Acompañamiento en la micropropagación de especies promisorias para la ejecución del programa de silvicultura urbana desarrollado bajo el convenio entre la alcaldía de san José de Cúcuta y la universidad Francisco de Paula Santander.

En esta investigación se relacionan los procesos para la micro propagación de tres especies leñosas de importancia en los proyectos de silvicultura desarrollados por la alcaldía de San José de Cúcuta con el acompañamiento de la Universidad Francisco de Paula Santander. Dentro de las especies sugerid...

Full description

Autores:: Gutiérrez Flórez, Arley Andrés

Tipo de recurso:: Trabajo de grado de pregrado

Fecha de publicación:: 2023

Institución:: Universidad Francisco de Paula Santander

Repositorio:: Repositorio Digital UFPS

Idioma:

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description	En esta investigación se relacionan los procesos para la micro propagación de tres especies leñosas de importancia en los proyectos de silvicultura desarrollados por la alcaldía de San José de Cúcuta con el acompañamiento de la Universidad Francisco de Paula Santander. Dentro de las especies sugeridas para micro propagar según su comportamiento in vitro se sugirió trabajar con Chicalá (Tecoma Stans) Lluvia de oro (Cassia fistula) y Acacia Amarilla (Senna siamea) dada su capacidad de respuesta para los procesos de germinación alcanzándose porcentajes de germinación de hasta un 83 % cuando las semillas se sometieron a un pretratamiento de imbibición más escarificación con ácido sulfúrico al 97 %, el medio de cultivo que permitió una mejor respuesta morfo génica de los explantes en las fases de establecimiento y multiplicación fue el denominado T7 (MS al 100 % suplementado con 3â€¯mg/L de 6-BAP+1â€¯mg/l de ANA) en este la especie que mejor respuesta en formación de brotes, hojas y crecimiento fue Chicalá y la especie con menor rendimiento fue Lluvia de oro.
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Dentro de las especies sugeridas para micro propagar según su comportamiento in vitro se sugirió trabajar con Chicalá (Tecoma Stans) Lluvia de oro (Cassia fistula) y Acacia Amarilla (Senna siamea) dada su capacidad de respuesta para los procesos de germinación alcanzándose porcentajes de germinación de hasta un 83 % cuando las semillas se sometieron a un pretratamiento de imbibición más escarificación con ácido sulfúrico al 97 %, el medio de cultivo que permitió una mejor respuesta morfo génica de los explantes en las fases de establecimiento y multiplicación fue el denominado T7 (MS al 100 % suplementado con 3â€¯mg/L de 6-BAP+1â€¯mg/l de ANA) en este la especie que mejor respuesta en formación de brotes, hojas y crecimiento fue Chicalá y la especie con menor rendimiento fue Lluvia de oro.Contenido Introducción 1 1. El problema 4 1.1 Título 4 1.2 Planteamiento del problema 4 1.3 Formulación del problema 5 1.4 Justificación 5 1.5 Objetivos 6 1.5.1. Objetivo General 6 1.5.2. Objetivos Específicos 6 1.6 Alcances y delimitación 7 1.6.1. Espacial 7 1.6.2. Temporal 7 1.6.3. Conceptual 7 2. Marco Referencial 8 2.1 Antecedentes 8 2.2 Marco teórico 11 2.2.1. Acacio rojo 11 2.2.2 Cañahuate 12 2.2.3 Moringa 13 2.2.4 Samán 14 2.2.5. Urapo 15 2.3. Marco Legal 15 2.4 Marco Contextual 17 3.Metodología. 18 3.1 Tipo de investigación 18 3.2. Fases o etapas. 18 3.3 Fase 0. Determinación de especie 20 3.3.1 Revisión Bibliográfica 21 3.3.2 Selección y tratamiento del material vegetal. 21 3.3.2.1Obtención de Semillas 21 3.3.2.2Pretratamiento de las semillas 23 3.4. Fase 1. Diseño de protocolos para la etapa de germinación in vitro. 25 3.4.1 Desinfección de semillas para la siembra In vitro 26 3.4.2 Germinación In vitro de semillas. 