot tip culture and cryotherapy. Journal of Virological Methods, (pp. 135-145). Wang, Q., Cuellar, W., Rajamäk, M., Hirata, Y., & Valkonen, J. (2008a). Combined thermotherapy and cryotherapy for efficient virus eradication: relation of virus distribution, subcellular changes, cell survival and viral RNA degradation in shoot tips. Molecular Plant Pathology, 9(2), 237-250. Wang, Q., & Valkonen, J. (2008b). Elimination of two viruses which interact synergistically from sweet potato by shoot tip culture and cryotherapy. Journal of Virological Methods, 154,135–145. doi:https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2008.08.006 Wang, Q., & Valkonen, J. P. (2009). Cryotheraphy of shoot tips: novel pathogen eradication method. Technical and application. Trends in Plant Science, 14(3), 119-122. Wang, Y., & Navin, N. E. (2015). Advances and Applications of Single-Cell Sequencing Technologies. Molecular cell, 58(4), 598-609. Wang, M., Chen, L., Zhang, Z., Blystad, D., & Wang, Q. (2018). Cryotherapy: A Novel Method for Virus Eradication in Economically Important Plant Species. Plant Cell Culture Protocols, (pp. 257-268). doi: 10.1007/978-1-4939-8594-4_17 Wetzel, T., Candresse, T., Macquaire, G., Ravelonandro, M., & Dunez, J. (1992). A highly sensitive immunocapture polymerase chain reaction method for plum pox potyvirus detection. Journal Virologyl Methods., 39, 27-37. White, P. (1934). Multiplication of the viruses of tobacco and Aucuba mosaics in growing excised tomato root tips. The Rockefeller Institute, USA., (pp. 581). Winks, C. W., Menzel, C. M., & Simpson, D. R. (1988). Passionfruit in Queensland. 2. Botany and cultivars. Queensland Agricultural Journal, 114, 217-224. Wylie, S. J., & Jones, M. G. (2011). The complete genome sequence of a Passion fruit woodiness virus isolate from Australia determined using deep sequencing, and its relationship to other potyviruses. Archives of virology, 156(3), 479-482. Yockteng, R., D’Eeckenbrugge, G.C., & Souza-Chies, T.T. (2011). Passiflora. En C. Kole (Ed.), Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources. Tropical and Subtropical Fruits (pp. 129-171). Clemson, USA: Springer. Yuan, Y., Lee, H., Hu, H., Scheben, A., & Edwards, D. (2018). Single-Cell Genomic Analysis in Plants. Genes, 9(1), 50. https://doi.org/10.3390/genes9010050 Zapata, C., Creighton, M., & Smith, R. (1995). An in vitro procedure to eradicate potato viruses x, y, and s from russet norkotah and two of its strains. Society for In Vitro Biology, 153-159. Zerbini, F.M., Briddon, R.W., Idris, A., Martin, D.P., Moriones, E., Navas-Castillo, J., Rivera-Bustamante, R., Roumagnac, P., Varsani, A., & ICTV Report Consortium. (2017) ICTV Virus Taxonomy Perfil: Geminiviridae, Journal of General Virology, 98, 131 - 133. Zerbino, D. (2010). Using the Velvet de novo assembler for short-read sequencing technologies. Capítulo 11 , Unidad 11.5. doi:doi: 10.1002 / 0471250953.bi1105s31 Zhao, L., Wang, M. R., Cui, Z. H., Chen, L., Volk, G. M., & Wang, Q. C. (2018). Combining Thermotherapy with Cryotherapy for Efficient Eradication of Apple stem grooving virus from Infected In-vitro-cultured Apple Shoots. Plant disease, 102(8), 1574-1580. Zumla, A., Al-Tawfiq, J. A., Enne, V. I., Kidd, M., Drosten, C., Breuer, J., Muller, M., Hui, D., Maeurer, M., Bates, M., Mwaba, P., Al-Hakeem, R.,Gray, G., Gautret, P., Al-Rabeeah, A.,Memish, Z., & Gant, V. (2014). Rapid point of care diagnostic tests for viral and bacterial respiratory tract infections—needs, advances, and future prospects. The Lancet infectious diseases, 14(11), 1123-1135.
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A pesar de su importancia, los conocimientos frente a las prácticas agronómicas del cultivo son reducidos, por lo que el manejo de enfermedades, especialmente aquellas de origen viral, es muy limitado. Las enfermedades virales de las plantas causan grandes pérdidas en la producción agrícola mundial al reducir los rendimientos de los cultivos, afectar la calidad de los frutos y disminuir la longevidad de las plantas. La sintomatología que inducen los virus en las plantas puede aparecer después de largos periodos de infección causando mosaicos, moteados, deformaciones foliares, enanismos, variegaciones, y amarillamientos, entre otros; sin embargo, en algunos casos las infecciones pueden ser asintomáticas, lo que dificulta aún más la detección temprana de los agentes causales. Debido a la poca información que aún se tiene sobre el viroma de la gulupa, sus mecanismos de transmisión y la sintomatología asociada, este trabajo de investigación tuvo como objetivo detectar e identificar los virus que infectan los cultivos de gulupa en el Oriente y Suroeste de Antioquia utilizando pruebas moleculares, como RT-qPCR y secuenciación de nueva generación (NGS), para el apoyo de los programas de manejo fitosanitario y certificación de semilla de este frutal. Los resultados obtenidos indicaron que el virus de RNA con mayor prevalencia en los cultivos en producción fue el tymovirus passion fruit yellow mosaic virus (PFYMV) con un 62%, seguido por el potyvirus soybean mosaic virus (SMV) con 22% y por el cucumovirus cucumber mosaic virus (CMV) presente en el 10% de las muestras. Por otro lado, la detección viral en el material de siembra (brotes de semillas y en plántulas) utilizado en estas regiones indicó la presencia del PFYMV (82%), SMV (44%) y CMV (12%). Adicionalmente, se detectó un virus de DNA del género Badnavirus (gulupa bacilliform virus A -GBVA) en el 60% del total de las muestras evaluadas, así como un nuevo tymoviridae en el suroeste de Antioquia, cuyo nombre tentativo es: purple passionfruit leaf deformation virus (PpLDV). Finalmente, se estableció un protocolo para el cultivo in vitro de explantes de gulupa y enraizamiento ex vitro y se evaluaron las técnicas de limpieza viral de termoterapia y quimioterapia sobre plántulas de 2-3 meses, obteniendo un porcentaje de eliminación viral en el tratamiento térmico del 71,4% para PFYMV. Por otra parte, el tratamiento de quimioterapia permitió eliminar el PFYMV en un 66,7% de las muestras. Este estudio confirma la importancia de la implementación de técnicas moleculares y métodos de secuenciación masiva como herramientas eficientes para el diagnóstico temprano de infecciones virales en cultivos de importancia económica. Se espera que estos resultados contribuyan al diseño de programas de manejo integrado de enfermedades en gulupa, a la generación de material de siembra certificado por su sanidad vegetal y al establecimiento de sistemas de vigilancia cuarentenaria que eviten la dispersión de los virus aquí reportados en los cultivos de este frutal en Antioquia y otras regiones del país. (Texto tomado de la fuente)Due to the little information available on the viruses affecting purple passion fruit, their associated symptoms and transmission mechanisms, this work aimed at characterizing this virome in eastern and southwestern Antioquia. Viruses were detected using PCR-based methods such as RT-qPCR and high-throughput sequencing (HTS). The information presented here will provide significant