Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia
Colombia es un país megadiverso en flora y fauna, siendo el país número uno con mayor biodiversidad de aves a nivel mundial. Sin embargo, los estudios relacionados con parásitos sanguíneos que infectan animales de vida silvestre son limitados, en la actualidad no se han reportado estudios con respec...
- Autores:
-
Macías Zacipa, Jhon Jaime
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2020
- Institución:
- Colegio Mayor de Cundinamarca
- Repositorio:
- Repositorio Colegio Mayor de Cundinamarca
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/118
- Acceso en línea:
- https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/118
- Palabra clave:
- Parásitos
Plasmodium
Trypanosoma
Colombia
Aves
Hemoparásitos
Caracterización
Microscopia
Prevalencia
Acuáticas
- Rights
- closedAccess
- License
- Derechos reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2020
id |
UCOLMAYOR2_b5a40b5069367c625792d194420b8610 |
---|---|
oai_identifier_str |
oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/118 |
network_acronym_str |
UCOLMAYOR2 |
network_name_str |
Repositorio Colegio Mayor de Cundinamarca |
repository_id_str |
|
dc.title.spa.fl_str_mv |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
title |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
spellingShingle |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia Parásitos Plasmodium Trypanosoma Colombia Aves Hemoparásitos Caracterización Microscopia Prevalencia Acuáticas |
title_short |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
title_full |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
title_fullStr |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
title_full_unstemmed |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
title_sort |
Caracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia |
dc.creator.fl_str_mv |
Macías Zacipa, Jhon Jaime |
dc.contributor.advisor.none.fl_str_mv |
Pinillos Medina, Ingred Matta Camacho, Nubia Estela |
dc.contributor.author.none.fl_str_mv |
Macías Zacipa, Jhon Jaime |
dc.subject.lemb.none.fl_str_mv |
Parásitos Plasmodium Trypanosoma |
topic |
Parásitos Plasmodium Trypanosoma Colombia Aves Hemoparásitos Caracterización Microscopia Prevalencia Acuáticas |
dc.subject.proposal.spa.fl_str_mv |
Colombia Aves Hemoparásitos Caracterización Microscopia Prevalencia Acuáticas |
description |
Colombia es un país megadiverso en flora y fauna, siendo el país número uno con mayor biodiversidad de aves a nivel mundial. Sin embargo, los estudios relacionados con parásitos sanguíneos que infectan animales de vida silvestre son limitados, en la actualidad no se han reportado estudios con respecto a la diversidad de hemoparásitos que afectan aves asociadas a cuerpos de agua en el territorio colombiano. A nivel mundial se ha venido incrementando el estudio de este tipo de agentes infecciosos que pueden afectar no solo mamíferos, sino también reptiles y aves. Este estudio realizó la caracterización y prevalencia de los hemoparásitos presentes en algunas especies de aves asociadas a cuerpos de agua en 12 departamentos del territorio colombiano, utilizando la determinación morfológica a través de microscopia de luz e información del marcador molecular del gen citocromo b, para los géneros de Haemoproteus, Plasmodium y Leucocytozoon. Se analizaron 565 individuos, encontrando 42 infectados en total; 21 con Haemoproteus, 5 con Plasmodium, 3 con Leucocytozoon, 5 con microfilarias, 5 con Trypanosoma, 2 con Hepatozoon y un único individuo con Leucocytozoon, Trypanosoma y microfilaria. De igual manera se reportó por primera vez linajes del cytb para H. gabaldoni y se realizó la caracterización morfológica y morfométrica de cada especie encontrada. A pesar de esto, los estudios sobre la presencia, prevalencia, ocurrencia y el efecto que puedan llegar a tener este tipo de microoorganismos en este tipo de aves es limitado hasta el día de hoy. |
publishDate |
2020 |
dc.date.issued.none.fl_str_mv |
2020-03-20 |
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv |
2021-05-31T15:52:45Z |
dc.date.available.none.fl_str_mv |
2021-05-31T15:52:45Z |
dc.type.spa.fl_str_mv |
Trabajo de grado - Pregrado |
dc.type.coar.spa.fl_str_mv |
http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f |
dc.type.coarversion.spa.fl_str_mv |
http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85 |
dc.type.content.spa.fl_str_mv |
Text |
dc.type.driver.spa.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/bachelorThesis |
dc.type.redcol.spa.fl_str_mv |
https://purl.org/redcol/resource_type/TP |
dc.type.version.spa.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/publishedVersion |
format |
http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f |
status_str |
publishedVersion |
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv |
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/118 |
url |
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/118 |
dc.language.iso.spa.fl_str_mv |
spa |
language |
spa |
dc.relation.references.spa.fl_str_mv |
Liao W, Atkinson CT, LaPointe DA, Samuel MD. Mitigating Future Avian Malaria Threats to Hawaiian Forest Birds from Climate Change. Sullivan DJ, editor. PLoS One. 2017;12:1– 25. Cannell BL, Krasnec KV, Campbell K, Jones HI, Miller RD, Stephens N. The pathology and pathogenicity of a novel Haemoproteus spp. infection in wild Little Penguins (Eudyptula minor). Vet Parasitol. 2013;197:74–84. Donovan TA, Schrenzel M, Tucker TA, Pessier AP, Stalis IH. Hepatic hemorrhage, hemocoelom, and sudden death due to Haemoproteus infection in passerine birds: Eleven cases. J Vet Diagnostic Investig. 2008;20:304–13. Martinsen ES, Sidor IF, Flint S, Cooley J, Pokras MA. Documentation of Malaria Parasite (Plasmodium spp.) Infection and Associated Mortality in a Common Loon (Gavia immer). J Wildl Dis. 2017;53:859–63. Olias P, Wegelin M, Zenker W, Freter S, Gruber AD, Klopfleisch R. Avian Malaria Deaths in Parrots, Europe. Emerg Infect Dis. 2011;17:950–2. Ortiz-Catedral L, Brunton D, Stidworthy MF, Elsheikha HM, Pennycott T, Schulze C, et al. Haemoproteus minutus is highly virulent for Australasian and South American parrots. Parasit Vectors. 2019;12:1–10. Galindo ABF, Cortes JCG. Geopolitica y perdida del territorio colombiano. Rev Geotransfroteirica. 2017;1:1–6. Avendaño JE, Bohórquez CI, Rosselli L, Arzuza-Buelvas D, Estela FA, Cuervo AM, et al. Lista de referencia de especies de aves de Colombia. 2018. p. 1–10. Hamilton WJ, Poulin R. The Hamilton and Zuk hypothesis revisited: a meta-analytical approach. Behaviour. 1997;134:299–320. Matta NE, Rodríguez ÓA. Hemoparásitos Aviares. Acta Biológica Colomb. 2001;6:27–33. Hewitt R. Studies on blood protozoa obtained from mexican wild birds. J Parasitol. 1940;26:287–95. Renjifo S, Sanmartin C, De Zuleta J. A survey of the blood parasites of vertebrates in Eastern Columbia. Acta Trop. 1952;9:151–69. Greiner EC, Bennett GF, White EM, Coombs RF. Distribution of the avian hematozoa of North America. Can J Zool. 1975;53:1762–87. Bennett GF, Borrero H JI. Blood Parasites of Some Birds From Colombia. J Wildl Dis. 1976;12:454–8. Anderson RM, May RM. Regulation and Stability of Host-Parasite Population Interactions: I. Regulatory Processes. J Anim Ecol. 1978;47:219–47. White EM, Greiner EC, Bennett GF, Herman CM. Distribution of the hematozoa of Neotropical birds. Rev Biol Trop. 1978;26:43–102. Ervin S. Banding and bird blood. North Am Bird Bander. 1980;5:140–2. Godfrey RD, Fedynich AM, Pence DB. Quantification of hematozoa in blood smears. J Wildl Dis. 1987;23:558–65. Bennett GF, Peirce MA. Morphological form in the avian haemoproteidae and an annotated checklist of the genus Haemoproteus Kruse, 1890. J Nat Hist. 1988;22:1683–96. Bennett GF, Peirce MA, Ashford RW. Avian Haematozoa: mortality and pathogenicity. J Nat Hist. 1993;27:993–1001. McCallum H, Dobson A. Detecting disease and parasite threats to endangered species and ecosystems. Trends Ecol Evol. 1995;10:190–4. Jovani R, Tella JL, Forero MG, Bertellotti M, Blanco G, Ceballos O, et al. Apparent absence of blood parasites in the Patagonian seabird community: Is it related to the marine environment? Waterbirds Int J Waterbird Biol. 2001;24:430. Quillfeldt P, Arriero E, Martínez J, Masello JF, Merino S. Prevalence of blood parasites in seabirds - a review. Front Zool. 2011;8:26. Grilo ML, Vanstreels RET, Wallace R, García-Párraga D, Braga ÉM, Chitty J, et al. Malaria in penguins – current perceptions. Avian Pathol. 