27 3.4.3. Cálculos para el porcentaje de germinación y porcentaje de contaminación.30 3.4 Fase 2: Establecimiento del material vegetal. 31 3.6 Fase 3: Influencia hormonal en la etapa de multiplicación. 34 3.6.1 Organogénesis Directa. 34 3.6.2Organogénesis indirecta. 36 3.7 Técnicas de análisis de procesamiento de la información. 37 4.Resultados y análisis. 38 4.1 Fase 0: Determinación de las especies. 38 4.1.1 Revisión Bibliográfica. 38 4.1.2Selección y tratamiento del material vegetal 40 4.1.2.1Obtención de semillas 40 4.1.2.2Pretratamientos de las semillas 41 4.2 Fase 1. Diseño de protocolos para la etapa de germinación in vitro 43 4.2.1 Desinfección de las semillas para la siembra in vitro 43 4.2.2 Germinación in vitro de semillas. 45 4.2.2.1Germinación de lotes iniciales. 45 4.2.2.2 Germinación de lotes finales. 47 4.3 Fase 2: Establecimiento del material vegetal. 52 4.3.1 Respuesta morfogenética del explante. 53 4.4 Fase 3: Influencia hormonal en la etapa de multiplicación. 58 4.4.1 Organogénesis directa 58 4.4.2 Organogénesis indirecta. 60 Conclusiones 69 Recomendaciones 72 Referencias 73 Anexos 87Archivo Medios ElectrónicosPregradoIngeniero(a) Biotecnológico(a)application/pdfUniversidad Francisco de Paula SantanderFacultad de Ciencias Agrarias y del AmbienteIngeniería Biotecnológicahttp://catalogobiblioteca.ufps.edu.co/cgi-bin/koha/opac-retrieve-file.pl?id=2674a9addb98dffae1213fe4f29ec812Acompañamiento en la micropropagación de especies promisorias para la ejecución del programa de silvicultura urbana desarrollado bajo el convenio entre la alcaldía de san José de Cúcuta y la universidad Francisco de Paula Santander.Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttp://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionEspecies LeñosasMedio de CultivoMicropropagaciónRespuesta MorfogénicaSilvicultura.Plantas leñosasÃrbolesCultivoAbedini, W., Boeri, P., Marinucci, L., Ruscitti, M. & Scelzo, L. (2000). Biotécnicas aplicadas a especies forestales nativas. Invest. Agr.: Sist. Recur. For, 9 (1), 31-43 Recuperado de: https://revistas.inia.es/index.php/fs/article/view/653/650Agrawal, V., & Sardar, P. (2006). In vitro propagation of Cassia angustifolia through leaflet and cotyledon derived calli. Biologia Plantarum, 50(1), 118–122. doi:10.1007/s10535-005-0084-8Apostolo, N., Larraburu, E., Gil, M., Zapater, M. & Llorente, B. (2016). In vitro and ex vitro germination of three Handroanthus species (Bignoniaceae). Bonplandia, 25(1), 5-15. Doi: http://dx.doi.org/10.30972/bon.2511267Areft, I., Atta, H., Shahrani, T. & Mohamed, A. (2011). Effect of seed pretreatment and seed source on germination of five Acacia Spp. African Journal of Biotechnology, 10(71), 15901-15910.Doi: https://doi.org/10.5897/AJB11.1763Avila, J., Muñoz, J., Pérez, E., Rodríguez, A. & Morales, J. (2017). In vitro propagation from bud and apex explants of Moringa oleifera and evaluation of the genetic stability with RAMP marker. South African Journal of Botany, 108(1), 149–156. Doi: 10.1016/j.sajb.2016.10.003Bhojwani, S., & Dantu, P. (2013). Micropropagation. Plant Tissue Culture: An Introductory Text. 1(1), 245–274. Doi: 10.1007/978-81-322-1026-9_17Calaza, P., Cariñanos, F., Escobedo, J., & Tovar, G. (2018). Crear paisajes urbanos e infraestructuras verdes. Unasylva. 9(250), 11-21. Recuperado de: https://www.fao.org/3/I8707ES/i8707es.pdfCañedo, B. Pérez, M. & Pérez, E. (2000). Somatic embryogenesis and plant regeneration in Acacia farnesiana and A. schaffner. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 36(1), 268-272. Recuperado de: https://www.researchgate.net/publication/225423687_Somatic_embryogenesis_and _plant_regeneration_in_Acacia_farnesiana_and_A_schaffneriCarrero, M., Ramírez, A. & Suárez, N. (2020). SIGARB: Visor geográfico para la selección de especies vegetales adecuadas para la plantación, teniendo en cuenta los del manual de silvicultura urbana para Bogotá. Lineamientos caso de estudio: emplazamiento vías tipo 1, 2 y 3. Trabajo de Especialización en Sistemas de Información Geográfico, Universidad francisco José de Caldas, Bogotá. Recuperado de: https://repository.udistrital.edu.co/handle/11349/27919Carvajal, E. (2006). Manual de fundamentos y metodología para la identificación de las familias botánicas de las especies arbóreas de San José de Cúcuta. Flora urbana de Colombia blog. Recuperado de: https://drive.google.com/file/d/1ewNKzSWubK06F2_Sn70H32AxopLq8A7j/viewCarvajal, E. (2020). Ficha de taxonomía: especies arbóreas de flora urbana de San José de Cúcuta. flora urbana de Colombia blog. Recuperado de: https://drive.google.com/file/d/1xH5ZFQpasWHTU1zC8f009O109t18oqE0/viewCarvajal, E., & Morales, S. (2021). descripción y taxonomía de especies arbóreas y ornamentales ubicadas en la zona verde pública de San José de Cúcuta y el área metropolitana. flora urbana de Colombia blog. Disponible en: https://drive.google.com/file/d/1eEXPWMxlzb3Ehi4a8YVxb9x9FphAjnPt/viewCarvajal, E., Figueroa, W., & Ferreira, Y. (2017). Caracterización palinológica preliminar de las especies arbóreas de San José de Cúcuta. Editorial académica española, Saarbrücken.Cavalcante, P., Houllou, L., Alves, G., Torres, G., Souza, R., Souza, K. & Gregório, S. (2015). Desenvolvimento in vitro de diferentes explantes de Trapiá (Crataeva tapia L). Journal of Environmental Analysis and Progress, 5(5), 41-47. Recuperado de: https://www.researchgate.net/publication/348236612_DESENVOLVIMENTO_IN_ VITRO_DE_DIFERENTES_EXPLANTES_DE_TRAPIA_Crataeva_tapia_LCorozo, L., Eduardo, H., Macías, F., Vásquez, B., Pinargote, B., Cobeña, G., Mendoza, A., & Arteaga, F. (2020). Micropropagación de dos variedades ecuatorianas de yuca (Manihot esculenta CRANTZ). Chilean journal of agricultural & animal sciences, 36(3), 224-232. Doi: https://dx.doi.org/10.29393/chjaas36-21mdlc80022Da Oliveira, M. (2007). Germinaçãon in vitro de Parkinsonia aculeata l: uma espécie de uso múltiplo ocurrente nas matas ciliares da catinga. Master en botánica. Universidades rurale da Pernambuco. Recuperado de: http://www.tede2.ufrpe.br:8080/tede2/handle/tede2/4889De Araújo, J. & De Aguiar, I. (2000). Germinative pretreatments to dormancy break in Guazuma ulmifolia Lam. seeds. Forest Sciences, 1(58), 15-24. Recuperado de: http://hdl.handle.net/11449/66380Díaz, M., Rodas, J., González, Luis., & Vera, M. (2020). Establecimiento in vitro de segmentos nodales de Handroanthus heptaphyllus de flores blancas. Biotecnología Vegetal. 20(3), 203-210. Recuperado de: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2074-86472020000300203El-Nagish, A., Hassanein, A., Salem, J. & Faheed, F. (2019). Some important aspects in Moringa oleifera Lam. Micropropagation. Acta Agriculturae Slovenica, 113(1), 13- 27. Doi:10.14720/aas.2019.113.1.02Fernández, P. & Diaz, P. (2002). Investigación cuantitativa y cualitativa. p. 1. Tomado de: https://ocw.unican.es/pluginfile.php/355/course/section/154/Tema%25208.pdfGantait, S., Kundu, S. & Das, P. (2018). Acacia: An exclusive survey on in vitro propagation. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 17(2), 163–177.Doi: 10.1016/j.jssas.2016.03.004García, D., Ocampo, M. & Mesa, N. (2015). Estandarización del protocolo de desinfección para la micropropagación de Aspidosperma polyneuron. Revista Colombiana de Biotecnología. 17(2), 76–84. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v17n2.54277García, J., & Islas, C. (2018). Recursos arbóreos y arbustivos tropicales para una ganadería bovina sustentable. Recuperado de: https://www.researchgate.net/profile/PedroCisnerosSaguilan/publication/333117874_Samanea_saman_Jacq_Merr/links/5cdc51949285 1c4eaba35d51/Samanea-saman-Jacq-Merr.pdfGutiérrez, E. (2021). Potencial de aprovechamiento de Tabebuia rosea Bertol (Bertero) Ex. A. DC. en Quintana Roo. Tesis de grado para optar por el título de Licenciado en manejo de recursos naturales, Universidad de Quintana Roo, México. Disponible en: http://192.100.164.85/handle/20.500.12249/2734Heikrujam, M., Kumar, D., Kumar, S., Gupta, S. & Agrawal, V. (2014). High efficiency cyclic production of secondary somatic embryos and ISSR based assessment of genetic fidelity among the emblings in Calliandra tweedii (Benth.). Scientia Horticulturae, 177(1), 63–70. Doi: 10.1016/j.scienta.2014.07.036Hernández, M. (2014). Identificación de genes implicados en el desarrollo de meristemos inducidos por benciladenina en tejidos de Pinus spp. Tesis para optar por el título de Máster Universitario en Biotecnología Aplicada a la Conservación y Gestión Sostenible de Recursos Vegetales, Universidad de Oviedo, España. Recuperado de: https://digibuo.uniovi.es/dspace/handle/10651/27967Herrera, D., León, J., Ruiz, M., Osorio, N., Correa, R., & Uribe, A. (2014). Evaluación de requerimientos nutricionales en vivero de especies tropicales empleadas en silvicultura urbana. Revista EIA, (21), 41-54. Recuperado de: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1794- 12372014000100004&lng=en&tlng=esHerrera, J. (2013). Investigación cuantitativa. P. 30. Tomado de: https://juanherrera.files.wordpress.com/2008/11/investigacion-cuantitativa.pdfHussain, A., Anis, M. & Alatar, A. (2019). Efficient in Vitro Regeneration System for Tecoma stans L., Using Shoot Tip and Assessment of Genetic Fidelity Among Regenerants. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences, 90(1), 171-178. Doi:10.1007/s40011-019-01093-xHussain, S. A., Ahmad, N., Anis, M. & Alatar, A. (2019). Influence of meta-topolin on in vitro organogenesis in Tecoma stans L., assessment of genetic fidelity and phytochemical profiling of wild and regenerated plants. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 138(1), 339-351. Doi:10.1007/s11240-019-01631-5Hussain, S. A., Ahmad, N., Anis, M. & Hakeem, K. (2019). Development of an efficient micropropagation system for Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth using thidiazuron and effects on phytochemical constitution. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant. 55(1), 442-453. Doi:10.1007/s11627-019-10001-xJun-jie, Z., Yue-sheng, Y., Meng-fei, L., Shu-qi, L., Yi, T., Han-bin, C., & Xiao-yang, C. (2017). An efficient micropropagation protocol for direct organogenesis from leaf explants of an economically valuable plant, drumstick (Moringa oleifera Lam.). Industrial Crops and Products, 103, 59–63. Doi:10.1016/j.indcrop.2017.03.028Kasthurirengan, S., Xie, L., Li, C. H., Fong, Y. K., & Hong, Y. (2013). In vitro propagation and assessment of genetic stability of micropropagated Samanea saman (rain tree) using microsatellite markers. Acta Physiologiae Plantarum, 35(8), 2467–2474. Doi: 10.1007/s11738-013-1281-2Khalisi, A. & Joboury, R. (2012). In vitro propagation of Acacia farnesiana. Journal of scientific research and advances, 23(3), 29-34. Recuperado de: https://www.researchgate.net/publication/320715987_In_vitro_propagation_of_Aca cia_farnesianaKumar, S., Vilama, Y., & Singh, I. (2022). In vitro evaluation of free flavonoids in Cassi a fistula Linn. calli of different ages under varying concentration of plans growth regulators (PGRs). Indian Journal of Experimental Biology, 60(1), 635-639. DOI:10.56042/ijeb.v60i08.64965Larraburu, E., Correa, S., & Llorente, E. (2019). In vitro development of yellow lapacho (bignoniaceae) using high-power light emitting diode. Revista Árvore, 42(5), 1-12. Doi:10.1590/1806-90882018000500008López, A., Ramírez, F., Sepúlveda, G., & Trejo, G. (2009). Comparison of metabolite levels in callus of Tecoma stans (L.) Juss. ex Kunth. cultured in photoperiod and darkness. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 45(5), 550–558. doi:10.1007/s11627-009-9250-6López, O. (2015). Investigación experimental. P. 13. Tomado de: https://poliformat.upv.es/access/content/user/24389381/Contenido%20abierto%20al %20p%C3%BAblico/Metodolog%C3%ADa%20de%20la%20investigaci%C3%B3 n/3.2%20Metodologi%CC%81a%20experimental.pdf.Luna, C. 2019. Establecimiento de un método eficiente de estandarización de la germinación in vitro de Moringa oleifera (Moringaceae). Acta Botánica Mexicana, 126(1), e1496. Doi: 10.21829/abm126.2019.1496Mathur, J. & Mukunthakumar, S. (1992). Micropropagation of Bauhinia variegata and Parkinsonia aculeata from nodal explants of mature trees. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 28(1), 119–121. doi:10.1007/bf00039924Molina, L. & Vargas, B. (2006). Árboles para Cúcuta: Especies que Fortalecen la Estructura Ecológica Principal. Nodo, 1(1), 45-62. Recuperado de: https://dialnet.unirioja.es/servlet/articulo?codigo=3396729Morales, J., De León, D., Garcidueñas, C. & Pérez, E. (2019). Germination, in vitro propagation and soil acclimatization of Acacia farnesiana and Prosopis laevigata. South African Journal of Botany, 124(1), 345–349. Doi: 10.1016/j.sajb.2019.05.034Mosaleeyanon, K., Cha-um, S. & Kirdmanee, C. (2004). Enhanced growth and photosynthesis of rain tree (Samanea saman Merr.) plantlets in vitro under a CO2- enriched condition with decreased sucrose concentrations in the medium. Scientia Horticulturae, 103(1), 51–63. Doi: 10.1016/j.scienta.2004.02.010Mota, A. Silva, L. Dos santos, N. & Ebling, G. (2020). Estabelecimiento in vitro de Ceiba rubriflora Carv.-Sobr. e L. P. Queiroz: uma espécie endêmica do vale do rio São Francisco. Caderno de Ciências agrárias. 12(1), 1-5. Doi: https://doi.org/10.35699/2447-6218.2020.24029Namde, H. & Minal, W. (2014). Callus induction studies and active components and antioxidant activity investigation of leaves and callus of Tecoma stans L. Juss. ex Kunth. Research Jornal of Pharmaceutical , Biological and Chemical Sciences, 5(2), 604-610. Recuperado de: http://rjpbcs.com/pdf/2014_5(2)/[67].pdfOliveira, A. (2019). Establecimiento de sistemas de regeneração in vitro de flamboyant [Delonix regia (Bojer ex Hook) Raf.]. Disertación para obtener el título de Magister en Agronomía, Universidade Federal de Goiás, Brasil. Recuperado de: https://repositorio.bc.ufg.br/tede/handle/tede/9574Otaya, L., Sánchez, R., Morales, L. & Botero, V. (2006). Los sistemas de información geográfica (SIG), una gran herramienta para la silvicultura urbana. Revista Facultad Nacional de Agronomía Medellín, 59(1), 3201-3216. Disponible en: http://www.scielo.org.co/pdf/rfnam/v59n1/a08v59n1.pdfPadilla, I, & Encina, C. (2003). In vitro germination of cherimoya (Annona cherimola Mill.) seeds. Scientia Horticulturae, 97(3-4), 219–227. doi:10.1016/s0304-4238(02)00160- 7Parveen, S., Shahzad, A. & Saema, S. (2010). In vitro plant regeneration system for Cassia siamea Lam., a leguminous tree of economic importance. Agroforestry Systems, 80(1), 109–116. Doi: 10.1007/s10457-010-9301-3Pepe, M., Mohsen, H. & Phineas, A. (2021). Machine Learning-Mediated Development and Optimization of Disinfection Protocol and Scarification Method for Improved In Vitro Germination of Cannabis Seeds. Plants, 10(1), 2397. Doi: https://doi.org/10.3390/ plants10112397Pérez, B., Medero, M., Vega, V., Torres, M., López, J., Santos, A., Rayas, A., et