insights into the design of disease management strategies and seed certification programs for this crop. This study reveals that the most prevalent RNA viruses in purple passion fruit fields are the tymovirus passion fruit yellow mosaic virus (PFYMV) at 62%, the potyvirus soybean mosaic virus (SMV) at 22%, and the cucumovirus cucumber mosaic virus (CMV) at 10%. On the other hand, analysis of viruses infecting the plantlets and seed-sprouts used by farmers in these regions revealed the presence of PFYMV at 82%, SMV at 44%, and CMV at 12%. In addition to these viruses, a new DNA virus, gulupa bacilliform virus A (GBVA, Badnavirus), was detected in 60% of samples. Additionally, a new member of the family Tymoviridae, tentatively named purple passion fruit leaf deformation virus (PpLDV), was discovered in field samples from the southwest. Protocols to produce in vitro explants and ex vitro rooting were also developed in this work to investigate the effect of chemotherapy and thermotherapy on virus eradication. Thermotherapy resulted in 71,4% elimination of PFYMV, in contrast to 66,7% with chemotherapy. This work confirms the importance of implementing molecular and high-throughput sequencing methods as routine diagnostic tools for the early detection of viruses in economically important crops. Hopefully, the results presented here will contribute to the implementation of an integrated disease management program for purple passion fruit, the production of planting material free of viruses, and the establishment of quarantine monitoring and surveillance protocols of incoming planting stocks in Antioquia and elsewhere in Colombia.MaestríaMagíster en Ciencias - BiotecnologíaVirología vegetalÁrea curricular Biotecnología273 páginasapplication/pdfspaUniversidad Nacional de ColombiaMedellín - Ciencias - Maestría en Ciencias - BiotecnologíaFacultad de CienciasMedellín, ColombiaUniversidad Nacional de Colombia - Sede Medellín630 - Agricultura y tecnologías relacionadas::632 - Lesiones, enfermedades, plagas vegetales580 - PlantasPatología vegetalVisosis (Plantas)Plant diseasesVirus diseases of plantsPassifloraceaeQuimioterapiaSecuenciación de alto rendimientoTermoterapiaVirus de plantasRT-PCRRT-PCRchemotherapyhigh-throughput sequencingPassifloraceaeplant virusesthermotherapyCaracterización genómica de los virus que infectan los cultivos de gulupa (Passiflora edulis f. edulis) en Antioquia para el apoyo de los programas de certificación de semillaGenome characterization of viruses infecting purple passion fruit (Passiflora edulis f. edulis) in Antioquia as support of seed-certification programsTrabajo de grado - Maestríainfo:eu-repo/semantics/masterThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionTexthttp://purl.org/redcol/resource_type/TMOriente Antioqueño, ColombiaSuroeste Antioqueño, ColombiaAgrosaviaRedColLaReferenciaAgrovocAbd El-Aziz, M. H. (2019). Three modern serological methods to detect plant viruses. Journal of Plant Science and Phytopathology, 3, 101-106.Adams, I. P., Glover, R. H., Monger, W. A., Mumford, R., Jackeviciene, E., Navalinskiene, M., Samuitiene, M., & Boonham, N. (2009). Next‐generation sequencing and metagenomic analysis: a universal diagnostic tool in plant virology. Molecular Plant Pathology, 10(4), 537-545.Adams, I., & Fox, A. (2016). Diagnosis of plant viruses using next-generation sequencing and metagenomic analysis. In Current research topics in plant virology (pp. 323-335). Springer, Cham.Agronet (2018) Ministerio de Agricultura. Recuperado de https://www.agronet.gov.co/Noticias/Paginas/Gulupa-y-otras-frutas-ex%C3%B3ticas-se-pueden-mejorar-para-exportaci%C3%B3n.aspxAguirre, G., Baudoin, J., & Leigue, L.(Eds.) (2010). Aplicación del Cultivo de Tejidos en la Multiplicación y Conservación de los Recursos Fitogenéticos. Cochabamba, Bolivia: Universidad Mayor de San Simón, Facultad de Ciencias Agrícolas, Pecuarias, Forestales y Veterinarias.Angel, C., Nates, G., Ospina, R., Melo, C. D., & Amaya, M. (2011). Floral and reproductive biology of the" gulupa" Passiflora edulis Sims f. edulis. Caldasia, 33(2), 433-451.Angulo , R. (2009). Gulupa (Passiflora edulis var. edulis Sims.). Bogotá, Colombia: Bayer Crop Science.Andrade, S., Fonseca, L., Silvia, M., Faleiro, F., & Junqueira N. (2010). Estudos preliminares para o uso de termoterapia ex vitro em maracujazeiro-azedo visando a eliminacao de virus-do-endurecimento-dos-frutos- Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento (Embrapa Cerrados) 267, 1-18.Arya, M., Shergill, I. S., Williamson, M., Gommersall, L., Arya, N., & Patel, H. R. (2005). Basic principles of real-time quantitative PCR. Expert Review Of Molecular Diagnostics, 5(2), 209-219.Aslam, S., Tahir, A., Aslam, M. F., Alam, M. W., Shedayi, A. A., & Sadia, S. (2017). Recent advances in molecular techniques for the identification of phytopathogenic fungi–a mini review. Journal of Plant Interactions, 12(1), 493-504.Azcón-Bieto, J., & Talón, M. (2008). Fundamentos de fisiología vegetal. 2ª Edición. Madrid: McGRAW-HILL - Interamericana De España, S. L.Badali, H., & Nabili, M. (2012). Molecular Tools in Medical Mycology; Where We Are!. Jundishapur Journal of Microbiology, 6(1), 1-3. doi: 10.5812/jjm.8566.Balaguera, H.E., Álvarez, J.G., & Cárdenas, J. (2010). Efecto de la estratificación fría y la cobertura plástica en semillas de gulupa (Passiflora edulis Sims.) para la obtención de plántulas Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica. 13(2), 89-97.Bandte, M., Rodriguez, M. H., Schuch, I., Schmidt, U., & Buettner, C. (2016). Plant viruses in irrigation water: reduced dispersal of viruses using sensor-based disinfection. Irrigation Science, 34(3), 221-229.Benscher, D., Pappu, S., Niblett, C., Varón de Agudelo, F., Morales, F., Hodson, E., Alvarez, E., Acosta, O., & Lee, R.F. (1996). A strain of Soybean mosaic virus infecting Passiflora spp. in Colombia. Plant disease, 80, 258-262.Bentley, D. R., Balasubramanian, S., Swerdlow, H. P., Smith, G. P., Milton, J., Brown, C. G., Boutell, J. M. & et al. (2008). Accurate whole human genome sequencing using reversible terminator chemistry. Nature, 456(7218), 53-59.Bernal, R., Gradstein, S.R., & Celis, M. (2015). Catálogo de plantas y líquenes de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá. Recuperado de http://catalogoplantasdecolombia.unal.edu.co/es/Bharagava, R. N., Purchase, D., Saxena, G., & Mulla, S. I. (2019). Chapter 26 - Applications of Metagenomics in Microbial Bioremediation of Pollutants: From Genomics to Environmental Cleanup. Microbial Diversity in the Genomic Era, (pp. 459-477). Oxford, UK. ElsevierBio-Rad Laboratories Inc. (2020) Recuperado de https://www.bio-rad-antibodies.com/elisa-types-direct-indirect-sandwich-competition-elisa-formats.htmlBolaños, M. (2017). Micropropagación in vitro de meristemos para control del virus del amarillamiento foliar (SCYLV) en variedades de caña de azúcar. Facultad De Ciencias Ambientales Y Agrícolas. Universidad Rafael Landívar. Guatemala de la Asunción.Boonham, N., Kreuze, J., Winter, S., Van der Vlugt, R., Bergervoet, J., Tomlinson, J., & Mumford, R. (2014). Methods in virus diagnostics: from ELISA to next generation sequencing. Virus Research, 186, 20-31.Boratyn, G. M., Thierry-Mieg, J., Thierry-Mieg, D., Busby, B., & Madden, T. L. (2019). Magic-BLAST, an accurate RNA-seq aligner for long and short reads. BMC bioinformatics, 20(1), 1-19.Burrows-Wheeler Aligner. (28 de Febrero de 2010). Obtenido de http://bio-bwa.sourceforge.net/.Büttner, C., von Bargen, S., & Bandte, M. (2015). Phytopathogenic Viruses. En Principles of Plant-Microbe Interactions (pp. 115-122). Springer, Cham.Brandes, J., & Wetter, C. (1963). Untersuchungen über Eigenschaften und Verwandtschaftsbeziehungen des Latenten Passiflora‐Virus (Passiflora latent virus). Journal of Phytopathology, 49(1), 61-70.Bronzato Badial, A., Sherman, D., Stone, A., Gopakumar, A., Wilson, V., Schneider, W., & King, J. (2018). Nanopore sequencing as a surveillance tool for plant pathogens in plant and insect tissues. Plant disease, 102(8), 1648-1652.Brunt, A., Crabtree, K., Dallwitz, M. J., & Gibbs, A. J.