2016;45:393–407. Chahad-Ehlers S, Fushita AT, Lacorte GA, Assis PCP De, Del Lama SN. Effects of habitat suitability for vectors, environmental factors and host characteristics on the spatial distribution of the diversity and prevalence of haemosporidians in waterbirds from three Brazilian wetlands. Parasites and Vectors. 2018;11:1–12. Barrero JA. Geografía física de Colombia. 1st ed. Areandino F editorial, editor. Fundación Universitaria del Área Andina; 2017. 1–72 p. Sanz JL. Historia temprana del vuelo en las aves. La base la Biol. 2002;509–25. Olmo G del. Manual para principiantes en la observación de las aves. Vol. 1. 2009. 1–106 p. Grupo de Investigación en Zoología. Plan de ordenación y manejo de la cuenca hidrográfica mayor del río Totare - Biodiversidad Regional fase 3. 2002;503–772. Clark P, Boardman WSJ, Raidal SR. Atlas of clinical avian hematology. Br J Psychiatry. 2009;1:1–200. Gálvez Martínez CF, Ramírez Benavides GF, Osorio JH. El laboratorio clínico en hematología de aves exóticas. Biosalud. 2009;8:178–88. UNESCO. Convención relativa a los humedales de importancia internacional especialmente como hábitat de aves acuáticas. 1971;1–7. Estela FA, López-Victoria M, Castillo LF, Naranjo LG. Estado del conocimiento sobre aves marinas en Colombia, después de 110 años de investigación. Boletín SAO. 2010;20:2–21. Ruiz Guerra C. Lista de aves acuáticas de Colombia. 2012. Ayerbe-Quiñones F. An Illustrated Field Guide to the Birds of Colombia. .Puntoaparte Bookvertising, editor. Vol. 1. 2019. 1–444 p. Rojas LM, Ramírez Y, Marín G, Mcneil R. Capacidad visual en Caprimulgiformes. Ornitol Neotrop. 2004;15:251–60. Villarreal Orias Johnny. Uso de hábitat diferencial de aves playeras migratorias (Charadriiformes) en la costa oeste de la península de Nicoya, Costa Rica. Zeledonia. 2010;14:13. Giner SB. Guía de prácticas de ornitología. Vol. 1. 2015. p. 1–44. Posso SR, Donatelli RJ. Biogeography on the early distribution of cuckoos (Aves: Cuculiformes). Zoologia. 2012;29:187–94. Ernis FB, Uana EDEJ, Oyo JDELH, Ruz MFE, Errer XF, Áez RS, et al. Nombres en castellano de las aves del mundo (septima parte: Piciformes). Ardeola. 2002;1:121–5. Jesús García-Grajales, Alejandra Buenrostro-Silva JFMH. Registro notable de Aramides axillaris (Gruiformes, Rallidae) en los límites de la Sierra Sur de Oaxaca, México. Acta Zool Mex. 2016;32:126–37. Viña CA. Estudio en aves silvestres de canto (“Passeriformes”) de las moléculas MHC y reclasificación molecular de la familia “Carduelini.” 2016. Van Test GF. A Comparative Study of Some Social Communication Patterns in the Pelecaniformes. Am Ornithol Union. 2013;2:1–88. Lefèvre T, Vantaux A, Dabiré KR, Mouline K, Cohuet A. Non-Genetic Determinants of Mosquito Competence for Malaria Parasites. PLoS Pathog. 2013;9:1–11. González CR, Reyes C, Jercic MI, Rada V, Saldarriaga M, Pavletic C, et al. Manual De Culícidos (Diptera: Culicidae) De La Zona Norte Y Centro De Chile, Incluyendo Isla De Pascua. 2016. 1–95 p. Andrés M, Esmeralda RG, Rentería-ledezma AMLQPL. Actividad de picadura de Culex quinquefasciatus. Rev Fac Med. 2013;61:261–6. Hutson AM. Keds, Flat-Flies and Bat-Flies. Vol. 10. 1984. 1–40 p. Arcoverde AR, Rodrigues AFSF, Daemon E. Feeding and breeding aspects of Pseudolynchia canariensis (Macquart, 1839) (Diptera, Hippoboscidae) under laboratory conditions. Parasitol Res. 2009;104:277–80. Trindade RL da, Gorayeb I de S. Maruins (Diptera: Ceratopogonidae: Culicoides), após a estação chuvosa, na Reserva de Desenvolvimento Sustentável Itatupã-Baquiá, Gurupá, Pará, Brasil. Rev Pan-Amazônica Saúde. 2010;1:121–30. Portillo Rubio M, Martínez Ruiz R. Estudio faunístico y ecológico de los Simúlidos (Díptera, Simuliidae) del río Cidacos a su paso por La Rioja. Zubía. 1999;11:61–80. Ruiz I. Biología y ecología de los simúlidos. Universidad De Zaragoza , Facultad De Veterinaria. 2012. p. 1–18. Polanco D, Rios L. Aspectos biológicos y ecológicos de las garrapatas duras. Corpoica Cienc y Tecnol Agropecu. 2016;17:81–95. Del Pilar Pulido-Villamarín A, Castañeda-Salazar R, Ávila HI, Gómez-Méndez LD, Barbosa-Buitrago AM. Microscopía y principales características morfológicas de algunos ectoparásitos de interés veterinario. Rev Investig Vet del Perú. 2016;27:91–113. Valkiūnas G. Avian Malaria and Other Hemosporidia. CRC PRESS; 2005. 947 p. Lotta IA, Matta NE, Torres RD, Sandino MM, Moncada LI. Leucocytozoon fringillinarum and Leucocytozoon dubreuili in Turdus fuscater from a Colombian páramo Ecosystem. J Parasitol. 2013;99:359–62. Lotta IA, Gonzalez AD, Pacheco MA, Escalante AA, Valkiūnas G, Moncada LI, et al. Leucocytozoon pterotenuis sp. nov. (Haemosporida, Leucocytozoidae): description of the morphologically unique species from the Grallariidae birds, with remarks on the distribution of Leucocytozoon parasites in the Neotropics. Parasitol Res. 2015;114:1031–44. Matta NE, Lotta IA, Valkiūnas G, González AD, Pacheco MA, Escalante AA, et al. Description of Leucocytozoon quynzae sp. nov. (Haemosporida, Leucocytozoidae) from hummingbirds, with remarks on distribution and possible vectors of leucocytozoids in South America. Parasitol Res. 2014;113:457–68. Trigueros Venegas A. Hemoparasitosis de las aves domésticas en el trópico peruano. 2015. p. 1–99. Spencer LM, Mendoza E, Louro A. Mecanismos de invasión del esporozoíto de Plasmodium en el mosquito vector Anopheles Mechanisms of invasion from sporozoite of Plasmodium into the mosquito vector Anopheles. Bionatura •. 2016;1:146–53. Ledermann D. W, Valle B. G. Ética e investigación en la historia de la malaria. Rev Chil Infectol. 2009;26:466–71. Castro RI, Rodríguez GM del C. Análisis proteómico de Plasmodium, el agente causal de la Malaria. Salud Publica Mex. 2009;51:395–402. Valkiūnas G, Iezhova TA. Keys to the avian malaria parasites. Malar J. 2018;17:1–19. Ngotho P, Soares AB, Hentzschel F, Achcar F, Bertuccini L, Marti M. Revisiting gametocyte biology in malaria parasites. FEMS Microbiol Rev. 2019;43:401–14. Atkinson CT, Thomas NJ, Hunter DB. Parasitic Diseases of Wild Birds. Parasitic Diseases of Wild Birds. 2009. 1–595 p. Gardiner CH, Jenkins HJ, Mahoney KS. Myositis and death in bobwhites, Colinus virginianus (L.), due to hemorrhagic cysts of a haemosporozoan of undetermined taxonomic status. J Wildl Dis. 1984;20:308–18. Bennett GF, Garnham PC, Fallis AM. On the status of the genera Leucocytozoon Ziemann, 1893 and Haemoproteus Kruse, 1890 (Haemosporidiida: Leucocytozoidae and Haemoproteidae). Can J Zool. 1965;43:927–32. Cepeda A, Lotta-Arevalo I, Pinto-Osorio D, Macías-Zacipa J, Valkiūnas G, Barato P, et al. The experimental characterization of complete life cycle of Haemoproteus columbae, with description of natural host-parasite system to study this infection. J Parasitol. 2019;49:975– 84. C. M. Wenyon. Protozoology : a manual for medical men, veterinarians and zoologists. Vol. 2. 1776. 455–500 p. Ahmedt FE, Mohammed AH. Schizogony in Haemoproteus columbae Kruse. J Protozool. 1977;4:389–93. Carter T A, Ellis C G, Donald J F. Pre-Erythrocytic Development and Associated Host Responses to Haemoproteus meleagridis (Haemosporina: Haemoproteidae) in Experimentally Infected Domestic Turkeys. J Protozool. 