Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)

La enfermedad de Chagas, causada por Trypanosoma cruzi, afecta entre 10 a 18 millones de personas en Latinoamérica y 25 millones de personas están en riesgo de contraer la enfermedad; se clasifica hoy como una enfermedad olvidada y desatendida en Colombia y países de América del sur. El municipio de...

Full description

Autores:
Herrera Caicedo, Lina María
Leaño Jiménez, Jeimy Paola
Tipo de recurso:
Trabajo de grado de pregrado
Fecha de publicación:
2018
Institución:
Colegio Mayor de Cundinamarca
Repositorio:
Repositorio Colegio Mayor de Cundinamarca
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/4776
Acceso en línea:
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4776
Palabra clave:
Infección
Enfermedad de Chagas
Didelphis marsupialis
Caninos
Triatominos
Humanos
DTUs
Rights
closedAccess
License
Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2017
id UCOLMAYOR2_70fa098eecbd78d0f9d2fc0fbf81084a
oai_identifier_str oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/4776
network_acronym_str UCOLMAYOR2
network_name_str Repositorio Colegio Mayor de Cundinamarca
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
title Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
spellingShingle Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
Infección
Enfermedad de Chagas
Didelphis marsupialis
Caninos
Triatominos
Humanos
DTUs
title_short Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
title_full Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
title_fullStr Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
title_full_unstemmed Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
title_sort Caracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)
dc.creator.fl_str_mv Herrera Caicedo, Lina María
Leaño Jiménez, Jeimy Paola
dc.contributor.advisor.none.fl_str_mv Torres García, Orlando Alfredo
Garzón Jiménez, Sandra Patricia
dc.contributor.author.none.fl_str_mv Herrera Caicedo, Lina María
Leaño Jiménez, Jeimy Paola
dc.subject.lemb.none.fl_str_mv Infección
topic Infección
Enfermedad de Chagas
Didelphis marsupialis
Caninos
Triatominos
Humanos
DTUs
dc.subject.proposal.spa.fl_str_mv Enfermedad de Chagas
Didelphis marsupialis
Caninos
Triatominos
Humanos
DTUs
description La enfermedad de Chagas, causada por Trypanosoma cruzi, afecta entre 10 a 18 millones de personas en Latinoamérica y 25 millones de personas están en riesgo de contraer la enfermedad; se clasifica hoy como una enfermedad olvidada y desatendida en Colombia y países de América del sur. El municipio de La Mesa (Cundinamarca) se encuentra clasificado como un escenario de alto riesgo para la adquisición de la enfermedad. T. cruzi ha sido clasificado en seis unidades discretas de tipificación (DTUs) desde TcI a TcVI, distribuídas en diversas especies de vectores y reservorios, llevándolos a predominar entre los ciclos doméstico, peridoméstico y silvestre. De esta manera, se ha encontrado que TcI, TcIII y TcIV circulan en el ciclo silvestre; mientras que, en el ciclo doméstico, prevalece TcII, TcV y TcVI. Dentro de ellas, las cepas con mayor importancia son: TcI que contiene características más virulentas y TcII que causa formas digestivas de la infección con presencia en Colombia. Materiales y métodos: A partir de muestras de humanos, caninos, triatominos y zarigüeyas, se confirma la presencia de T. cruzi y se realiza un algoritmo diagnóstico para la identificación de los DTUs circulantes, usando el método convencional de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
publishDate 2018
dc.date.issued.none.fl_str_mv 2018
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv 2022-03-07T15:45:18Z
dc.date.available.none.fl_str_mv 2022-03-07T15:45:18Z
dc.type.spa.fl_str_mv Trabajo de grado - Pregrado
dc.type.coar.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.coarversion.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85
dc.type.content.spa.fl_str_mv Text
dc.type.driver.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.redcol.spa.fl_str_mv https://purl.org/redcol/resource_type/TP
dc.type.version.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/publishedVersion
format http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
status_str publishedVersion
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4776
dc.identifier.barcode.none.fl_str_mv 58432
url https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/4776
identifier_str_mv 58432
dc.language.iso.spa.fl_str_mv spa
language spa
dc.relation.references.spa.fl_str_mv Saldaña C, Córdova O, Vargas F. UTILIZACIÓN DE Lepidium peruvianum MACA, COMO MEDIO DE CULTIVO PARA EL CRECIMIENTO DE Trypanosoma cruzi. Rev Perú Med Exp Salud Pública. 2006; 23(2).
Graiff D, Zurbriggen G, Aleu G, Sequeira G, Faya M, Marini V, et al. Seropositividad para Trypanosoma cruzi en caninos de la localidad de La Para (Córdoba, Argentina). InVet. 2009 Agosto; 11(1).
Ferrer E. Técnicas moleculares para el diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Universidad del Oriente de Venezuela. 2015 Marzo; 27(3).
Ibáñez G, Martinez A, Nogueda B, López E, Alonso A, Perea C, et al. Identification by Q-PCR of Trypansoma cruzi lienage and determination of blood meal sources in triatomine gut samples in Mexico. Parasitology international. 2013; 62(36-43).
Espinoza F. Distribución y bionomia de los vectores de la enfermedad de Chagas en Colima. Tesis maestral en entomología médica. Monterrey: Universidad Autonoma de Nuevo León, Nuevo León; 1998.
8. Salvatella R. Los ciclos de transmisión de Trypanosoma cruzi (Chagas 1909) (Protozoa, Masigophora) en Uruguay. Rev med Uruguay. 1993 Septiembre; 9(1).
Colciencias. Dinámica de la transmisión de Trypanosoma cruzi, en zonas urbanas, periurbanas y rurales en la región Andina - modelo municipio de La Mesa Cundinamarca. 2015. Folleto.
Sanchez J. Información del comportamiento del programa Chagas Cundinamarca años 2002-2005. Universidad de los Andes. 2005 Mayo.
Krestchmer C. "Prevalencia de genotipos (clones) de Trypanosoma cruzi en micromamiferos. modulada por la presencia de distintos vectores, en sectores endémicos de tres regiones de Chile". Trabajo de grado. Santiago de Chile : Universidad de Chile , Santiago; 2010.
Ceballos L. Ciclo silvestre de transmisión de Trypanosoma cruzi en el noroeste de argentina. Tesis doctoral. Buenos Aires : Universidad de Buenos Aires ; 2010.
Bravo T. Trypanosoma cruzi historia natural y diagnostico de la enfermedad de Chagas. Revista mexicana de patologia medica. 2004 Diciembre; 54(4).
Salud OMdl. La enfermedad de Chagas (Tripanosomiasis americana). Página web. ; 2017.
Suárez C, Rey Á, Orduz M, Prada R, Tarazona Z. Supervivencia de Trypanosoma cruzi en bebidas experimentalmente contaminadas. Biomédica. 2012; 32.
Angulo V. Aspectos ecologicos de la enfermedad de Chagas en el oriente de Colombia. MVZ cordoba. 2000; 5(1).
Gaviria Aea. Plan Decenal de Salud Pública. Bogotá: Ministerio de salud y protección social, Cundinamarca; 2013.
Hernández L, Ramírez A, Cucunubá Z, Zambrano P. Brote de Chagas agudo en Lebrija, Santander. Articulo institucional. 2009 Marzo; 4(1)
Vacca M, Mercado M. Determinación de las características operativas de las pruebas serológicas con cepas colombianas de Trypanosoma cruzi utilizadas para el diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Tesis para Maestría en Epidemiología Clínica. Bogotá D.C: Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá D.C; 2005.
Palmezano J, Plazas L, Rviera K, Rueda V. Enfermedad de Chagas: realidad de una patología frecuente en Santander, Colombia. Revistas medicas UIS. 2014 Diciembre; 28(1).
Leonard J. Carlos Chagas pionero en salud en el interior de Brasil. Bold of sanit panam. 1991; 110(3).
Rueda K, Trujillo J, Carranza J, Vallejo G. Transmisión oral de Trypansoma cruzi: una nueva situación epidemiológica de la enfermedad de Chagas en Colombia y otros países suramericanos. Biomédica. 2014 Junio; 34(631-641).
Castillo D, Wolff M. Aspectos del comportamiento de los triatominos (Hemiptera: Reduviidae), vectores de la enfermedad de Chagas. Biomédica. 2000; 20
Chagas C. Nova tripanozomiaze humana. Estudos sobre a morfolojia e o ciclo evolutivo do schizotrypanum cruzi n. gen., n. sp., ajente etiolojico de nova entidade morbida do homem. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1909.
Barr S. Canine Chagas´disease (American Trypanosomiasis) in North America. Vet Clin Small Anim. 2009; 39
Nicholls R, al. e. Enfermedad de Chagas aguda en Colombia, una entidad poco sospechada. informe de 10 casos presentados en el periodo 2002-2005. Biomedica. 2007 Febrero; 27(1)
Internet. Bogotá: Organización Mundial de la Salud; 2014.
Rosas A, Ojeda G, Barrios A, Otteo M, Maruñak S. Tripanosomiasis americana en un canino del nordeste argentino, reporte de un caso clinico. Rev. vet. 2016 Febrero; 27(1)
0. Rosas F. Enfermedad de Chagas. Revista colombiana de cardiologia. 2011 Octubre; 18(5).
. Bern C, Montgomery S. An Estimate of the Burden of Chagas Disease in the United States. Clinical Infection Diseases (CID). 2009 September; 49.
. Jackson Y, Gétaz L, Wolff H, Holst M, Mauris A, Tardin A, et al. Prevalence, Clinical Staging and Risk for Blood-Borne Transmission of Chagas Disease among Latin American Migrants in Geneva, Switzerland. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 Febraury; 4(2).
da Silva S, al. e. Analisys of an acute Chagas disease outbreak in the Brazilian Amazon. Transactions of the royal society of tropical medicine and hygiene. 2009 Diciembre; 103(1).
. Molina I, Salvador F, Sánchez A. Actualización en Enfermedad de Chagas. Elsevier. 2016; 34(2).
Díaz M, González C. Enfermedad de Chagas agudo: transmision oral de Trypanosoma cruzi como una via de transmisión re-emergente. Revista de la universidad industrial de Santander. 2014 Agosto; 46(2).
Soto H, Tibaduiza T, Montilla M, Triana O, Suarez D, Torres M, et al. Investigación de vectores y reservorios en brote de Chagas agudo por posible transmisión oral en Aguachica, Cesar, Colombia. Cad. Saúde Pública, Rio de Janeiro. 2014 Abril; 30(4).
Reyes M, Torres A, Esteban L, Flóres M, Angulo V. Riesgo de transmisión de la enfermedad de Chagas por intrusión de tratiatominos y mamiferos silvestres en Bucaramanga, Santander y Bogotá. Biomedica. 2017 Marzo; 37.