(Eds.) (1990). Viruses of tropical plants. Oxon, UK: CAB International Press.Caleño, B.L., & Morales, G. (2019). Propagación asexual de especies endémicas y amenazadas del género Passiflora en los Andes colombianos. En Colombia Forestal 22 (2), 67-82. https://doi.org/10.14483/2256201X.14302Camacaro, N., Pérez, D., Miranda, M., Carvajal, R., & Espinoza, M. (2005). Métodos para la ruptura de latencia de semillas de parchita (Passiflora edulis Sims. f. flavicarpa). Facultad de Agronomía U. Central de Venezuela, Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas (INIA), Aragua.Camelo, V. (2010). Detección e identificación e los virus patógenos de cultivos de gulupa (Passiflora edulis Sims) en la región de Sumapaz (Cundinamarca). Trabajo de grado de maestría en Fitopatología. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de agronomía. Bogotá.Cameron, C. E., & Castro, C. (2001). The mechanism of action of ribavirin: lethal mutagenesis of RNA virus genomes mediated by the viral RNA-dependent RNA polymerase. Current opinion in infectious diseases, 14(6), 757-764.Carstens, E. B. (2010). Ratification vote on taxonomic proposals to the International Committee on Taxonomy of Viruses (2009). Archives of virology, 155, 133-146.Carvajal., L. M. Enfermedades en gulupa. . Obtenido de Universidad Nacional De Colombia- Ministerio De Agricultura Y Desarrollo Rural- Asohofrucol : http://www.asohofrucol.com.co/archivos/biblioteca/biblioteca_135_Enfermedades_gulupa.pdfCastaño, J. (2009). Enfermedades importantes de las pasifloráceas en Colombia. pp. 223-244. En: Miranda, D., G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahíta y L.E. Flórez (Eds.), Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.Castilla, J. (fecha de Consulta 5 de Julio de 2019). Agronegocios. Obtenido de https://www.agronegocios.co/agricultura/la-exportacion-de-gulupa-supero-las-8109-toneladas-2881324Castillo, A. (2004). Propagación de plantas por cultivo in vitro:una biotecnología que nos acompaña hace mucho tiempo.Las Brujas, Uruguay: AR-VITRO, INIA. Obtenido de http://www.inia.uy/Publicaciones/Documentos%20compartidos/111219220807102417.pdf Fecha de consulta: Enero 21 de 2020Castro, L. (2001). Guía básica para el establecimiento y mantenimiento del cultivo de la granadilla. Bogotá: Asociación Hortofrutícula de Colombia (ASOHOFRUCOL).Chagas, C.M., Colariccio, A., & Kitajima, E.W. (1983) Estudos de transmissibilidade do enfezamento do maracujazeiro. Fitopatologia Brasileira, 8, 620Chang, C. A. (1992). Characterization and comparison of passionfruit mottle virus, a newly recognized potyvirus, with passionfruit woodiness virus. Phytopathology, 82(11), 1358-1363.Chellappan, P., Vanitharani, R., Ogbe, F., & Fauquet, C. M. (2005). Effect of temperature on geminivirus-induced RNA silencing in plants. Plant physiology, 138(4), 1828-1841.Chomczynski, P. (1993). A Reagent for the Single-step Simultaneous Isolation of RNA, DNA and Proteins from Cell and Tissue Samples. BioTechniques 15(3),532-536Clark, M.F., & Adams, A.N. (1977). Characteristics of the microplate method of enzymelinked immunosorbent assay for the detection of plant viruses, Journal of General Virology, 34(3), 475-483Clark, D.P,Pazdernik, N., & McGehee, M. (2019) Chapter 8 - DNA Sequencing. Molecular Biology (Third Edition), (pp. 240-269). Academic Cell.Cobo, F. (2012). Application of molecular diagnostic techniques for viral testing. The Open Virology Journal, 6, 104-114. doi: 10.2174/1874357901206010104Conci, V. (2004). Obtención de plantas libres de virus. Biotecnología y Mejoramiento Vegetal, 8(5), 303-312.Conci, V. (2010). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Argentina: INTA.Crotty, S., Maag, D., Arnold, J. J., Zhong, W., Lau, J. Y., Hong, Z., Andino, R., & Cameron, C. E. (2000). The broad-spectrum antiviral ribonucleoside ribavirin is an RNA virus mutagen. Nature medicine, 6(12), 1375-1379.Cox, J.E. (1957). Flowering and pollination of passion fruit. Agri. Gaz. N.S. Wales, 68, 573-576.Crestani, O. A., Kitajima, E. W., Lin, M. T., & Marinho, V. L. A. (1986). Passion fruit yellow mosaic virus, a new tymovirus found in Brazil. Phytopathology, 76(9), 951-955.Dasmahapatra, K. K., & Mallet, J. (2006). DNA barcodes: recent successes and future prospects. Heredity, 97(4), 254-255.Dawson, W. (1984). Effects of animal antiviral chemicals on plant viruses. Phytopathology 74(2),211-213.de Andrade, S. R., Fonseca, L., Silva, M., Faleiro, F., & Junqueira, N. (2010). Estudos preliminares para o uso de termoterapia ex vitro em maracujazeiro-azedo visando à eliminação de vírus-do-endurecimento-dos-frutos. Embrapa Cerrados-Boletim de Pesquisa e Desenvolvimento (INFOTECA-E).Dellaporta, S., Wood, J., & Hicks, J. (1983). A plant DNA minipreparation: Version II. Plant Molecular Biology Reporter, pp. 19-21.Deshmukh, N. A., Patel, R. K., Okram, S., Rymbai, H., Roy, S. S., & Jha, A. K. (2017). Passion fruit (Passiflora spp.). Magnesium (mg/litre), 100, 200.Dhawan, K., Dhawan, S., & Sharma, K. (2004). Passiflora: A review update. Journal of Ethnopharmacology, 94(1), 1-23.Didier, C. (2001). Growing passion fruit. Tropical Fruits Newsletter.Djikeng, A., & Spiro, D. (2009). Advancing full length genome sequencing for human RNA viral pathogens. Future Virology. https://doi.org/10.2217/17460794.4.1.47Doyle, J. (1987). A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, (pp. 1-15).Drew, R. (1991). In vitro culture of adult and juvenile bud explant of passiflora species. Plant cell, Tissue and organ culture, 26, 23-27.Drew, R. A. (1997). Micropropagation of Passiflora species (passionfruit). In High-tech and micropropagation (pp. 135-149). Berlin, Heidelberg: Springer.Droege, M., & Hill, B. (2008). The Genome Sequencer FLX™ System—Longer reads, more applications, straight forward bioinformatics and more complete data sets. Journal of biotechnology, 136(1-2), 3-10.El-Araby, W. S., Ibrahim, I. A., Hemeida, A. A., Mahmoud, A., Soliman, A. M., El-Attar, A. K., & Mazyad, H. M. (2009). Biological, serological and molecular diagnosis of three major potato viruses in Egypt. International Journal