Identificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar.
136 p
- Autores:
-
Guerrero Gómez, Lucila Selene
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2018
- Institución:
- Universidad de Santander
- Repositorio:
- Repositorio Universidad de Santander
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.udes.edu.co:001/4346
- Acceso en línea:
- https://repositorio.udes.edu.co/handle/001/4346
- Palabra clave:
- Sacarosa
Elaboración de azúcar
Bacterias termófilas
Levaduras
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- openAccess
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- Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018
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Andjelkovic, U., Picuric, S., & Vujcic, Z. (2010). Purification and characterisation of Saccharomyces cerevisiae external invertase isoforms. Food Chemistry, 799-804. Antier, R. (1996). Microbiological control in a cane sugar mill: implications on sugar quality and on losses. Proc S Afr Sug Technol Ass, 186- 188. Asocaña. (2017). Informe anual 2017. Centro de investigación de la caña de Azúcar de Colombia Cenicaña. Cali: Servicio de Cooperación Técnica y Transferencia de Tecnología. Cenicaña . Obtenido de Asocaña: http://www.asocana.org/publico/info.aspx?Cid=215 Assis, O., Morais, B., Domenech, D., Carvalho, J., Kyaw, C., Krugger, R., . . . Ferraz, B. (2014). Microbial diversity in sugarcane ethanol production in a Brazilian distillery using a culture-independent method. Environmental microbiology, 73-84. Belghitha, K., Dahecha, I., Belghithb, H., & Mejdouba, H. (2012). Microbial production of levansucrase for synthesis of fructooligosaccharides and levan. International Journal of Biological Macromolecules, 451– 458. Bergwall, C. (2018). New microbiological challenges for the sugar industry with focus on thermophilic acidophilic bacteria. Sugar Industry(2), 28-32. Bertrand, C. (2003). Evolution of lactoglobulin and lactoalbumin content during yogurt fermentation. International Dairy Journal, 39-45. Bhalla, T., Thakur, B., & Thakur, S. (2016). Invertase of saccharomyces cerevisiae SAA-612: Production, characterization and application in synthesis of fructo-oligosaccharides. LWT - Food Science and Technology. Biolabs, N. E. (2018). New England Biolabs. Obtenido de PCR Protocol for Phusion® High-Fidelity DNA Polymerase (M0530): https://www.neb.com/protocols/1/01/01/pcr-protocol-m0530 Birren, B., Lander, E., Galagan, J., Nusbaum, C., Devon, K., Cuomo, C., . . . LaButti, K. (2010). Anotación de Pichia guilliermondii (Candida guilliermondii) . Sin publicar. Black, W., & Munstermann, L. (1996). Molecular Taxonomic and systematics of Arthropod vectors. The biology of disease vectors. University Press of Colorado, 438-470. Bruns, T., White, T., & Taylor, J. (1991). Fungal molecular systematics. Annu. Rev. Ecol Syst, 525-564. Buckley, D., & Schmidt, T. (2002). Exploring the biodiversity of soil - A microbial rain forest. ,Biodiversity of Microbial Life. New York: John Wiley & Sons: In Staley, J. & Reysenbach, A. (Ed.). Castro, M. (1995). Leveduras contaminantes do processo de fermentação alcoólica: diversidade taxonômica e metabólica. Dissertação, Universidade estadual de campinas, Campinas. CENICAÑA. (2004). Cenicaña . Obtenido de Proceso de obtención de azúcar: http://www.cenicana.org/pop_up/fabrica/diagrama_obtencion.php Cerutti de Guglielmone, G., Diez, O., & Cárdenas, G. (2000). Control microbiologico en la industria azucarera: empleo de agentes de sanatización puros y en mezclas. Revista industrial y agricola de Tucuman , 19-27. Chakravorty, S., Helb, D., Burday, M., Connell, N., & Alland, D. (2008). A detailed analysis of 16S ribosomal RNA gene segments for the diagnosis of pathogenic bacteria. J Microbiol Methods. Author manuscript; available in PMC . Chowdhury, S. P., Michael, S., Anton, H., & Tripathi, A. K. (2007). Identification of Diazotrophs in the Culturable Bacterial Community Associated with Roots of Lasiurus sindicus, a Perennial Grass of Thar Desert, India. Microbial Ecology, 82-90. Clarke, W. (1968). A study of the role of starch in the growth of sugar cane and the manufacturing of cane sugar. Proc. inter. Soc. Sugar Cane Technol (ISSCT), 351-356. Claus, D., & Berkeley, R. (1986). Genus Bacillus Cohn. En B. Williams & Wilkins, Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology (págs. 1105-1139). In P. H. A. Sneath, N. S. Mair, M. E. Sharpe, and J. G. Holt. Cuddihy, J., Porro, M., & Rauh, J. (2001). The presence of total polysaccharides in sugar production and methods for reducing their negative effects. Journal of the American society of sugar cane tecnologists , 73-91. Cuddy, J., Rauh, J., & Porro, M. (1998). Improving sugar recovery wuth sugar process chemicals. Midland Research Laboratories Inc. Daza, T. (2007). Determinación de la acción microbiológica en las pérdidas de sacarosa en fábrica. Tesis de pregrado., 69- 110. Daza, T. (2013). Establecimiento de la calidad microbiologica de los materiales del proceso azucarero. . Cali, Colombia: Serie de materiales de capacitación para la transferencia tecnológica en la agroindustria de la caña de azúcar. Daza, T., Cuadrado, P., Cardozo, M., Chica, H., & Gil, N. (2015). Comportamiento de los microorganismos y su incidencia en la calidad de los jugos de caña. X Congreso de la asociación colombiana de técnicos de la caña de azúcar Tecnicaña, 125-131. Daza, T., Guerrero, L., Prieto, G., Moreno, C., & Gil, N. (2018). Microorganismos responsables de las pérdidas de sacarosa en el área de elaboración|. Tecnicaña. Documento en proceso . Daza, Z., Martínez, J., Calero, L., Larrahondo, J., Guzmán, M., & Castillo, E. (2009). Participación de la acción microbiológica en las pérdidas indeterminadas de sacarosa. Congreso de la Asociación Colombiana de Técnicos de la Caña de Azúcar. Tecnicaña, 655-663. de Azeredo, L., Mendonca, L., & Hagler, A. (1998). Yeast communities associated with sugarcane in Campos, Rio de Janeiro, Brazil . Int Microbiol, 205-208. De Vos, P., Garrity, G., Jones, D., Krieg, N., Ludwig, W., Rainey, F., . . . Whitman, W. (2009). Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. New York: Springer. DeLong, E., Lory, S., Stackebrandt, E., & Thompson, F. (2014). The Prokaryoites. Londres: Springer Reference. Espinosa, L. (2013). Guia práctica sobre la técnica de PCR. Las herramientas moleculares , 512-535. Forero, L. (2017). Aislamiento y caracterización de microorganismos termófilos con potencial biotecnológico del mantial termomineral Santa Mónica del municipio de Choachi (Cundinamarca). Tesis de pregrado , 42. Frank, J., & Reich, C. (2008). Critical evaluation of two primers commonly used for amplification of bacterial 16S rRNA genes. Appl Environ Microbiol, 2461–2470. Gao, T., Wong, Y., & Ng, C. H. (2012). Lactc acid production by Bacillus subtilis MUR1. Bioresourse Technology, 105-110. Gil, N. (2007). Aconitic acid from sugarcane:production and industrial application. Doctoral Dissertations, Lousiana State University, 15. Giraud, E. (1992). Contribution a l'etude physiologique et ezimologique dúne nouvelle souche de Lactobacillus plantarum amylolytique isolee du mandioc fermente. Thése Université demProvence aix-Marseille , 139. Gross, M., & Rudolph, K. (1987). Studies on the extracellular polysaccharides (EPS) produced in vitro by Pseudomonas syringae. Caracterization of levan alginate, and LPS, 206-215. Hedman, J. (s.f.). Proceso de producción de azucar. Argentina . Hernandez, V. (1995). Desacidificación biologica de vinos tintos por fermentación meloláctica. . Trabajo de grado. Pontificia Universidad Javeriana. Facultar de Ciencias. Departamento de microbiología. Hongqiao, L., & Matthias, U. (2001). Characterization and mutational analysis of three allelic lsc genes enconding levansucrase in Pseudomonas syringae. Journal of bacteriology, 3282-3292. Honig, P. (1969). Principios de tecnología azucarera (Vol. Tomo I: propiedades de los azucares y no azúcares). Mexico, España y Argentina. Hugar, E. (1986). Handbook of cane sugar Engincering. Elsevier, Amsterdam: 3ra Edición. ICUMSA. (2015). ICUMSA Methods Book. . International Commission for Uniform Methods of Sugar Analisys. Inc, C. D. (2017). Conveniente Systema De Perlas. Obtenido de http://www.pvequip.cl/wp-content/uploads/2015/03/Cryobank.pdf Jang, E.-k., Jang, K.-h., Koh, I., Kim, I.-H., Kim, S.-H., Kang, S., . . . Rhee, S. (2002). Molecular characterization of the levansucrase gene from Pseudomonas aurantiaca S-4380 and its expession in Escherichia coli. J. Microbiological Biotechnology, 603-609. Juang, M., Shao, W., Perego, M., & Hock, J. (2000). Multiple histidine kinases regulate entry into stationary phase and sporulation in Bacillus subtilis. Molecular microbiology, 535-542. Jurado, H., & Jarrín, V. (2015). Cinética de crecimiento de Lactobacillus lactis y determinación del efecto probiótico en cepas patógenas. Biosalud , 49-62. Korbie, D., & Mattick, J. (2008). Touchdown PCR for increased specificity and sensitivity in PCR amplification. Australian Research Council Special Research Centre for Functional and Applied Genomics, Institute for Molecular Bioscience, University of Queensland, St Lucia, 1452-1456. Kukhari, M., El Kahseh, S., Osman, A., & Hegazi, S. (2015). Investigations of the influence of dextran on sugar cane quality and sugar cane processing in Kenana sugar factory. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 381-392. Kumar, S., & Agrawal, P. (2002). Studies on possibility of using ICUMSA microbiological pour plate methods for refined sugar for enumeration of microbial populations in primary and mixed sugarcane juice. Sugar tech, 7-13. Kurtzman, C., Fell, J., & Boekhout, T. (2011). The yeast a taxonomic study. ELSEVIER. Leemhuis, H., Pijning, T., Dobruchowska, J., van Leeuwen, S., & Kralj, S. (2013). Glucansucrases: Three-dimensional structures, reactions, mechanism, α-glucan analysis and their implications in biotechnology. J Biotechnol, 250–272. Legendre, B. (1992). The core/press method for predicting the sugar p¿yield from cane for use in cane payment . Sugar. Legendre, B., Clarke, M., Godshall, M., & Grisham, M. (1999). Developments in sugarcane agriculture that effect processing. Zuckerindustrie, 120-125. Mackrory, L., Cazalei, J., & Smith, L. (1984). A compararison of the microbiological associated with milling and cane diffusion. Proc. S. Afr. Sugar. Technol, 86-89. Martinez, Y. (2012). Determinación de biomasa. Laboratorio de biotecnología de los productos agroindustriales . Maruaga, M., Preotti, M., & Lucca, M. (2005). Conservación de la cepa de levadura floculenta de cerveceria LM25 mediante criopreservación. Tucumán, Argentina. McNeil, K., & Bond, J. (1980). The identification, enumeration and properties of microflora of sugarcane, cane juice and processing liquors. Technical Report No. 154 of the Sugar Research Institute, Mackay, Australia., 78. Meade, G., & Chen, J. (1991). Sugar cane handbook. nueva York: WilleyIntersciencie Publication. John Wiley and Sons. Merck, K. (Junio de 2006). Reflectoquant® Test Ácido láctico. Obtenido de EMD Millipore Corporation, 290 Concord Road, : www.analytical-test-kits.com Miller, S., Dykes, D., & Polesky, H. (1988). A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. . Nucleic Acid Research, 1215. Milintawisamai, N., Niamsanit, S., Ngasan, C., Pliansinchai, U., & Weerathaworn, P. (2009). Dextran producing microoganismos from Mitr Phuveing sugar factory , Thailand. Sugar tech, 196-199. Mora, O., Rincón, L., & Avellaneda, C. (2009). Evaluación de biocidas para el control de contaminantes en las plantas de azúcar y etanol de los Ingenios Providencia S.A. y Mayagüez S.A. VII Congreso. Asociación de Técnicas de la Caña de Azúca, 585-596. Nácher, M. (2015). Dextranos de bacterias lácticas aisladas de productos cárnicos: caracterización y aplicaciones. Tesis de doctorado, Universidad de Valencia, 5-131. Nel, S. (2014). Microbial diversity profiling in sugarcane processing: what, why and