Xavier S, Rodrigues A, Bilac D, Louzada V, da Costa S, Seixas E, et al. Distantiae Transmission of Trypanosoma cruzi: A New Epidemiological Feature of Acute Chagas Disease in Brazil. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2014 May; 8(5).
Dario M, Silva M, da Silva J, da Chagas S, D'Andrea P, Rodriguez A, et al. Ecological scenario and Trypanosoma cruzi DTU characterization of a fatal acute Chagas disease case transmitted orally (Espírito Santo state, Brazil). Parasites & Vectors. 2016; 9.
Kjos S, Snowden K, Creig T, Lewis B, Ronald N, Olson J. Distribution and characterization of canine Chagas. Veterinary parasitology. 2008 Diciembre; 152.
Deane. Double development cycle of Trypanosoma cruzi in the Opossum. Parasitology today. 1986; 2(5).
Turriago C, Vallejo G, Guhl F. Seroprevalencia de Trypanosoma cruzi en perros de dos áreas endémicas de Colombia. Revista Med. 2008 Marzo; 16(1)
Reyes L, Silesky E, Cerdas C, Chinchilla M, Guerrero O. Presencia de anticuerpos contra Trypanosoma cruzi en perros de Costa Rica. Parasitol Latinoam. 2002; 57.
Schweigmann N, al. e. Estudio de la prevalencia de la infección por Trypanosoma cruzi en zarigüeyas (Didelphis albiventris) en Santiago de Estero, Argentina. Rev Panam Salud Publica. 1999; 6(6).
Urdaneta-Morales S, Nironi L. Trypanosoma cruzi in the anal glands of urban opossums I-Isolation and experimental infections. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1996 Agosto; 91(4
. Carreira. Histopaologycal study of experimental and natural infections by T. cruzi in Didelphis marsupialis. Mem inst Oswaldo Cruz. 1996 Octubre; 91(5).
Jansen A, Carreira J, Deane M. Infection of a mammal by monogenetic insect trypanosomatids (kinetoplastida, trypanosomatidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1988 September; 83(3)
Flores-Chávez M, de Fuentes I, Gárate T, Cañavate C. Diagnóstico de laboratorio de la enfermedad de Chagas importada. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2006; 25(3).
Vega S, Naquira C. Manual de procedimientos de laboratorio para el diagnóstico de la tripanosomiosis americana (enfermedad de Chagas). Primera ed. Salud MdSyINd, editor. Lima: Ministerio de Salud y Instituto Nacional de Salud; 2005.
Vallejo G, Guhl F, Chiari E, Macedo A. Species specific detection of Trypanosoma cruzi and Trypanosoma rangeli in vector and mammalian host by polymerase chain reaction amplification of kinetoplast minicircle DNA. Acta Tropica. 1999 Octubre; 72.
. Teixeira A, Hecht M, Guimaro M, Sousa A, Nitz N. Pathogenesis of Chagas's Disease: Parasite persistence and autoinmunity. Clinical Microbiology Reviews. 2011 Julio; 24(3)
Melo M, Moreira O, Tenório P, Lorena V, Lorena-Rezende I, Oliveira W, et al. Usefulness of real time PCR to quantify parasite load in serum samples from chronic Chagas disease patients. Parasites & Vectors. 2015; 8.
Health TCfFS&P, Biologics IfICiA. Enfermedad de Chagas. 2010. Folleto.
Miqueles C. Rendimiento del xenodiagnóstico y reacción en cadena de la polimerasa en la detección de Trypanosoma cruzi en deyecciones de triatominos. Tesis. Santiago de Chile: Universidad de Chile, Facultad de ciencias veterinarias y pecuarias; 2005.
Villamil-Gómez W, Echeverría L, Ayala M, Mejia L, Eyes-Escalante M, VenegasHermosilla J, et al. Orally transmitted acute Chagas disease in domestic travelers in Colombia. Journal of Infection and Public Health. 2016 Mayo.
Cucunubá Z, Okuwoga O, Basáñez MG, Nouvellet P. Increased mortality attributed to Chagas disease: a systematic review and meta-analysis. Parasites & Vectors. 2016; 9(42).
. Zetun C, Lucheis S, Troncarelli M, Langoni H. Infeccao por Trypanosoma cruzi em animail silvestres procedentes de zoológicos do estado de Sao Paulo. Veterinaria e zootecnia. 2014 Marzo; 21(1).
Mejia A, Triana O. Análisis por LSSP-PCR de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi en sangre y órganos de ratones. Biomédica. 2005 Enero; 25
Guhl F, Vallejo G. Interruption of Chagas disease transmission in the Andean Countries: Colombia. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999 Agosto; 94(1).
. Hernández C, Salazar C, Brochero H, Teherán A, Buitrago L, Vera M, et al. Untangling the transmission dynamics of primary and secondary vectors of Trypanosoma cruzi in Colombia: parasite nfection, feedng sources and discrete typing units. Parasites & Vectors. 2016.
Cucunubá Z, Cárdenas A, Pavia P, Montilla M, Aldana R, Villamizar K, et al. Prevalence and risk factors for Chagas disease in preagnant women in Casanare, Colombia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2012; 87(5)
Manrique-Abril D, Manrique-Abril F, Lorca M, Ospina J. Prevalencia de anticuerpos para Trypanosoma cruzi en caninos de dos municipios endémicos de Boyacá. Rev. MVZ Córdoba. 2011 Junio; 17(1).
Guhl F, Aguilera G, Pinto N, Vergara D. Actualización de la distribución geográfica y ecoepidemiológica de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia. Biomédica. 2007 Junio; 27(1).
Vásquez L, Galvao C, Pinto N, Granados H. Primer registro de Triatoma nigromaculata (Stal, 1859) (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) para Colombia. Biomédica. 2005 Mayo; 25.
Moncayo A. Chagas disease: Current epidemiological trends after the interruption of vectorial and transfusional transmision in the Southern Cone countries. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2003 Julio; 98(5).
Angulo V, Esteban L. Nueva trampa para la captura de triatominos en hábitats silvestres y peridomésticos. Biomédica. 2011; 3(I).
Herrera L. Trypanosoma cruzi, the causal agent of Chagas disease: boundaries between wild and domestic cycles in Venezuela. Frontiers in Public Health. 2014 Noviembre; 2
. Guhl F, Restrepo M, Angulo V, Antunes C, Campbell-Lendrum D, Davies C. Lessons from an national survey of Chagas disease transmission risk in Colombia. TRENDS in parasitology. 2005 Junio; 21(6).
Gomez A, Monteon V. Algunos aspectos de la organización y regulación genética en Trypanosoma cruzi: el agente etiológico de la enfermedad de Chagas. Revista Latinoamericana de Microbiología. 2008 Diciembre; 50(3).
Toso A, Vial F, Galanti N. Transmisión de la enfermedad de Chagas por vía oral. Rev Med Chile. 2011 Noviembre; 139.
Carlos N. "Evaluación de potenciales reservorios silvestres de Trypanosoma sp. en cuatro localidades de cuatro localidades de los departamentos de Amazonas y Loreto. Trabajo de grado para el título de maestría. Lima: Universidad Nacional Mayor de San Marcos; 2015
Teixeira D, Benchimol M, Crepaldi P, de Souzza W. Atlas didáctico ciclo de vida do Trypanosoma cruzi. Primera ed. Teixeira D, Benchimol M, Crepaldi P, de Souzza W, editors. Rio de Janeiro: Fundacao CECIERJ; 2011.
Lima V, Mangia R, Carreira J, Marchevsky R, Jansen A. Trypanosoma cruzi: Correlations of biological aspects of the life cycle in mice and triatomines. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999 Junio; 94(3).
Alessio G. Performance of TcI/TcVI/TcII Chagas-Flow ATE-IgG2a for universal and genotype-specific serodignosis of Trypanosoma cruzi infection. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASE. 2017 Marzo; 11(3).
Souto R, Fernandes O, Macedo A, Campbell D, Zingales B. DNA markers define two major phylogenetic lineages of Trypanosoma cruzi. Molecular and biochemical parasitology. 1996 September; 83.
Pinto A, de Lana M, Britto C, Bastrenta B, Tibayrene M. Experimental Trypanosoma cruzi biclonal infection in Triatoma infestans: detection of distinct clonal genotypes using kinetoplast DNA probes. International Journal for Parasitology. 2000 April; 30
Ocaña-Mayorga S, Llewellyn M, Costales J, Miles M, Grijalva M. Sex, subdivision and Domestic Dispersal of Trypanosoma cruzi Lineage I in Southern Ecuador. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 November; 4(12).
. Macedo A, Oliveira R, Pena S. Chagas disease: Roll of parasite genetic variation in pathogenesis. Expert reviews in molecular medicine. 2002 March.
. Pavia P. Caracterización moelcular del elemento repetido disperso pequeño, SIRE, en las seis Unidades Discretas de Tipificación (DTU) de Trypanosoma cruzi y si aplicación en una prueba de PCR. Tesis de Doctorado. Bogotá D.C: Pontificia Universidad Javeriana, Facultad de Ciencias; 2011.
Sierra V. IDENTIFICACIÓN DE UNIDADES DISCRETAS DE TIPIFICACIÓN (DTU'S) DE Trypanosoma cruzi EN MARSUPIALES (Didelpahis marsupialis, Didelphis virginianus, Philander oppossum) PRESENTES EN LA RESERVA ECOLÓGICA "EL ZAPOTAL" EN EL ESTADO DE CHIAPAS. Trabajo de grado de maestría. México: Universidad Autonoma del estado de México; 2016.
Briones M, Souto R, Stolf B, Zingales B. The evolution of two Trypanosoma cruzi subgroups inferred from rRNA genes can be correlated with the interchange of American mammalian faunas in the Cenozoic and has implications to pathogenicity and host specificity. Molecular and biochemical parasitology. 1999; 104.
Zingales B, Miles M, Campbell D, Tibayrenc M, Macedo A, Teixeira M, et al. The revised Trypanosoma cruzi subespecific nomenclature: Rationale, epidemiological, relevance and research applications. Infection, Genetics and Evolution. 2012 December; 12.
Arner. Database of Trypanosoma cruzi repeated genes: 20.000 additional gene variants. BioMed Central. 2007 October; 8
Nantylya V. Trypanosomiasis in domestic animals: the problem of diagnosis. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. 1990; 9(2)
. Sturm N, Campbell D. Alternative lifestyles: The population structure of Trypanosoma cruzi. Acta Tropica. 2010 August; 115.
Aliaga C, Breniere S, Barnabé C. Further interest of miniexón multiplex PCR for a rapid typing of Trypanosoma cruzi. Infection, Genetics and Evolution. 2011 November; 11.