1986;33:375–81. Garvin MC, Greiner EC. Ecology of Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae) in southcentral Florida and experimental Culicoides vectors of the avian hematozoan Haemoproteus danilewskyi kruse. J Wildl Dis. 2003;39:170–8. Kazuo Akiba. Studies on the leucytozoon found in the chicken, in Japan. Japanese J Vet Sci. 1960;22:309–17. Maley GJ, Desser SS. Anemia in Leucocytozoon simondi infections. I. Quantification of anemia, gametocytemia, and osmotic fragility of erythrocytes in naturally infected Pekin ducklings. Can J Zool. 1977;55:355–8. DeJong RJ, Muzzall PM. Hematozoa of waterfowl from Michigan. J Wildl Dis. 2000;36:767–73. Khan RA, Fallis AM. Comparison of infections with Leucocytozoon simondi in black ducks (Anas rubripes), mallards (Anas platyrhynchos and white Pekins (Anas bochas). Can J Zool. 1968;46:773–80. Raidal SR, Jaensch SM. Central nervous disease and blindness in Nankeen kestrels (Falco cenchroides) due to a novel Leucocytozoon-like infection. Avian Pathol. 2000;29:51–6. Reilly BO, Woo PTK. The biology of Trypanosoma andersoni n. sp. and Trypanosoma grylli Nigrelli, 1944 (Kinetoplastida) from Hyla versicolor LeConte, 1825 (Anura). Can J Zool. 1982;60:116–23. Votýpka J, Oborník M, Volf P, Svobodová M, Lukeš J. Trypanosoma avium of raptors (Falconiformes): Phylogeny and identification of vectors. Parasitology. 2002;125:253–63. Nandi NC, Bennett GF. Re-description of Trypanosoma corvi Stephens and Christophers,1908 Emend. Baker, 1976 and remarks on the Trypanosomes of the Avian Family Corvidae. Vol. 89, Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. 1994. p. 145–51. Zídková L, Cepicka I, Szabová J, Svobodová M. Biodiversity of avian trypanosomes. Infect Genet Evol. 2012;12:102–12. Molyneux DH. Trypanosoma bouffardi of West African Ploceidae (Aves). Parasitology. 1973;66:215–30. Baker JR. Studies on Trypanosoma Avium Danilewsky 1885 III. Life Cycle in vertebrate and invertebrate hosts. Parasitology. 1956;46:335–52. Anderson RC, Freeman RS. Cardiofilaria inornata (Anderson, 1956) from Woodcock with a review of Cardiofilaria and Related genera (Nematoda: Filarioidea). Trans Am Microsc Soc. 1969;88:68. Bartlett CM, Anderson RC. Chandlerella bushi n.sp. and Splendidofilaria caperata Hibler, 1964 (Nematoda: Filarioidea) from Fulica americana (Gruiformes: Rallidae) in Manitoba, Canadá. Can J Zool. 1987;65:2799–802. Ujvari B, Madsen T, Olsson M. High Prevalence of Hepatozoon Spp. (Apicomplexa, Hepatozoidae) Infection in Water Pythons (Liasis fuscus) From Tropical Australia. J Parasitol. 2004;90:670–2. Austin CC, Perkins SL. Parasites in a Biodiversity Hotspot: a Survey of Hematozoa and a Molecular Phylogenetic Analysis of Plasmodium in New Guinea Skinks. J Parasitol. 2006;92:770–7. Merino S, Martínez J, Masello JF, Bedolla Y, Quillfeldt P. First molecular characterization of a Hepatozoon species (Apicomplexa: Hepatozoidae) infecting birds and description of a new species infecting storm petrels (Aves: Hydrobatidae). J Parasitol. 2014;100:338–43. Ball GH, Chao J, Telford SR. Morphological Changes in Infected Erythrocytes from marked producing morphological Boa constrictor erythrocytes. Society. 2009;55:800–13. Brown GP, Shilton CM, Shine R. Do parasites matter? Assessing the fitness consequences of haemogregarine infection in snakes. Can J Zool. 2006;84:668–76. Zamudio Zuluaga N, Ramírez Monroy M. Presencia de Hepatozoon spp. en serpientes del Centro de Atención y Valoración de Fauna Silvestre (CAV) del Área Metropolitana del Valle de Aburra, Barbosa - Antioquia. Rev CES Med Vet y Zootec. 2007;2:33–6. Matta NE, Pacheco MA, Escalante AA, Valkiūnas G, Ayerbe-Quiñones F, Acevedo- Cendales LD. Description and molecular characterization of Haemoproteus macrovacuolatus n. sp. (Haemosporida, Haemoproteidae), a morphologically unique blood parasite of black-bellied whistling duck (Dendrocygna autumnalis) from South America. Parasitol Res. 2014;113:2991–3000. Lotta IA, Valkiūnas G, Pacheco MA, Escalante AA, Hernández SR, Matta NE. Disentangling Leucocytozoon parasite diversity in the neotropics: Descriptions of two new species and shortcomings of molecular diagnostics for leucocytozoids. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2019;9:159–73. González AD, Matta NE, Ellis VA, Miller ET, Ricklefs RE, Gutiérrez HR. Mixed species flock, nest height, and elevation partially explain avian haemoparasite prevalence in Colombia. PLoS One. 2014;9. Peirce MA. A checklist of the valid avian species of Babesia (Apicomplexa: Piroplasmorida), Haemoproteus, Leucocytozoon (Apicomplexa: Haemosporida), and Hepatozoon (Apicomplexa: Haemogregarinidae). J Nat Hist. 2005;39:3621–32. Bennett GF, Forrester DJ, Greiner EC, Campbell AG. Avian Haemoproteidae. 4. Description of Haemoproteus telfordi sp. nov., and a review of the haemoproteids of the families Gruidae and Otidae. Can J Zool. 1975;53:72–81. Bennett GF. Avian haemoproteidae. 10. the haemoproteids of the avian family scolopacidae. Can J Zool. 1979;57:901–7. Bennett GF. Haemoproteus gabaldoni n. sp. (Apicomplexa: Haemoproteidae) from the Muscovy duck Cairina moschata (Aves: Anatidae). Syst Parasitol. 1993;25:119–23. Bennett GF. Avian Haemoproteidae. 14. The haemoproteids of the avian family Rallidae. Can J Zool. 1980;58:321–5. Williams NA, Bennett GF, Mahrt JL. Avian haemoproteidae. 6. Description of Haemoproteus caprimulgi sp. nov., and a review of the haemoproteids of the family Caprimulgidae. Can J Zool. 1975;53:916–9. Bennett GF, Witt H, White EM. Blood parasites of some Jamaican birds. J Wildl Dis. 1980;16:29–38. Sousa OE, Herman CM. Blood parasites of birds from Chiriqui and Panama Provinces in the Republic of Panama. J Wildl Dis. 1982;18:205–21. Bennett GF, Garvin M, Bates JM. Avian Hematozoa from West-Central Bolivia. J Parasitol. 1991;77:207. Bennett GF, Peirce MA, Ashford RW. Avian haematozoa: Mortality and pathogenicity. J Nat Hist. 1993;27:993–1001. Basto N, Rodríguez OA, Marinkelle CJ, Gutiérrez R, Matta NE. Hematozoarios en aves del Parque Nacional Natural La Macarena (Colombia). Caldasia. 2006;28:371–7. Londoño A, Pulgarin-R PC, Blair S. Blood parasites in birds from the lowlands of Northern Colombia. Caribb J Sci. 2007;43:87–93. Bennett GF, Turner B, Whiteway M. Avian Haemoproteidae. 18. Haemoproteus greineri, a new species of haemoproteid from the waterfowl family Anatidae. Can J Zool. 1984;62:2290–2. Fallis AM, Wood D. M. Bitingmidges (diptera: ceratopogonidae) as intermediate hosts for haemoproteus of ducks. Can J Zool. 1957;35:425–35. Valkiūnas G, Iezhova TA, Loiseau C, Smith TB, Sehgal RNM. New malaria parasites of the subgenus Novyella in African rainforest birds, with remarks on their high prevalence, classification and diagnostics. Parasitol Res. 2009;104:1061–77. Scorza J V. Electron microscope study of the blood stages of plasmodium tropiduri, a lizard malaria parasite. Parasitology. 1971;63:1–20. Gabaldon A, Ulloa G, Gomez de Moncourt A. Encuesta sobre la malaria aviar en Venezuela: resultados del segundo año. 1975. p. 73–91. Ashford RW, Palmer TT, Ash JS, Bray RS. Blood parasites of Ethiopian birds. 1. General survey. J Wildl Dis. 1976;12:409–26. Lucena DTP de. Lista dos protozoários hemoparasitas de aves da região neotrópica. Rev da Fac Med Veterinária, Univ São Paulo. 1941;2:1–33. Dusek RJ, Spalding MG, Forrester DJ, Greiner EC. Haemoproteus balearicae and other blood parasites of free-ranging Florida sandhill crane chicks. J Wildl Dis. 2004;40:682–7. Halpern N, Bennett GF. Haemoproteus and Leucocytozoon infections in birds of the Oklahoma City Zoo. J Wildl Dis. 1983;19:330–2. Amico LD, Baker AJ. A rare case of Plasmodium (Haemamoeba) relictum infection in a free-living Red Knot (Calidris canutus rufa , Scolopacidae). J Ornithol. 2010;151:951–4. Rodríguez OA, Moya H, Matta NE. Avian blood parasites in the National Natural Park Chingaza: High andes of Colombia. El Hornero. 2009;24:1–6. G. L, Saavedra C, D O, J M, G. L, Saavedra C, et al. Notas sobre la anidación del Tororoi bigotudo (Grallaria alleni) en la cordillera central de Colombia. Ornitol Colomb. 2004;2:19–24. Stiles Hurd F, Alvarez López H. La situación del tororoi pechicanela (grallaria haplonota, formicariidae) en colombia. Caldasia. 