how? Proc S Afr Sug Technol Ass, 246-254. Orberá, R. (2004). Métodos moleculares de identifiacion de levaduras de interés biotecnológico. Revista Iberoamericana de Micología, 15-19. Orozco, R., & Saavedra, H. (2001). Debaryomyces hansenii growth in nonsterile seawater ClO2-peptone-containing medium. Can. J.Microbiol., 676–679. Parra, R. (2010). Bácterias ácido lácticas: papel funcional en los alimentos . Facultad de ciencias agropecuarias, 93-105. Peredo, S. (2017). Factores fisicoquímicos que afectan la sacarosa durante el proceso industrial. Memorias Seminario Internacional Producción y optimización de la sacarosa en el proceso agroindustrial de la caña de azúcar. Pham, P., Dupont, I., Roy, D., Lapointe, G., & Cerning, J. (2000). Production of exopolysaccharide by Lactobacillus rhamnosus E and Analisis of its enzymatica Degradation during Prolonged Fermentation. Applied and environmental microbiology, 2302-2310. Prieto, C. (2014). Establecimiento de los requisitos para el control del riesgo microbiológico en la producción de azúcar y mieles dentro de un enfoque de BPM, HACCP y SGI. Santiago de Cali : Cenicaña. Promega. (s.f.). Wizard Genomic DNA purification kit. 14. Purchase, B. (2001). Losses caused by micro-organism. Proceedings 24th International Society of Sugar Cane technologist, 24: 379-379. Ramirez, J., Rosas, P., Velázquez, M., Armando, J., & Arce, R. (2011). Bacterias lácticas: importancia en alimentos y sus efectos en la salud. Revista Fuente Año 2. Ramos, A. (2002). Proceso de elaboración del azúcar de caña . Cali : Tecnicaña. Ravnö, A. (2001). Microbial degradation in sugar cane diffusers. Congress of the International Society of Sugar Cane Technologist, 184-185. Ravno, B. (1977). Calorific value of South African bagase. Proc. S. Afr. Sugar. Technol. Ass, 163-173. Rein, P. (2012). Ingeniería de la caña de azúcar. Berlin: Bartens. Rodicioa, M. d., & Mendoza, M. d. (2004). Identificación bacteriana mediante secuenciación del ARNr 16S: fundamento, metodología y aplicaciones en microbiología clínica. Enferm Infecc Microbiol Clin, 22:238-45. Rodriguez, E. (2005). La dextranasa a lo largo de la industria azucarera. Biotecnologia aplicada, 12-19. SanCarlos, I. (2018). Ingenio San Carlos. Obtenido de Proceso de producción de azúcar: http://www.sancarlos.com.ec/portal/html/themes/ingenio/pdf/proceso_produccion.pdf Santos, M., Teixeira, J., & Rodrigues, A. (2000). Production of dextranucrase, dextran and frutose sucrose, using Leuconostoc mesenteroides NRRL B512. Biochemical Engineering Journal, 177-188. Sarmiento, A., & Herrera, J. (2003). Obtención y caracterización de un banco de levaduras con potencial aplicación prebiótica. Bogotá. Satyanarayana, T., & Kunze, G. (2009). Yeast Biotechnology Diversity and applications. Springer. Serrano, L. (2006). Determinación de las problaciones microbiológicas en el proceso de extracción de jugo de caña de azúcar en el ingenio Manuelita S.A. Bogotá: Tesis de grado. Shimotsu, H., & Henner, D. (1986). Modulation of Bacillus subtilis Levansucrase Gene Expression by Sucrose and Regulation of the Steady-State mRNA Level by sacU and sacQ Genes. JOURNAL OF BACTERIOLOGY, 380-388. Singer, M., & Lindquist, S. (1998). Thermotolerancia in saccharomyces cerevisiae: the yin and yang of trehalose. Elsevier Science Ltd., 460-468. Tallgren, A., Airaksinen, U., Weissenbeg, R., Ojano, H., Kuusisto, J., & Leisola, M. (1999). Exopolisacharide-producing Bacteria from sugar Beets. Applied and Environmental Microbiology, 862-864. Thanonkeo, S., Klanrit, P., & Thanonkeo, P. (2018). The potential of the newly isolated thermotolerant yeast Pichia kudriavzevii RZ8-1 for high-temperature ethanol production. Braz. J. Microbiol. Tieking, M., Korakli, M., Ehrmann, M., & Ganzle, M. (2003). In situ production of exopolysaccharides during Sourdough fermentation by cereal and intestinal isolates of lactic acid bacteria. Applied and environmental microbiology , 945-952. Torres, M. (2007). Valoración de la calidad microbiológica del producto en proceso en una planta productora de bebidas alcoholicas. Bogotá : Tesis de pregrado. Valik, L., Medvedova, A., & Liptaková. (2008). Characterization of the growth of Lactobacillus rhamnosus GG in milk at suboptimal temperatures. Journal of Food and Nutrition Research , 60-67. Velenzuela, F., & Casillas, R. (2015). El gen ARNr 16S en el estudio de comunidades microbianas marinas. Ciencias marinas. Větrovský, T., & Baldrian, P. (2013). The Variability of the 16S rRNA Gene in Bacterial Genomes and Its Consequences for Bacterial Community Analyses. A Peer-Reviewed, Open Access Journal. Wojtczak, M., Antczak, A., Mikos, P., Molska, M., Blaszcyk, I., & Papiewska, A. (2016). Changes in the content of organic acids and inorganic anions in sugar beet during long-term storage. Sugar Industry, 760-764. Zarzoso, E. (1999). Identification of yeasts by RFLP analysis of the 5.8 rRNA gene and the two ribosomal internal transcribed spacers. . Int J Syst Bacteriol. Zeikus, J. (1979). Thermophilic bacteria: ecologu, physiology and technology. Enzyme Microb. Technol, 243-252. Zhennai, T. (2000). Antimicrobial Compounds and Extracellular polysaccharides produced by Lactic acid bacteria, Structures and Propieties. Department of Food Technology. |