Tibayrenc M, Ward P, Moya A, Ayala F. Natural populations of Trypanosoma cruzi, the agent of Chagas disease, have a complex multiclonal structure. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986 January; 8
Tibayrenc M, Ayala F. The clonal theory of parasitic protozoa: 12 years on. TRENDS in Parasitology. 2002 September; 18(9).
Westenberger S, Barnabé C, Campbell D, Sturm N. Two hybridation events define the population structure of Trypanosoma cruzi. Genetics Society of Americaa. 2005 June; 171
Subileau M, Barnabé C, Douzery E, Diosque P, Tibayrenc M. Trypanosoma cruzi: New insights on ecophylogeny and hybridization by multigene sequencing of three nuclear and one maxicircle genes. Experimental Parasitology. 2009 April; 122
Lenne S, Pedroso A, e Ferreira R, Briones M, Zingales B. Network genealogy of 195- pb satellite DNA supports the superimposed hybridization hypothesis of Trypanosoma cruzi evolutionary pattern. Infection, Genetics and Evolution. 2010 April; 10.
Vallejo G, Carranza J, Ortiz P, Sanchez , Rodriguez B, Rivera F, et al. La interacción entre Tripanosomas y Triatominos: Aspectos evolutivos y epidemiológicos. Universidad de los Andes. 2005 Mayo
Da Silveira A, de Lana M, Britto C, Bastrnta B, Tibayrenc M. Experimental Trypanosoma cruzi biclonal infection in Triatoma infestans; detection of distinc clonal genotypes using kinetoplasto DNA probes. International Journal for Parasitology. 2000 April; 30(843-848)
Burgos J, Diez M, Vigliano C, Bisio M, Risso M, Duffy T, et al. Molecular identification of Trypanosoma cruzi Discrete Typing Units in End-Stage Chronic Chagas Heart Disease and Reactivation after Heart Transplantation. Clinical Infectious Diseases. 2010 July; 51(5)
Martínez-Calvillo S, Vizuet-de-Rueda J, Florencio-Martínez L, Manning-Cela R, Figeroa-Angulo E. Gene expression in trypanosomatid parasites. Journal of biomedicine and biotechnology. 2009 November.
Pavia P, Montilla M, Flórez C, Herrera G, Ospina J, Manrique F, et al. Reporte del primer caso de enfermedad de Chagas transplacentaria analizado por AP-PCR en Moniquirá, Boyacá. Biomédica. 2009 Junio; 29(513-522).
. Mendoca C, Pamplona L, Moreira R, Barbosa S, Xavier S, Jansen A, et al. Domestic, peridomestic and wild hosts in the transmission of Trypanosoma cruzi in the Caatinga área colonised by Triatoma brasiliensis. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2014 November; 109(7).
Acosta N, Lopez E. Reservorios mamíferos del Trypanosoma cruzi en Paraguay. Mem. Inst. Investig. Cienc. Salud. 2013 December; 9(2).
Gunter S, Brown E, Gorchakov R, Murray K, Garcia M. Sylvatic transmission of Trypanosoma cruzi among domestic and wildlife reservoirs in Texas, USA: A review of the historical literature. Zoonoses and Public Health. 2016 March.
Curtis-Robles R, Lewis B, Hamer S. High Trypanosoma cruzi infection prevalence associated with minimal cardiac pathology among wild carnivores in central Texas. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 2016 April; 5.
Moreira F, Saab J, Lopes F, Miraglia H, de Miranda G, Jansen A. Complexity and multi-factoriality of Trypanosoma cruzi sylvatic cycle in coatis, Nasua nasua (Procyonidae), and triatomine bugs in the Brazilian Pantanal. Parasites & Vectors. 2016; 9.
Noireau F, Diosque P, Jansen A. Trypansoma cruzi: adaptation to its vectors and its hosts. Vet. Res. 2009 February; 40(26).
Solis H, Carlos N. Reservorios silvestres de Trypanosoma cruzi en cuatro localidades de las regiones Amazonas y Loreto. Theorema. 2015 Abril; 2(2)
Enciso C, Montilla M, Santacruz M, Nicholls R, Rodriguez A, Mercado M, et al. Comparación de la prueba de inmunofluorescencia indirecta un inmunoensayo enzimático y la prueba comercial Chagatek para la detección de anticuerpos antiTrypanosoma cruzi. Biomédica. 2004 Enero; 24(104-108).
Jansen A, Santos A, Varella C, Cupolillo E, Mangia R, Fernandes O. The sylvatic cycle of Trypanosoma cruzi: a still unsolved puzzle. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999; 94(1).
Shikanai-yasuda M, Brisola C, Guedes L, Siqueira G, Barone A, Dias J, et al. Possible oral transmission of acute Chaga's Disease in Brazil. Rev. Inst. Med. trop. Sao Paulo. 1991 October; 33(5).
Zingales B, Andrade S, Briones M, Campbell D, Chiari E, Fernandes O, et al. A new consensus for Trypanosoma cruzi intraespecific nomenclature: second revision meeting recommends TcI to TcVI. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2009 November; 104(7)
Devera R, Fernandes O, Rodrigues J. Should Trypanosoma cruzi be called "cruzi" complex? A review of the parasite diversity and the potential of selecting population after in vitro culturing and mice infection. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2003 January; 98(1)
Manrique-Abril F, Ospina J, G H, Florez A, Pavia P, Montilla M, et al. Diagnóstico de la enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas y recién nacidos de Moniqurá y Miraflorez, Boyacá, Colombia. Infectio. 2013 Febrero; 17(1).
Brisse S, Barnabé C, Tibayrenc M. Identification of six Trypanosoma cruzi phylogenetic lineages by random amplified polymorphic DNA adn multilocus enzyme electrophoresis. International Journal for Parasitology. 2000 Octubre; 30(35-44).
Ramirez J, Guhl F, Rendon L, Rosas F, Marin-Neto J, Morillo C. Chagas cardiomyopathy manifestations and Trypanosoma cruzi genotypes circulating in chronic chagasic patients. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 November; 4(11).
Sales-Campos H, Borges H, Pontes C, Pereira T, de Castilho A, Ramirez L, et al. Trypanosoma cruzi DTU TcII presents higher blood parasitism than DTU TcI in an experimental model of mixed infection. Acta Parasitológica. 2015 March; 60(3).
Ramirez J, Duque M, Montilla M, Cucunubá Z, Guhl F. Natural and emergent Trypanosoma cruzi I genotypes revealed by mitochondrial (Cytb) and nuclear (SSU rDNA) genetic markers. Experimental parasitology. 2012; 132.
Punukollu G, Gowda R, Khan I, Navarro V, Vasavada B. Clinical aspects of the Chaga's disease. International Journal of Cardiolofy. 2007 Junio; 115.
Herrera C, Bargues D, Fajardo A, Montilla M, Triana O, Vallejo G, et al. Identifying four Trypanosoma cruzi I isolate haplotypes from different
Falla A, Herrera C, Fajardo A, Montilla M, Vallejo G, Guhl F. Haplotype identification within Trypanosoma cruzi I in Colombian isolates from several reservoirs, vectors and humans. Acta Tropica. 2009 December; 110
Ramírez J, Duque M, Guhl F. Phylogenetic reconstrucion based on cytochrome b (Cytb) gene sequences reveals distinct genotypes within Colombian Trypanosoma cruzi I populations. Acta Tropica. 2011 April; 119.
Ramirez J, Duque M, Montilla M, Cucunubá Z, Guhl F. Multilocus PCR-RFLP profiling in Trypanosoma cruzi I highlights an intraspecific genetic variation pattern. Infection, genetics and evolution. 2012; 12.
Rueda M, Ramírez G, Osorio J. Aproximación a la biología de la zarigüeya común (Didelphis marsupialis). Boletín científico centro de museos-museo de historio natural. 2013 Diciembre; 17(2).
Lozada S, Ramírez G, Osorio J. Características morfológicas de un grupo de zarigüeyas (Didelphys marsupialis) del Suroccidente Colombiano. Rev. Inv. Vet. Perú. 2015 Noviembre; 26(2).
Ramírez G, Osorio J. Identificación de helmintos en zarigüeyas (Didelphis marsupialis) en el Suroccidente Colombiano. Revista Biosalud. 2014 Agosto; 13(1).
Aponte J. Una revisión de la biología del Didelphis marsupialis y su relación con el mal de Chagas y la Leishmaniasis. Hipótesis: apuntes científicos uniandinos, número especial. 2013
Grisard E, Carvalho-Pinto C, Scholz A, Toma H, Schlemper B, Steindel M. Trypanosoma cruzi infection in Didelphis marsupialis in Santa Catarina and Arvoredo Islands, Sourthern Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2000 December; 95(6).
Curtis-Robles R, Snowden K, Dominguez B, Dinges L, Rodges S, Mays G, et al. Epidemiology and molecular typing of Trypanosoma cruzi in naturally-infected hound dogs and associated triatomine vectors in Texas, USA. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2017 January
Castillo R, Chou L, Quispe-Machaca V, Ancca-Juarez J, Malaga F, Bastos M, et al. The potential of canine sentinels for reemerging Trypanosoma cruzi transmission. Prev. Vet. Med. 2015 July; 120(0).
Farfán-García A, Angulo-Silva V. Conducta alimentaria de poblaciones de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) en una zona endémica y sus implicaciones epidemiológicas. Rev. Salud Pública. 2011 Febrero; 13(1).
Tenney T, Curtis-Robles R, Snowden K, Hamer S. Shelter dogs as sentinels for Trypanosoma cruzi transmission across Texas, USA. Emerging Infectious Diseases. 2014 August; 20(8).
Cañavate C, Cuadros J, Martínez-Ruiz R, Martín-Rabadán P. Procedimientos en Microbiología Clínica Cercenado E, Cantón R, editors. España: Seimc; 2009.
Cardoso M, Reis-Cunha J, Bartholomeu D. Evasion of the inmune Response by Trypanosoma cruzi during acute infection. Frontiers in Inmunology. 2016 January; 6(659)
Flores P, Rivadeneira V. Tratamiento parasitcida de la enfermedad de Chagas. Prosac. 2012; 8(1).
Cummings K, Tarleton R. Rapid quantitation of Trypanosoma cruzi in host tissue by real-time PCR. Molecular & Biochemical Parasitology. 2003; 129(53-59).
Bacal F, Silva C, Pires P, Mangini S, Fiorelli A, Stolf N, et al. Transplantation for Chagas' Disease: an overview of inmunosuppression and reactivation in the last two decades. Clin Transplant. 2010; 24
Rodríguez-Morales O, Ballinas-Verdugo M, Alejandre-Aguilar R, Reyes P, ArceFonseca M. Trypanosoma cruzi connatal transmission in dogs with Chagas Disease: Experimental case report. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 2011; 11(10).
