Biorremediación de residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad colegio mayor de Cundinamarca
El presente proyecto de investigación tiene como objetivo biorremediar residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, utilizando microorganismos nativos. La metodología realizada incluyó un diagnóstico de los residuos generados para el...
- Autores:
-
Ariza Baron, Juan Camilo
Castellanos Sanchez, Jhon Smith
Ramirez Morales, Cristian Felipe
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2019
- Institución:
- Colegio Mayor de Cundinamarca
- Repositorio:
- Repositorio Colegio Mayor de Cundinamarca
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.unicolmayor.edu.co:unicolmayor/3604
- Acceso en línea:
- https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/3604
- Palabra clave:
- consorcio
microorganismos nativos
bioderremediación
microencapsulación
residuos peligrosos
- Rights
- closedAccess
- License
- Derechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019
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El presente proyecto de investigación tiene como objetivo biorremediar residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, utilizando microorganismos nativos. La metodología realizada incluyó un diagnóstico de los residuos generados para el primer periodo de 2018, seguido por el aislamiento e identificación de los microorganismos presentes en estos residuos y el uso los métodos de biorremediación usando consorcio, inmovilización y microencapsulación. Generándose de residuos de hipoclorito de sodio 302 L, de colorantes 112L, de ácidos 32L y de básicos 16L. Los cuales son considerados peligrosos por tener características corrosivas, reactivas, explosivas, tóxicas, inflamables e infecciosas, CRETII. Los microorganismos aislados fueron Staphylococcus sciuri, Burkholderia cepacia, Aeromonas Hydrophila, usados en consorcio microbiano y en microencapsulación, Corynebacterium aquaticum, el Aspergillus niger, usado en inmovilización fúngica y Penicillium spp. El método de inmovilización fúngica biorremedió en un 35.06% los residuos básicos en 192 h. El consorcio bacteriano en células libres biorremedió cristal violeta en un 72.78%, residuos de colorantes en un 32.78% y los residuos de hipoclorito en 100% en 192 horas, destacando al microorganismo Aeromonas hydrophila, el cual biorremedió el cristal violeta en 58.42% en 192 horas. El método de microencapsulación del consorcio bacteriano biorremedió en 45.52% los residuos básicos y en 100% los residuos de hipoclorito de sodio en 192 horas. El análisis ANOVA (95%) estableció que no hay diferencias significativas entre los métodos de biorremediación realizados (F= 1, 941; P= 0,199; gl = 2), concluyendo que sirven para el tratamiento de los residuos peligrosos generados. |
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Camacho Kurmen, Judith Elena88ec3d87924bea44fb175e7780652267Ariza Baron, Juan Camilod704129dc45bdfb75e01140249951870Castellanos Sanchez, Jhon Smitha43221a84d8506aaf7f1311cacfdac80Ramirez Morales, Cristian Felipe980283e0e6ced6d941a9f0572d8094262021-11-05T01:16:37Z2021-11-05T01:16:37Z2019https://repositorio.unicolmayor.edu.co/handle/unicolmayor/360460040El presente proyecto de investigación tiene como objetivo biorremediar residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, utilizando microorganismos nativos. La metodología realizada incluyó un diagnóstico de los residuos generados para el primer periodo de 2018, seguido por el aislamiento e identificación de los microorganismos presentes en estos residuos y el uso los métodos de biorremediación usando consorcio, inmovilización y microencapsulación. Generándose de residuos de hipoclorito de sodio 302 L, de colorantes 112L, de ácidos 32L y de básicos 16L. Los cuales son considerados peligrosos por tener características corrosivas, reactivas, explosivas, tóxicas, inflamables e infecciosas, CRETII. Los microorganismos aislados fueron Staphylococcus sciuri, Burkholderia cepacia, Aeromonas Hydrophila, usados en consorcio microbiano y en microencapsulación, Corynebacterium aquaticum, el Aspergillus niger, usado en inmovilización fúngica y Penicillium spp. El método de inmovilización fúngica biorremedió en un 35.06% los residuos básicos en 192 h. El consorcio bacteriano en células libres biorremedió cristal violeta en un 72.78%, residuos de colorantes en un 32.78% y los residuos de hipoclorito en 100% en 192 horas, destacando al microorganismo Aeromonas hydrophila, el cual biorremedió el cristal violeta en 58.42% en 192 horas. El método de microencapsulación del consorcio bacteriano