MICROPROPAGACIÓN DE ÑAME ESPINO (Dioscorea rotundata, POIR), CULTIVAR BOTÓN EN SISTEMA DE CULTIVO DOBLE FASE
El ñame espino (Dioscorea rotundata) es una de las 650 especies pertenecientes al género Dioscorea, ampliamente distribuidas en regiones tropicales de alta pluviosidad, donde exhibe su mayor diversidad, consolidándose como el grupo principal de plantas con flores de esta familia (Thurston, 1998). Es...
- Autores:
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Díaz Narváez, Lucía Candelaria
Polanco Ortega, Heberto
Carmona Wilches, Oscar Elías
Durango Ballesteros, Eder Dadner
Beltrán Herrera, Javier Darío
Suárez Padrón, Isidro Elías
- Tipo de recurso:
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- Fecha de publicación:
- 2019
- Institución:
- Corporación Universitaria del Caribe - CECAR
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- Repositorio Digital CECAR
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El ñame espino (Dioscorea rotundata) es una de las 650 especies pertenecientes al género Dioscorea, ampliamente distribuidas en regiones tropicales de alta pluviosidad, donde exhibe su mayor diversidad, consolidándose como el grupo principal de plantas con flores de esta familia (Thurston, 1998). Es originario de África occidental y actualmente distribuido por todos los trópicos. Esta especie no se conoce en estado silvestre y se cree que derivó de D. cayenensis, de la misma región. Las plantas pertenecientes a esta especie se caracterizan por poseer tubérculos llamados ñames, los cuales son una estructura del tallo modificado, cuya función es el almacenamiento de gránulos de almidón (Tejeda et al., 2007). En Colombia, las especies más cultivadas son Dioscorea alata o ñame criollo y D. rotundata o ñame espino, donde el 92% de la producción nacional se concentra en los departamentos de Sucre, Córdoba y Bolívar (Campo, 2011; Reina, 2012; Agronet, 2016). El ñame espino, por su parte, es un cultivo de pequeños y medianos agricultores de la Costa Caribe, el cual constituye la principal fuente de ingresos, de empleo rural, oferta de alimento para sus pobladores y un producto de exportación (Tejeda et al., 2007; Reina, 2012). |
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Acosta, R. y Beltrán, J. (2000). Estandarización de la técnica de micropropagación para la obtención masiva de plantas de ñame espino (D. rotundata) mediante el cultivo in vitro de segmentos nodales. (Tesis de pregrado). Universidad de Sucre. Sincelejo. Agronet. (2014). Anuario estadístico del sector agropecuario 2013. ISSN: 2346-4089. Agronet.______________________________(2016). Recuperado de: http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/default.aspx Amusa, N., Adegbite, A., Muhammed, S. y Baiyewu, R. (2003). Yam diseases and its management in Nigeria. Afr. J. Biotechnol, 2(12), 497-502. Ascough, G. y Fennell, C. (2004). The regulation of plant growth and deve-lopment in liquid culture. S. Afr. J. Bot, 70(2), 181-190. Bonilla, M. y Hernández, O. (2012). Propagación in vitro de ñame (Dioscorea spp.): Una perspectiva en la producción masiva de plántulas y conservación de germoplasma. Agron, 20(2), 65-76p. Borges, M., Destrade, R., Rodríguez, S., Kosky, R., Malaurie, Hamon, P. 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En Colombia, las especies más cultivadas son Dioscorea alata o ñame criollo y D. rotundata o ñame espino, donde el 92% de la producción nacional se concentra en los departamentos de Sucre, Córdoba y Bolívar (Campo, 2011; Reina, 2012; Agronet, 2016). El ñame espino, por su parte, es un cultivo de pequeños y medianos agricultores de la Costa Caribe, el cual constituye la principal fuente de ingresos, de empleo rural, oferta de alimento para sus pobladores y un producto de exportación (Tejeda et al., 2007; Reina, 2012).17 Páginasapplication/pdfspaCorporación Universitaria del Caribe - CECARSincelejo - Sucre ColombiaLibro b3619Biotecnología aplicada al sector agropecuario en el departamento de SucreAcosta, R. y Beltrán, J. (2000). Estandarización de la técnica de micropropagación para la obtención masiva de plantas de ñame espino (D. rotundata) mediante el cultivo in vitro de segmentos nodales. (Tesis de pregrado). Universidad de Sucre. Sincelejo.Agronet. (2014). Anuario estadístico del sector agropecuario 2013. ISSN: 2346-4089.Agronet.