Urinovsky F, Salomone O, Córdoba R, Zazu A, Martínez A, Zlocowsky J, et al. Morbimortalidad de los pacientes con miocardiopatía chagásica y trasplante cardíaco. Experiencia inicial. Revista Argentina de Cardiología. 2003 Septiembre; 71(5).
Vásquez C, Robledo S, Calle J, Triana O. Identificación de nuevos escenarios epidemiológicos para la enfermedad de Chagas en la región momposina, norte de Colombia. Biomédica. 2013; 33.
Villalobos G, Martínez-Hernández F, de la Torre P, Laclette J, Espinoza B. Entomological indices, feeding sources, and molecular identification of Triatoma phyllosoma (Hemipter:Reduviidae) One of the main vectors of Chagas disease in the Istmo de Tehuantepec, Oaxaca, México. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2011; 85(3)
Luquetti A. El diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Diagnóstico serológico, xenodiagnósitco, hemocultivo, PCR y examen directo. Universidad de los Andes. 2005 Mayo.
Piron M, Fisa R, Casamitjana N, López-Chejade P, Puig L, Vergés M, et al. Development of a real-time PCR assay for Trypanosoma cruzi detection in blood samples. Acta tropica. 2007 June; 103.
. Dias E. Técnica do xenodiagnostico na molestia de Chagas. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1940 Agosto; 35(2).
. Duarte L, Flórez O, Rincón O, Gonzáles C. Comparación de siete pruebas diagnósticas para detectar infección por Trypanosoma cruzi en pacientes en fase crónica de la enfermedad de Chagas. Colombia médica. 2014 Junio; 45(2).
Amanda R, Sá G, Dias K, Steindel K, Max G, Toledo J. Genotyping of Trypanosoma cruzi DTUs and Trypansoma rangeli groups in experimentally infected Rhodnius prolixus by PCR-RFLP. Acta Tropica. 2016 Enero.
lab. W. Prueba de hemaglutinación indirecta para la detección de anticuerpos contra el Trypanosoma cruzi. 2000. Inserto de laboratorio.
Alviarez Y, Lares M, Viettri M, Aguilar C, Herrera L, Elizabeth F. Estandarización de la técnica de aglutinación directa para el inmunodiagnóstico de la enfermedad de Chagas. Biomédica. 2014 Marzo; 34(308- 317).
Cantillo-Barraza O, Gómez-Palacio A, Salazar D, Mejía-Jaramillo A, Calle J, Triana O. Biomédica Revista del Instituto Nacional de Salud. [Online].; 2010 [cited 2017 Septiembre 16. Available from: http://www.revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/272/461
Cundinamarca AdLM. Alcaldía de La Mesa - Cundinamarca. [Online].; 2016 [cited 2017 Agosto 20. Available from: www.lamesacundinamarca.gov.co/información_general.shtml
Suárez A, Ramírez H. Los carnívoros terrestres y semiacuáticos continentes de Colombia// Guía de campo. Primera ed. Bogotá, Colombia: GRACOM ; 2015.
Choi EH, Kwang S, Ihm C, Sohn YH. Rapid DNA extraction from dried blood spots on filter paper: Potential applications in biobanking. Osong Public Health Res Perspect. 2014 September; 5(6).
Briceño D, Caballero G, Lares M, Viettri M, Medina M, Ferrer E. Diagnóstico inmunológico de la enfermedad de Chagas, a partir de muestras colectadas en papel filtro. Diagnóstico de la enfermedad de Chagas. 2012 Abril; 16(1).
Folmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial crytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology. 1994; 3(5).
Martínez I, Nogueda B, Martínez-Hernández F, Espinoza B. Microsatellite and miniexón analysis of mexican human DTU I Trypanosoma cruzi strains and their susceptibility to Nifurtimux and Benznidazol. VECTOR-BORNE AND ZOONOTIC DISEASE. 2013; 13(3).
sostenible Mdayd. Decreto No. 1376. 2013. Por el cual se reglamenta el permiso de recolección de especies silvestres
Ley 84 de 1989. Bogotá: Congreso de Colombia, Cundinamarca; 1989.
Resolución número 8430 de 1993. Bogotá: Ministerio de salud, Cundinamarca; 1993.
Padilla J. Situación actual de la enfermedad de Chagas en Colombia. Primer taller internacional sobre el control de la enfermedad de Chagas Universidad de los Andes. 2005 Mayo
Qvarnstrom Y, Schijman A, Veron V, Aznar C, Steurer F, da Silva A. Sensitive and specific detection of Trypanosoma cruzi DNA in clinical specimens using a MultiTarget Real Time PCR approach. PLoS Neglected Tropical Diseases. 2012 July; 6(7
Moreira O, Ramírez J, Velázquez E, Lima-Ferreira C, Guhl F, Sosa-Estani S, et al. Towards the establishment of a consensus real-time qPCR to monitor Trypanosoma cruzi parasitemia in patients with chronic Chagas disease cardiomyopathy: A substudy from the BENEFIT trial. Acta Tropica. 2013; 125(23-31).
Travi B, Jaramillo C, Montoya J, Segura I, Zea A, Goncalves A, et al. Didelphis marsupialis, an important reservoir of Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi and Leishmania (Leishmania) chagasi in Colombia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1994; 50(5).
Crisante G, Rojas A, Teixeira M, Añez N. Infected dogs as a risk factor in the transmission of human Trypanosoma cruzi infection in western Venezuela. Acta Tropica. 2006 Junio; 98.
Green M, Sambrook J. Molecular clonning: a laboratory manual. Cuarta ed. New York; 2012
Association CB. Census of Marine Zooplankton. [Online].; 2009 [cited 2016 Septiembre 16. Available from: http://www.cmarz.org/barcode/protocols/barcode_cmarz_mtcoi_barcoding_protocol.ht ml
Brisse S, Verhoef J, Tibayrenc M. Characterisation of large and small subunit rRNA and mini-exon genes futher supports the distinction of six Trypanosoma cruzi lineages. International Journal for Parasitology. 2001 April; 31
Salud INd. Boletín epidemiológico. Página web. , Bogotá D.C; 2006-2017
nstantáneas.. Triatomidos infectados con trypanosoma cruzi en Cuernavaca (Morelos), México. Pan Am. 1998; 3(3).
Dujardin J, Henriksson J, Victoir K, Brisse S, Gamboa D, Arévalo J, et al. Genomic Rearrangements in Trypanosomatids: an alternative to the "One Gene" Evolutionary hypotheses? Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2000 August; 95(4).
Becerril M, Angeles-Pérez V, Noguez-García J, Imbert-Palafox J. Riesgo de transmisión de Trypanosoma cruzi en el municipio de Metztitlán, Estado de Hidalgo, México, mediante la caracterización de unidades domiciliarias y sus índices entomológicos. Neotropical Entomology. 2010 October; 39(5).
Guhl F. Memorias Primer Taller Internacional sobre el control de la Enfermedad de Chagas. Primera ed. Guhl F, editor. Bogotá D.C: Ediciones Uni Andes; 2005
dc.rights.spa.fl_str_mv Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2017
dc.rights.uri.spa.fl_str_mv https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rights.accessrights.spa.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/closedAccess
dc.rights.creativecommons.spa.fl_str_mv Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)
dc.rights.coar.spa.fl_str_mv http://purl.org/coar/access_right/c_14cb
rights_invalid_str_mv Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2017
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)
http://purl.org/coar/access_right/c_14cb
eu_rights_str_mv closedAccess
dc.format.extent.spa.fl_str_mv 141p.