al. (2013). Nueva alternativa para la micropropagación en inmersión temporal del cultivar de plátano vianda "INIVITPV-2011"(AAB). Revista Colombiana de Biotecnología, 15(1), 98-107. Recuperado de: http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0123- 34752013000100010Restrepo, C., Gómez, F., Gil, A., Torres, J. & Urrea, A. (2018). In vitro propagation of avocado (Persea americana Mill.) cv. Hass through morphogenesis. Acta Agronómica, 67(1), 160-167. Recuperado de: 82 https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=169959093022 Doi: https://doi.org/10.1s446/acag.v67n1.61474 .Restrepo, Z. González, S. Zea, J. y Álvarez, E. (2016). Árboles grandes y antiguos: una mirada a los habitantes más viejos de Medellín. Ed. Naturaleza urbana, Bogotá. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 60-63.Reynolds, C., Escobedo, F., Clerici, J., & Camaño, J. (2017). Does “greening” of Neotropical cities considerably mitigate carbon dioxide emissions? The case of Medellin, Colombia. Sustainability, 9(5), 785. https://doi.org/10.3390/su9050785Ribeiro, L. C., Pedrosa, M. & Borghetti, F. (2012). Heat shock effects on seed germination of five Brazilian savanna species. Plant Biology, 15(1), 152–157. Doi:10.1111/j.1438-8677.2012. 00604.xRidzuan, I., Abdullah, L. & Supramaniam, V. (2019). Micropropagation and defence enzymes assessment of Moringa oleifera L. plantlets using nodal segments as explant. South African Journal of Botany, 129(1),55-61. Doi: 10.1016/j.sajb.2018.12.010Rivas, G., Mendoza, Z., González, A., González, E., Mendoza, N., & Paredes, D. (2015). Pasado, presente y futuro de los “guayacanes” Handroanthus chrysanthus (Jacq.) SO Grose y Handroanthus billbergii (Bureau & K. Schum.) S. O. Grose, de los bosques secos de Loja, Ecuador. Arnaldoa, 22(1).85-104. Recuperado de: https://www.researchgate.net/publication/285574500_Pasado_presente_y_futuro_de _los_guayacanes_Handroanthus_chrysanthus_Jacq_S_O_Grose_y_Handroanthus_b illbergii_Bureau_K_Schum_S_O_Grose_de_los_bosques_secos_de_Loja_EcuadorRossi, E. & Sartoretto, L. (2013). Propagação in vitro da farinha-seca. Pesquisa florestal brasileira, 33(73), 45-52. doi: 10.4336/2013.pfb.33.73.361. Recuperado de: http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S0304- 28472006000100008&script=sci_abstract&tlng=ptSaini, K., Shetty, P., Giridhar, P. & Ravishankar, A. (2012). Rapid in vitro regeneration method for Moringa oleifera and performance evaluation of field grown nutritionally enriched tissue cultured plants. Biotech, 2(3), 187–192. Doi:10.1007/s13205-012- 0045-9Salem, J. (2017). In vitro propagation of Moringa oleifera L. under salinity and ventilation conditions. Genetic and Plants Physiology. 6(2), 54-64. Recuperado de: https://staffsites.sohag-univ.edu.eg/uploads/800/1537372012%20- %20moringamicropropagation.pdfSantos, R. (2018). Moringa oleífera Lam., su aprovechamiento actual a nivel mundial y su potencial para Quintana Roo. Tesis de grado para optar por el título de Licenciado en manejo de recursos naturales, Universidad de Quintana Roo, México. Recuperado de: http://risisbi.uqroo.mx/handle/20.500.12249/2672Schuler, I., Baquero, S., Gaona, D., Vega, E. Rodríguez, J., Ramírez, S., et al. (2005). Propagación in vitro de material seleccionado de Tabebuia rosea (Bertol.) DC. (Ocobo) y Cordia alliodora (Ruiz & Pav.) Oken (Nogal Cafetero). Revista Colombiana de Biotecnología, 7(1), 39-50. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=77670106Sharma, P. Patil, A. & Patil, D. (2017). Effect of culture media and growth hormones on callus induction in Crataeva tapia L. International Journal of Pharmaceutical Research, 9(2), 70-76. Recuperado de: https://www.researchgate.net/publication/319096132_Effect_of_culture_media_and _growth_hormones_on_callus_induction_in_Crataevatapia_L?enrichId=rgreq079b87739c4540efa1ceecdad420a9baXXX&enrichSource=Y292ZXJQYWdlOzMxOTA5NjEzMjtBUzo1ODc0ODY0Nj gyNjM5NDFAMTUxNzA3OTA5NzQ2OA%3D%3D&el=1_x_2&_esc=publicatio nCoverPdfSoares, A., Rego, F. McPherson, E., Simpson, J., Peper, P., & Xiao, Q. (2011). Benefits and costs of street trees in Lisbon, Portugal. Urban Forestry & Urban Greening, 10(2), 69- 78. Doi: 10.1016/j.ufug.2010.12.001Soliman, A. & Abbas, M. (2013). Effects of sulfuric acid and hot water Pre-treatments on seed germination and seedling growth of Cassia fistula L. American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 13 (1), 07-15. Doi: 10.5829/idosi.aejaes.2013.13.01.1914Souza, R., Padilha, P., Freitas, P., Rocha, L. & Houllou, L. (2017). Basic procedure for the in vitro propagation of Brazilian tres for reforestetion propuses. Journal of Environmental Analysis and Progress, 2(2), 107-114. Doi: http://dx.doi.org/10.24221/jeap.2.2.2017.1139.107-11Suárez, I., Jarma, A., & Ávila, M. (2006). Desarrollo de un protocolo para propagación in vitro de roble (Tabebuia rosea Bertol DC). Temas Agrarios, 11(2), 52-62. https://doi.org/10.21897/rta.v11i2.645Sumi, P., Suman,K. & Pramod, T.(2011). Un medio nutritivo eficaz para la germinación asimbiótica de semillas y la regeneración in vitro a gran escala de Dendrobium hookerianum, una orquídea amenazada del noreste de India, AoB plants, 2012(1), plr032. Doi:https://doi .org/10.1093/aobpla/plr032Tadros, J., AL-Mefleh, N., & Mohawesh, O. (2012). Effect of irrigation water qualities on Leucaena leucocephala germination and early growth stage. International Journal of Environmental Science and Technology, 9(2), 281–286. Doi:10.1007/s13762-012- 0033-yTimofeeva, N., Elkonin, A. & Tyrnov, S. (2014). Micropropagation of Laburnum anagyroides Medic. through axillary shoot regeneration. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 50(5), 561–567. doi:10.1007/s11627-014-9618-0Tovar, G. (2013). Aproximación a la silvicultura urbana en Colombia. Revista bitácora urbana territorial, 22(1), 119-136. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=74829048012Trivedi,D. & Joshi, A. (2014). Studies on seed germination of Stereospermum suaveolens with respect to different parameters. Environmental and Experimental Biology,12(1), 33–37. Recuperado de: http://eeb.lu.lv/EEB/201403/EEB_12_Trivedi.pdfVargas, J. & Torres, A. (2018). Germination and seed conservation of a pioneer species, Tecoma stans (Bignoniaceae), from tropical dry forest of Colombia. Revista de Biología Tropical, 66(2), 918-936. https://dx.doi.org/10.15517/rbt.v66i2.33423Vázquez, L., Robledo, A. Muratalla, A., & Conde, V. (2014). Micropropagación de Stevia rebaudiana Bertoni y detección de steviósidos. Bioagro, 26(1), 49-56. Recuperado de: http://ve.scielo.org/scielo.php?pid=S1316-33612014000100006&script=sci_arttextVinolya, K. & Pullaiah, T. (2015). Micropropagation of Samanea saman (jacq) merr of tirumala hills. World Journal of Pharmaceutical Research, 4(7), 1135-1144. Recuperado de: https://1library.net/document/qo54pm5y-micropropagation-ofsamanea-saman-jacq-merr-tirumala-hills.htmlufps/7656oai:repositorio.ufps.edu.co:ufps/76562024-10-04 10:23:50.768An error occurred on the license name.\|\|\|https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/metadata only accessRepositorio Universidad Francisco de Paula Santanderbdigital@metabiblioteca.com

Acompañamiento en la micropropagación de especies promisorias para la ejecución del programa de silvicultura urbana desarrollado bajo el convenio entre la alcaldía de san José de Cúcuta y la universidad Francisco de Paula Santander.

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