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Daza Merchán, Zunny Tatiana88f5ce8e-490e-48b1-a7e8-0db8f55c4618-1Guerrero Gómez, Lucila Selene06a9e5f0-5a6a-4a12-b512-3a9f03b9d434-1Zafra, German2020-01-22T15:55:11Z2020-01-22T15:55:11Z2018-06-29136 pIn the process of making sugar, where the conditions of temperature and osmotic pressure are not favorable for the development of microorganisms, there has been an increase in the concentration of microbial metabolites that influence the physical-chemical characteristics of the materials and affect the process . The objective of the present investigation was to characterize microorganisms isolated from the process of the elaboration stage and to identify their possible metabolic activity in substrates and conditions of the process. Isolations were made in three pilot mills and microorganisms were identified by gene sequencing. BAL lactic acid bacteria belonging to genera Lactobacillus, Entrococcus, Weisella and Bacillus were identified; yeasts of genera Meyerozyma, Pichia, Candida, Trichosporon, Rhodotorula, Saccharomyces and Debaromyceni; thermophilic bacteria of the genus Bacillus, and lactic acid bacteria producing exopolysaccharide (BALPE) from genera such as Leuconostoc, Lactobacillus and Bacillus. In order to know the possible effect of the microorganisms in clear juice and molasses, deterioration tests were performed by inoculating microorganisms representative of each microbial group and evaluating the behavior at 30 ° C and 60 ° C. The statistical analysis of the response variables of sucrose consumption and production of organic acids was carried out. It was observed that the greatest effect in terms of sucrose inversion is caused by the yeasts and in terms of production of metabolites are the BAL that produce the highest amount of metabolites in juices at room temperature and thermophilic bacteria at temperatures of 60 ° C . We identified genes involved in the production of exopolysaccharides such as the dextransucrase gene in Leuconostoc pseudomesenteroides and the levansucrase gene in Lactobacillus and Bacillus genera. This work made it possible to demonstrate that under conditions of high temperature and high concentration of sugars characteristic of the production processes, thermophilic bacteria are the main responsible for the increase of metabolites in this area.En el proceso de elaboración de azúcar, donde las condiciones de temperatura y presión osmótica no son favorables para el desarrollo de microorganismos, se ha evidenciado aumento en la concentración de metabolitos microbianos que influyen en las características físico-químicas de los materiales y afectan el proceso. El objetivo de la presente investigación fue caracterizar microorganismos aislados de los proceso de la etapa de elaboración e identificar su posible actividad metabólica en sustratos y condiciones propias del proceso. Se realizaron aislamientos en tres ingenios piloto y los microorganismos fueron identificados mediante secuenciamiento de genes. Se identificaron bacterias ácido lácticas BAL pertenecientes a géneros Lactobacillus, Entrococcus, Weisella y Bacillus; levaduras de géneros Meyerozyma, Pichia, Candida, Trichosporon, Rhodotorula, Saccharomyces y Debaromyceni; bacterias termófilas del género Bacillus, y bacterias ácido lácticas productoras de exopolisacárido (BALPE) de géneros como Leuconostoc, Lactobacillus y Bacillus. Para conocer el posible efecto de los microorganismos en jugo claro y meladura, se realizaron pruebas de deterioro inoculando microorganismos representativos de cada grupo microbiano y evaluando el comportamiento a 30°C y 60°C. Se realizó el análisis estadístico de las variables respuesta de consumo de sacarosa y producción de ácidos orgánicos. Se observó que el mayor efecto en términos de inversión de sacarosa es causado por las levaduras y en cuanto a producción de metabolitos son las BAL las que producen la mayor cantidad de metabolitos en jugos a temperatura ambiente y las bacterias termófilas en temperaturas de 60°C. Se logró identificar genes involucrados en la producción de exopolisacáridos como el gen dextransacarasa en Leuconostoc pseudomesenteroides y el gen levansacarasa en géneros de Lactobacillus y Bacillus. Este trabajo permitió evidenciar que bajo condiciones de alta temperatura y alta concentración de azúcares propias de los procesos de elaboración, son las bacterias termófilas las principales responsables del aumento de metabolitos en ésta área.PregradoMicrobiólogo Industrial1. Introducción ............................................................................................ 1 2. Planteamiento del problema .................................................................. 4 3. Justificación..................................................................................... 6 4. Hipótesis ................................................................................................. 8 5. Marco teórico .......................................................................................... 9 5.1. Generalidades de la caña de azúcar ................................................. 9 5.1.1. Sector agroindustrial de la Caña en Colombia .......................... 9 5.1.2. Características del jugo de caña ................................................. 9 5.2. Proceso de producción de azúcar .................................................. 10 5.2.1. Generalidades del proceso de producción de azúcar ............. 10 5.2.2. Proceso de producción en fábrica ............................................ 11 5.3. Microorganismos contaminantes presentes en el proceso de producción de azúcar .............................................................................. 15 5.3.1. Bacterias ácido lácticas .......................................................... 16 5.3.2. Bacterias termófilas ................................................................ 16 5.3.3. Bacterias productoras de exopolisacáridos ......................... 17 5.3.4. Levaduras ................................................................................ 18 5.4. Subproductos indicadores del deterioro de la sacarosa ........... 19 5.4.1. Azúcares reductores ............................................................... 19 5.4.2. Polisacáridos ........................................................................... 20 5.4.3. Dextrana ................................................................................... 21 5.4.4. Levana ...................................................................................... 22 5.4.5. Ácido láctico ............................................................................ 23 5.4.6. Manitol ...................................................................................... 