dc.format.mimetype.spa.fl_str_mv application/pdf
dc.publisher.spa.fl_str_mv Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca
dc.publisher.faculty.spa.fl_str_mv Facultad de Ciencias de la Salud
dc.publisher.place.spa.fl_str_mv Bogotá D.C
dc.publisher.program.spa.fl_str_mv Bacteriología y Laboratorio Clínico
institution Colegio Mayor de Cundinamarca
bitstream.url.fl_str_mv https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/1/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/2/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/3/license.txt
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/4/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf.txt
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/6/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf.txt
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/5/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf.jpg
https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/7/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf.jpg
bitstream.checksum.fl_str_mv 8b2f97885740c6d033c8fbdeab619b26
7f98613ff01557f8f933d221feb2593c
2f9959eaf5b71fae44bbf9ec84150c7a
0f1d306bcaf7c96ae01a6a12c457c6ed
ba944ff29285b6ba1588d4cd55a618e0
c3c92ab80f72f850dc2b32c37c669f5b
7c7a6eaf33be7142a110201590bb8130
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Biblioteca Digital Unicolmayor
repository.mail.fl_str_mv repositorio@unicolmayor.edu.co
_version_ 1807009116129853440
spelling Torres García, Orlando Alfredo114da78c61c90fae6400033dbdb95165Garzón Jiménez, Sandra Patricia563870342a432cf43bedc1725c656e56Herrera Caicedo, Lina Maríafb1de453cd355367fcb91bccc908f432Leaño Jiménez, Jeimy Paola49d944c60008b851bc968cac328c8a752022-03-07T15:45:18Z2022-03-07T15:45:18Z2018https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/477658432La enfermedad de Chagas, causada por Trypanosoma cruzi, afecta entre 10 a 18 millones de personas en Latinoamérica y 25 millones de personas están en riesgo de contraer la enfermedad; se clasifica hoy como una enfermedad olvidada y desatendida en Colombia y países de América del sur. El municipio de La Mesa (Cundinamarca) se encuentra clasificado como un escenario de alto riesgo para la adquisición de la enfermedad. T. cruzi ha sido clasificado en seis unidades discretas de tipificación (DTUs) desde TcI a TcVI, distribuídas en diversas especies de vectores y reservorios, llevándolos a predominar entre los ciclos doméstico, peridoméstico y silvestre. De esta manera, se ha encontrado que TcI, TcIII y TcIV circulan en el ciclo silvestre; mientras que, en el ciclo doméstico, prevalece TcII, TcV y TcVI. Dentro de ellas, las cepas con mayor importancia son: TcI que contiene características más virulentas y TcII que causa formas digestivas de la infección con presencia en Colombia. Materiales y métodos: A partir de muestras de humanos, caninos, triatominos y zarigüeyas, se confirma la presencia de T. cruzi y se realiza un algoritmo diagnóstico para la identificación de los DTUs circulantes, usando el método convencional de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR).Chagas disease, caused by Trypanosoma cruzi, affects 10 to 18 million people in Latin America and 25 million people are at risk of getting the disease; It is classified today as a forgotten and neglected disease in Colombia and South American countries. The municipality of La Mesa (Cundinamarca) is classified as a high-risk scenario for the acquisition of the disease. T. cruzi has been classified into six discrete classification units (DTUs) from TcI to TcVI, distributed in various species of vectors and reservoirs, leading them to predominate between domestic, peridomestic and wild cycles. Thus, it has been found that TcI, TcIII and TcIV circulate in the wild cycle; While in the domestic cycle, prevails TcII, TcV and TcVI. Among them, the most important strains are: TcI which contains more virulent and TcII characteristics that cause digestive forms of infection. Materials and methods: From samples of humans, canines, triatomine and opossums, it confirms the presence of T. cruzi and performs a diagnostic algorithm for the identification of circulating DTUs, using the conventional method of polymerase chain reaction (PCR).1. INTRODUCCIÓN 1 2. JUSTIFICACIÓN 3 3. OBJETIVOS 5 3.1. Objetivo General 5 3.2. Objetivos Específicos 5 4. ANTECEDENTES 6 5. MARCO TEÓRICO 11 5.1. Generalidades de la tripanosomiasis 11 5.2. Epidemiología 11 5.2.1. Morbilidad y mortalidad 12 5.2.2. Datos mundiales 13 5.2.3. Datos nacionales 13 5.2.3.1. Características geográficas 14 5.2.4. Datos locales 15 5.3. Agente 16 5.3.1. Taxonomía 17 5.3.2. Características morfológicas 18 5.3.2.1. Formas celulares 18 5.3.3. Material genético 19 5.3.3.1. Regulación de la expresión génica 21 5.3.3.2. ADN del cinetoplasto 21 5.3.4. Ciclo de transmisión 22 5.3.4.1. Ciclo doméstico 24 5.3.4.2. Ciclo peridoméstico 25 5.3.4.3. Ciclo silvestre 25 5.3.5. Clasificación del agente 26 5.3.5.1. Biodemas 26 5.3.5.2. Zimodemas 27 5.3.5.3. Esquizodemas 27 5.3.5.4. Unidades Discretas de Tipificación (DTUs 27 5.4. Vector 31 5.4.1. Características morfológicas 32 5.4.2. Ciclo reproductivo 33 5.5. Huéspedes 33 5.5.1. Zarigüeya común (Didelphis marsupialis) 34 5.5.1.1. Fisiopatología 36 5.5.2. Perro (Canis lupus familiaris 36 5.5.2.1. Periodo de incubación 37 5.5.2.2. Fisiopatología 37 5.5.2.2.1. Forma aguda 37 5.5.2.2.2. Fase indeterminada o latente 38 5.5.2.2.3. Fase crónica 38 5.5.3. Humano 38 5.5.3.1. Periodo de incubación 38 5.5.3.2. Fisiopatología 39 5.5.3.2.1. Aspectos inmunológicos 39 5.5.3.2.2. Fases clínicas 41 5.5.3.2.2.1. Fase aguda 41 5.5.3.2.2.2. Fase latente o indeterminada 41 5.5.3.2.2.3. Fase crónica 42 5.5.3.2.2.4. Forma congénita 43 5.6. Puerta de entrada 43 5.6.1. Chagoma 43 5.6.2. Signo de Romaña 43 5.6.3. Otros 44 5.7. Mecanismos de transmisión 44 5.7.1. Transmisión Vectorial 44 5.7.2. Transmisión oral 44 5.7.3. Transmisión transfusional 46 5.7.4. Transmisión transplacentaria 46 5.7.5. Transmisión por trasplante 46 5.7.6. Transmisión por lactancia materna 46 5.7.7. Transmisión sexual 46 5.8. Factores de riesgo y determinantes de la salud 47 5.9. Diagnóstico 48 5.9.1. Pruebas parasitológicas directas 49 5.9.1.1. Examen en fresco 49 5.9.1.2. Extendido coloreado 49 5.9.1.3. Biopsia 49 5.9.1.4. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) 50 5.9.2. Pruebas parasitológicas indirectas 51 5.9.2.1. Xenodiagnóstico 51 5.9.2.2. Cultivo 52 5.9.2.3. Inoculaciones en animales 52 5.9.3. Pruebas serológicas 53 5.9.3.1. Inmunofluorescencia indirecta (IFI) 53 5.9.3.2. Ensayo por inmunoabsorción ligado a enzimas (ELISA 54 5.9.3.3. Hemaglutinación indirecta (HAI ) 54 5.9.3.4. Métodos de transferencia a filtros 54 5.10. Tratamiento 55 5.11. Prevención 55 6. HIPÓTESIS 58 7. METODOLOGÍA 58 7.1. Enfoque metodológico, tipo y diseño de la investigación 58 7.2. Población 58 7.3. Diseño muestral 58 7.3.1. Captura de triatominos 59 7.3.2. Captura de zarigüeyas 60 7.4. Criterios de inclusión y exclusión 61 7.5. Descripción de variables 61 7.5.1. Variable dependiente 61 7.5.2. Variable independiente 61 7.6. Técnicas de procesamiento y análisis de datos 61 7.6.1. Cuantificación de ADN 61 7.6.2. PCR 61 7.6.2.1. PCR con los cebadores LCO 1940 – HCO 2198 61 7.6.2.2. PCR con los cebadores S35 y S36 62 7.6.2.3. PCR con los cebadores TCI, TCII y TCC 63 7.6.3. Hemaglutinación indirecta (HAI 63 7.6.4. Análisis estadísticos 63 7.7. Consideraciones éticas 64 7.8. Consentimiento de información 64 8. RESULTADOS 65 9. DISCUSION 80 10. CONCLUSIONES 89 11. RECOMENDACIONES 91 12. REFERENCIAS 114PregradoBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico141p.application/pdfspaUniversidad Colegio Mayor de CundinamarcaFacultad de Ciencias de la SaludBogotá D.CBacteriología y Laboratorio ClínicoDerechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2017https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/closedAccessAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)http://purl.org/coar/access_right/c_14cbCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (Dtus) y su asociación con los ciclos de transmisión en la Mesa (Cundinamarca)Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Textinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionSaldaña C, Córdova O, Vargas F. UTILIZACIÓN DE Lepidium peruvianum MACA, COMO MEDIO DE CULTIVO PARA EL CRECIMIENTO DE Trypanosoma cruzi. Rev Perú Med Exp Salud Pública. 2006; 23(2).Graiff D, Zurbriggen G, Aleu G, Sequeira G, Faya M, Marini V, et al. Seropositividad para Trypanosoma cruzi en caninos de la localidad de La Para (Córdoba, Argentina). InVet. 2009 Agosto; 11(1).Ferrer E. Técnicas moleculares para el diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Universidad del Oriente de Venezuela. 2015 Marzo; 27(3).Ibáñez G, Martinez A, Nogueda B, López E, Alonso A, Perea C, et al. Identification by Q-PCR of Trypansoma cruzi lienage and determination of blood meal sources in triatomine gut samples in Mexico. Parasitology international. 2013; 62(36-43).Espinoza F. Distribución y bionomia de los vectores de la enfermedad de Chagas en Colima. Tesis maestral en entomología médica. Monterrey: Universidad Autonoma de Nuevo León, Nuevo León; 1998.8. Salvatella R. Los ciclos de transmisión de Trypanosoma cruzi (Chagas 1909) (Protozoa, Masigophora) en Uruguay. Rev med Uruguay. 1993 Septiembre; 9(1).Colciencias. Dinámica de la transmisión de Trypanosoma cruzi, en zonas urbanas, periurbanas y rurales en la región Andina - modelo municipio de La Mesa Cundinamarca. 2015. Folleto.Sanchez J. Información del comportamiento del programa Chagas Cundinamarca años 2002-2005. Universidad de los Andes. 2005 Mayo.Krestchmer C. "Prevalencia de genotipos (clones) de Trypanosoma cruzi en micromamiferos. modulada por la presencia de distintos vectores, en sectores endémicos de tres regiones de Chile". Trabajo de grado. Santiago de Chile : Universidad de Chile , Santiago; 2010.Ceballos L. Ciclo silvestre de transmisión de Trypanosoma cruzi en el noroeste de argentina. Tesis doctoral. Buenos Aires : Universidad de Buenos Aires ; 2010.Bravo T. Trypanosoma cruzi historia natural y diagnostico de la enfermedad de Chagas. Revista mexicana de patologia medica. 2004 Diciembre; 54(4).Salud OMdl. La enfermedad de Chagas (Tripanosomiasis americana). Página web. ; 2017.Suárez C, Rey Á, Orduz M, Prada R, Tarazona Z. Supervivencia de Trypanosoma cruzi en bebidas experimentalmente contaminadas. Biomédica. 