1995;17:607–10. Rivers W. Blood Parasites of Birds from Almirante, Panama with ecological notes on the hosts. Rev Biol Trop. 1966;14:27–46. Kattan GH, Beltran JW. Altitudinal distribution, habitat use, and abundance of Grallaria antpittas in the Central Andes of Colombia. Bird Conserv Int. 1999;9:271–81. Valkiūnas G, Iezhova TA, Brooks DR, Hanelt B, Brant S V., Sutherlin ME, et al. Additional observations on blood parasites of birds in Costa Rica. J Wildl Dis. 2004;40:555–61. Valkiūnas G, Salaman P, Iezhova TA. Paucity of hematozoa in Colombian birds. J Wildl Dis. 2003;39:445–8. Holmstad PR, Anwar A, Iezhova T, Skorping A. Standard sampling techniques underestimate prevalence of avian hematozoa in willow ptarmigan (Lagopus lagopus). J Wildl Dis. 2003;39:354–8. Sehgal RNM, Jones HI, Smith TB. Molecular evidence for host specificity of parasitic nematode microfilariae in some African rainforest birds. Mol Ecol. 2005;14:3977–88. Supperer R. Zwei neue filarien (S. L.), Eufilaria delicata spec. nov. und Ornithofilaria bohmi spec. nov. aus der misterldrossel, Turdus viscivorus l. Z f Parasitenkd. 1958;319:312– 3. Cano Martil S, Vallejo Ruiz D, Coy Otero A, Lopez Caballero EJ. Demostración de la actividad de fosfatasa acida en microfilarias hematicas de Turdus philomelosBrehm (Aves:Turdidae). Rev Iberoam Parasitol. 1989;4:349–55. Hauptmanová K, Baruš V, Literák I, Benedikt V. Haemoproteids and microfilariae in hawfinches in the Czech Republic. Vol. 41, Helminthologia. 2004. p. 125–33. Anderson RC. Nematode parasites of vertebrates. Their development and transmission. J Phytopathol. 2000;148:637–42. Podlipaev SA. Insect Trypanosomatids: The Need to Know More. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000;95:517–22. Kirkpatrick CE, Lauer DM. Hematozoa of raptors from southern New Jersey and adjacent areas. J Wildl Dis. 1985;21:1–6. Novy F, MacNeal W. On the Trypanosomes of Birds. J Infect Dis. 1905;2:256–308. Apanius V. Avian trypanosomes as models of hemoflagellate evolution. Parasitol Today. 1991;7:87–90. Pulgarín-R PC, Gómez C, Bayly NJ, Bensch S, FitzGerald AM, Starkloff N, et al. Migratory birds as vehicles for parasite dispersal? Infection by avian haemosporidians over the year and throughout the range of a long-distance migrant. J Biogeogr. 2019;46:83–96. Méller AP, Erritzée J. Host immune defence and migration in birds. Evol Ecol. 1998;12:945–6. Viana DS, Santamaría L, Figuerola J. Migratory birds as global dispersal vectors. Trends Ecol Evol. 2016;1–13. Novembre J, Pe J, Fuller T, Bensch S, Mu I, Ricklefs RE, et al. The ecology of emerging infectious diseases in migratory birds : An assessment of the role of climate change and priorities for future research. Ecohealth. 2012;9:80–8. Kilpatrick AM, Daszak P, Goodman SJ, Rogg H, Kramer LD, No VC. Predicting pathogen introduction : West Nile Virus spread to Galápagos. 2006;20:1224–31. Smith RP, Rand PW, Lacombe EH, Morris SR, Holmes DW, Caporale DA. Role of Bird Migration in the Long-Distance Dispersal of Ixodes dammini, the Vector of Lyme Disease. J Infect Dis. 1996;174:221–4. Mideo N, Day T. On the evolution of reproductive restraint in malaria. Proc R Soc. 2008;275:1217–24. Santiago-Alarcon D, Palinauskas V, Schaefer HM. Diptera vectors of avian Haemosporidian parasites : untangling parasite life cycles and their taxonomy. Biol Rev. 2012;4:1–37. Naranjo, G. Amaya, J. González, D. Cifuentes Y. Guía de las especies migratorias de la Biodiversidad en Colombia. Vol. 1. Ministerio de la Biodiversidad en Colombia. 2012. 708 p. Avendaño JE, Bohórquez CI, Rosselli L, Arzuza-Buelvas D, Estela FA, Cuervo AM, et al. Lista de chequeo de las aves de Colombia: Una síntesis del estado del conocimiento desde Hilty & Brown (1986). Ornitol Colomb. 2017;2017:eA01-1-eA01-83. Garrido M, Medrano F. Cachudito común (Anairetes parulus) Tufted Tit-Tyrant. In: Atlas de las aves nidificantes de Chile. 2018. p. 462–3. Arzuza DE, Moreno MI, Salaman PGW. Conservación de las aves acuáticas en Colombia. Vol. 6, Conservación Colombiana. 2008. 1–72 p. Herrera B Y, Almanza P M, Goméz M L. Frecuencia de parásitos gastrointestinales en patos domésticos (Anas platyrhynchos domesticus) en el departamento de Córdoba, Colombia. Rev Electron Vet. 2016;17:1–7. Rodríguez Alonso M, Palacios Alberti J. Ánsar común – Anser anser (Linnaeus,1758). Encicl virtual los Vertebr españoles. 2018;1–24. Mallard O. Observaciones sobre el nido, polluelos y cuidado parental de Bucco macrodactylus en el norte de Bolivia. Kempffiana. 2004;3:25–7. Andrea Morales-Rozo, Zerda SD La. Caracterización y uso de hábitat del cucarachero de pantano Cistothorus apolinari (Troglodytidae) en humedales de la cordillera oriental de Colombia. Ornitol Colomb. 2004;2:4–18. Peraza C, Moreno J. Parkesia noveboracensis. Guía las Especies Migr la Biodivers en Colomb Aves. 2012;1:708. Ramírez Albores J., Chapa Vargas L, Jasso Gordoa M. Luis mayor (Pitangus sulphuratus) en el altiplano mexicano. Vol. 32. 2016. p. 186–91. Turner A. Southern Rough-winged Swallow (Stelgidopteryx ruficollis). Handbook of the Birds of the World Alive. 2019. p. 2–5. |
dc.rights.spa.fl_str_mv |
Derechos reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2020 |
dc.rights.uri.spa.fl_str_mv |
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ |
dc.rights.accessrights.spa.fl_str_mv |
info:eu-repo/semantics/closedAccess |
dc.rights.creativecommons.spa.fl_str_mv |
Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0) |
dc.rights.coar.spa.fl_str_mv |
http://purl.org/coar/access_right/c_14cb |
rights_invalid_str_mv |
Derechos reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2020 https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/ Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0) http://purl.org/coar/access_right/c_14cb |
eu_rights_str_mv |
closedAccess |
dc.format.extent.spa.fl_str_mv |
302p. |
dc.format.mimetype.spa.fl_str_mv |
application/pdf |
dc.publisher.spa.fl_str_mv |
Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca |
dc.publisher.faculty.spa.fl_str_mv |
Facultad de Ciencias de la Salud |
dc.publisher.place.spa.fl_str_mv |
Bogotá D.C |
dc.publisher.program.spa.fl_str_mv |
Bacteriología y Laboratorio Clínico |
institution |
Colegio Mayor de Cundinamarca |
bitstream.url.fl_str_mv |
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/15/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/14/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdf https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/5/license.txt https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/16/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf.txt https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/18/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdf.txt https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/17/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf.jpg https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/19/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdf.jpg |
bitstream.checksum.fl_str_mv |
920aef594e1a71c11e75835ea55f7bfc b0fafdabdf32efec2814b643f9957796 2f9959eaf5b71fae44bbf9ec84150c7a 3a2179f38387de7a2a24991d602f691a 0d43126fad68fe2c979d6a117ae97cc5 61195964e58f67d9c8869ee8185c6686 2986b116664de12f0aa1c468eb8c7b3a |
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv |
MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 MD5 |
repository.name.fl_str_mv |
Biblioteca Digital Unicolmayor |
repository.mail.fl_str_mv |
repositorio@unicolmayor.edu.co |
_version_ |
1812210093919305728 |
spelling |