biorremedió en 45.52% los residuos básicos y en 100% los residuos de hipoclorito de sodio en 192 horas. El análisis ANOVA (95%) estableció que no hay diferencias significativas entre los métodos de biorremediación realizados (F= 1, 941; P= 0,199; gl = 2), concluyendo que sirven para el tratamiento de los residuos peligrosos generados.INTRODUCCIÓN 14 OBJETIVOS 17 1. ANTECEDENTES 18 2. MARCO REFERENCIAL 27 2.1 Residuos peligrosos 27 2.1.1 Características de peligrosidad 27 2.1.2 Residuos generados en laboratorios de docencia 29 2.2 Colorantes 31 2.2.1 clasificación de los colorantes 31 2.3 Tinciones 32 2.3.1 Tinción de Gram 32 2.3.2 Tinción de Wright 34 2.3.3 Tinción de Ziehl – Neelsen 35 2.3.4 Tinción negativa 36 2.3.5 Tinción azul de lactofenol 37 2.4 Reactivos químicos 37 2.4.1 Reactivos ácidos 37 2.4.2 Reactivos básicos 37 2.4.3 Reactivos de hipoclorito de sodio 37 2.5 Técnicas de tratamiento para residuos 38 2.5.1. Digestión anaerobia 38 2.5.2 Compostaje 38 2.5.3 Biorremediación 39 2.5.4 Degradación enzimática 39 2.5.5 Remediación microbiana 40 2.5.6 Fitorremediación 40 2.6 Factores que afectan a la biorremediación 40 2.6.1 Temperatura 40 2.6.2 pH 41 2.6.3 Disponibilidad de oxígeno 41 2.6.4 Disponibilidad de nutrientes 41 2.6.5 Humedad 41 2.6.6 Otros factores 42 2.7 Biorremediación de colorantes 42 2.7.1 Biorremediación de cristal violeta 42 2.7.2 Biorremediación de verde de malaquita 43 2.8 Microencapsulación 47 2.8.1 Procesos de microencapsulación 47 2.8.2 Materiales usados en la microencapsulación 48 2.8.3 Microencapsulación con alginato de sodio 50 2.9 Inmovilización de células 50 2.9.1 Inmovilización sin soporte 50 2.9.2 Unión covalente 51 2.9.3 Adsorción 51 2.9.4 Captura 52 2.9.5 Membranas semipermeables 53 2.10 Degradación enzimática 53 2.11 Métodos para determinación de biomasa en procesos biológicos 54 2.11.1 Métodos directos 54 2.11.2 Métodos indirectos 56 2.11.3 Otros métodos 56 2.12 Métodos para determinar la concentración del colorante 56 2.12.1 DBO5 56 2.12.2 DQO 56 2.12.3 pH 57 2.12.4 Método espectrofotométrico 57 2.12.5 Carbono orgánico total (TOC) 57 2.12.6 Cromatografia de gases 57 2.12.7 Espectrofotometría de gases 58 2.12.8 Acoplamiento cromatografía de gases – espectrometría de masas 58 2.13 Marco legal 58 2.13.1 Resolución 01174 de 2002 58 2.13.2 Decreto 4741 de 2005 58 2.13.3 Resolución 0062 de 2007 59 2.13.4 Resolución 2115 de 2007 59 2.13.5 Resolución 043 de 2007 59 2.13.6 Resolución 1362 de 2007 59 2.13.7 Resolución 631 de 2015 59 3. DISEÑO METODOLOGICO 60 3.1 Tipo de estudio 60 3.1.1 Universo 60 3.1.2 Población 60 3.1.3 Muestra 60 3.2 Hipótesis 60 3.2.1 Variables e indicadores 60 3.3. Técnicas y procedimientos 61 3.3.1 Fase 1. Diagnóstico de los residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la universidad colegio mayor de Cundinamarca 61 3.3.2 Fase 2. Aislamiento e identificación de microorganismos presentes en los residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca 62 3.3.3 Fase 3. Biorremediación de los residuos generados utilizando diferentes métodos 64 4. RESULTADOS 69 4.1 Fase 1. Diagnóstico sobre la generación de residuos en los laboratorios de docencia de la universidad colegio mayor de Cundinamarca 69 4.2 Fase 2. Aislamiento e identificación de microorganismos nativos en los residuos peligrosos generados 77 4.2.1 Potencial de decoloración 83 4.3 Fase 3. Ensayos de Biorremediación 86 4.3.1 Biorremediación con inmovilización de hongo Aspergillus niger 86 4.3.2 Biorremediación de residuos peligrosos generados utilizando un consorcio bacteriano y microencapsulación del consorcio bacteriano en alginato de sodio 90 5. DISCUSIÓN 97 6. CONCLUSIONES 108 7. RECOMENDACIONES 110 8. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 111 9. ANEXOS 124PregradoBacteriólogo(a) y Laboratorista Clínico149p.application/pdfspaUniversidad Colegio Mayor de CundinamarcaFacultad de Ciencias de la SaludBogotá DCBacteriología y Laboratorio ClínicoDerechos Reservados - Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, 2019https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/info:eu-repo/semantics/closedAccessAtribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)http://purl.org/coar/access_right/c_14cbBiorremediación de residuos peligrosos generados en los laboratorios de docencia de la Universidad colegio mayor de CundinamarcaTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Textinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionJones JJ, Falkinham, JO. Decolorization of malachite green and crystal violet by waterborne pathogenic mycobacteria. 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