24 5.4.7. Almidón .................................................................................... 24 5.5. Pérdidas de sacarosa .................................................................... 24 5.5.1. Pérdidas físicas ....................................................................... 25 5.5.2. Pérdidas por destrucción de sacarosa ................................. 25 5.6. Identificación molecular de microorganismos ............................ 26 5.6.1. Identificación molecular de levaduras .................................. 26 5.6.2. Identificación molecular de bacterias ................................... 27 6. Objetivos ............................................................................................... 28 6.1. Objetivo general ............................................................................. 28 6.2. Objetivos específicos .................................................................... 28 7. Metodología .......................................................................................... 29 7.1. Muestreo ......................................................................................... 29 7.1.1. Ubicación y diseño de la investigación ................................. 29 7.1.2. Población y muestra ............................................................... 29 7.1.3. Variables de estudio ............................................................... 31 7.2. ACTIVIDAD 1. Aislamiento, conservación e identificación molecular de levaduras y bacterias. ...................................................... 32 7.2.1. Aislamiento de microorganismos representativos. ............. 32 7.2.2. Conformación de banco de cepas ......................................... 33 7.2.3. Caracterización morfológica de levaduras. .......................... 34 7.2.4. Identificación molecular de levaduras .................................. 34 7.2.5. Caracterización morfológica de bacterias. ........................... 36 7.2.6. Identificación molecular de bacterias. .................................. 36 7.3. ACTIVIDAD 2. Detección de los genes que codifican las enzimas dextransacarasa y levansacarasa. ......................................................... 38 7.3.1. Detección del gen dextransacarasa. ..................................... 38 7.3.2. Detección del gen levansacarasa .......................................... 39 7.4. ACTIVIDAD 3. Evaluación del comportamiento metabólico de microorganismos representativos en diferentes materiales del proceso azucarero. .................................................................................. 40 7.4.1. Selección de microorganismos ............................................. 40 7.4.2. Evaluación metabólica ............................................................ 41 7.4.3. Análisis estadístico ................................................................... 42 7.4.4. Curva de crecimiento. ................................................................ 42 7.5. Determinación de parámetros químicos de los materiales. ....... 44 7.5.1. pH ............................................................................................. 44 7.5.2. Grados Brix .............................................................................. 44 7.5.3. Ácido láctico ............................................................................ 44 7.5.4. Determinación de azúcares y ácidos orgánicos por cromatografía ....................................................................................... 45 7.6.5. Determinación de ácidos orgánicos ......................................... 45 8. Resultados y discusión ....................................................................... 46 8.1. Conformación de un banco de cepas de levaduras y bacterias 46 8.1.1. Recuento microbiológico en las fábricas de los ingenios piloto 46 8.1.2. Aislamiento y caracterización de microorganismos ............ 50 8.2. Identificación molecular de microorganismos ............................ 61 8.2.1. Identificación molecular de levaduras. ................................. 61 8.2.2. Identificación de bacterias. .................................................... 66 8.2.2.1. Extracción de ADN bacteriano ............................................ 66 8.2.2.2. Reacción en cadena de la polimerasa................................ 67 8.2.2.3. Identificación de bacterias termófilas ................................ 67 8.2.2.4. Identificación de bacterias ácido lácticas. ......................... 70 8.2.2.5. Identificación de BALPE ...................................................... 73 8.3. Detección de los genes dextransacarasa y levansacarasa. ...... 75 8.3.1. Detección del gen dextransacarasa. ......................................... 75 8.3.2. Detección del gen levansacarasa ............................................. 79 8.4. Evaluación metabólica de microorganismos representativos. . 81 8.4.1. Selección de microorganismos ............................................. 81 8.4.2. Evaluación metabólica ............................................................ 82 8.4.3. Curva de crecimiento. ............................................................. 92 9. Conclusiones ...................................................................................... 100 10. Bibliografía ...................................................................................... 