2012; 32.Angulo V. Aspectos ecologicos de la enfermedad de Chagas en el oriente de Colombia. MVZ cordoba. 2000; 5(1).Gaviria Aea. Plan Decenal de Salud Pública. Bogotá: Ministerio de salud y protección social, Cundinamarca; 2013.Hernández L, Ramírez A, Cucunubá Z, Zambrano P. Brote de Chagas agudo en Lebrija, Santander. Articulo institucional. 2009 Marzo; 4(1)Vacca M, Mercado M. Determinación de las características operativas de las pruebas serológicas con cepas colombianas de Trypanosoma cruzi utilizadas para el diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Tesis para Maestría en Epidemiología Clínica. Bogotá D.C: Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá D.C; 2005.Palmezano J, Plazas L, Rviera K, Rueda V. Enfermedad de Chagas: realidad de una patología frecuente en Santander, Colombia. Revistas medicas UIS. 2014 Diciembre; 28(1).Leonard J. Carlos Chagas pionero en salud en el interior de Brasil. Bold of sanit panam. 1991; 110(3).Rueda K, Trujillo J, Carranza J, Vallejo G. Transmisión oral de Trypansoma cruzi: una nueva situación epidemiológica de la enfermedad de Chagas en Colombia y otros países suramericanos. Biomédica. 2014 Junio; 34(631-641).Castillo D, Wolff M. Aspectos del comportamiento de los triatominos (Hemiptera: Reduviidae), vectores de la enfermedad de Chagas. Biomédica. 2000; 20Chagas C. Nova tripanozomiaze humana. Estudos sobre a morfolojia e o ciclo evolutivo do schizotrypanum cruzi n. gen., n. sp., ajente etiolojico de nova entidade morbida do homem. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1909.Barr S. Canine Chagas´disease (American Trypanosomiasis) in North America. Vet Clin Small Anim. 2009; 39Nicholls R, al. e. Enfermedad de Chagas aguda en Colombia, una entidad poco sospechada. informe de 10 casos presentados en el periodo 2002-2005. Biomedica. 2007 Febrero; 27(1)Internet. Bogotá: Organización Mundial de la Salud; 2014.Rosas A, Ojeda G, Barrios A, Otteo M, Maruñak S. Tripanosomiasis americana en un canino del nordeste argentino, reporte de un caso clinico. Rev. vet. 2016 Febrero; 27(1)0. Rosas F. Enfermedad de Chagas. Revista colombiana de cardiologia. 2011 Octubre; 18(5).. Bern C, Montgomery S. An Estimate of the Burden of Chagas Disease in the United States. Clinical Infection Diseases (CID). 2009 September; 49.. Jackson Y, Gétaz L, Wolff H, Holst M, Mauris A, Tardin A, et al. Prevalence, Clinical Staging and Risk for Blood-Borne Transmission of Chagas Disease among Latin American Migrants in Geneva, Switzerland. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 Febraury; 4(2).da Silva S, al. e. Analisys of an acute Chagas disease outbreak in the Brazilian Amazon. Transactions of the royal society of tropical medicine and hygiene. 2009 Diciembre; 103(1).. Molina I, Salvador F, Sánchez A. Actualización en Enfermedad de Chagas. Elsevier. 2016; 34(2).Díaz M, González C. Enfermedad de Chagas agudo: transmision oral de Trypanosoma cruzi como una via de transmisión re-emergente. Revista de la universidad industrial de Santander. 2014 Agosto; 46(2).Soto H, Tibaduiza T, Montilla M, Triana O, Suarez D, Torres M, et al. Investigación de vectores y reservorios en brote de Chagas agudo por posible transmisión oral en Aguachica, Cesar, Colombia. Cad. Saúde Pública, Rio de Janeiro. 2014 Abril; 30(4).Reyes M, Torres A, Esteban L, Flóres M, Angulo V. Riesgo de transmisión de la enfermedad de Chagas por intrusión de tratiatominos y mamiferos silvestres en Bucaramanga, Santander y Bogotá. Biomedica. 2017 Marzo; 37.Xavier S, Rodrigues A, Bilac D, Louzada V, da Costa S, Seixas E, et al. Distantiae Transmission of Trypanosoma cruzi: A New Epidemiological Feature of Acute Chagas Disease in Brazil. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2014 May; 8(5).Dario M, Silva M, da Silva J, da Chagas S, D'Andrea P, Rodriguez A, et al. Ecological scenario and Trypanosoma cruzi DTU characterization of a fatal acute Chagas disease case transmitted orally (Espírito Santo state, Brazil). Parasites & Vectors. 2016; 9.Kjos S, Snowden K, Creig T, Lewis B, Ronald N, Olson J. Distribution and characterization of canine Chagas. Veterinary parasitology. 2008 Diciembre; 152.Deane. Double development cycle of Trypanosoma cruzi in the Opossum. Parasitology today. 1986; 2(5).Turriago C, Vallejo G, Guhl F. Seroprevalencia de Trypanosoma cruzi en perros de dos áreas endémicas de Colombia. Revista Med. 2008 Marzo; 16(1)Reyes L, Silesky E, Cerdas C, Chinchilla M, Guerrero O. Presencia de anticuerpos contra Trypanosoma cruzi en perros de Costa Rica. Parasitol Latinoam. 2002; 57.Schweigmann N, al. e. Estudio de la prevalencia de la infección por Trypanosoma cruzi en zarigüeyas (Didelphis albiventris) en Santiago de Estero, Argentina. Rev Panam Salud Publica. 1999; 6(6).Urdaneta-Morales S, Nironi L. Trypanosoma cruzi in the anal glands of urban opossums I-Isolation and experimental infections. Mem Inst Oswaldo Cruz. 1996 Agosto; 91(4. Carreira. Histopaologycal study of experimental and natural infections by T. cruzi in Didelphis marsupialis. Mem inst Oswaldo Cruz. 1996 Octubre; 91(5).Jansen A, Carreira J, Deane M. Infection of a mammal by monogenetic insect trypanosomatids (kinetoplastida, trypanosomatidae). Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1988 September; 83(3)Flores-Chávez M, de Fuentes I, Gárate T, Cañavate C. Diagnóstico de laboratorio de la enfermedad de Chagas importada. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2006; 25(3).Vega S, Naquira C. Manual de procedimientos de laboratorio para el diagnóstico de la tripanosomiosis americana (enfermedad de Chagas). Primera ed. Salud MdSyINd, editor. Lima: Ministerio de Salud y Instituto Nacional de Salud; 2005.Vallejo G, Guhl F, Chiari E, Macedo A. Species specific detection of Trypanosoma cruzi and Trypanosoma rangeli in vector and mammalian host by polymerase chain reaction amplification of kinetoplast minicircle DNA. Acta Tropica. 1999 Octubre; 72.. Teixeira A, Hecht M, Guimaro M, Sousa A, Nitz N. Pathogenesis of Chagas's Disease: Parasite persistence and autoinmunity. Clinical Microbiology Reviews. 2011 Julio; 24(3)Melo M, Moreira O, Tenório P, Lorena V, Lorena-Rezende I, Oliveira W, et al. Usefulness of real time PCR to quantify parasite load in serum samples from chronic Chagas disease patients. Parasites & Vectors. 2015; 8.Health TCfFS&P, Biologics IfICiA. Enfermedad de Chagas. 2010. Folleto.Miqueles C. Rendimiento del xenodiagnóstico y reacción en cadena de la polimerasa en la detección de Trypanosoma cruzi en deyecciones de triatominos. Tesis. Santiago de Chile: Universidad de Chile, Facultad de ciencias veterinarias y pecuarias; 2005.Villamil-Gómez W, Echeverría L, Ayala M, Mejia L, Eyes-Escalante M, VenegasHermosilla J, et al. Orally transmitted acute Chagas disease in domestic travelers in Colombia. Journal of Infection and Public Health. 2016 Mayo.Cucunubá Z, Okuwoga O, Basáñez MG, Nouvellet P. Increased mortality attributed to Chagas disease: a systematic review and meta-analysis. Parasites & Vectors. 2016; 9(42).. Zetun C, Lucheis S, Troncarelli M, Langoni H. Infeccao por Trypanosoma cruzi em animail silvestres procedentes de zoológicos do estado de Sao Paulo. Veterinaria e zootecnia. 2014 Marzo; 21(1).Mejia A, Triana O. Análisis por LSSP-PCR de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi en sangre y órganos de ratones. Biomédica. 2005 Enero; 25Guhl F, Vallejo G. Interruption of Chagas disease transmission in the Andean Countries: Colombia. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999 Agosto; 94(1).. Hernández C, Salazar C, Brochero H, Teherán A, Buitrago L, Vera M, et al. Untangling the transmission dynamics of primary and secondary vectors of Trypanosoma cruzi in Colombia: parasite nfection, feedng sources and discrete typing units. Parasites & Vectors. 2016.Cucunubá Z, Cárdenas A, Pavia P, Montilla M, Aldana R, Villamizar K, et al. Prevalence and risk factors for Chagas disease in preagnant women in Casanare, Colombia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2012; 87(5)Manrique-Abril D, Manrique-Abril F, Lorca M, Ospina J. Prevalencia de anticuerpos para Trypanosoma cruzi en caninos de dos municipios endémicos de Boyacá. Rev. MVZ Córdoba. 2011 Junio; 17(1).Guhl F, Aguilera G, Pinto N, Vergara D. Actualización de la distribución geográfica y ecoepidemiológica de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia. Biomédica. 2007 Junio; 27(1).Vásquez L, Galvao C, Pinto N, Granados H. Primer registro de Triatoma nigromaculata (Stal, 1859) (Hemiptera, Reduviidae, Triatominae) para Colombia. Biomédica. 2005 Mayo; 25.Moncayo A. Chagas disease: Current epidemiological trends after the interruption of vectorial and transfusional transmision in the Southern Cone countries. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2003 Julio; 98(5).Angulo V, Esteban L. Nueva trampa para la captura de triatominos en hábitats silvestres y peridomésticos. Biomédica. 2011; 3(I).Herrera L. Trypanosoma cruzi, the causal agent of Chagas disease: boundaries between wild and domestic cycles in Venezuela. Frontiers in Public Health. 2014 Noviembre; 2. Guhl F, Restrepo M, Angulo V, Antunes C, Campbell-Lendrum D, Davies C. Lessons from an national survey of Chagas disease transmission risk in Colombia. TRENDS in parasitology. 2005 Junio; 21(6).Gomez A, Monteon V. Algunos aspectos de la organización y regulación genética en Trypanosoma cruzi: el agente etiológico de la enfermedad de Chagas. Revista Latinoamericana de Microbiología. 2008 Diciembre; 50(3).Toso A, Vial F, Galanti N. Transmisión de la enfermedad de Chagas por vía oral. Rev Med Chile. 2011 Noviembre; 139.Carlos N. "Evaluación de potenciales reservorios silvestres de Trypanosoma sp. en cuatro localidades de cuatro localidades de los departamentos de Amazonas y Loreto. Trabajo de grado para el título de maestría. Lima: Universidad Nacional Mayor de San Marcos; 2015Teixeira D, Benchimol M, Crepaldi P, de Souzza W. Atlas didáctico ciclo de vida do Trypanosoma cruzi. Primera ed. Teixeira D, Benchimol M, Crepaldi P, de Souzza W, editors. Rio de Janeiro: Fundacao CECIERJ; 2011.Lima V, Mangia R, Carreira J, Marchevsky R, Jansen A. Trypanosoma cruzi: Correlations of biological aspects of the life cycle in mice and triatomines. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999 Junio; 94(3).Alessio G. Performance of TcI/TcVI/TcII Chagas-Flow ATE-IgG2a for universal and genotype-specific serodignosis of Trypanosoma cruzi infection. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASE. 2017 Marzo; 11(3).Souto R, Fernandes O, Macedo A, Campbell D, Zingales B. DNA markers define two major phylogenetic lineages of Trypanosoma cruzi. Molecular and biochemical parasitology. 1996 September; 83.Pinto A, de Lana M, Britto C, Bastrenta B, Tibayrene M. Experimental Trypanosoma cruzi biclonal infection in Triatoma infestans: detection of distinct clonal genotypes using kinetoplast DNA probes. International Journal for Parasitology. 2000 April; 30Ocaña-Mayorga S, Llewellyn M, Costales J, Miles M, Grijalva M. Sex, subdivision and Domestic Dispersal of Trypanosoma cruzi Lineage I in Southern Ecuador. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 November; 4(12).. Macedo A, Oliveira R, Pena S. Chagas disease: Roll of parasite genetic variation in pathogenesis. Expert reviews in molecular medicine. 2002 March.. Pavia P. Caracterización moelcular del elemento repetido disperso pequeño, SIRE, en las seis Unidades Discretas de Tipificación (DTU) de Trypanosoma cruzi y si aplicación en una prueba de PCR. Tesis de Doctorado. Bogotá D.C: Pontificia Universidad Javeriana, Facultad de Ciencias; 2011.Sierra V. IDENTIFICACIÓN DE UNIDADES DISCRETAS DE TIPIFICACIÓN (DTU'S) DE Trypanosoma cruzi EN MARSUPIALES (Didelpahis marsupialis, Didelphis virginianus, Philander oppossum) PRESENTES EN LA RESERVA ECOLÓGICA "EL ZAPOTAL" EN EL ESTADO DE CHIAPAS. Trabajo de grado de maestría. México: Universidad Autonoma del estado de México; 2016.Briones M, Souto R, Stolf B, Zingales B. The evolution of two Trypanosoma cruzi subgroups inferred from rRNA genes can be correlated with the interchange of American mammalian faunas in the Cenozoic and has implications to pathogenicity and host specificity. Molecular and biochemical parasitology. 1999; 104.Zingales B, Miles M, Campbell D, Tibayrenc M, Macedo A, Teixeira M, et al. The revised Trypanosoma cruzi subespecific nomenclature: Rationale, epidemiological, relevance and research applications. Infection, Genetics and Evolution. 2012 December; 12.Arner. Database of Trypanosoma cruzi repeated genes: 20.000 additional gene variants. BioMed Central. 2007 October; 8Nantylya V. Trypanosomiasis in domestic animals: the problem of diagnosis. Rev. sci. tech. Off. int. Epiz. 1990; 9(2). Sturm N, Campbell D. Alternative lifestyles: The population structure of Trypanosoma cruzi. Acta Tropica. 2010 August; 115.Aliaga C, Breniere S, Barnabé C. Further interest of miniexón multiplex PCR for a rapid typing of Trypanosoma cruzi. Infection, Genetics and Evolution. 2011 November; 11.Tibayrenc M, Ward P, Moya A, Ayala F. Natural populations of Trypanosoma cruzi, the agent of Chagas disease, have a complex multiclonal structure. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1986 January; 8Tibayrenc M, Ayala F. The clonal theory of parasitic protozoa: 12 years on. TRENDS in Parasitology. 2002 September; 18(9).Westenberger S, Barnabé C, Campbell D, Sturm N. Two hybridation events define the population structure of Trypanosoma cruzi. Genetics Society of Americaa. 2005 June; 171Subileau M, Barnabé C, Douzery E, Diosque P, Tibayrenc M. Trypanosoma cruzi: New insights on ecophylogeny and hybridization by multigene sequencing of three nuclear and one maxicircle genes. Experimental Parasitology. 2009 April; 122Lenne S, Pedroso A, e Ferreira R, Briones M, Zingales B. Network genealogy of 195- pb satellite DNA supports the superimposed hybridization hypothesis of Trypanosoma cruzi evolutionary pattern. Infection, Genetics and Evolution. 2010 April; 10.Vallejo G, Carranza J, Ortiz P, Sanchez , Rodriguez B, Rivera F, et al. La interacción entre Tripanosomas y Triatominos: Aspectos evolutivos y epidemiológicos. Universidad de los Andes. 2005 MayoDa Silveira A, de Lana M, Britto C, Bastrnta B, Tibayrenc M. Experimental Trypanosoma cruzi biclonal infection in Triatoma infestans; detection of distinc clonal genotypes using kinetoplasto DNA probes. International Journal for Parasitology. 2000 April; 30(843-848)Burgos J, Diez M, Vigliano C, Bisio M, Risso M, Duffy T, et al. Molecular identification of Trypanosoma cruzi Discrete Typing Units in End-Stage Chronic Chagas Heart Disease and Reactivation after Heart Transplantation. Clinical Infectious Diseases. 2010 July; 51(5)Martínez-Calvillo S, Vizuet-de-Rueda J, Florencio-Martínez L, Manning-Cela R, Figeroa-Angulo E. Gene expression in trypanosomatid parasites. Journal of biomedicine and biotechnology. 2009 November.Pavia P, Montilla M, Flórez C, Herrera G, Ospina J, Manrique F, et al. Reporte del primer caso de enfermedad de Chagas transplacentaria analizado por AP-PCR en Moniquirá, Boyacá. Biomédica. 2009 Junio; 29(513-522).. Mendoca C, Pamplona L, Moreira R, Barbosa S, Xavier S, Jansen A, et al. Domestic, peridomestic and wild hosts in the transmission of Trypanosoma cruzi in the Caatinga área colonised by Triatoma brasiliensis. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2014 November; 109(7).Acosta N, Lopez E. Reservorios mamíferos del Trypanosoma cruzi en Paraguay. Mem. Inst. Investig. Cienc. Salud. 2013 December; 9(2).Gunter S, Brown E, Gorchakov R, Murray K, Garcia M. Sylvatic transmission of Trypanosoma cruzi among domestic and wildlife reservoirs in Texas, USA: A review of the historical literature. Zoonoses and Public Health. 2016 March.Curtis-Robles R, Lewis B, Hamer S. High Trypanosoma cruzi infection prevalence associated with minimal cardiac pathology among wild carnivores in central Texas. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. 2016 April; 5.Moreira F, Saab J, Lopes F, Miraglia H, de Miranda G, Jansen A. Complexity and multi-factoriality of Trypanosoma cruzi sylvatic cycle in coatis, Nasua nasua (Procyonidae), and triatomine bugs in the Brazilian Pantanal. Parasites & Vectors. 2016; 9.Noireau F, Diosque P, Jansen A. Trypansoma cruzi: adaptation to its vectors and its hosts. Vet. Res. 2009 February; 40(26).Solis H, Carlos N. Reservorios silvestres de Trypanosoma cruzi en cuatro localidades de las regiones Amazonas y Loreto. Theorema. 2015 Abril; 2(2)Enciso C, Montilla M, Santacruz M, Nicholls R, Rodriguez A, Mercado M, et al. Comparación de la prueba de inmunofluorescencia indirecta un inmunoensayo enzimático y la prueba comercial Chagatek para la detección de anticuerpos antiTrypanosoma cruzi. Biomédica. 2004 Enero; 24(104-108).Jansen A, Santos A, Varella C, Cupolillo E, Mangia R, Fernandes O. The sylvatic cycle of Trypanosoma cruzi: a still unsolved puzzle. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1999; 94(1).Shikanai-yasuda M, Brisola C, Guedes L, Siqueira G, Barone A, Dias J, et al. Possible oral transmission of acute Chaga's Disease in Brazil. Rev. Inst. Med. trop. Sao Paulo. 1991 October; 33(5).Zingales B, Andrade S, Briones M, Campbell D, Chiari E, Fernandes O, et al. A new consensus for Trypanosoma cruzi intraespecific nomenclature: second revision meeting recommends TcI to TcVI. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2009 November; 104(7)Devera R, Fernandes O, Rodrigues J. Should Trypanosoma cruzi be called "cruzi" complex? A review of the parasite diversity and the potential of selecting population after in vitro culturing and mice infection. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2003 January; 98(1)Manrique-Abril F, Ospina J, G H, Florez A, Pavia P, Montilla M, et al. Diagnóstico de la enfermedad de Chagas en mujeres embarazadas y recién nacidos de Moniqurá y Miraflorez, Boyacá, Colombia. Infectio. 2013 Febrero; 17(1).Brisse S, Barnabé C, Tibayrenc M. Identification of six Trypanosoma cruzi phylogenetic lineages by random amplified polymorphic DNA adn multilocus enzyme electrophoresis. International Journal for Parasitology. 2000 Octubre; 30(35-44).Ramirez J, Guhl F, Rendon L, Rosas F, Marin-Neto J, Morillo C. Chagas cardiomyopathy manifestations and Trypanosoma cruzi genotypes circulating in chronic chagasic patients. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2010 November; 4(11).Sales-Campos H, Borges H, Pontes C, Pereira T, de Castilho A, Ramirez L, et al. Trypanosoma cruzi DTU TcII presents higher blood parasitism than DTU TcI in an experimental model of mixed infection. Acta Parasitológica. 2015 March; 60(3).Ramirez J, Duque M, Montilla M, Cucunubá Z, Guhl F. Natural and emergent Trypanosoma cruzi I genotypes revealed by mitochondrial (Cytb) and nuclear (SSU rDNA) genetic markers. Experimental parasitology. 2012; 132.Punukollu G, Gowda R, Khan I, Navarro V, Vasavada B. Clinical aspects of the Chaga's disease. International Journal of Cardiolofy. 2007 Junio; 115.Herrera C, Bargues D, Fajardo A, Montilla M, Triana O, Vallejo G, et al. Identifying four Trypanosoma cruzi I isolate haplotypes from differentFalla A, Herrera C, Fajardo A, Montilla M, Vallejo G, Guhl F. Haplotype identification within Trypanosoma cruzi I in Colombian isolates from several reservoirs, vectors and humans. Acta Tropica. 2009 December; 110Ramírez J, Duque M, Guhl F. Phylogenetic reconstrucion based on cytochrome b (Cytb) gene sequences reveals distinct genotypes within Colombian Trypanosoma cruzi I populations. Acta Tropica. 2011 April; 119.Ramirez J, Duque M, Montilla M, Cucunubá Z, Guhl F. Multilocus PCR-RFLP profiling in Trypanosoma cruzi I highlights an intraspecific genetic variation pattern. Infection, genetics and evolution. 2012; 12.Rueda M, Ramírez G, Osorio J. Aproximación a la biología de la zarigüeya común (Didelphis marsupialis). Boletín científico centro de museos-museo de historio natural. 2013 Diciembre; 17(2).Lozada S, Ramírez G, Osorio J. Características morfológicas de un grupo de zarigüeyas (Didelphys marsupialis) del Suroccidente Colombiano. Rev. Inv. Vet. Perú. 2015 Noviembre; 26(2).Ramírez G, Osorio J. Identificación de helmintos en zarigüeyas (Didelphis marsupialis) en el Suroccidente Colombiano. Revista Biosalud. 2014 Agosto; 13(1).Aponte J. Una revisión de la biología del Didelphis marsupialis y su relación con el mal de Chagas y la Leishmaniasis. Hipótesis: apuntes científicos uniandinos, número especial. 2013Grisard E, Carvalho-Pinto C, Scholz A, Toma H, Schlemper B, Steindel M. Trypanosoma cruzi infection in Didelphis marsupialis in Santa Catarina and Arvoredo Islands, Sourthern Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2000 December; 95(6).Curtis-Robles R, Snowden K, Dominguez B, Dinges L, Rodges S, Mays G, et al. Epidemiology and molecular typing of Trypanosoma cruzi in naturally-infected hound dogs and associated triatomine vectors in Texas, USA. PLoS NEGLECTED TROPICAL DISEASES. 