______________________________(2016). Recuperado de: http://www.agronet.gov.co/estadistica/Paginas/default.aspxAmusa, N., Adegbite, A., Muhammed, S. y Baiyewu, R. (2003). Yam diseases and its management in Nigeria. Afr. J. Biotechnol, 2(12), 497-502.Ascough, G. y Fennell, C. (2004). The regulation of plant growth and deve-lopment in liquid culture. S. Afr. J. Bot, 70(2), 181-190.Bonilla, M. y Hernández, O. (2012). Propagación in vitro de ñame (Dioscorea spp.): Una perspectiva en la producción masiva de plántulas y conservación de germoplasma. Agron, 20(2), 65-76p.Borges, M., Destrade, R., Rodríguez, S., Kosky, R., Malaurie, Hamon, P. Y Demenorval, L. (2011). Optimización de un medio de cultivo para plantas micropropagadas de Dioscorea alata L. Rev. Col. Biot, 13(2), 221-228p.Borges, M., Meneses, S., Aguilera, N. y Vazquez, J. (2004). Regeneration and multiplication of Dioscorea alata germplasm maintained in vitro. Plant Cell Tissue Organ Cult, 76, 87-89.Cabrera, M. (2009). Empleo de métodos biotecnológicos para la propagación de ñame. Biot. Veg, 9(4), 195-209.Campo, R. (2011). Manejo integrado de la antracnosis (colletotrichum spp.) en ñame (Dioscorea alata), mediante el uso de alternativas para reducir el inoculo primario, la dispersión y el establecimiento del patógeno. Recuperado el 7 de junio de 2016.Recuperado de: http://web.www3.unicordoba.edu.co/sites/default/files/Infor me%20Final%20FCA%2003-08%20Rodrigo%20Campo%20Ara-na.pdfChu, E. y Figuereido, R. (2002). Growth and cabohydrate hanges in shoot cultures of Dioscorea species as influenced by photoperiod, exo-genous sucrose and cytokinin concentractions. Plant. Cell. Tissue. Organ. Cult. 70(1), 241-249.Debergh, P. (1983). Effects of agar brand and concentration on the tissue culture medium. Physiol. Plant, 59(1), 270–576.Díaz, L., Carmona, O., y Beltrán, J. (2015). Optimización de la conservación in vitro de germoplasma de Dioscorea spp por crecimiento mínimo. Rev. colomb. Biotecnol. 17(1), 32-39.Domíngues, Sh., Meneses, R., Aparecida, T. y Scherwinski, J. (2013). A new procedure for in vitro propagation of vanilla (Vanilla planifolia) using a double-phase culture system. Sci Hortic, 161, 204-209.Fundación PROCARIBE. (2012). Guía práctica para el manejo orgánico de cultivo de ñame tipo exportación. Recuperado el 15 de agosto 2016. Recuperado de: https://issuu.com/swissaid-ko/docs/cartilla__ame_julio_2012Gawel, N. y Robacker, C. (1990). Somatic embryogenesis in two Gossypium hirsutum genotypes on semisolid versus liquid proliferation media. Plant. Cell. Tissue. Org. Cult, 23(1), 201–204.Instituto Colombiano Agropecuario (ICA). (2009). Exportadores de ñame de la mano del ICA. Recuperado el 25 de junio de 2016. Recueperado de: http://www.ica.gov.co/Noticias/Agricola/2009/Exportado-res-de-name-de-la-mano-del-ICA.aspxMarín, E., Vargas, T. y Oropeza, M. (2012). Variabilidad genética y anatomía foliar comparada de plantas de Dioscorea alata mantenidas en cultivo in vitro. Interciencias, 37(6), 477-483.Medero, V., Del Sol, L., García, M., López, J. y Rodríguez, S. (1999). Metodología para la propagación del clon de ñame “Blanco o Pelú”. Resúmenes de BIOCAT99, Granma Cuba, pp. 12.Mendiburu, F. (2016). Agricolae: Statistical Procedures for Agricultural Research. R package version 1.2-4. http://CRAN.R-project.org/package=agricolaePlan General de Asistencia Técnica Municipio de Chalán. (2013). Recuperado de: http://chalan-sucre.gov.co/apc-aa-fi-les/66313336653063613665666139613230/documento-plan-gene-ral-de-asistencia-tecnica-pgat.pdfPreil, W. (2005). General introduction: a personal reflection on the use of liquid media for in vitro culture. En: A. 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