103Ej. 1application/pdfT 33.18 G827ihttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/4346spaBucaramanga : Universidad de Santander, 2018Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y AgropecuariasMicrobiología IndustrialAndjelkovic, U., Picuric, S., & Vujcic, Z. (2010). Purification and characterisation of Saccharomyces cerevisiae external invertase isoforms. Food Chemistry, 799-804.Antier, R. (1996). Microbiological control in a cane sugar mill: implications on sugar quality and on losses. Proc S Afr Sug Technol Ass, 186- 188.Asocaña. (2017). Informe anual 2017. Centro de investigación de la caña de Azúcar de Colombia Cenicaña. Cali: Servicio de Cooperación Técnica y Transferencia de Tecnología. Cenicaña . Obtenido de Asocaña: http://www.asocana.org/publico/info.aspx?Cid=215Assis, O., Morais, B., Domenech, D., Carvalho, J., Kyaw, C., Krugger, R., . . . Ferraz, B. (2014). Microbial diversity in sugarcane ethanol production in a Brazilian distillery using a culture-independent method. Environmental microbiology, 73-84.Belghitha, K., Dahecha, I., Belghithb, H., & Mejdouba, H. (2012). Microbial production of levansucrase for synthesis of fructooligosaccharides and levan. International Journal of Biological Macromolecules, 451– 458.Bergwall, C. (2018). New microbiological challenges for the sugar industry with focus on thermophilic acidophilic bacteria. Sugar Industry(2), 28-32.Bertrand, C. (2003). Evolution of lactoglobulin and lactoalbumin content during yogurt fermentation. International Dairy Journal, 39-45.Bhalla, T., Thakur, B., & Thakur, S. (2016). Invertase of saccharomyces cerevisiae SAA-612: Production, characterization and application in synthesis of fructo-oligosaccharides. LWT - Food Science and Technology.Biolabs, N. E. (2018). New England Biolabs. Obtenido de PCR Protocol for Phusion® High-Fidelity DNA Polymerase (M0530): https://www.neb.com/protocols/1/01/01/pcr-protocol-m0530Birren, B., Lander, E., Galagan, J., Nusbaum, C., Devon, K., Cuomo, C., . . . LaButti, K. (2010). Anotación de Pichia guilliermondii (Candida guilliermondii) . Sin publicar.Black, W., & Munstermann, L. (1996). Molecular Taxonomic and systematics of Arthropod vectors. The biology of disease vectors. University Press of Colorado, 438-470.Bruns, T., White, T., & Taylor, J. (1991). Fungal molecular systematics. Annu. Rev. Ecol Syst, 525-564.Buckley, D., & Schmidt, T. (2002). Exploring the biodiversity of soil - A microbial rain forest. ,Biodiversity of Microbial Life. New York: John Wiley & Sons: In Staley, J. & Reysenbach, A. (Ed.).Castro, M. (1995). Leveduras contaminantes do processo de fermentação alcoólica: diversidade taxonômica e metabólica. Dissertação, Universidade estadual de campinas, Campinas.CENICAÑA. (2004). Cenicaña . Obtenido de Proceso de obtención de azúcar: http://www.cenicana.org/pop_up/fabrica/diagrama_obtencion.phpCerutti de Guglielmone, G., Diez, O., & Cárdenas, G. (2000). Control microbiologico en la industria azucarera: empleo de agentes de sanatización puros y en mezclas. Revista industrial y agricola de Tucuman , 19-27.Chakravorty, S., Helb, D., Burday, M., Connell, N., & Alland, D. (2008). A detailed analysis of 16S ribosomal RNA gene segments for the diagnosis of pathogenic bacteria. J Microbiol Methods. Author manuscript; available in PMC .Chowdhury, S. P., Michael, S., Anton, H., & Tripathi, A. K. (2007). Identification of Diazotrophs in the Culturable Bacterial Community Associated with Roots of Lasiurus sindicus, a Perennial Grass of Thar Desert, India. Microbial Ecology, 82-90.Clarke, W. (1968). A study of the role of starch in the growth of sugar cane and the manufacturing of cane sugar. Proc. inter. Soc. Sugar Cane Technol (ISSCT), 351-356.Claus, D., & Berkeley, R. (1986). Genus Bacillus Cohn. En B. Williams & Wilkins, Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology (págs. 1105-1139). In P. H. A. Sneath, N. S. Mair, M. E. Sharpe, and J. G. Holt.Cuddihy, J., Porro, M., & Rauh, J. (2001). The presence of total polysaccharides in sugar production and methods for reducing their negative effects. Journal of the American society of sugar cane tecnologists , 73-91.Cuddy, J., Rauh, J., & Porro, M. (1998). Improving sugar recovery wuth sugar process chemicals. Midland Research Laboratories Inc.Daza, T. (2007). Determinación de la acción microbiológica en las pérdidas de sacarosa en fábrica. Tesis de pregrado., 69- 110.Daza, T. (2013). Establecimiento de la calidad microbiologica de los materiales del proceso azucarero. . Cali, Colombia: Serie de materiales de capacitación para la transferencia tecnológica en la agroindustria de la caña de azúcar.Daza, T., Cuadrado, P., Cardozo, M., Chica, H., & Gil, N. (2015). Comportamiento de los microorganismos y su incidencia en la calidad de los jugos de caña. X Congreso de la asociación colombiana de técnicos de la caña de azúcar Tecnicaña, 125-131.Daza, T., Guerrero, L., Prieto, G., Moreno, C., & Gil, N. (2018). Microorganismos responsables de las pérdidas de sacarosa en el área de elaboración|. Tecnicaña. Documento en proceso .Daza, Z., Martínez, J., Calero, L., Larrahondo, J., Guzmán, M., & Castillo, E. (2009). Participación de la acción microbiológica en las pérdidas indeterminadas de sacarosa. Congreso de la Asociación Colombiana de Técnicos de la Caña de Azúcar. Tecnicaña, 655-663.de Azeredo, L., Mendonca, L., & Hagler, A. (1998). Yeast communities associated with sugarcane in Campos, Rio de Janeiro, Brazil . Int Microbiol, 205-208.De Vos, P., Garrity, G., Jones, D., Krieg, N., Ludwig, W., Rainey, F., . . . Whitman, W. (2009). Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. New York: Springer.DeLong, E., Lory, S., Stackebrandt, E., & Thompson, F. (2014). The Prokaryoites. Londres: Springer Reference.Espinosa, L. (2013). Guia práctica sobre la técnica de PCR. Las herramientas moleculares , 512-535.Forero, L. (2017). Aislamiento y caracterización de microorganismos termófilos con potencial biotecnológico del mantial termomineral Santa Mónica del municipio de Choachi (Cundinamarca). Tesis de pregrado , 42.Frank, J., & Reich, C. (2008). Critical evaluation of two primers commonly used for amplification of bacterial 16S rRNA genes. Appl Environ Microbiol, 2461–2470.Gao, T., Wong, Y., & Ng, C. H. (2012). Lactc acid production by Bacillus subtilis MUR1. Bioresourse Technology, 105-110.Gil, N. (2007). Aconitic acid from sugarcane:production and industrial application. Doctoral Dissertations, Lousiana State University, 15.Giraud, E. (1992). Contribution a l'etude physiologique et