2017 JanuaryCastillo R, Chou L, Quispe-Machaca V, Ancca-Juarez J, Malaga F, Bastos M, et al. The potential of canine sentinels for reemerging Trypanosoma cruzi transmission. Prev. Vet. Med. 2015 July; 120(0).Farfán-García A, Angulo-Silva V. Conducta alimentaria de poblaciones de Triatoma dimidiata (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) en una zona endémica y sus implicaciones epidemiológicas. Rev. Salud Pública. 2011 Febrero; 13(1).Tenney T, Curtis-Robles R, Snowden K, Hamer S. Shelter dogs as sentinels for Trypanosoma cruzi transmission across Texas, USA. Emerging Infectious Diseases. 2014 August; 20(8).Cañavate C, Cuadros J, Martínez-Ruiz R, Martín-Rabadán P. Procedimientos en Microbiología Clínica Cercenado E, Cantón R, editors. España: Seimc; 2009.Cardoso M, Reis-Cunha J, Bartholomeu D. Evasion of the inmune Response by Trypanosoma cruzi during acute infection. Frontiers in Inmunology. 2016 January; 6(659)Flores P, Rivadeneira V. Tratamiento parasitcida de la enfermedad de Chagas. Prosac. 2012; 8(1).Cummings K, Tarleton R. Rapid quantitation of Trypanosoma cruzi in host tissue by real-time PCR. Molecular & Biochemical Parasitology. 2003; 129(53-59).Bacal F, Silva C, Pires P, Mangini S, Fiorelli A, Stolf N, et al. Transplantation for Chagas' Disease: an overview of inmunosuppression and reactivation in the last two decades. Clin Transplant. 2010; 24Rodríguez-Morales O, Ballinas-Verdugo M, Alejandre-Aguilar R, Reyes P, ArceFonseca M. Trypanosoma cruzi connatal transmission in dogs with Chagas Disease: Experimental case report. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. 2011; 11(10).Urinovsky F, Salomone O, Córdoba R, Zazu A, Martínez A, Zlocowsky J, et al. Morbimortalidad de los pacientes con miocardiopatía chagásica y trasplante cardíaco. Experiencia inicial. Revista Argentina de Cardiología. 2003 Septiembre; 71(5).Vásquez C, Robledo S, Calle J, Triana O. Identificación de nuevos escenarios epidemiológicos para la enfermedad de Chagas en la región momposina, norte de Colombia. Biomédica. 2013; 33.Villalobos G, Martínez-Hernández F, de la Torre P, Laclette J, Espinoza B. Entomological indices, feeding sources, and molecular identification of Triatoma phyllosoma (Hemipter:Reduviidae) One of the main vectors of Chagas disease in the Istmo de Tehuantepec, Oaxaca, México. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2011; 85(3)Luquetti A. El diagnóstico de la enfermedad de Chagas. Diagnóstico serológico, xenodiagnósitco, hemocultivo, PCR y examen directo. Universidad de los Andes. 2005 Mayo.Piron M, Fisa R, Casamitjana N, López-Chejade P, Puig L, Vergés M, et al. Development of a real-time PCR assay for Trypanosoma cruzi detection in blood samples. Acta tropica. 2007 June; 103.. Dias E. Técnica do xenodiagnostico na molestia de Chagas. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 1940 Agosto; 35(2).. Duarte L, Flórez O, Rincón O, Gonzáles C. Comparación de siete pruebas diagnósticas para detectar infección por Trypanosoma cruzi en pacientes en fase crónica de la enfermedad de Chagas. Colombia médica. 2014 Junio; 45(2).Amanda R, Sá G, Dias K, Steindel K, Max G, Toledo J. Genotyping of Trypanosoma cruzi DTUs and Trypansoma rangeli groups in experimentally infected Rhodnius prolixus by PCR-RFLP. Acta Tropica. 2016 Enero.lab. W. Prueba de hemaglutinación indirecta para la detección de anticuerpos contra el Trypanosoma cruzi. 2000. Inserto de laboratorio.Alviarez Y, Lares M, Viettri M, Aguilar C, Herrera L, Elizabeth F. Estandarización de la técnica de aglutinación directa para el inmunodiagnóstico de la enfermedad de Chagas. Biomédica. 2014 Marzo; 34(308- 317).Cantillo-Barraza O, Gómez-Palacio A, Salazar D, Mejía-Jaramillo A, Calle J, Triana O. Biomédica Revista del Instituto Nacional de Salud. [Online].; 2010 [cited 2017 Septiembre 16. Available from: http://www.revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/272/461Cundinamarca AdLM. Alcaldía de La Mesa - Cundinamarca. [Online].; 2016 [cited 2017 Agosto 20. Available from: www.lamesacundinamarca.gov.co/información_general.shtmlSuárez A, Ramírez H. Los carnívoros terrestres y semiacuáticos continentes de Colombia// Guía de campo. Primera ed. Bogotá, Colombia: GRACOM ; 2015.Choi EH, Kwang S, Ihm C, Sohn YH. Rapid DNA extraction from dried blood spots on filter paper: Potential applications in biobanking. Osong Public Health Res Perspect. 2014 September; 5(6).Briceño D, Caballero G, Lares M, Viettri M, Medina M, Ferrer E. Diagnóstico inmunológico de la enfermedad de Chagas, a partir de muestras colectadas en papel filtro. Diagnóstico de la enfermedad de Chagas. 2012 Abril; 16(1).Folmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoek R. DNA primers for amplification of mitochondrial crytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology. 1994; 3(5).Martínez I, Nogueda B, Martínez-Hernández F, Espinoza B. Microsatellite and miniexón analysis of mexican human DTU I Trypanosoma cruzi strains and their susceptibility to Nifurtimux and Benznidazol. VECTOR-BORNE AND ZOONOTIC DISEASE. 2013; 13(3).sostenible Mdayd. Decreto No. 1376. 2013. Por el cual se reglamenta el permiso de recolección de especies silvestresLey 84 de 1989. Bogotá: Congreso de Colombia, Cundinamarca; 1989.Resolución número 8430 de 1993. Bogotá: Ministerio de salud, Cundinamarca; 1993.Padilla J. Situación actual de la enfermedad de Chagas en Colombia. Primer taller internacional sobre el control de la enfermedad de Chagas Universidad de los Andes. 2005 MayoQvarnstrom Y, Schijman A, Veron V, Aznar C, Steurer F, da Silva A. Sensitive and specific detection of Trypanosoma cruzi DNA in clinical specimens using a MultiTarget Real Time PCR approach. PLoS Neglected Tropical Diseases. 2012 July; 6(7Moreira O, Ramírez J, Velázquez E, Lima-Ferreira C, Guhl F, Sosa-Estani S, et al. Towards the establishment of a consensus real-time qPCR to monitor Trypanosoma cruzi parasitemia in patients with chronic Chagas disease cardiomyopathy: A substudy from the BENEFIT trial. Acta Tropica. 2013; 125(23-31).Travi B, Jaramillo C, Montoya J, Segura I, Zea A, Goncalves A, et al. Didelphis marsupialis, an important reservoir of Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi and Leishmania (Leishmania) chagasi in Colombia. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1994; 50(5).Crisante G, Rojas A, Teixeira M, Añez N. Infected dogs as a risk factor in the transmission of human Trypanosoma cruzi infection in western Venezuela. Acta Tropica. 2006 Junio; 98.Green M, Sambrook J. Molecular clonning: a laboratory manual. Cuarta ed. New York; 2012Association CB. Census of Marine Zooplankton. [Online].; 2009 [cited 2016 Septiembre 16. Available from: http://www.cmarz.org/barcode/protocols/barcode_cmarz_mtcoi_barcoding_protocol.ht mlBrisse S, Verhoef J, Tibayrenc M. Characterisation of large and small subunit rRNA and mini-exon genes futher supports the distinction of six Trypanosoma cruzi lineages. International Journal for Parasitology. 2001 April; 31Salud INd. Boletín epidemiológico. Página web. , Bogotá D.C; 2006-2017nstantáneas.. Triatomidos infectados con trypanosoma cruzi en Cuernavaca (Morelos), México. Pan Am. 1998; 3(3).Dujardin J, Henriksson J, Victoir K, Brisse S, Gamboa D, Arévalo J, et al. Genomic Rearrangements in Trypanosomatids: an alternative to the "One Gene" Evolutionary hypotheses? Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 2000 August; 95(4).Becerril M, Angeles-Pérez V, Noguez-García J, Imbert-Palafox J. Riesgo de transmisión de Trypanosoma cruzi en el municipio de Metztitlán, Estado de Hidalgo, México, mediante la caracterización de unidades domiciliarias y sus índices entomológicos. Neotropical Entomology. 2010 October; 39(5).Guhl F. Memorias Primer Taller Internacional sobre el control de la Enfermedad de Chagas. Primera ed. Guhl F, editor. Bogotá D.C: Ediciones Uni Andes; 2005InfecciónEnfermedad de ChagasDidelphis marsupialisCaninosTriatominosHumanosDTUsORIGINALCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdfCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdfapplication/pdf4338182https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/1/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf8b2f97885740c6d033c8fbdeab619b26MD51open accessCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdfCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdfapplication/pdf363023https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/2/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf7f98613ff01557f8f933d221feb2593cMD52metadata only accessLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-814828https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/3/license.txt2f9959eaf5b71fae44bbf9ec84150c7aMD53open accessTEXTCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdf.txtCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdf.txtExtracted texttext/plain282782https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/4/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf.txt0f1d306bcaf7c96ae01a6a12c457c6edMD54open accessCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdf.txtCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdf.txtExtracted texttext/plain11https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/6/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf.txtba944ff29285b6ba1588d4cd55a618e0MD56metadata only accessTHUMBNAILCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdf.jpgCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg6971https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/5/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202.pdf.jpgc3c92ab80f72f850dc2b32c37c669f5bMD55open accessCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdf.jpgCaracterización de la variabilidad genética de Trypanosoma cruzi (DTUs) y su asociación con los 2 FORMATO DERECHOS DE AUTOR.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg5982https://repositorio.unicolmayor.edu.co/bitstream/unicolmayor/4776/7/Caracterizaci%c3%b3n%20de%20la%20variabilidad%20gen%c3%a9tica%20de%20Trypanosoma%20cruzi%20%28DTUs%29%20y%20su%20asociaci%c3%b3n%20con%20los%202%20FORMATO%20DERECHOS%20DE%20AUTOR.pdf.jpg7c7a6eaf33be7142a110201590bb8130MD57metadata only accessunicolmayor/4776oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/47762022-03-08 03:02:14.43An error occurred on the license name.|||https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/open accessBiblioteca Digital Unicolmayorrepositorio@unicolmayor.edu.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