Evaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis.

60 p.

Autores:
Angarita Guzmán, Karen
Tipo de recurso:
Trabajo de grado de pregrado
Fecha de publicación:
2018
Institución:
Universidad de Santander
Repositorio:
Repositorio Universidad de Santander
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repositorio.udes.edu.co:001/4343
Acceso en línea:
https://repositorio.udes.edu.co/handle/001/4343
Palabra clave:
Phaseolus vulgaris
Frijol arbustivo
Propagación in vitro
Estrés hídrico
Bean shrub
Propagation in vitro
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Rights
openAccess
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Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018
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Antioquía, U. d. (30 de Abril de 2016). Penicillum spp. Obtenido de Aprende en línea: http://aprendeenlinea.udea.edu.co/lms/moodle/mod/page/view.php?id=100815
Arias Restrepo , J. H., Rengijo Martínez, T., & Jaramillo Carmona, M. (2007). Buenas prácticas agícolas (BPA) en la producción de fríjol voluble. Medellín , Colombia: FAO.
Artiaga Suarez, M. E. (Noviembre de 2012). Efecto del BAP y 2,4-D en la inducción in vitro de tejidos callogénicos a partir de láminas foliares, segmentos peciolares y vitro-explantes hipocotiledonares y radiculares de Moringa oleífera. Obtenido de Zamorano, Honduras: https://bdigital.zamorano.edu/bitstream/11036/1057/1/T3349.pdf
Benítez Zequeira, D. E. (2006). Vitaminas y oxidorreductores antioxidantes: defensa ante el estrés oxidativo. Rev. Cubana Invest Biomed., 1-8.
Braun, G. A., & Zucari , U. (2014). Aportes tecnológicos al cultivo de orégano. Obtenido de Facultad de agronomía de la Universidad de la Pampa: http://www.biblioteca.unlpam.edu.ar/rdata/tesis/a_braapo054.pdf
Braun, G. A., & Zuccari , U. (2014). APORTES TECNOLÓGICOS AL CULTIVO DE ORÉGANO. Obtenido de Facultad de agronomía de la universidad nacional de la Pampa: http://www.biblioteca.unlpam.edu.ar/rdata/tesis/a_braapo054.pdf
Cámara de Comercio de Bogotá. (2015). MANUAL FRIJOL. Cámara de comercio de Bogotá, 1-60.
Cantliffe, D. (1993). Advanced Propagation Systems for Biomass Species. A model system based on Sweet potato. Biomass and Bioenergy, 63-69.
Cárdenas Ávila, M. L. (30 de Noviembre de 2017). Cultivo de callo in vitro como una alternativa para evaluar resistencia a salinidad y sequía en frijol "Phaseolus vulgaris L". Obtenido de Universidad autónoma de nuevo león: http://eprints.uanl.mx/5113/1/1080124449.PDF
Cárdenas Hernández , J., Álvarez Herrera , J., Barrangan , E., & Rivera, C. M. (2010). Efecto del ácido giberélico y la 6- bencilaminopurina sobre el desarrollo de yemas en injertos de caco (Theobroma cacao L.). Revista Agronómica de Colombia, 19-27.
Cárdenas Mateus, L. A. (12 de Julio de 2016). Santander, Tierra de frijol de alta calidad. El tiempo, pág. 2.
Del Valle Esparza, M. S. (2006). Determinación de sulfonatos de alquilbenceno lineales (LAS) en biosólidos y suelos tratados con biosólidos. Obtenido de Universidad de Chile: http://repositorio.uchile.cl/tesis/uchile/2006/valle_m/sources/valle_m.pdf
Dersa Ltda. (29 de Noviembre de 2017). Dersa Ltda, jabones para lavar. Obtenido de http://www.dersa.com.co/pagina/index.php
FENALCE. (2010). Importancia de los cultivos representados por FENALCE. El cultivo de frijol, historia e importancia. Federación Nacional de Cultivadores de Cereales y Legumbres, 30-31.