ezimologique dúne nouvelle souche de Lactobacillus plantarum amylolytique isolee du mandioc fermente. Thése Université demProvence aix-Marseille , 139.Gross, M., & Rudolph, K. (1987). Studies on the extracellular polysaccharides (EPS) produced in vitro by Pseudomonas syringae. Caracterization of levan alginate, and LPS, 206-215.Hedman, J. (s.f.). Proceso de producción de azucar. Argentina .Hernandez, V. (1995). Desacidificación biologica de vinos tintos por fermentación meloláctica. . Trabajo de grado. Pontificia Universidad Javeriana. Facultar de Ciencias. Departamento de microbiología.Hongqiao, L., & Matthias, U. (2001). Characterization and mutational analysis of three allelic lsc genes enconding levansucrase in Pseudomonas syringae. Journal of bacteriology, 3282-3292.Honig, P. (1969). Principios de tecnología azucarera (Vol. Tomo I: propiedades de los azucares y no azúcares). Mexico, España y Argentina.Hugar, E. (1986). Handbook of cane sugar Engincering. Elsevier, Amsterdam: 3ra Edición.ICUMSA. (2015). ICUMSA Methods Book. . International Commission for Uniform Methods of Sugar Analisys.Inc, C. D. (2017). Conveniente Systema De Perlas. Obtenido de http://www.pvequip.cl/wp-content/uploads/2015/03/Cryobank.pdfJang, E.-k., Jang, K.-h., Koh, I., Kim, I.-H., Kim, S.-H., Kang, S., . . . Rhee, S. (2002). Molecular characterization of the levansucrase gene from Pseudomonas aurantiaca S-4380 and its expession in Escherichia coli. J. Microbiological Biotechnology, 603-609.Juang, M., Shao, W., Perego, M., & Hock, J. (2000). Multiple histidine kinases regulate entry into stationary phase and sporulation in Bacillus subtilis. Molecular microbiology, 535-542.Jurado, H., & Jarrín, V. (2015). Cinética de crecimiento de Lactobacillus lactis y determinación del efecto probiótico en cepas patógenas. Biosalud , 49-62.Korbie, D., & Mattick, J. (2008). Touchdown PCR for increased specificity and sensitivity in PCR amplification. Australian Research Council Special Research Centre for Functional and Applied Genomics, Institute for Molecular Bioscience, University of Queensland, St Lucia, 1452-1456.Kukhari, M., El Kahseh, S., Osman, A., & Hegazi, S. (2015). Investigations of the influence of dextran on sugar cane quality and sugar cane processing in Kenana sugar factory. Journal of Chemical and Pharmaceutical Research, 381-392.Kumar, S., & Agrawal, P. (2002). Studies on possibility of using ICUMSA microbiological pour plate methods for refined sugar for enumeration of microbial populations in primary and mixed sugarcane juice. Sugar tech, 7-13.Kurtzman, C., Fell, J., & Boekhout, T. (2011). The yeast a taxonomic study. ELSEVIER.Leemhuis, H., Pijning, T., Dobruchowska, J., van Leeuwen, S., & Kralj, S. (2013). Glucansucrases: Three-dimensional structures, reactions, mechanism, α-glucan analysis and their implications in biotechnology. J Biotechnol, 250–272.Legendre, B. (1992). The core/press method for predicting the sugar p¿yield from cane for use in cane payment . Sugar.Legendre, B., Clarke, M., Godshall, M., & Grisham, M. (1999). Developments in sugarcane agriculture that effect processing. Zuckerindustrie, 120-125.Mackrory, L., Cazalei, J., & Smith, L. (1984). A compararison of the microbiological associated with milling and cane diffusion. Proc. S. Afr. Sugar. Technol, 86-89.Martinez, Y. (2012). Determinación de biomasa. Laboratorio de biotecnología de los productos agroindustriales .Maruaga, M., Preotti, M., & Lucca, M. (2005). Conservación de la cepa de levadura floculenta de cerveceria LM25 mediante criopreservación. Tucumán, Argentina.McNeil, K., & Bond, J. (1980). The identification, enumeration and properties of microflora of sugarcane, cane juice and processing liquors. Technical Report No. 154 of the Sugar Research Institute, Mackay, Australia., 78.Meade, G., & Chen, J. (1991). Sugar cane handbook. nueva York: WilleyIntersciencie Publication. John Wiley and Sons.Merck, K. (Junio de 2006). Reflectoquant® Test Ácido láctico. Obtenido de EMD Millipore Corporation, 290 Concord Road, : www.analytical-test-kits.comMiller, S., Dykes, D., & Polesky, H. (1988). A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. . Nucleic Acid Research, 1215.Milintawisamai, N., Niamsanit, S., Ngasan, C., Pliansinchai, U., & Weerathaworn, P. (2009). Dextran producing microoganismos from Mitr Phuveing sugar factory , Thailand. Sugar tech, 196-199.Mora, O., Rincón, L., & Avellaneda, C. (2009). Evaluación de biocidas para el control de contaminantes en las plantas de azúcar y etanol de los Ingenios Providencia S.A. y Mayagüez S.A. VII Congreso. Asociación de Técnicas de la Caña de Azúca, 585-596.Nácher, M. (2015). Dextranos de bacterias lácticas aisladas de productos cárnicos: caracterización y aplicaciones. Tesis de doctorado, Universidad de Valencia, 5-131.Nel, S. (2014). Microbial diversity profiling in sugarcane processing: what, why and how? Proc S Afr Sug Technol Ass, 246-254.Orberá, R. (2004). Métodos moleculares de identifiacion de levaduras de interés biotecnológico. Revista Iberoamericana de Micología, 15-19.Orozco, R., & Saavedra, H. (2001). Debaryomyces hansenii growth in nonsterile seawater ClO2-peptone-containing medium. Can. J.Microbiol., 676–679.Parra, R. (2010). Bácterias ácido lácticas: papel funcional en los alimentos . Facultad de ciencias agropecuarias, 93-105.Peredo, S. (2017). Factores fisicoquímicos que afectan la sacarosa durante el proceso industrial. Memorias Seminario Internacional Producción y optimización de la sacarosa en el proceso agroindustrial de la caña de azúcar.Pham, P., Dupont, I., Roy, D., Lapointe, G., & Cerning, J. (2000). Production of exopolysaccharide by Lactobacillus rhamnosus E and Analisis of its enzymatica Degradation during Prolonged Fermentation. Applied and environmental microbiology, 2302-2310.Prieto, C. (2014). Establecimiento de los requisitos para el control del riesgo microbiológico en la producción de azúcar y mieles dentro de un enfoque de BPM, HACCP y SGI. Santiago de Cali : Cenicaña.Promega. (s.f.). Wizard Genomic DNA purification kit. 14.Purchase, B. (2001). Losses caused by micro-organism. Proceedings 24th International Society of Sugar Cane technologist, 24: 379-379.Ramirez, J., Rosas, P., Velázquez, M., Armando, J., & Arce, R. (2011). Bacterias lácticas: importancia en alimentos y sus efectos en la salud. Revista Fuente Año 2.Ramos, A. (2002). Proceso de elaboración del azúcar de caña . Cali : Tecnicaña.Ravnö, A. (2001). Microbial degradation in sugar cane diffusers. Congress of the International Society of Sugar Cane Technologist, 184-185.Ravno, B. (1977). Calorific value of South African bagase. Proc. S. Afr. Sugar. Technol. Ass, 163-173.Rein, P. (2012). Ingeniería de la caña de azúcar. Berlin: Bartens.Rodicioa, M. d., & Mendoza, M. d. (2004). Identificación bacteriana mediante secuenciación del ARNr 16S: fundamento, metodología y aplicaciones en microbiología clínica. Enferm Infecc Microbiol Clin, 22:238-45.Rodriguez, E. (2005). La dextranasa a lo largo de la industria azucarera. Biotecnologia aplicada, 12-19.SanCarlos, I. (2018). Ingenio San Carlos. Obtenido de Proceso de producción de azúcar: http://www.sancarlos.com.ec/portal/html/themes/ingenio/pdf/proceso_produccion.pdfSantos, M., Teixeira, J., & Rodrigues, A. (2000). Production of dextranucrase, dextran and frutose sucrose, using Leuconostoc mesenteroides NRRL B512. Biochemical Engineering Journal, 177-188.Sarmiento, A., & Herrera, J. (2003). Obtención y caracterización de un banco de levaduras con potencial aplicación prebiótica. Bogotá.Satyanarayana, T., & Kunze, G. (2009). Yeast Biotechnology Diversity and applications. Springer.Serrano, L. (2006). Determinación de las problaciones microbiológicas en el proceso de extracción de jugo de caña de azúcar en el ingenio Manuelita S.A. Bogotá: Tesis de grado.Shimotsu, H., & Henner, D. (1986). Modulation of Bacillus subtilis Levansucrase Gene Expression by Sucrose and Regulation of the Steady-State mRNA Level by sacU and sacQ Genes. JOURNAL OF BACTERIOLOGY, 380-388.Singer, M., & Lindquist, S. (1998). Thermotolerancia in saccharomyces cerevisiae: the yin and yang of trehalose. Elsevier Science Ltd., 460-468.Tallgren, A., Airaksinen, U., Weissenbeg, R., Ojano, H., Kuusisto, J., & Leisola, M. (1999). Exopolisacharide-producing Bacteria from sugar Beets. Applied and Environmental Microbiology, 862-864.Thanonkeo, S., Klanrit, P., & Thanonkeo, P. (2018). The potential of the newly isolated thermotolerant yeast Pichia kudriavzevii RZ8-1 for high-temperature ethanol production. Braz. J. Microbiol.Tieking, M., Korakli, M., Ehrmann, M., & Ganzle, M. (2003). In situ production of exopolysaccharides during Sourdough fermentation by cereal and intestinal isolates of lactic acid bacteria. Applied and environmental microbiology , 945-952.Torres, M. (2007). Valoración de la calidad microbiológica del producto en proceso en una planta productora de bebidas alcoholicas. Bogotá : Tesis de pregrado.Valik, L., Medvedova, A., & Liptaková. (2008). Characterization of the growth of Lactobacillus rhamnosus GG in milk at suboptimal temperatures. Journal of Food and Nutrition Research , 60-67.Velenzuela, F., & Casillas, R. (2015). El gen ARNr 16S en el estudio de comunidades microbianas marinas. Ciencias marinas.Větrovský, T., & Baldrian, P. (2013). The Variability of the 16S rRNA Gene in Bacterial Genomes and Its Consequences for Bacterial Community Analyses. A Peer-Reviewed, Open Access Journal.Wojtczak, M., Antczak, A., Mikos, P., Molska, M., Blaszcyk, I., & Papiewska, A. (2016). Changes in the content of organic acids and inorganic anions in sugar beet during long-term storage. Sugar Industry, 760-764.Zarzoso, E. (1999). Identification of yeasts by RFLP analysis of the 5.8 rRNA gene and the two ribosomal internal transcribed spacers. . Int J Syst Bacteriol.Zeikus, J. (1979). Thermophilic bacteria: ecologu, physiology and technology. Enzyme Microb. Technol, 243-252.Zhennai, T. (2000). Antimicrobial Compounds and Extracellular polysaccharides produced by Lactic acid bacteria, Structures and Propieties. Department of Food Technology.Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018info:eu-repo/semantics/openAccessAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/http://purl.org/coar/access_right/c_abf2SacarosaElaboración de azúcarBacterias termófilasLevadurasSucroseSugar elaborationTermophilic bacteriaYeastIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar.Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionPublicationORIGINALIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdfIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdfapplication/pdf3712492https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/773a2177-7957-447e-b297-ba77479bbf25/downloadde9fb92a8807f54266e06a294e9e2bc3MD51LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-859https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/0d8b5fbb-43d5-41cb-9df7-ca66e290d28b/download38d94cf55aa1bf2dac1a736ac45c881cMD52TEXTIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdf.txtIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdf.txtExtracted texttext/plain191260https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/a504a8ab-e8bb-4f4c-a266-630ed1358f05/download0b7027f558b90bac6869e3aa7824f397MD53THUMBNAILIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdf.jpgIdentificación y evaluación de la actividad metabólica de microorganismos contaminantes representativos de la etapa de elaboración de azúcar..pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1243https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/3ab20789-9a87-410e-b4ed-7878a64b7b30/download366c9a44272132be92a387717e3b6fd1MD54001/4346oai:repositorio.udes.edu.co:001/43462022-10-25 09:59:24.967https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018https://repositorio.udes.edu.coRepositorio Universidad de Santandersoporte@metabiblioteca.comTGljZW5jaWEgZGUgUHVibGljYWNpw7NuIFVERVMKRGlyZWN0cmljZXMgZGUgVVNPIHkgQUNDRVNPCgo= |