Pinillos Medina, Ingreded14c822edec9c1cb24988db5e35c4e1Matta Camacho, Nubia Estelaab2ccefb2d955ea25b011d959ff6619dMacías Zacipa, Jhon Jaimeb36adc05b293e1262de7c767602c4ef52021-05-31T15:52:45Z2021-05-31T15:52:45Z2020-03-20https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/118Colombia es un país megadiverso en flora y fauna, siendo el país número uno con mayor biodiversidad de aves a nivel mundial. Sin embargo, los estudios relacionados con parásitos sanguíneos que infectan animales de vida silvestre son limitados, en la actualidad no se han reportado estudios con respecto a la diversidad de hemoparásitos que afectan aves asociadas a cuerpos de agua en el territorio colombiano. A nivel mundial se ha venido incrementando el estudio de este tipo de agentes infecciosos que pueden afectar no solo mamíferos, sino también reptiles y aves. Este estudio realizó la caracterización y prevalencia de los hemoparásitos presentes en algunas especies de aves asociadas a cuerpos de agua en 12 departamentos del territorio colombiano, utilizando la determinación morfológica a través de microscopia de luz e información del marcador molecular del gen citocromo b, para los géneros de Haemoproteus, Plasmodium y Leucocytozoon. Se analizaron 565 individuos, encontrando 42 infectados en total; 21 con Haemoproteus, 5 con Plasmodium, 3 con Leucocytozoon, 5 con microfilarias, 5 con Trypanosoma, 2 con Hepatozoon y un único individuo con Leucocytozoon, Trypanosoma y microfilaria. De igual manera se reportó por primera vez linajes del cytb para H. gabaldoni y se realizó la caracterización morfológica y morfométrica de cada especie encontrada. A pesar de esto, los estudios sobre la presencia, prevalencia, ocurrencia y el efecto que puedan llegar a tener este tipo de microoorganismos en este tipo de aves es limitado hasta el día de hoy.RESUMEN 15 1. INTRODUCCIÓN 17 2. ANTECEDENTES 19 3. MARCO TEÓRICO 22 3.1 Sitio de muestreo 22 3.1.1 Características geográficas 22 3.1.2 Hidrografía 22 3.1.3 Clima 22 3.2 Aves 24 3.2.1 Generalidades 24 3.2.2 Hematología 25 3.2.3 Aves acuáticas 26 3.2.3.1 Características de las aves de la investigación 29 3.3 Vectores 31 3.3.1 Características de los vectores 31 3.4 Hemoparásitos 37 3.4.1 Plasmodium spp 38 3.4.1.1 Aspectos morfológicos 39 3.4.1.2 Ciclo de vida 41 3.4.1.3 Efectos en el hospedero 43 3.4.2 Haemoproteus spp 44 3.4.2.1 Aspectos morfológicos 44 3.4.2.2 Ciclo de vida 45 3.4.2.3 Efectos en el hospedero 47 3.4.3 Leucocytozoon spp 47 3.4.3.1 Aspectos morfológicos 48 3.4.3.2 Ciclo de vida 49 3.4.3.3 Efectos en el hospedero 51 3.4.4 Trypanosoma spp 52 3.4.4.1 Aspectos morfológicos 52 3.4.4.2 Ciclo de vida 52 3.4.4.3 Efectos en el hospedero 53 3.4.5 Microfilarias 54 3.4.5.1 Aspectos morfológicos 54 3.4.5.2 Ciclo de vida 54 3.4.5.3 Efectos en el hospedero 55 3.4.6 Hepatozoon spp 55 3.4.6.1 Aspectos morfológicos 55 3.4.6.2 Ciclo de vida 56 3.4.6.3 Efectos en el hospedero 57 4. OBJETIVOS 58 4.1 Objetivo general 58 4.2 Objetivos específicos 58 5. METODOLOGÍA 59 5.1 Universo, población y muestra 59 5.1.1 Universo 59 5.1.2 Población 59 5.1.3 Muestra 59 5.2 Tipo de estudio, hipótesis, variables e indicadores 59 5.2.1 Tipo de estudio 59 5.2.2 Hipótesis 59 5.2.3 Variables morfología 59 5.2.3.4 Variables dependientes 59 5.2.3.5 Variables independientes 59 5.4 Indicadores 59 5.4.1 Parasitemia 59 5.4.2 Morfología 59 5.5 Comité de ética y permisos de colecta 59 5.6 Técnicas y procedimientos 60 5.6.1 Área de estudio 60 5.6.2 Captura de los individuos 64 5.6.3 Muestreo 64 5.6.4 Frotis de sangre periférica (FSP) 64 5.6.5 Prevalencia 65 5.6.6 Porcentaje de ocurrencias 65 5.6.7 Parasitemia 65 5.6.8 Análisis microscópico de los frotis 66 5.6.9 Análisis molecular 68 6. RESULTADOS 69 6.1 Resultados generales 69 6.2 Prevalencia general 74 6.2.1 Prevalencia por género de hemoparásito 74 6.3 Proporción de las ocurrencias 75 6.4 Parasitemias76 6.4.1 Parasitemia según morfoespecies de Haemoproteus 76 6.4.2 Parasitemia según especies de Microfilarias 77 6.4.3 Parasitemia según especies de Plasmodium 77 6.4.4 Parasitemia según especies de Trypanosoma 78 6.4.5 Parasitemia según especies de Leucocytozoon 78 6.4.6 Parasitemia según especies de Hepatozoon 79 6.5 Descripciones morfológicas 80 6.5.1 Plasmodium 80 Plasmodium sp. 1. 80 Plasmodium sp. 2. 80 Plasmodium sp. 3. 81 Plasmodium sp. 4. 82 Plasmodium sp. 5. 83 6.5.2 Haemoproteus 83 Haemoproteus sp. 1 83 Haemoproteus (Parahaemoproteus) balearicae 85 Haemoproteus (Parahaemoproteus) contortus 88 Haemoproteus (Parahaemoproteus) gabaldoni 91 Haemoproteus (Parahaemoproteus) gallinulae 95 Haemoproteus (Parahaemoproteus) macrovacuolatus n. sp. 98 Haemoproteus (Parahaemoproteus) nettionis 102 Haemoproteus (Parahaemoproteus) caprimulgi 105 6.5.3 Leucocytozoon 109 Leucocytozoon sp. 1. 109 Leucocytozoon fringillinarum 110 Leucocytozoon pterotenuis n. sp. © 112 Leucocytozoon grallariae n. sp. © 116 6.5.4 Microfilaria 120 Microfilaria morfotipo 1.120 Microfilaria morfotipo 2.121 Microfilaria morfotipo 3.121 Microfilaria morfotipo 4.122 Microfilaria morfotipo 5.123 Microfilaria morfotipo 6.123 6.5.5 Trypanosoma 124 Trypanosoma morfotipo 1.124 Trypanosoma morfotipo 2.125 Trypanosoma morfotipo 3.126 Trypanosoma morfotipo 4.127 Trypanosoma morfotipo 5.128 Trypanosoma morfotipo 6 © 129 6.5.6 Hepatozoon 130 Hepatozoon morfotipo 1.130 Hepatozoon morfotipo 2.131 6.6 Extracción de ADN, amplificación por PCR y secuenciación del gen del citocromo b 132 6.7 Infección en aves migratorias vs aves residentes 138 7. DISCUSIÓN 140 8. CONCLUSIONES 155 9. RECOMENDACIONES 156 10. REFERENCIAS 157 11. ANEXOS 171PregradoBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico302p.application/pdfspaUniversidad Colegio Mayor de CundinamarcaFacultad de Ciencias de la SaludBogotá D.CBacteriología y Laboratorio ClínicoDerechos reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2020https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/closedAccessAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)http://purl.org/coar/access_right/c_14cbCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de ColombiaTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Textinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionLiao W, Atkinson CT, LaPointe DA, Samuel MD. Mitigating Future Avian Malaria Threats to Hawaiian Forest Birds from Climate Change. Sullivan DJ, editor. PLoS One. 2017;12:1– 25.Cannell BL, Krasnec KV, Campbell K, Jones HI, Miller RD, Stephens N. The pathology and pathogenicity of a novel Haemoproteus spp. infection in wild Little Penguins (Eudyptula minor). Vet Parasitol. 2013;197:74–84.Donovan TA, Schrenzel M, Tucker TA, Pessier AP, Stalis IH. Hepatic hemorrhage, hemocoelom, and sudden death due to Haemoproteus infection in passerine birds: Eleven cases. J Vet Diagnostic Investig. 2008;20:304–13.Martinsen ES, Sidor IF, Flint S, Cooley J, Pokras MA. Documentation of Malaria Parasite (Plasmodium spp.) Infection and Associated Mortality in a Common Loon (Gavia immer). J Wildl Dis. 2017;53:859–63.Olias P, Wegelin M, Zenker W, Freter S, Gruber AD, Klopfleisch R. Avian Malaria Deaths in Parrots, Europe. Emerg Infect Dis. 2011;17:950–2.Ortiz-Catedral L, Brunton D, Stidworthy MF, Elsheikha HM, Pennycott T, Schulze C, et al. Haemoproteus minutus is highly virulent for Australasian and South American parrots. Parasit Vectors. 2019;12:1–10.Galindo ABF, Cortes JCG. Geopolitica y perdida del territorio colombiano. Rev Geotransfroteirica. 2017;1:1–6.Avendaño JE, Bohórquez CI, Rosselli L, Arzuza-Buelvas D, Estela FA, Cuervo AM, et al. Lista de referencia de especies de aves de Colombia. 2018. p. 1–10.Hamilton WJ, Poulin R. The Hamilton and Zuk hypothesis revisited: a meta-analytical approach. Behaviour. 1997;134:299–320.Matta NE, Rodríguez ÓA. Hemoparásitos Aviares. Acta Biológica Colomb. 2001;6:27–33.Hewitt R. Studies on blood protozoa obtained from mexican wild birds. J Parasitol. 1940;26:287–95.Renjifo S, Sanmartin C, De Zuleta J. A survey of the blood parasites of vertebrates in Eastern Columbia. Acta Trop. 1952;9:151–69.Greiner EC, Bennett GF, White EM, Coombs RF. Distribution of the avian hematozoa of North America. Can J Zool. 1975;53:1762–87.Bennett GF, Borrero H JI. Blood Parasites of Some Birds From Colombia. J Wildl Dis. 1976;12:454–8.Anderson RM, May RM. Regulation and Stability of Host-Parasite Population Interactions: I. Regulatory Processes. J Anim Ecol. 1978;47:219–47.White EM, Greiner EC, Bennett GF, Herman CM. Distribution of the hematozoa of Neotropical birds. Rev Biol Trop. 1978;26:43–102.Ervin S. Banding and bird blood. North Am Bird Bander. 