Fenalce. (2011). Situción actual y perspectiva del cultivo de Fríjol. Obtenido de http://www.fenalce.org/archivos/Coyuntura_Frijol.pptx.pdf
FENALCE. (2016). Federación nacional de cultivadores de cereales y leguminosas. Obtenido de Departamento económico y apoyo a la comercialización: http://www.fenalce.org/archivos/indcer2016b.pdf
Fernández C., F., Gepts, P., & López , M. (1986). Etapas de desarrollo de la planta de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). En F. Fernández C., P. Gepts, & M. López, Etapas de desarrollo de la planta de frijol común (Phaseolus vulgaris L.) (págs. 6-9). Cali: CIAT (Centro Internacional deAgricultura Tropical). Obtenido de http://ciat-library.ciat.cgiar.org/ciat_digital/CIAT/28093.pdf
FIRA, F. I. (2016). Panorama Agroalimentario, Dirección de investigación y Evaluación económica y sectorial. Obtenido de Frijol. 2016: https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/200638/Panorama_Agroalimentario_Frijol_2016.pdf
Gamarra Reinoso, L. (2014). Regeneración in vitro vía organogénesis y aislamiento de protoplastos de Gmelina arboera a partir de plantas in vitro. Obtenido de Pontificia Universidad Javeriana: https://repository.javeriana.edu.co/bitstream/handle/10554/15436/GamarraReinosoLiesel2014.pdf?sequence=1
García R, L., Collado, R., Bermúdez Caraballoso, I., Veitía , N., Torres, D., & Romero, C. (2008). Regeneración de plantas vía organogénesis directa en Phaseolus vulgaris L. Biotecnología Vegatal, 109-114.
Gómez Gutiérrez, D. C. (2014). Regeneración in vitro a partir de semillas madura en la variedad de soya (Glycine max L.) soyica P34. Obtenido de Universidad Nacional de Colombia: http://www.bdigital.unal.edu.co/39718/1/dianacgomezg.2014.pdf
Kohashi Shibata, J., Galván Tovar, M., García Esteva, A., Yanéz Jimenez, P., Martinez Villegas, E., & Ruíz Posadas, L. (2002). Estrés hídrico y su efecto en el crecimiento de los fitomeros del frijol común (Phaseolus vulgaris L). Redalyc.com - Agricultura Técnica en México., 65-75.
Martínez Castillo, B. (Abril de 2014). Regeneración por organogénesis directa y transfromación genética de frijol (Phaseolus vulgaris L.) mediante bombardeo de micropartículas. Obtenido de https://chapingo.mx/horticultura/pdf/tesis/TESISDCH2014041107126601.pdf
Miranda, O., & Belmar, C. (1977). Déficit hídrico y frecuencia de riego en frejol (Phaseolus vulgaris L.). Agricultura Técnica (Chile), 111-117.
Misterbino Borges Garcia, E. (2009). Uso de distintos tratamientos de desinfección en el cultivo in vitro de Discorea Alata L. Clon carequeño.
Mroginski, L., ., & Roca, W. M. (1991). Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales in vitro. Obtenido de Capítulo 2: https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/54686
Nuñez Barrios, A., Ritchie, J., & Smucker, A. (1998). Efecto de la sequía en el crecimiento, la fotosíntesis y la intercepción de luz en frijol común. Agronomía mesoamericana, 1-8.
Pedroza Marique, J. A. (2009). Efecto del carbón activado, ácido indolacético (AIA) y bencil amino purina(BAP) en el desarrollo de protocromos de Epidendrum elongatum Jacq bajo condiciones in vitro. Revista Colombiana de Biotecnología, 17-32.
Pérez Pérez, J. L. (2006). Embriogénesis somática en Frijol tepari. Universidad central "Marta Abreu" de las villas , 1-88.
Polón, R., Miranda, C., Lázaro, M., & Ramírez, M. (2013). Efecto de diferentes intensidades d estrés hídrico en la fase vegetativa en el cultivo del fríjol (Phaseolus vulgaris). Ciencias Técnicas Agropecuarias, 60-64.