of Virology, 5(2), 77-88. doi: 10.3923/ijv.2009.77.88Escobar, L. (1988). En Passifloraceae. Flora de Colombia. Instituto de Ciencias Naturales, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá.10, 1-138.Ferreira, S. S., Barros, D. R., De Almeida, M. R., & Zerbini, F. M. (2010). Characterization of Passionfruit severe leaf distortion virus, a novel begomovirus infecting passionfruit in Brazil, reveals a close relationship with tomato‐infecting begomoviruses. Plant Pathology, 59(2), 221-230.Fischer, G. (2000). Efecto de las condiciones en precosecha sobre la calidad poscosecha de los frutos. Revista Comalfi 27(1-2), 39-50.Fischer, I., & Rezende, J. (2008). Diseases of Passion Flower (Passiflora spp.). Pest Technology, 2, 1–19.Fischer, G. (Noviembre, 2010). Condiciones ambientales que afectan crecimiento, desarrollo y calidad de las pasifloráceas. En Primer Congreso Latinoamericano de Passiflora. Corporación Centro de Investigación para la Gestión Tecnológica de Passiflora del departamento de Huila CEPASS y La Asociación Hortofrutícola de Colombia ASOHOFRUCOL, Huila.Forero, A.; Becerra, N.; Fischer, G.; Miranda, D. (2008). Propagación de gulupa (Passiflora edulis Sims) por estacas. Seminario Nacional sobre Pasifloráceas. Programa científico y libro de resúmenes. Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas. Bogotá.Gallard, A., Mallet, R., Chevalier, M., & Grapin, A. (2011). Limited elimination of two viruses by cryotherapy of pelargonium apices related to virus distribution. CryoLetters, 32(2), 111-122.Gallo, Y. (2017). Caracterización molecular del viroma de plantas solanáceas de importancia económica en Antioquia. Tesis doctoral en Biotecnología. Universidad Nacional de Colombia. Medellín, Antioquia, Colombia.Garrido, C., Carbú, M., Fernández‐Acero, F. J., Boonham, N., Colyer, A., Cantoral, J. M., & Budge, G. (2009). Development of protocols for detection of Colletotrichum acutatum and monitoring of strawberry anthracnose using real‐time PCR. Plant Pathology, 58(1), 43-51.Garrido, C., Acero, F. G. F., Carbú, M., Rodriguez, V. E. G., Liniero, E., & Cantoral, J. M. (2012). Molecular microbiology applied to the study of phytopathogenic fungi. Biochemistry, Genetics and Molecular Biology. Rijeka, InTech, 139-156.Gawad, C., Koh, W., & Quake, S. R. (2016). Single-cell genome sequencing: current state of the science. Nature Reviews Genetics, 17(3), 175.Gella, R., & ERREA, P. (1998). Application of In Vitro Therapy for Ilarvirus Elimination in Three Prunus Species. Journal of Phytopathology, 445-449.Gioria, R., Espinha, L., Rezende , J., Gaspar, J., & Kitajima, E. (2002). Limited movement of Cucumber mosaic virus (CMV) in yellow passion flower in Brazil. Plant Pathology., 51, 127-133.Giulietti, A., Overbergh, L., Valckx, D., Decallonne, B., Bouillon, R., & Mathieu, C. (2001). An overview of real-time quantitative PCR: applications to quantify cytokine gene expression. Methods, 25(4), 386-401.Gomes, A., & Korf, B., (2018) Genetic Testing Techniques. In N. Robin, Farmer, M. (Eds.) Pediatric Cancer Genetics. (pp 350). Alabama: Elsevier.González, R. (2017). Evolution of diagnostic technics for plant viruses. Revista Mexicana de Fitopatología, 35(3), 591-610. doi:10.18781/R.MEX.FIT.1706-1Gosalvez, B., Garcia, S., Pallas, V., & Sanchez, M. A. (2006). Distribution of carnation viruses in the shoot tip: exclusion from the shoot apical meristem. Physiological and molecular plant pathology, 69(1-3), 43-51.Goulter, K. C., & Randles, J. W. (1997). Serological and molecular techniques to detect and identify plant pathogens, (pp. 172-188).Grabherr, M. G., Haas, B. J., Yassour, M., Levin, J. Z., Thompson, D. A., Amit, I., Adiconis, X., Fan, L., Raychowdhury, R., Zeng, Q., Chen, Z., Mauceli, E., Hacohen, N., Gnirke, A., Rhind, N., Palma, F., Birren, B., Nusbaum, C., Lindblad-Toh, K., Friedman, N., & Regev, A., (2011). Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature biotechnology, 29(7), 644.doi: 10.1038 / nbt.1883. PubMed PMID: 21572440 .Guerrero, E., Potosí, C., Melgarejo, L.M., & Hoyos, L. (2011). Manejo agronómico de gulupa (Passiflora edulis Sims) en el marco de las Buenas Prácticas Agrícolas (BPA). En L.M. Melgarejo (Ed.) Ecofisiología del cultivo de la gulupa (Passiflora edulis Sims) (pp. 123). Bogotá, Colombia: Produmedios.Ha, C., Coombs, S., Revill, P., Harding, R., Vu , M., & Dale, J. (2008). Design and application of two novel degenerate primer pairs for the detection and complete genomic characterization of potyviruses. Archives of Virology. 153, 25-36.Hadidi, A. R. (1998). Plant virus disease control. APS Press, USA. 684.Hakkaart, F. A., & Quak, F. (1964). Effect of heat treatment of young plants on freeing chrysanthemums from virus B by means of meritem culture. Neth. J. Plant Path., 70, 154-157.Hakkaart, F. A., & Jordanota, J. (1968). Heat treatment experiments with carnations for elimination of Carnation mottle and etched ring virases. Neth. J. Plant Path, 74, 146-149.Hanley-Bowdoin, L., Settlage, S. B., Orozco, B. M., Nagar, S., & Robertson, D. (2000). Geminiviruses: models for plant DNA replication, transcription, and cell cycle regulation. Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology, 35(2), 105-140Hechenleitner, V.P., Gardner, M.F., Thomas, P.I., Echeverría, C., Escobar, B., Brownless, P., & Martínez, C. (2005). Plantas amenazadas del Centro-Sur de Chile. Distribución, Conservación y Propagación. 1ª Ed. Recuperado de http://dspace.utalca.cl/bitstream/1950/10294/1/Hechenleitner%20%20V..pdfHelliot, B, Panis, B., Poumay, Y., Swennen, R., Lepoivre, P., & Frison, E. (2002). Cryopreservation for the elimination of Cucumber mosaic and Banana streak viruses from banana (Musa spp.). Plant Cell Report, 20,1117-1122 doi:https://doi.org/10.1007/s00299-002-0458-8Hernández, A., & Bernal, R. (2000). Lista de Especies de Passifloraceae de Colombia. Biota Colombiana, 1(3),320-335. ISSN: 0124-5376. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=491/49110302Hicks, R.G.T., Mohamed, M.E., & Blakesley, D. (1996) Passiflora latent carlavirus in European collections of ornamental Passiflora. Journal of Phytopathology 144, 203-205Ho, T., & Tzanetakis, I. E. (2014). Development of a virus detection and discovery pipeline using next generation sequencing. Virology, 471, 54-60.Hodson, E. (2005). Transformación genética de plantas para resistencia a virus. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias 29(110), 5-24.Hong, C., G.W. Moorman, W. Wohanka y C. Büttner (Eds.). (2014). Biology, detection, and management of plant pathogens in irrigation water. St. Paul, MN: APS Press.Houten, J. G. (1968). Heat treatment and meristem culture for the production of virus-free plant material. Neth. J. Pl. Path., v. 74, p. 17-24.Houten, J. G., Quak, F., & Van der Meer, F. A. (1968). Heat treatment and meristem culture for the production of virus-free plant material. Netherlands Journal of Plant Pathology., 74, 17.Igarza Castro, J., Hernández Pérez, H., & Cruz Castellanos, B. (2001). electroterapia como alternativa para la eliminación del virus LMV en malanga. Técnica. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica), 60, 57-60.Iwai, H., Ohmori, T., Kurokawa, Y., Muta, T., & Arai, K. (1996) New report of pas- sionfruit woodiness virus in Japan. Annals of the Phytopathological Society of Japan. 62, 459-465.Jan, F. J., & Yeh, S. D. (1995). Purification, in situ localization, and comparative serological properties of Passionfruit woodiness virus-encoded amorphous inclusion protein and two other virus proteins. Phytopathology, 85, 64-71.Jaramillo, H. (2016). Análisis del transcriptoma y viroma de Passiflora edulis f. edulis en cultivos de Antioquia utilizando métodos de secuenciación de nueva generación. Tesis de Maestría en Ciencias-Biotecnología. Universidad Nacional de Colombia. Medellín, Antioquia, Colombia.Jaramillo, H., Marín, M., & Gutiérrez, P. A. (2018). Molecular characterization of Soybean mosaic virus (SMV) infecting Purple passion fruit (Passiflora edulis f. edulis) in Antioquia, Colombia. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 51(11-12), 617-636.Jaramillo, H., Marín, M., & Gutiérrez Sánchez, P. A. (2019). Complete genome sequence of a Passion fruit yellow mosaic virus (PFYMV) isolate infecting purple passion fruit (Passiflora edulis f. edulis). Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 72(1), 8643-8654.Jiménez, Y. (2006). El cultivo de la gulupa Passiflora edulis Sims. (Trabajo final especialización en Horticultura). Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia. Bogotá.Jimenez, Y., Carranza, C., & RodrÍguez, M. (2009). Manejo integrado del cultivo de gulupa (Passiflora edulis Sims.) En Miranda, D., G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitskiy, F. Casierra, W. Piedrahita y L.E. Flórez (Eds). Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. (pp. 159-190) Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.Jo, H., & Koh, G. (2015). Faster single-end alignment generation utilizing multi-thread for BWA. Bio-medical materials and engineering, 26(1), 1791-1796.Jones, S., Baizan-Edge, A., MacFarlane, S., & Torrance, L. (2017). Viral diagnostics in plants using next generation sequencing: computational analysis in practice. Frontiers in plant science, 8, 1770.Khan, J., & Dijkstra, J. (2006). Handbook of plant virology. The Haworth Press, Inc.Knapp, E., Hanzer, V., Mendonca, D., da Câmara Machado, A., Katinger, H., & da Câmara Machado, M. L. (1997). Improved virus detection in rosaceous fruit trees in vitro. In Pathogen and Microbial Contamination Management in Micropropagation (pp. 23-29). Dordrecht: Springer.Killip, E. (1938). The American Species of Passifloraceae Field Museum of Natural History Publication. Botanical Series, 19(1,2), 1-613.King, A., Adams, M., Cartens, E., & Lefkowitz, E. (2012). Viral taxonomy. Virology Journal. Elsevier Academic Press.Kitajima, E., Chagas, C., & Crestani, O. (1986) Enfermidades de etiologia viral e associadas a organismos do tipo micoplasma em maracujazeiros no Brasil. Fitopatologia Brasileira 11, 409-432.Kitajima, E., Rezende, J., & Rodrigues, J. (2003). Passion fruit green spot virus vectored by Brevipalpus phoenicis (Acari: Tenuipalpidae) on passion fruit in Brazil. Experimental and Applied Acarology, 30, 225-31.Kitajima, E., Rezende, J., Rodrigues, J., Chiavegato, L., Piza-Junior, C., & Morozini, W. (1997). Green spot of passion fruit, a possible viral disease associated with infestation by the mite Brevipalpus phoenicis. Fitopatologia Brasileira, 22, 555–559.Kreuze, J. F., Perez, A., Untiveros, M., Quispe, D., Fuentes, S., Barker, I., & Simon, R. (2009). Complete viral genome sequence and discovery of novel viruses by deep sequencing of small RNAs: a generic method for diagnosis, discovery and sequencing of viruses. Virology, 388(1), 1-7.Kreuze, J. (2014). siRNA deep sequencing and assembly: piecing together viral infections. In Detection and diagnostics of plant pathogens (pp. 21-38). Springer, Dordrecht.Kumar, S., Khan, M., Raj, S. K., & Sharma, A. (2009). Elimination of mixed infection of Cucumber mosaic and Tomato aspermy virus from Chrysanthemum morifolium Ramat. cv. Pooja by shoot meristem culture. Scientia Horticulturae, 119,108-112.Laboratorio de servicios genómicos LANGEBIO, México. (2016). Obtenido de http://labsergen.langebio.cinvestav.mx/genomics/?services=sbssequencingLan, H., Lai, B., Zhao, P., Dong, X., Wei, W., Ye, Y., & Wu, Z. (2020). Cucumber mosaic virus infection modulated the phytochemical contents of Passiflora edulis. Microbial pathogenesis, 138, 103828. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2019.103828Lekeu, J.-P. (2001). Passion fruit. En Raemaekers, R.H. (ed.). (págs. pp. 626-631). Crop production.Li, Y., Zhou, X., & Ye, D. (2008). Molecular beacons: an optimal multifunctional biological probe. Biochemical and Biophysical Research Communications, 373(4), 457-461.Liu, W., Huang, S., Liu, N., Dong, D., Yang, Z., Tang, Y., Ma, W., He, X., Ao, D., Xu, Y., & Zou, D. (2017). Establishment of an accurate and fast detection method using molecular beacons in loop-mediated isothermal amplification assay. Scientific reports, 7(1), 1-9.Liberato, J.R., & Zerbini, F.M. (2003). Diseases of Passionfruit (Passiflora spp.). The American Phytopathological Society.Liberato, J.R., & Zerbini, F.M. (2016). Diseases of Passionfruit (Passiflora spp.). The American Phytopathological Society.Lim, S., Wong, S., & Goh, C. (1993). Elimination of Cymbidium mosaic virus and Odontoglossum ringspot virus from orchids by meristem culture and thin section culture with chemotherapy. Annals of Applied. Biology , 122(2),289-297.Lima, J. A. A., Nascimento, A. K. Q., Radaelli, P., & Purcifull, D. E. (2012). Serology applied to plant virology. Serological diagnosis of certain human, animal and plant diseases. Rijeka: InTech, 71-94.Litardo, A. C., Korneva, S. B., Fischer, F. C., Tola, N. A., Leal, M. R., & Flores, A. P. (2015). Obtención de semilla biotecnológica de caña de azúcar (Saccharum spp. híbrido) de alta calidad genética y fitosanitaria en el Ecuador. Revista Colombiana de Biotecnología, 17(1), 101-110.Lobo, M., & Medina, C. I. (2009). Recursos genéticos de pasifloráceas en Colombia. En D. Miranda, G. Fischer, C. Carranza, S. Magnitski, F. Casierra-Posada, W. Piedrahíta, & L. E. Flórez. Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa (pp. 7-15). Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.López, C., & Cazorla , J. Saneamiento del material vegetal: cultivo de meristemos. Obtenido de http://www.encuentros.uma.es/encuentros41/meristemos. Citado el 21 de Enero de 2020Lüdders, P. (2003). Granadilla (Passiflora edulis Sims.) a multiple useful tropical fruit. Erwerbs Obstbau, 45, 186-191.Macaulay, I. C., Teng, M. J., Haerty, W., Kumar, P., Ponting, C. P., & Voet, T. (2016). Separation and parallel sequencing of the genomes and transcriptomes of single cells using G&T-seq. Nature protocols, 11(11), 2081.Makałowski, W., & Shabardina, V. (2020). Bioinformatics of nanopore sequencing. Journal of Human Genetics, 65, 61–67. https://doi.org/10.1038/s10038-019-0659-4Manicom , B., Ruggiero, C., Ploetz , R., & Goes, A. (2003). Diseases of Passion Fruit. Diseases of Tropical Fruit Crops (pp. 413-441). Wallingford: CAB International.Manjarrés, E.H., & Perea, M. (2012). Establecimiento de un protocolo de propagación de gulupa (Passifl ora edulis SIMS.) a partir de embriones cigóticos y yemas axilares. Agronomía, 20(2), 53-64.Marcel, S., Sawers, R., Oakeley, E., Angliker, H., & Paszkowski, U. (2010). Tissue-adapted invasion strategies of the rice blast fungus Magnaporthe oryzae. The Plant Cell, 22(9), 3177-3187.Marín, M., & Gutiérrez, P. (2016). Principios de virología molecular de plantas tropicales. Mosquera, Colombia: (Corpoica) Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria.Martini, C. K. H. (1962). Some properties of the virus causing ‘woodiness' of passion fruit in Western Nigeria. Annals of Applied Biology, 50(1), 163-168.Matthews, R. (1951). Effect of some substituted purines on the development of plant virus infection. Nature , 167, 892-893.Matthews, R. E. F., & Hull, R. (2002). Matthews' plant virology. San Diego: Gulf Professional Publishing.Melgarejo, L.M., Pérez, L., Florez, L., Aguilar, M., Hoyos, L., Guerrero, E., & Medina, J. (2012). Ecofisiología del cultivo de Gulupa (Passiflora edulis Sims). Bogota: Universidad Nacional de Colombia.Melgarejo, L.M. (Ed.) (2019). Gulupa (Passiflora edulis), curuba (Passiflora tripartita),aguacate (Persea americana) y tomate de árbol (Solanum betaceum). Bogota: Centro editorial Facultad de Ciencias Universidad Nacional de Colombia.Menzel, C. M., Simpson, D. R., & Dowling, A. J. (1986). Water relations in passionfruit: Effect of moisture stress on growth, flowering and nutrient uptake. Scientia Horticulturae, 29(3), 239-249. https://doi.org/10.1016/0304-4238(86)90067-1Mezzonato-Pires, A.C., & Milward-de-Azevedo, M.A. (2017). Lectotypes for species of Passiflora L. (Passifloraceae) described by João Barbosa Rodrigues. Acta Botanica Brasilica, 31(1), 134-136. doi: 10.1590/0102-33062016abb0330Michael, T. P., & VanBuren, R. (2020). Building near-complete plant genomes. Current Opinion in Plant Biology, 54, 26-33.Miranda, D., Fischer, G., Carranza, C., Magnitskiy, S., Casierra, F., Piedrahíta, W., & Flórez, L. E. (2009). Ciencias Hortícolas.Cultivo, poscosecha y comercialización de las pasifloráceas en Colombia: maracuyá, granadilla, gulupa y curuba. Bogotá: Sociedad Colombiana de Ciencias Hortícolas.Mirmajlessi, S. M., Loit, E., Maend, M., & Mansouripour, S. M. (2015). Real-time PCR applied to study on plant pathogens: potential applications in diagnosis-a review. Plant Protection Science, 51(4), 177-190.Molina, L., & Melgar, M. (2014). Biotecnología aplicada al cultivo de la caña de Azúcar. El cultivo de la Caña de Azúcar en Guatemala. Cengicaña, 79-106.Montiel-Martinez, O., Pastelín-Solano, M., Ventura-Zapata, E., Castañeda-Castro, O., Gozalez-Arnao, M., Guevara-Valencia, M., & Diaz-Ramos, C. (2011). Alargamiento y enraizamiento de vitroplantas de cereza del perú (Physalis peruviana L.). Tropical and Subtropical Agroecosystems,, 537-542.Morales, F.J., Lozano, I., Muñoz, C., Castaño, M., Arroyave, J.A., Varón de Agudelo, F., Chávez, B., & Castillo, G. (2001). Caracterización molecular de los virus que afectan al maracuyá (Passiflora edulis Sims) y otras pasifloras en Colombia. Fitopatología Colombiana, 25(2), 99-102.Morales, F.J., Lozano, I., Castaño, M., Arroyave, J.A., Velasco A.C., & Varon F. (2002). Partial characterization of a tymovirus infecting passion fruit in Colombia, South America. Journal of Phytopathology 150(4-5), 292-296. doi: 10.1046/j.1439-0434.2002.00740.xMorales, F., Belo, W., Morales, G., & Kitajima, E. (2006). Occurrence of passion fruit green spot virus in the passion fruit crop in the State of Maranhão, Brazil. Fitopatologia Brasileira, 31,100.Morel, G., & Martin, C. (1952). Guerison de daphlias atteints d´une maladie a virus. C.R. Acad. Sci., 235, 1324-1325.Morley-Bunker, M. (1999). Passionfruit. En Jackson, D.I. y N.E. Looney (Eds.) Temperate and subtropical fruit production. 2a ed. (pp. 252-255). Wallingford, UK: CABI Publishing.Moroni, A., & Cordes, G. (2010). Producción de material libre de virus. Laboratorio de Fitopatología - Cátedra de Fitopatología. Universidad Nacional de Córdoba- Argentina. Obtenido de http://agro.unc.edu.ar/~fito/teoricos/viruslibrevirus.pdf Fecha de consulta: Enero 23 de 2020Morton, J. (1987). Passionfruit. In J. Morton (Ed.), Fruits of warm climates. (pp. 320–328). Miami, Florida. Echo Point Books & Media.Muñoz, M. (2012). Biotecnología. Segunda Edición. Argentina: Universidad Nacional de Quilmes.Nascimento, A., Santana, E., Braz, A., Alfenas, P., Pio-Ribeiro, G., Andrade, G., de Carvalho, M., & Zerbini, F. (2006). Cowpea aphid-borne mosaic virus (CABMV) is widespread in passionfruit in Brazil and causes passionfruit woodiness disease. Archives of Virology, 151(9), 1797-1809. https://doi.org/10.1007/s00705-006-0755-6.Nakasone, H. Y., & Paull, R. E. (1998). Tropical fruits. Wallingford, UK. CAB International (CABI).NCBI Magic-BLAST. (s.f.). Obtenido : Enero 27 de 2020: https://ncbi.github.io/magicblast/Noueiry, A. O., Lucas, W. J., & Gilbertson, R. L. (1994). Two proteins of a plant DNA virus coordinate nuclear and plasmodesmal transport. Cell, 76(5), 925-932.Nyanzi, S. A., Carstensen, B., & Schwack, W. (2005). A comparative study of fatty acid profiles of Passiflora seed oils from Uganda. Journal of the American Oil Chemists' Society, 82(1), 41-44.Ocampo, J., Coppens d'Eeckenbrugge, G., Restrepo, M., Salazar, M., Jarvis, A., & Caetano, C. (2007). Diversity of Colombian Passifloraceae: biogeography and an updatet list for conservation. Biota Colombiana, 8(1), 1-45.Ocampo, J., Coppens d'Eeckenbrugge, G., & Jarvis, A. (2010). Distribution of the Genus Passiflora L. diversity in Colombia and its potential as an indicator for diversity management in the Coffee Growing Zone. Diversity, 2, 1158-1180. doi:10.3390/d2111158Ocampo, J., & Wyckhuys, K. (2012). Tecnología para el cultivo de la gulupa (Passiflora edulis f. edulis Sims) en Colombia. Bogotá: Centro de Bio-sistemas de la Universidad Jorge Tadeo Lozano, Centro Internacional de Agricultura Tropical -CIAT y Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural, República de Colombia.O'Herlihy, E., Croke, J., & Cassells, A. (2003). Influence of in vitro factors on titre and elimination of model fruit tree viruses. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 72(1), 33-42. https://doi.org/10.1023/A:1021260202876Olmos, S., Luciani, G., & Galdeano, E. (2010). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria. (pp. 353-362)Otahola, V. A., & VIidal G. (2010). Efecto de las características de la estaca y la utilización de ANA en la propagación de parchita (Passiflora edulis f. flavicarpa Deg.) Revista Científica UDO Agrícola 10 (1), 29-35Oxford Nanopore technologies. (Busqueda en: Enero 26 de 2020). Obtenido de https://nanoporetech.com/applications/dna-nanopore-sequencingOzarowski, M., & Thiem, B. (2013). Progress in micropropagation of Passiflora spp. to produce medicinal plants: a mini-review. Revista Brasileira de Farmacognosia, 23(6), 937-947.Pares, R., Gunn, L., Keskula, E., Martin, A., & Teakle, D. (1997). Occurrence of Passiflora latent carlavirus in cultivated and wild Passiflora species in Australia. Plant Disease, 81, 248–350.Peña, H., Vázquez-Juárez, R., Mejia, H., & Garzon-Tiznado, J. (2003). Geminivirus en Tomate (Lycopersicon esculentum Mill.) y Rango de Hospedantes en Baja California Sur, México. Revista Mexicana de fitopatología, 107-116.Pierik, L. (1990). Cultivo in vitro de las plantas superiores. Madrid: Mundi-Prensa.Porter, K., & Kuehnle, A. (1997). Using Dithiouracil and Ribavirin to eliminate Cymbidium mosaic virus during micropropagation of ‘Uniwai mist’ Dendrobium orchid. HortTechnology, 7,161-164.Prabha, K., Baranwal, V. K., & Jain, R. K. (2013). Applications of next generation high throughput sequencing technologies in characterization, discovery and molecular interaction of plant viruses. Indian Journal of Virology, 24(2), 157-165.Quevedo, E. (1989). Análisis de la floración y fructificación bajo tres sistemas de soporte en la gulupa. Trabajo de grado. Facultad de Agronomía, Universidad Nacional de Colombia, Bogotá.Ram, R., Verma, N., Singh, A. K., Singh, L., Hallan, V., & Zaidi, A. A. (2005). Indexing and production of virus-free chrysantemums. Biología Plantarum, 49 (1), 149-152.Rigden, P., & Newett, S. (2005). Passionfruit problem solver field guide. Natural library of Australia, Queensland, Australia., (pp. 132).Rivera, B., Miranda, D., Ávila , L. A., & Nieto, A. M. (2008). Manejo integral del cultivo del cultivo de la granadilla (Passiflora ligularis Juss.). Ed. Litoas, Manizales, Colombia.Robinson, T. S., Scherm, H., Brannen, P., Allen, R., & Deom, C. M. (2016). Blueberry necrotic ring blotch virus in southern highbush blueberry: Insights into in planta and in-field movement. Plant Disease, 100, 1575-1579.Rodríguez Sánchez, I. P., & Barrera Saldaña, H. A. (2004). La reacción en cadena de la polimerasa a dos décadas de su invención. Ciencia UANL, 7(3).Rodríguez, M. H., Niño, N., Cutler, J., Langer, J., Casierra-Posada, F., Miranda, D., Bandte, M. & Büttner, C. (2016). Certificación de material vegetal sano en Colombia: un análisis crítico de oportunidades y retos para controlar enfermedades ocasionadas por virus. Revista Colombiana De Ciencias Hortícolas , 10(1), 164-175. doi: 10.17584/rcch.2016v10i1.4921.Rojas, M. (1993). Use of degenerate primers in the polymerase chain reaction to detect whitefly transmitted geminiviruses. Plant Disease, pp. 340-347.Rojas, M. R., Hagen, C., Lucas, W. J., & Gilbertson, R. L. (2005). Exploiting chinks in the plant's armor: evolution and emergence of geminiviruses. Annual Review of Phytopathology., 43, 361-394. doi: 10.1146/annurev.phyto.43.040204.135939Ruggiero, C., São José, A.R., Volpe, C.A., Oliveira, J.C., Duringan, J.F., Baumgartner, J.G., Silva, J.R., Nakamura, K., Ferreira, M.E., Kavati, R., & Pereira, V.P. (1996). Maracujá para expotação: Aspectos técnicos da Produção. Brasília: Publicações Técnicas FRUPEX 19, 64.Sanabria, N.M. (2010) Reconocimiento de enfermedades en gulupa (Passiflora edulis Sims.) en el departamento de Boyacá. (Tesis de maestría) Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá Recuperado de https://repository.javeriana.edu.co/bitstream/handle/10554/8664/tesis617.pdf?sequence=1&isAllowed=ySanderfoot, A. A., & Lazarowitz, S. G. (1996). Getting it together in plant virus movement: cooperative interactions between bipartite geminivirus movement proteins. Trends in cell biology, 6(9), 353-358.Sastry, K. S., & Zitter, T. A. (2014). Management of virus and viroid diseases of crops in the tropics. Plant virus and viroid diseases in the tropics., (pp. 149-480).Shabardina, V., Kashima, Y., Suzuki, Y., & Makalowski, W. (2020). Emergence and evolution of ERM proteins and merlin in metazoans. Genome biology and evolution, 12(1), 3710-3724.Shapiro, E. M., Sharer, K., Skrtic, S., & Koretsky, A. P. (2006). In vivo detection of single cells by MRI. Magnetic Resonance in Medicine: An Official Journal of the International Society for Magnetic Resonance in Medicine, 55(2), 242-249.Shcherbakova, L. A. (2007). Advanced methods of plant pathogen diagnostics. In Comprehensive and Molecular Phytopathology (pp. 75-116). Elsevier.Schena, L., Nigro, F., Ippolito, A., & Gallitelli, D. (2004). Real-time quantitative PCR: a new technology to detect and study phytopathogenic and antagonistic fungi. European Journal of plant pathology, 110(9), 893-908.Shoyinka, S.A., Thottappilly, G., Adebayo, G.G., Anno-Nyako, F.O. (1997). Survey on cowpea virus incidence and distribution in Nigeria. International Journal of Pest Management, 43(2),127-132.Shukla, D., Ward, C., Brunt, A., & Berger, P. (1998). Potyviridae family. CMI/AAB Descriptions of plant viruses N° 366. Recuperado de Association of Applied Biologists: http://www.dpvweb.net/dpv/showdpv.php?dpvno=366Sierra, J.C., Gómez, C., Sánchez, E.E., & Pinilla, M. (2013). Viabilidad financiera para la producción y exportación de gulupa (Passiflora edulis Sims) hacia el mercado español. Corpoica. Ciencia y tecnología Agropecuaria, 14(1), 17-26. Recuperado de https://www.redalyc.org/pdf/4499/449945181003.pdfSierra, J.C.; Gómez, C.; Sánchez E.E.; Pinilla, M. (2013). Viabilidad financiera para la producción y exportación de gulupa (Passiflora edulis Sims) hacia el mercado español. Corpoica. Ciencia y tecnología Agropecuaria, 14(1), 17-26.Singh, S.J. (2004). Virus and Phytoplasma Diseases of Passion Fruit. En: Diseases of Fruits and Vegetables, Diagnosis and Management, 11, 269-300Simpkins, I., Walkey, D. G. A., & NEELY, H. A. (1981). Chemical suppression of virus in cultured plant tissues. Annals of Applied Biology, 99(2), 161-169.SOAP de novo: short-read assembly. (s.f.). Obtenido de https://www.animalgenome.org/bioinfo/resources/manuals/SOAP.htmlThe complete genome sequence and genome structure of passion fruit mosaic virus. Arch Virol 156, 1093–1095 (2011). https://doi.org/10.1007/s00705-011-0961-8Spiegel, S., Zeidan, M., Sobolev, I., Beckelman, Y., Holdengreber, V., Tam, Y., Bar Joseph, M., Lipsker, Z., & Gera, A. (2007). The complete nucleotide sequence of Passiflora latent virus and its phylogenetic relationship to other carlaviruses. Archies Virology, 152, 181-189.Stark, R., Grzelak, M., & Hadfield, J. (2019). RNA sequencing: the teenage years. 20, 631–656 https://doi.org/10.1038/s41576-019-0150-2. Nature Reviews \| Genetics, 20, 631–656.St. Hill, A.A., Zettler, F.W., Elliot, M.S., Peterson, M.A., Li, R.H., & Bird, J. (1992). Presence of Passiflora Latent Virus and a Serologically Distinct Strain of Maracuja mosaic virus in Passiflora spp in Florida. The American Phytophatological Society. Plant Disease 76,843-847.Swiss Institute of Bioinformatics SIB. (s.f.). Obtenido de https://www.sib.swiss/Thien, H., & T., I. E. (2014). Development of a virus detection and discovery pipeline using next generation sequencing. Virology, 473,54–60.Toussaint, A., Kummert, J., Maroquin, C., Lebrun, A., & Roggemans, J. (1993). Use of Virazole® to eradicate Odontoglossum ringspot virus from in vitro cultures of Cymbidium Sw. Plant Cell, Tissue an Organ Culture, 32(3):303-309.Ulmer, T., & MacDougal, J.M. (2004). Passiflora: Passionflowers of the world. Timber Press Portland, Oregon, 430.Vaca, J. C. V., Carrasco-Lozano, E. C., Rodríguez-Rodríguez, M., Pérez, J. F. B., & López-López, K. (2016). Primer reporte de un begomovirus presente en maracuyá amarillo [Passiflora edulis f. flavicarpa (Degener)] en Valle del Cauca, Colombia. Revista Colombiana de Biotecnología, 18(2), 56-65.Valverde, R., Nameth, S., & Jordan, R. (1990). Analysis of double-stranded RNA for plant virus diagnosis. 