1980;5:140–2.Godfrey RD, Fedynich AM, Pence DB. Quantification of hematozoa in blood smears. J Wildl Dis. 1987;23:558–65.Bennett GF, Peirce MA. Morphological form in the avian haemoproteidae and an annotated checklist of the genus Haemoproteus Kruse, 1890. J Nat Hist. 1988;22:1683–96.Bennett GF, Peirce MA, Ashford RW. Avian Haematozoa: mortality and pathogenicity. J Nat Hist. 1993;27:993–1001.McCallum H, Dobson A. Detecting disease and parasite threats to endangered species and ecosystems. Trends Ecol Evol. 1995;10:190–4.Jovani R, Tella JL, Forero MG, Bertellotti M, Blanco G, Ceballos O, et al. Apparent absence of blood parasites in the Patagonian seabird community: Is it related to the marine environment? Waterbirds Int J Waterbird Biol. 2001;24:430.Quillfeldt P, Arriero E, Martínez J, Masello JF, Merino S. Prevalence of blood parasites in seabirds - a review. Front Zool. 2011;8:26.Grilo ML, Vanstreels RET, Wallace R, García-Párraga D, Braga ÉM, Chitty J, et al. Malaria in penguins – current perceptions. Avian Pathol. 2016;45:393–407.Chahad-Ehlers S, Fushita AT, Lacorte GA, Assis PCP De, Del Lama SN. Effects of habitat suitability for vectors, environmental factors and host characteristics on the spatial distribution of the diversity and prevalence of haemosporidians in waterbirds from three Brazilian wetlands. Parasites and Vectors. 2018;11:1–12.Barrero JA. Geografía física de Colombia. 1st ed. Areandino F editorial, editor. Fundación Universitaria del Área Andina; 2017. 1–72 p.Sanz JL. Historia temprana del vuelo en las aves. La base la Biol. 2002;509–25.Olmo G del. Manual para principiantes en la observación de las aves. Vol. 1. 2009. 1–106 p.Grupo de Investigación en Zoología. Plan de ordenación y manejo de la cuenca hidrográfica mayor del río Totare - Biodiversidad Regional fase 3. 2002;503–772.Clark P, Boardman WSJ, Raidal SR. Atlas of clinical avian hematology. Br J Psychiatry. 2009;1:1–200.Gálvez Martínez CF, Ramírez Benavides GF, Osorio JH. El laboratorio clínico en hematología de aves exóticas. Biosalud. 2009;8:178–88.UNESCO. Convención relativa a los humedales de importancia internacional especialmente como hábitat de aves acuáticas. 1971;1–7.Estela FA, López-Victoria M, Castillo LF, Naranjo LG. Estado del conocimiento sobre aves marinas en Colombia, después de 110 años de investigación. Boletín SAO. 2010;20:2–21.Ruiz Guerra C. Lista de aves acuáticas de Colombia. 2012.Ayerbe-Quiñones F. An Illustrated Field Guide to the Birds of Colombia. .Puntoaparte Bookvertising, editor. Vol. 1. 2019. 1–444 p.Rojas LM, Ramírez Y, Marín G, Mcneil R. Capacidad visual en Caprimulgiformes. Ornitol Neotrop. 2004;15:251–60.Villarreal Orias Johnny. Uso de hábitat diferencial de aves playeras migratorias (Charadriiformes) en la costa oeste de la península de Nicoya, Costa Rica. Zeledonia. 2010;14:13.Giner SB. Guía de prácticas de ornitología. Vol. 1. 2015. p. 1–44.Posso SR, Donatelli RJ. Biogeography on the early distribution of cuckoos (Aves: Cuculiformes). Zoologia. 2012;29:187–94.Ernis FB, Uana EDEJ, Oyo JDELH, Ruz MFE, Errer XF, Áez RS, et al. Nombres en castellano de las aves del mundo (septima parte: Piciformes). Ardeola. 2002;1:121–5.Jesús García-Grajales, Alejandra Buenrostro-Silva JFMH. Registro notable de Aramides axillaris (Gruiformes, Rallidae) en los límites de la Sierra Sur de Oaxaca, México. Acta Zool Mex. 2016;32:126–37.Viña CA. Estudio en aves silvestres de canto (“Passeriformes”) de las moléculas MHC y reclasificación molecular de la familia “Carduelini.” 2016.Van Test GF. A Comparative Study of Some Social Communication Patterns in the Pelecaniformes. Am Ornithol Union. 2013;2:1–88.Lefèvre T, Vantaux A, Dabiré KR, Mouline K, Cohuet A. Non-Genetic Determinants of Mosquito Competence for Malaria Parasites. PLoS Pathog. 2013;9:1–11.González CR, Reyes C, Jercic MI, Rada V, Saldarriaga M, Pavletic C, et al. Manual De Culícidos (Diptera: Culicidae) De La Zona Norte Y Centro De Chile, Incluyendo Isla De Pascua. 2016. 1–95 p.Andrés M, Esmeralda RG, Rentería-ledezma AMLQPL. Actividad de picadura de Culex quinquefasciatus. Rev Fac Med. 2013;61:261–6.Hutson AM. Keds, Flat-Flies and Bat-Flies. Vol. 10. 1984. 1–40 p.Arcoverde AR, Rodrigues AFSF, Daemon E. Feeding and breeding aspects of Pseudolynchia canariensis (Macquart, 1839) (Diptera, Hippoboscidae) under laboratory conditions. Parasitol Res. 2009;104:277–80.Trindade RL da, Gorayeb I de S. Maruins (Diptera: Ceratopogonidae: Culicoides), após a estação chuvosa, na Reserva de Desenvolvimento Sustentável Itatupã-Baquiá, Gurupá, Pará, Brasil. Rev Pan-Amazônica Saúde. 2010;1:121–30.Portillo Rubio M, Martínez Ruiz R. Estudio faunístico y ecológico de los Simúlidos (Díptera, Simuliidae) del río Cidacos a su paso por La Rioja. Zubía. 1999;11:61–80.Ruiz I. Biología y ecología de los simúlidos. Universidad De Zaragoza , Facultad De Veterinaria. 2012. p. 1–18.Polanco D, Rios L. Aspectos biológicos y ecológicos de las garrapatas duras. Corpoica Cienc y Tecnol Agropecu. 2016;17:81–95.Del Pilar Pulido-Villamarín A, Castañeda-Salazar R, Ávila HI, Gómez-Méndez LD, Barbosa-Buitrago AM. Microscopía y principales características morfológicas de algunos ectoparásitos de interés veterinario. Rev Investig Vet del Perú. 2016;27:91–113.Valkiūnas G. Avian Malaria and Other Hemosporidia. CRC PRESS; 2005. 947 p.Lotta IA, Matta NE, Torres RD, Sandino MM, Moncada LI. Leucocytozoon fringillinarum and Leucocytozoon dubreuili in Turdus fuscater from a Colombian páramo Ecosystem. J Parasitol. 2013;99:359–62.Lotta IA, Gonzalez AD, Pacheco MA, Escalante AA, Valkiūnas G, Moncada LI, et al. Leucocytozoon pterotenuis sp. nov. (Haemosporida, Leucocytozoidae): description of the morphologically unique species from the Grallariidae birds, with remarks on the distribution of Leucocytozoon parasites in the Neotropics. Parasitol Res. 2015;114:1031–44.Matta NE, Lotta IA, Valkiūnas G, González AD, Pacheco MA, Escalante AA, et al. Description of Leucocytozoon quynzae sp. nov. (Haemosporida, Leucocytozoidae) from hummingbirds, with remarks on distribution and possible vectors of leucocytozoids in South America. Parasitol Res. 2014;113:457–68.Trigueros Venegas A. Hemoparasitosis de las aves domésticas en el trópico peruano. 2015. p. 1–99.Spencer LM, Mendoza E, Louro A. Mecanismos de invasión del esporozoíto de Plasmodium en el mosquito vector Anopheles Mechanisms of invasion from sporozoite of Plasmodium into the mosquito vector Anopheles. Bionatura •. 2016;1:146–53.Ledermann D. W, Valle B. G. Ética e investigación en la historia de la malaria. Rev Chil Infectol. 2009;26:466–71.Castro RI, Rodríguez GM del C. Análisis proteómico de Plasmodium, el agente causal de la Malaria. Salud Publica Mex. 2009;51:395–402.Valkiūnas G, Iezhova TA. Keys to the avian malaria parasites. Malar J. 2018;17:1–19.Ngotho P, Soares AB, Hentzschel F, Achcar F, Bertuccini L, Marti M. Revisiting gametocyte biology in malaria parasites. FEMS Microbiol Rev. 2019;43:401–14.Atkinson CT, Thomas NJ, Hunter DB. Parasitic Diseases of Wild Birds. Parasitic Diseases of Wild Birds. 2009. 1–595 p.Gardiner CH, Jenkins HJ, Mahoney KS. Myositis and death in bobwhites, Colinus virginianus (L.), due to hemorrhagic cysts of a haemosporozoan of undetermined taxonomic status. J Wildl Dis. 1984;20:308–18.Bennett GF, Garnham PC, Fallis AM. On the status of the genera Leucocytozoon Ziemann, 1893 and Haemoproteus Kruse, 1890 (Haemosporidiida: Leucocytozoidae and Haemoproteidae). Can J Zool. 1965;43:927–32.Cepeda A, Lotta-Arevalo I, Pinto-Osorio D, Macías-Zacipa J, Valkiūnas G, Barato P, et al. The experimental characterization of complete life cycle of Haemoproteus columbae, with description of natural host-parasite system to study this infection. J Parasitol. 2019;49:975– 84.C. M. Wenyon. Protozoology : a manual for medical men, veterinarians and zoologists. Vol. 2. 1776. 455–500 p.Ahmedt FE, Mohammed AH. Schizogony in Haemoproteus columbae Kruse. J Protozool. 