Evaluación del potencial de cianobacterias termotolerantes para la producción de eps y fitohormonas
Las microalgas y cianobacterias son microorganismos fotosintéticos capaces de producir una amplia gama de compuestos bioactivos como pigmentos, vitaminas, proteínas, lípidos, exopolisacáridos y fitohormonas, que han traído el interés industrial debido a sus numerosas aplicaciones en campos como el a...
- Autores:
-
Moncada Jacome, Karen Andrea
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2022
- Institución:
- Universidad Francisco de Paula Santander
- Repositorio:
- Repositorio Digital UFPS
- Idioma:
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.ufps.edu.co:ufps/9048
- Acceso en línea:
- https://repositorio.ufps.edu.co/handle/ufps/9048
- Palabra clave:
- Cianobacteria
Exopolisacáridos
Fitohormonas
Luz
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- openAccess
- License
- Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0 Internacional (CC BY-NC-SA 4.0)
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Las microalgas y cianobacterias son microorganismos fotosintéticos capaces de producir una amplia gama de compuestos bioactivos como pigmentos, vitaminas, proteínas, lípidos, exopolisacáridos y fitohormonas, que han traído el interés industrial debido a sus numerosas aplicaciones en campos como el alimentario, farmacéutico, cosmético, bioenergético, entre otros. Sin embargo, la síntesis de dichos compuestos puede ser afectada de manera directa por las condiciones y parámetros de su cultivo. En consecuencia, esta investigación se enfocó en la determinación de cianobacterias termotolerantes con mayor capacidad de producción de EPS y fitohormonas, y posteriormente en el impacto de los parámetros de cultivo que caracterizan la luz (intensidad lumínica, ciclo de luz/oscuridad y tipo de luz) en la producción de estos compuestos. Se encontró que la cepa con mayor potencial para la producción tanto de fitohormonas como de exopolisacáridos correspondía al género Hapalosiphon sp. La cianobacteria fue sometida a las diferentes modificaciones en su cultivo donde se evidencio que la luz roja: azul en una relación de 5:1, una intensidad lumínica aproximada de 40 µmol y un tiempo de exposición a la luz 8 h propiciaron las condiciones más favorables para una mayor producción tanto de EPS como de fitohormonas. |
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Sin embargo, la síntesis de dichos compuestos puede ser afectada de manera directa por las condiciones y parámetros de su cultivo. En consecuencia, esta investigación se enfocó en la determinación de cianobacterias termotolerantes con mayor capacidad de producción de EPS y fitohormonas, y posteriormente en el impacto de los parámetros de cultivo que caracterizan la luz (intensidad lumínica, ciclo de luz/oscuridad y tipo de luz) en la producción de estos compuestos. Se encontró que la cepa con mayor potencial para la producción tanto de fitohormonas como de exopolisacáridos correspondía al género Hapalosiphon sp. La cianobacteria fue sometida a las diferentes modificaciones en su cultivo donde se evidencio que la luz roja: azul en una relación de 5:1, una intensidad lumínica aproximada de 40 µmol y un tiempo de exposición a la luz 8 h propiciaron las condiciones más favorables para una mayor producción tanto de EPS como de fitohormonas.Archivo Medios ElectrónicosPregradoIngeniero(a) Biotecnológico(a)application/pdfhttps://catalogobiblioteca.ufps.edu.co/descargas/tesis/1611405.pdfEvaluación del potencial de cianobacterias termotolerantes para la producción de eps y fitohormonasTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttp://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionFacultad de Ciencias Agrarias y del AmbienteIngeniería BiotecnológicaCianobacteriaExopolisacáridosFitohormonasLuzAhmed, M., Stal, L. J. & Hasnain, S. (2014). Biofilm Formation and Indole-3-Acetic Acid Production by Two Rhizospheric Unicellular Cyanobacteria. Journal of Microbiology and Biotechnology, 24(8), 1015-1025. https://doi.org/10.4014/jmb.1310.10099Álvarez, P., Influencia de la luz sobre la producción y la composición de la biomasa microalgal de Spirulina platensis LMPA55. Dpto. de Ingeniería Química, Universidad Tecnológica Nacional Buenos Aires (2018).Andersen, R., Berges, J., Harrison, P., & Watanabe, M. (2005). Recipes for Freshwater and Seawater Media. In Andersen, R. A. (Ed.). (2005). Algal culturing techniques. Elsevier.ArunKumar, M., Divya, S., LewisOscar, F., Thajuddin, N., & Nithya, C. (2018). Cyanobacterial exopolysaccharides: A potent antibiofilm agent against Pseudomonas aeruginosa.Babiak, W., & Krzemińska, I. (2021). Extracellular Polymeric Substances (EPS) as Microalgal Bioproducts: A Review of Factors Affecting EPS Synthesis and Application in Flocculation Processes. Energies, 14(13), 4007. https://doi.org/10.3390/en14134007Borah, D., Nainamalai, S., Gopalakrishnan, S., Rout, J., Alharbi, N. S., Alharbi, S. A., & Nooruddin, T. (2018). Biolubricant potential of exopolysaccharides from the cyanobacterium Cyanothece epiphytica. Applied Microbiology and Biotechnology, 102(8), 3635–3647. https://doi.org/10.1007/s00253-018-8892-xChamizo, S., Adessi, A., Torzillo, G., & De Philippis, R. (2020). Exopolysaccharide Features Influence Growth Success in Biocrust-forming Cyanobacteria, Moving From Liquid Culture to Sand Microcosms. Frontiers in Microbiology, 11. https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.568224Chatterjee, A., Singh, S., Agrawal, C., Yadav, S., Rai, R., & Rai, L. (2017). Role of Algae as a Biofertilizer. Algal Green Chemistry, 189–200. https://doi.org/10.1016/b978-0-444-63784- 0.00010-2Chentir, I., Hamdi, M., Doumandji, A., HadjSadok, A., Ouada, H. B., Nasri, M., & Jridi, M. (2017). Enhancement of extracellular polymeric substances (EPS) production in Spirulina (Arthrospira sp.) by two-step cultivation process and partial characterization of their polysaccharidic moiety. International Journal of Biological Macromolecules, 105, 1412– 1420. https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2017.07.009Cruz, D., Vasconcelos, V., Pierre, G., Michaud, P., & Delattre, C. (2020). Exopolysaccharides from Cyanobacteria: Strategies for Bioprocess Development. Applied Sciences, 10(11), 3763. https://doi.org/10.3390/app10113763Delattre, C., Pierre, G., Laroche, C., & Michaud, P. (2016). Production, extraction and characterization of microalgal and cyanobacterial exopolysaccharides. Biotechnology Advances, 34(7), 1159–1179. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2016.08.001DuBois, M., Gilles, K. A., Hamilton, J. K., Rebers, P. A., & Smith, F. (1956). Colorimetric Method for Determination of Sugars and Related Substances. Analytical Chemistry, 28(3), 350–356. https://doi.org/10.1021/ac60111a017Duong, T. T., Nguyen, T. T. L., Dinh, T. H. V., Hoang, T. Q., Vu, T. N., Doan, T. O., Dang, T. M. A., Le, T. P. Q., Tran, D. T., Le, V. N., Nguyen, Q. T., Le, P. T., Nguyen, T. K., Pham, T. D., & Bui, H. M. (2021). Auxin production of the filamentous cyanobacterial Planktothricoides strain isolated from a polluted river in Vietnam. Chemosphere, 284, 131242. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2021.131242Escárcega-González, C. E., Garza-Cervantes, J. A., Vázquez-Rodríguez, A., & Morones-Ramírez, J. R. (2018). Bacterial Exopolysaccharides as Reducing and/or Stabilizing Agents during Synthesis of Metal Nanoparticles with Biomedical Applications. International Journal of Polymer Science, 2018, 1–15. https://doi.org/10.1155/2018/7045852Fukushima, S., Motoyama, K., Tanida, Y., Higashi, T., Ishitsuka, Y., Kondo, Y., Irie, T., Tanaka, T., Ihn, H., & Arima, H. (2016). Clinical Evaluation of Novel Natural Polysaccharides Sacran as a Skincare Material for Atopic Dermatitis Patients. Journal of Cosmetics, Dermatological Sciences and Applications, 06(01), 9–18. https://doi.org/10.4236/jcdsa.2016.61002Garlapati, D., Chandrasekaran, M., Devanesan, A., Mathimani, T., & Pugazhendhi, A. (2019). Role of cyanobacteria in agricultural and industrial sectors: an outlook on economically important byproducts. Applied Microbiology and Biotechnology, 103(12), 4709–4721. https://doi.org/10.1007/s00253-019-09811-1Gayathri, M., Shunmugam, S., Thajuddin, N., & Muralitharan, G. (2017). Phytohormones and free volatile fatty acids from cyanobacterial biomass wet extract (BWE) elicit plant growth promotion. Algal Research, 26, 56–64. doi:10.1016/j.algal.2017.06.022Ge, H., Xia, L., Zhou, X., Zhang, D., & Hu, C. (2014). Effects of light intensity on components and topographical structures of extracellular polysaccharides from the cyanobacteria Nostoc sp. Journal of Microbiology, 52(2), 179–183. https://doi.org/10.1007/s12275-014-2720-5Guevara, M., Pinto, R., Villarroel, J., Hernández, E., Díaz, R., Gotera, B., & Cortez, R. (2016). Influencia de la salinidad y la irradiancia sobre el crecimiento y composición bioquímica de una nueva cepa de Dunaliella salina, proveniente de las salinas de Araya, Venezuela. Saber, 28(3), 494-501.Han, P. P., Shen, S. G., Wang, H. Y., Sun, Y., Dai, Y. J., & Jia, S. R. (2015). Comparative metabolomic analysis of the effects of light quality on polysaccharide production of cyanobacterium Nostoc flagelliforme. Algal Research, 9, 143–150. https://doi.org/10.1016/j.algal.2015.02.019Han, P., Sun, Y., Jia, S., Zhong, C., & Tan, Z. (2014). Effects of light wavelengths on extracellular and capsular polysaccharide production by Nostoc flagelliforme. Carbohydrate Polymers, 105, 145–151. doi:10.1016/j.carbpol.2014.01.061Kumar, G., Teli, B., Mukherjee, A., Bajpai, R., & Sarma, B. K. (2019). Secondary Metabolites from Cyanobacteria: A Potential Source for Plant Growth Promotion and Disease Management. Secondary Metabolites of Plant Growth Promoting Rhizomicroorganisms, 239–252. https://doi.org/10.1007/978-981-13-5862-3_12López-Padrón, I., Martínez-González, L., Pérez-Domínguez, G., Reyes-Guerrero, Y., NúñezVázquez, M., & Cabrera-Rodríguez, J. A. (2020). Las algas y sus usos en la agricultura. Una visión actualizada. Cultivos tropicales, 41(2). http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0258-59362020000200010Liqin, S., Wang, C., & Lei, S. (2008). Effects of light regime on extracellular polysaccharide production by Porphyridium cruentum cultured in flat plate photobioreactors. 2008 2nd International Conference on Bioinformatics and Biomedical Engineering.Magierek, E., Krzemińska, I., & Tys, J. (2017). Stimulatory effect of indole-3-acetic acid and continuous illumination on the growth of Parachlorella kessleri. International Agrophysics, 31(4), 483–489. doi:10.1515/intag-2016-0070Maltsev, Y., Maltseva, K., Kulikovskiy, M., & Maltseva, S. (2021). Influence of Light Conditions on Microalgae Growth and Content of Lipids, Carotenoids, and Fatty Acid Composition. Biology, 10(10), 1060. https://doi.org/10.3390/biology10101060Medina-Cabrera, E. V., Rühmann, B., Schmid, J., & Sieber, V. (2020). Optimization of growth and EPS production in two Porphyridum strains. Bioresource Technology Reports, 100486. doi:10.1016/j.biteb.2020.100486Miranda, J., & Krishnakumar, G. (2018). Partial