74:255-258. Plant Disease. doi:10.1094/PD-74-0255Vemulapati, B., Druffel, K. L., Husebye, D., Eigenbrode, S. D. & Pappu, H. R. (2014). Development and application of ELISA assays for the detection of two members of the family Luteoviridae infecting legumes: Pea enation mosaic virus (genus Enamovirus) and Bean leafroll virus (genus Luteovirus). Annu. Appl. Biol. 165, 130-136.Verma, N., Ram, R., & Zaidi, A. A. (2005). In vitro production of Prunus necrotic ringspot virus-free begonias through chemo and termotherapy. Scientia Horticulturae, 103, 239-247.Vijan, L. E., & Topală, C. M. (2016). Study of Ribavirin–Nucleic Acids Interaction. Chemical Engineering Communications, 203(12), 1562-1571.Villalobos, V. (1979). Obtención de plantas de clavel (Dianthus caryophyllus) libres de virus por cultivo in vitro de meristemos y ápices vegetativos. México: Secretaria de Agricultura y Recursos Hidráulicos.Wang, Q., Mawassi, M., Li, P., Gafny, R., I., S., & Tanne, E. (2003). Elimination of grapevine virus A (GVA) by cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of Vitis vinifera L. Plant Science, pp. 312-327.Wang, Q., & Valkonen, J. (2008). Elimination of two viruses which interact synergistically from sweetpotato by shoot tip culture and cryotherapy. Journal of Virological Methods, (pp. 135-145).Wang, Q., Cuellar, W., Rajamäk, M., Hirata, Y., & Valkonen, J. (2008a). Combined thermotherapy and cryotherapy for efficient virus eradication: relation of virus distribution, subcellular changes, cell survival and viral RNA degradation in shoot tips. Molecular Plant Pathology, 9(2), 237-250.Wang, Q., & Valkonen, J. (2008b). Elimination of two viruses which interact synergistically from sweet potato by shoot tip culture and cryotherapy. Journal of Virological Methods, 154,135–145. doi:https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2008.08.006Wang, Q., & Valkonen, J. P. (2009). Cryotheraphy of shoot tips: novel pathogen eradication method. Technical and application. Trends in Plant Science, 14(3), 119-122.Wang, Y., & Navin, N. E. (2015). Advances and Applications of Single-Cell Sequencing Technologies. Molecular cell, 58(4), 598-609.Wang, M., Chen, L., Zhang, Z., Blystad, D., & Wang, Q. (2018). Cryotherapy: A Novel Method for Virus Eradication in Economically Important Plant Species. Plant Cell Culture Protocols, (pp. 257-268). doi: 10.1007/978-1-4939-8594-4_17Wetzel, T., Candresse, T., Macquaire, G., Ravelonandro, M., & Dunez, J. (1992). A highly sensitive immunocapture polymerase chain reaction method for plum pox potyvirus detection. Journal Virologyl Methods., 39, 27-37.White, P. (1934). Multiplication of the viruses of tobacco and Aucuba mosaics in growing excised tomato root tips. The Rockefeller Institute, USA., (pp. 581).Winks, C. W., Menzel, C. M., & Simpson, D. R. (1988). Passionfruit in Queensland. 2. Botany and cultivars. Queensland Agricultural Journal, 114, 217-224.Wylie, S. J., & Jones, M. G. (2011). The complete genome sequence of a Passion fruit woodiness virus isolate from Australia determined using deep sequencing, and its relationship to other potyviruses. Archives of virology, 156(3), 479-482.Yockteng, R., D’Eeckenbrugge, G.C., & Souza-Chies, T.T. (2011). Passiflora. En C. Kole (Ed.), Wild Crop Relatives: Genomic and Breeding Resources. Tropical and Subtropical Fruits (pp. 129-171). Clemson, USA: Springer.Yuan, Y., Lee, H., Hu, H., Scheben, A., & Edwards, D. (2018). Single-Cell Genomic Analysis in Plants. Genes, 9(1), 50. https://doi.org/10.3390/genes9010050Zapata, C., Creighton, M., & Smith, R. (1995). An in vitro procedure to eradicate potato viruses x, y, and s from russet norkotah and two of its strains. Society for In Vitro Biology, 153-159.Zerbini, F.M., Briddon, R.W., Idris, A., Martin, D.P., Moriones, E., Navas-Castillo, J., Rivera-Bustamante, R., Roumagnac, P., Varsani, A., & ICTV Report Consortium. (2017) ICTV Virus Taxonomy Perfil: Geminiviridae, Journal of General Virology, 98, 131 - 133.Zerbino, D. (2010). Using the Velvet de novo assembler for short-read sequencing technologies. Capítulo 11 , Unidad 11.5. doi:doi: 10.1002 / 0471250953.bi1105s31Zhao, L., Wang, M. R., Cui, Z. H., Chen, L., Volk, G. M., & Wang, Q. C. (2018). Combining Thermotherapy with Cryotherapy for Efficient Eradication of Apple stem grooving virus from Infected In-vitro-cultured Apple Shoots. Plant disease, 102(8), 1574-1580.Zumla, A., Al-Tawfiq, J. A., Enne, V. I., Kidd, M., Drosten, C., Breuer, J., Muller, M., Hui, D., Maeurer, M., Bates, M., Mwaba, P., Al-Hakeem, R.,Gray, G., Gautret, P., Al-Rabeeah, A.,Memish, Z., & Gant, V. (2014). Rapid point of care diagnostic tests for viral and bacterial respiratory tract infections—needs, advances, and future prospects. The Lancet infectious diseases, 14(11), 1123-1135.InvestigadoresORIGINAL1037618038_2022.pdf1037618038_2022.pdfTesis de Maestría en Ciencias - Biotecnológiaapplication/pdf18219783https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/2/1037618038_2022.pdfeb3e4a2a124d4fb124035ba81b6a4424MD52LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-85879https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/14/license.txteb34b1cf90b7e1103fc9dfd26be24b4aMD514Daniela Cardona Mejía Artículo 1.pdfDaniela Cardona Mejía Artículo 1.pdfLicencia capitulo 1application/pdf752761https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/15/Daniela%20Cardona%20Mej%c3%ada%20Art%c3%adculo%201.pdf88c83c050e3c3595107a082985d6b00eMD515Daniela Cardona Mejía Artículo 2.pdfDaniela Cardona Mejía Artículo 2.pdfLicencia capitulo 2application/pdf754090https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/16/Daniela%20Cardona%20Mej%c3%ada%20Art%c3%adculo%202.pdfc841e46fe875eadf3d6c27d84a1fc6b1MD516Daniela Cardona Mejía Artículo 3.pdfDaniela Cardona Mejía Artículo 3.pdfLicencia capitulo 3application/pdf756054https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/17/Daniela%20Cardona%20Mej%c3%ada%20Art%c3%adculo%203.pdfe4b14ddb8d162789510cdcf0cd493254MD517Daniela Cardona Mejía Artículo 4.pdfDaniela Cardona Mejía Artículo 4.pdfLicencia capitulo 4application/pdf740698https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/18/Daniela%20Cardona%20Mej%c3%ada%20Art%c3%adculo%204.pdfb33d9cdc9cb806e396e52daf29f09be0MD518Daniela Cardona Mejía Artículo 5.pdfDaniela Cardona Mejía Artículo 5.pdfLicencia capitulo 5application/pdf745928https://repositorio.unal.edu.co/bitstream/unal/84714/19/Daniela%20Cardona%20Mej%c3%ada%20Art%c3%adculo%205.pdf8efe5d419a80857320edad8c2f2d166aMD519THUMBNAIL1037618038_2022.pdf.jpg1037618038_2022.pdf.jpgGenerated 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