1977;4:389–93.Carter T A, Ellis C G, Donald J F. Pre-Erythrocytic Development and Associated Host Responses to Haemoproteus meleagridis (Haemosporina: Haemoproteidae) in Experimentally Infected Domestic Turkeys. J Protozool. 1986;33:375–81.Garvin MC, Greiner EC. Ecology of Culicoides (Diptera: Ceratopogonidae) in southcentral Florida and experimental Culicoides vectors of the avian hematozoan Haemoproteus danilewskyi kruse. J Wildl Dis. 2003;39:170–8.Kazuo Akiba. Studies on the leucytozoon found in the chicken, in Japan. Japanese J Vet Sci. 1960;22:309–17.Maley GJ, Desser SS. Anemia in Leucocytozoon simondi infections. I. Quantification of anemia, gametocytemia, and osmotic fragility of erythrocytes in naturally infected Pekin ducklings. Can J Zool. 1977;55:355–8.DeJong RJ, Muzzall PM. Hematozoa of waterfowl from Michigan. J Wildl Dis. 2000;36:767–73.Khan RA, Fallis AM. Comparison of infections with Leucocytozoon simondi in black ducks (Anas rubripes), mallards (Anas platyrhynchos and white Pekins (Anas bochas). Can J Zool. 1968;46:773–80.Raidal SR, Jaensch SM. Central nervous disease and blindness in Nankeen kestrels (Falco cenchroides) due to a novel Leucocytozoon-like infection. Avian Pathol. 2000;29:51–6.Reilly BO, Woo PTK. The biology of Trypanosoma andersoni n. sp. and Trypanosoma grylli Nigrelli, 1944 (Kinetoplastida) from Hyla versicolor LeConte, 1825 (Anura). Can J Zool. 1982;60:116–23.Votýpka J, Oborník M, Volf P, Svobodová M, Lukeš J. Trypanosoma avium of raptors (Falconiformes): Phylogeny and identification of vectors. Parasitology. 2002;125:253–63.Nandi NC, Bennett GF. Re-description of Trypanosoma corvi Stephens and Christophers,1908 Emend. Baker, 1976 and remarks on the Trypanosomes of the Avian Family Corvidae. Vol. 89, Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. 1994. p. 145–51.Zídková L, Cepicka I, Szabová J, Svobodová M. Biodiversity of avian trypanosomes. Infect Genet Evol. 2012;12:102–12.Molyneux DH. Trypanosoma bouffardi of West African Ploceidae (Aves). Parasitology. 1973;66:215–30.Baker JR. Studies on Trypanosoma Avium Danilewsky 1885 III. Life Cycle in vertebrate and invertebrate hosts. Parasitology. 1956;46:335–52.Anderson RC, Freeman RS. Cardiofilaria inornata (Anderson, 1956) from Woodcock with a review of Cardiofilaria and Related genera (Nematoda: Filarioidea). Trans Am Microsc Soc. 1969;88:68.Bartlett CM, Anderson RC. Chandlerella bushi n.sp. and Splendidofilaria caperata Hibler, 1964 (Nematoda: Filarioidea) from Fulica americana (Gruiformes: Rallidae) in Manitoba, Canadá. Can J Zool. 1987;65:2799–802.Ujvari B, Madsen T, Olsson M. High Prevalence of Hepatozoon Spp. (Apicomplexa, Hepatozoidae) Infection in Water Pythons (Liasis fuscus) From Tropical Australia. J Parasitol. 2004;90:670–2.Austin CC, Perkins SL. Parasites in a Biodiversity Hotspot: a Survey of Hematozoa and a Molecular Phylogenetic Analysis of Plasmodium in New Guinea Skinks. J Parasitol. 2006;92:770–7.Merino S, Martínez J, Masello JF, Bedolla Y, Quillfeldt P. First molecular characterization of a Hepatozoon species (Apicomplexa: Hepatozoidae) infecting birds and description of a new species infecting storm petrels (Aves: Hydrobatidae). J Parasitol. 2014;100:338–43.Ball GH, Chao J, Telford SR. Morphological Changes in Infected Erythrocytes from marked producing morphological Boa constrictor erythrocytes. Society. 2009;55:800–13.Brown GP, Shilton CM, Shine R. Do parasites matter? Assessing the fitness consequences of haemogregarine infection in snakes. Can J Zool. 2006;84:668–76.Zamudio Zuluaga N, Ramírez Monroy M. Presencia de Hepatozoon spp. en serpientes del Centro de Atención y Valoración de Fauna Silvestre (CAV) del Área Metropolitana del Valle de Aburra, Barbosa - Antioquia. Rev CES Med Vet y Zootec. 2007;2:33–6.Matta NE, Pacheco MA, Escalante AA, Valkiūnas G, Ayerbe-Quiñones F, Acevedo- Cendales LD. Description and molecular characterization of Haemoproteus macrovacuolatus n. sp. (Haemosporida, Haemoproteidae), a morphologically unique blood parasite of black-bellied whistling duck (Dendrocygna autumnalis) from South America. Parasitol Res. 2014;113:2991–3000.Lotta IA, Valkiūnas G, Pacheco MA, Escalante AA, Hernández SR, Matta NE. Disentangling Leucocytozoon parasite diversity in the neotropics: Descriptions of two new species and shortcomings of molecular diagnostics for leucocytozoids. Int J Parasitol Parasites Wildl. 2019;9:159–73.González AD, Matta NE, Ellis VA, Miller ET, Ricklefs RE, Gutiérrez HR. Mixed species flock, nest height, and elevation partially explain avian haemoparasite prevalence in Colombia. PLoS One. 2014;9.Peirce MA. A checklist of the valid avian species of Babesia (Apicomplexa: Piroplasmorida), Haemoproteus, Leucocytozoon (Apicomplexa: Haemosporida), and Hepatozoon (Apicomplexa: Haemogregarinidae). J Nat Hist. 2005;39:3621–32.Bennett GF, Forrester DJ, Greiner EC, Campbell AG. Avian Haemoproteidae. 4. Description of Haemoproteus telfordi sp. nov., and a review of the haemoproteids of the families Gruidae and Otidae. Can J Zool. 1975;53:72–81.Bennett GF. Avian haemoproteidae. 10. the haemoproteids of the avian family scolopacidae. Can J Zool. 1979;57:901–7.Bennett GF. Haemoproteus gabaldoni n. sp. (Apicomplexa: Haemoproteidae) from the Muscovy duck Cairina moschata (Aves: Anatidae). Syst Parasitol. 1993;25:119–23.Bennett GF. Avian Haemoproteidae. 14. The haemoproteids of the avian family Rallidae. Can J Zool. 1980;58:321–5.Williams NA, Bennett GF, Mahrt JL. Avian haemoproteidae. 6. Description of Haemoproteus caprimulgi sp. nov., and a review of the haemoproteids of the family Caprimulgidae. Can J Zool. 1975;53:916–9.Bennett GF, Witt H, White EM. Blood parasites of some Jamaican birds. J Wildl Dis. 1980;16:29–38.Sousa OE, Herman CM. Blood parasites of birds from Chiriqui and Panama Provinces in the Republic of Panama. J Wildl Dis. 1982;18:205–21.Bennett GF, Garvin M, Bates JM. Avian Hematozoa from West-Central Bolivia. J Parasitol. 1991;77:207.Bennett GF, Peirce MA, Ashford RW. Avian haematozoa: Mortality and pathogenicity. J Nat Hist. 1993;27:993–1001.Basto N, Rodríguez OA, Marinkelle CJ, Gutiérrez R, Matta NE. Hematozoarios en aves del Parque Nacional Natural La Macarena (Colombia). Caldasia. 2006;28:371–7.Londoño A, Pulgarin-R PC, Blair S. Blood parasites in birds from the lowlands of Northern Colombia. Caribb J Sci. 2007;43:87–93.Bennett GF, Turner B, Whiteway M. Avian Haemoproteidae. 18. Haemoproteus greineri, a new species of haemoproteid from the waterfowl family Anatidae. Can J Zool. 1984;62:2290–2.Fallis AM, Wood D. M. Bitingmidges (diptera: ceratopogonidae) as intermediate hosts for haemoproteus of ducks. Can J Zool. 1957;35:425–35.Valkiūnas G, Iezhova TA, Loiseau C, Smith TB, Sehgal RNM. New malaria parasites of the subgenus Novyella in African rainforest birds, with remarks on their high prevalence, classification and diagnostics. Parasitol Res. 2009;104:1061–77.Scorza J V. Electron microscope study of the blood stages of plasmodium tropiduri, a lizard malaria parasite. Parasitology. 1971;63:1–20.Gabaldon A, Ulloa G, Gomez de Moncourt A. Encuesta sobre la malaria aviar en Venezuela: resultados del segundo año. 1975. p. 73–91.Ashford RW, Palmer TT, Ash JS, Bray RS. Blood parasites of Ethiopian birds. 1. General survey. J Wildl Dis. 1976;12:409–26.Lucena DTP de. Lista dos protozoários hemoparasitas de aves da região neotrópica. Rev da Fac Med Veterinária, Univ São Paulo. 1941;2:1–33.Dusek RJ, Spalding MG, Forrester DJ, Greiner EC. Haemoproteus balearicae and other blood parasites of free-ranging Florida sandhill crane chicks. J Wildl Dis. 2004;40:682–7.Halpern N, Bennett GF. Haemoproteus and Leucocytozoon infections in birds of the Oklahoma City Zoo. J Wildl Dis. 1983;19:330–2.Amico LD, Baker AJ. A rare case of Plasmodium (Haemamoeba) relictum infection in a free-living Red Knot (Calidris canutus rufa , Scolopacidae). J Ornithol. 2010;151:951–4.Rodríguez OA, Moya H, Matta NE. Avian blood parasites in the National Natural Park Chingaza: High andes of Colombia. El Hornero. 