characterization of the exopolysaccharide from Oscillatoria trichoides Szafer and the role of released polysaccharide in sequestration of Cr6+. Remediation Journal, 28(4), 51–64. doi:10.1002/rem.21576Moheimani, N. R., Borowitzka, M. A., Isdepsky, A., & Sing, S. F. (2013). Standard Methods for Measuring Growth of Algae and Their Composition BT - Algae for Biofuels and Energy (M. A. Borowitzka & N. R. Moheimani (eds.); pp. 265–284). Springer Netherlands. https://doi.org/10.1007/978-94-007-5479-9_16Mota, R., Rossi, F., Andrenelli, L., Pereira, S. B., De Philippis, R., & Tamagnini, P. (2016). Released polysaccharides (RPS) from Cyanothece sp. CCY 0110 as biosorbent for heavy metals bioremediation: interactions between metals and RPS binding sites. Applied Microbiology and Biotechnology, 100(17), 7765–7775. doi:10.1007/s00253-016-7602-9Mota, R., Vidal, R., Pandeirada, C., Flores, C., Adessi, A., De Philippis, R., Nunes, C., Coimbra, M. A., & Tamagnini, P. (2020). Cyanoflan: A cyanobacterial sulfated carbohydrate polymer with emulsifying properties. Carbohydrate Polymers, 229, 115525. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2019.115525Parwani, L., Bhatt, M., & Singh, J. (2021). Potential Biotechnological Applications of Cyanobacterial Exopolysaccharides. Brazilian Archives of Biology and Technology, 64. https://doi.org/10.1590/1678-4324-2021200401Prasanna, R., Joshi, M., Rana, A., & Nain, L. (2010). Modulation of IAA production in cyanobacteria by tryptophan and light. Polish Journal of Microbiology, 59(2), 99.Potnis, A. A., Raghavan, P. S., & Rajaram, H. (2021). Overview on cyanobacterial exopolysaccharides and biofilms: role in bioremediation. Reviews in Environmental Science and Bio/Technology, 20(3), 781–794. https://doi.org/10.1007/s11157-021-09586-wQian, L., Wu, L., Yang, L., & Zhang, Z. (2020). Inoculation concentration modulating the secretion and accumulation pattern of exopolysaccharides in desert cyanobacterium Microcoleus vaginatus. Biotechnology and Applied Biochemistry, 68(2), 330–337. https://doi.org/10.1002/bab.1930Ramos, R., & Pizarro, R. (2018). Crecimiento y capacidad de biorremediación de Chlorella vulgaris (Trebouxiophycea, Chlorophyta) cultivada en aguas residuales generadas en el cultivo del pez dorado Seriola lalandi (Perciformes: Carangidae). Revista de biología marina y oceanografía, 53(1), 75–86. https://doi.org/10.4067/s0718-19572018000100075Raungsomboon, S., Chidthaisong, A., Bunnag, B., Inthorn, D., & Harvey, N. W. (2006). Production, composition and Pb2+ adsorption characteristics of capsular polysaccharides extracted from a cyanobacterium Gloeocapsa gelatinosa. Water Research, 40(20), 3759–3766. https://doi.org/10.1016/j.watres.2006.08.013Romeral, G., Gómez, J., Sanz, M., Chirivella Martorell, J., & Aroca, A. (2017). Principios de biotecnología y Bioingeniería en el cultivo de microalgas: importancia, problemas tecnológicos, tipos y sistemas de cultivos, crecimiento, factores limitantes, selección, aislamiento, escalado y caracterización bioquímica. Nereis. revista Iberoamericana Interdisciplinar de Métodos Modelización y Simulación, 115-129.Santini, G., Biondi, N., Rodolfi, L., & Tredici, M. R. (2021). Plant Biostimulants from Cyanobacteria: An Emerging Strategy to Improve Yields and Sustainability in Agriculture. Plants, 10(4), 643. https://doi.org/10.3390/plants10040643Sharma, P., Slathia, P. S., Raina, N., & Bhagat, D. (2019). Microbial diversity in freshwater ecosystems and its industrial potential. Freshwater Microbiology, 341–392. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-817495-1.00009-8Singh, H. B., Keswani, C., Reddy, M. S., Sansinenea, E., & García-Estrada, C. (Eds.). (2019). Secondary Metabolites of Plant Growth Promoting Rhizomicroorganisms. doi:10.1007/978- 981-13-5862-3Singh, S., Kant, C., Yadav, R. K., Reddy, Y. P., & Abraham, G. (2019). Cyanobacterial Exopolysaccharides: Composition, Biosynthesis, and Biotechnological Applications. Cyanobacteria, 347–358. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-814667-5.00017-9Stirk, W. A., Bálint, P., Tarkowská, D., Novák, O., Maróti, G., Ljung, K., … van Staden, J. (2014). Effect of light on growth and endogenous hormones in Chlorella minutissima (Trebouxiophyceae). Plant Physiology and Biochemistry, 79, 66– 76. doi:10.1016/j.plaphy.2014.03.005Tan, C. Y., Dodd, I. C., Chen, J. E., Phang, S. M., Chin, C. F., Yow, Y. Y., & Ratnayeke, S. (2021). Regulation of algal and cyanobacterial auxin production, physiology, and application in agriculture: an overview. Journal of Applied Phycology, 33(5), 2995–3023. https://doi.org/10.1007/s10811-021-02475-3Tiwari, O. N., Mondal, A., Bhunia, B., Bandyopadhyay, T. K., Jaladi, P., Oinam, G., & Indrama, T. (2019). Purification, characterization and biotechnological potential of new exopolysaccharide polymers produced by cyanobacterium Anabaena sp. CCC 745. Polymer, 178, 121695. https://doi.org/10.1016/j.polymer.2019.121695Toribio, A., Suárez, E., Jurado, M., Lopez, M., & Lopez J. (2020). Prospection of cyanobacteria producing bioactive substances and their application as potential phytostimulating agents. Informes de biotecnología. Biotechnol Rep (Amst). https://doi.org/10.1016/j.btre.2020.e00449Trabelsi, L., ben Ouada, H., Bacha, H., & Ghoul, M. (2008). Combined effect of temperature and light intensity on growth and extracellular polymeric substance production by the cyanobacterium Arthrospira platensis. Journal of Applied Phycology, 21(4), 405–412. https://doi.org/10.1007/s10811-008-9383-8Vásquez-Villalobos, V., Vergaray, D., Méndez, J., Barrios, I., Baquedano, R., Caldas, C., Cruz, J., Gamboa, J., & Rivera, I. (2017). Effect of the light emitting diodes intensity and photoperiod in the optimization of the Spirulina (Arthrospira) biomass production. Scientia Agropecuaria, 8, 43–55. https://doi.org/10.17268/sci.agropecu.2017.01.04Veerabadhran, M., Chakraborty, S., Mitra, S., Karmakar, S., & Mukherjee, J. (2018b). Effects of flask configuration on biofilm growth and metabolites of intertidal Cyanobacteria isolated from a mangrove forest. Journal of Applied Microbiology, 125(1), 190–202. https://doi.org/10.1111/jam.13761Wenz, J., Davis, J.G. & Storteboom, H. Influence of light on endogenous phytohormone concentrations of a nitrogen-fixing Anabaena sp. cyanobacterium culture in open raceways for use as fertilizer for horticultural crops. J Appl Phycol 31, 3371–3384 (2019). https://doi.org/10.1007/s10811-019-01856-zYadav, A. N. (Ed.). (2021). Soil Microbiomes for Sustainable Agriculture. Sustainable Development and Biodiversity. doi:10.1007/978-3-030-73507-4You, T., & Barnett, S. M. (2004). Effect of light quality on production of extracellular polysaccharides and growth rate of Porphyridium cruentum. Biochemical Engineering Journal, 19(3), 251–258. https://doi.org/10.1016/j.bej.2004.02.004Zapata, D., Arroyave, C., Cardona, L., Aristizábal, A., Poschenrieder, C., & Llugany, M. (2021). Phytohormone production and morphology of Spirulina platensis grown in dairy wastewaters. Algal Research, 59, 102469. https://doi.org/10.1016/j.algal.2021.102469ufps/9048oai:repositorio.ufps.edu.co:ufps/90482024-10-03 11:02:44.488An error occurred on the license name.|||https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/metadata only accessRepositorio Universidad Francisco de Paula Santanderbdigital@metabiblioteca.com |