2009;24:1–6.G. L, Saavedra C, D O, J M, G. L, Saavedra C, et al. Notas sobre la anidación del Tororoi bigotudo (Grallaria alleni) en la cordillera central de Colombia. Ornitol Colomb. 2004;2:19–24.Stiles Hurd F, Alvarez López H. La situación del tororoi pechicanela (grallaria haplonota, formicariidae) en colombia. Caldasia. 1995;17:607–10.Rivers W. Blood Parasites of Birds from Almirante, Panama with ecological notes on the hosts. Rev Biol Trop. 1966;14:27–46.Kattan GH, Beltran JW. Altitudinal distribution, habitat use, and abundance of Grallaria antpittas in the Central Andes of Colombia. Bird Conserv Int. 1999;9:271–81.Valkiūnas G, Iezhova TA, Brooks DR, Hanelt B, Brant S V., Sutherlin ME, et al. Additional observations on blood parasites of birds in Costa Rica. J Wildl Dis. 2004;40:555–61.Valkiūnas G, Salaman P, Iezhova TA. Paucity of hematozoa in Colombian birds. J Wildl Dis. 2003;39:445–8.Holmstad PR, Anwar A, Iezhova T, Skorping A. Standard sampling techniques underestimate prevalence of avian hematozoa in willow ptarmigan (Lagopus lagopus). J Wildl Dis. 2003;39:354–8.Sehgal RNM, Jones HI, Smith TB. Molecular evidence for host specificity of parasitic nematode microfilariae in some African rainforest birds. Mol Ecol. 2005;14:3977–88.Supperer R. Zwei neue filarien (S. L.), Eufilaria delicata spec. nov. und Ornithofilaria bohmi spec. nov. aus der misterldrossel, Turdus viscivorus l. Z f Parasitenkd. 1958;319:312– 3.Cano Martil S, Vallejo Ruiz D, Coy Otero A, Lopez Caballero EJ. Demostración de la actividad de fosfatasa acida en microfilarias hematicas de Turdus philomelosBrehm (Aves:Turdidae). Rev Iberoam Parasitol. 1989;4:349–55.Hauptmanová K, Baruš V, Literák I, Benedikt V. Haemoproteids and microfilariae in hawfinches in the Czech Republic. Vol. 41, Helminthologia. 2004. p. 125–33.Anderson RC. Nematode parasites of vertebrates. Their development and transmission. J Phytopathol. 2000;148:637–42.Podlipaev SA. Insect Trypanosomatids: The Need to Know More. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2000;95:517–22.Kirkpatrick CE, Lauer DM. Hematozoa of raptors from southern New Jersey and adjacent areas. J Wildl Dis. 1985;21:1–6.Novy F, MacNeal W. On the Trypanosomes of Birds. J Infect Dis. 1905;2:256–308.Apanius V. Avian trypanosomes as models of hemoflagellate evolution. Parasitol Today. 1991;7:87–90.Pulgarín-R PC, Gómez C, Bayly NJ, Bensch S, FitzGerald AM, Starkloff N, et al. Migratory birds as vehicles for parasite dispersal? Infection by avian haemosporidians over the year and throughout the range of a long-distance migrant. J Biogeogr. 2019;46:83–96.Méller AP, Erritzée J. Host immune defence and migration in birds. Evol Ecol. 1998;12:945–6.Viana DS, Santamaría L, Figuerola J. Migratory birds as global dispersal vectors. Trends Ecol Evol. 2016;1–13.Novembre J, Pe J, Fuller T, Bensch S, Mu I, Ricklefs RE, et al. The ecology of emerging infectious diseases in migratory birds : An assessment of the role of climate change and priorities for future research. Ecohealth. 2012;9:80–8.Kilpatrick AM, Daszak P, Goodman SJ, Rogg H, Kramer LD, No VC. Predicting pathogen introduction : West Nile Virus spread to Galápagos. 2006;20:1224–31.Smith RP, Rand PW, Lacombe EH, Morris SR, Holmes DW, Caporale DA. Role of Bird Migration in the Long-Distance Dispersal of Ixodes dammini, the Vector of Lyme Disease. J Infect Dis. 1996;174:221–4.Mideo N, Day T. On the evolution of reproductive restraint in malaria. Proc R Soc. 2008;275:1217–24.Santiago-Alarcon D, Palinauskas V, Schaefer HM. Diptera vectors of avian Haemosporidian parasites : untangling parasite life cycles and their taxonomy. Biol Rev. 2012;4:1–37.Naranjo, G. Amaya, J. González, D. Cifuentes Y. Guía de las especies migratorias de la Biodiversidad en Colombia. Vol. 1. Ministerio de la Biodiversidad en Colombia. 2012. 708 p.Avendaño JE, Bohórquez CI, Rosselli L, Arzuza-Buelvas D, Estela FA, Cuervo AM, et al. Lista de chequeo de las aves de Colombia: Una síntesis del estado del conocimiento desde Hilty & Brown (1986). Ornitol Colomb. 2017;2017:eA01-1-eA01-83.Garrido M, Medrano F. Cachudito común (Anairetes parulus) Tufted Tit-Tyrant. In: Atlas de las aves nidificantes de Chile. 2018. p. 462–3.Arzuza DE, Moreno MI, Salaman PGW. Conservación de las aves acuáticas en Colombia. Vol. 6, Conservación Colombiana. 2008. 1–72 p.Herrera B Y, Almanza P M, Goméz M L. Frecuencia de parásitos gastrointestinales en patos domésticos (Anas platyrhynchos domesticus) en el departamento de Córdoba, Colombia. Rev Electron Vet. 2016;17:1–7.Rodríguez Alonso M, Palacios Alberti J. Ánsar común – Anser anser (Linnaeus,1758). Encicl virtual los Vertebr españoles. 2018;1–24.Mallard O. Observaciones sobre el nido, polluelos y cuidado parental de Bucco macrodactylus en el norte de Bolivia. Kempffiana. 2004;3:25–7.Andrea Morales-Rozo, Zerda SD La. Caracterización y uso de hábitat del cucarachero de pantano Cistothorus apolinari (Troglodytidae) en humedales de la cordillera oriental de Colombia. Ornitol Colomb. 2004;2:4–18.Peraza C, Moreno J. Parkesia noveboracensis. Guía las Especies Migr la Biodivers en Colomb Aves. 2012;1:708.Ramírez Albores J., Chapa Vargas L, Jasso Gordoa M. Luis mayor (Pitangus sulphuratus) en el altiplano mexicano. Vol. 32. 2016. p. 186–91.Turner A. Southern Rough-winged Swallow (Stelgidopteryx ruficollis). Handbook of the Birds of the World Alive. 2019. p. 2–5.ParásitosPlasmodiumTrypanosomaColombiaAvesHemoparásitosCaracterizaciónMicroscopiaPrevalenciaAcuáticasORIGINALCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdfCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdfapplication/pdf5579026https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/15/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf920aef594e1a71c11e75835ea55f7bfcMD515open accessCartas derechos de autor.pdfCartas derechos de autor.pdfapplication/pdf130012https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/14/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdfb0fafdabdf32efec2814b643f9957796MD514metadata only accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-814828https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/5/license.txt2f9959eaf5b71fae44bbf9ec84150c7aMD55open accessTEXTCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdf.txtCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdf.txtExtracted texttext/plain379629https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/16/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf.txt3a2179f38387de7a2a24991d602f691aMD516open accessCartas derechos de autor.pdf.txtCartas derechos de autor.pdf.txtExtracted texttext/plain3https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/18/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdf.txt0d43126fad68fe2c979d6a117ae97cc5MD518metadata only accessTHUMBNAILCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdf.jpgCaracterización de parásitos sanguíneos en aves asociadas a cuerpos de agua y su prevalencia en 12 departamentos de Colombia-2-1c.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg7467https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/17/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20par%c3%a1sitos%20sangu%c3%adneos%20en%20aves%20asociadas%20a%20cuerpos%20de%20agua%20y%20su%20prevalencia%20en%2012%20departamentos%20de%20Colombia-2-1c.pdf.jpg61195964e58f67d9c8869ee8185c6686MD517open accessCartas derechos de autor.pdf.jpgCartas derechos de autor.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg9509https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/118/19/Cartas%20derechos%20de%20autor.pdf.jpg2986b116664de12f0aa1c468eb8c7b3aMD519metadata only accessunicolmayor/118oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/1182024-04-29 12:32:14.533An error occurred on the license name.|||https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/open accessBiblioteca Digital Unicolmayorrepositorio@unicolmayor.edu.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 |