Quintero Jaimes, A., Espinosa Huerta , E., Acosta , A., Guzmán Maldonado, S., & Mora Aviles , A. (2010). Método eficiente de regeneración in vitro de frijol común (Phaseolus vulgaris). Agrociencia, 1-4.
Ramos Amaya, J. E. (2012). Avances de la micropropagación in vitro de plantas leñosas. Universidad Nacional Abierta y a Distancia (UNAD), 1-83.
Salazar, R. (2010). Historia del cultivo de tejidos vegetales. . Obtenido de Cultivo de tejidos vegetales Robinson Salazar Díaz.: www.calameo.com/subscriptions/632868
Salisbury, F., & Ross, C. (2000). Fisiología vegetal: desarrollo de las plantas y fisiología ambiental. España: Thomsop editores Paraninfo.
Sánchez Olate, M., Ríos, D., Rodríguez, R., Materán, E., & Pereira, G. (2004). Duración del efecto revigorizante de podas severas de plantas adultas de avellano europeo (Corylus avellana I) cv. negretta sobre el cultivo in vitro. Agricultuta Técnica Chile, 338-346.
Torrescano De Labra, L. (2014). Cultivo in vitro y evaluación de la expresión transitoria del gen uidA en Phaseolus vulgaris. Instituto politécnico Nacional, 1-88.
Ulloa, J. A., Ulloa, P. R., Ramiréz Ramiréz, j. C., & Ulloa Rangel, B. E. (2011). El frijol (Phaseolus vulgaris): su importancia nutricional y como fuente de fitoquímicos. Fuente, 1-5.
Villamizar Galvis, E. A. (2005). Estandarización del protocolo in vitro para el establecimiento de encenillo (Weinmannia tomentosa H.B & K.) y el rodamonte (Escallonia mytilloides L.F) en el laboratorio de cultivos de tejidos del jardín botánico José Celestino Mutis. San José de Cúcuta, Norte de Santander, Colombia. Obtenido de Universidad Frnacisco De Paula Santander.
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spelling Chacín Zambrano, Christian-Andreid3f18baa-7bb8-40c3-bda2-81dd5c37331a-1Angarita Guzmán, Karen8c4ae09b-cf36-4dd2-91fb-5067519c64a0-12020-01-21T21:27:06Z2020-01-21T21:27:06Z2018-01-1960 p.El frijol arbustivo en Colombia es de gran importancia en el sector agrícola y comercial (Arias Restrepo , Rengijo Martínez, & Jaramillo Carmona, 2007), por su gran contenido de proteinas y vitaminas como base nutricional de la población. Sin embargo se ha visto afectada su producción por malas prácticas agrícolas trayendo problemas fitosanitarios del cultivo en el departamento de Santander (Arias Restrepo , Rengijo Martínez, & Jaramillo Carmona, 2007). El objetivo de este trabajo de investigación fue establecer la propagación in vitro de Phaseolus vulgaris tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis, por esta razón se seleccionó un protocolo de desinfección a partir de tres tratamientos con diferentes tipos de desinfectantes a distintas concentraciones y tiempos de exposición de los embriones. Los resultados mostraron que el tratamiento T3 tuvo una mejor actividad de remoción de impurezas y eliminación de microorganismos (Solución jabonosa, Alcohol al 70%, Hipoclorito de sodio al 5% por un tiempo de 5 minutos), de la misma manera el medio de cultivo en el que se presentó una mayor formación de callos fue el medio MS modificado N°6 (con una diferencia significativa de p>0.005). Concluyendo así que el empleo de hormonas de regulación como AIA, 2,4D y 6-BAP en los medios de cultivo, indujo el proceso de la organogénesis indirecta en todas las concentraciones evaluadas, lográndose un 100% de formación en Me6 a concentraciones de 500 uL; 2000 uL 500 uL respectivamente.The shrub-like beans in Colombia is of great importance in the agricultural and commercial sectors (Arias Restrepo, Rengijo Martínez, & Jaramillo Carmona, 2007), by its high content of proteins and vitamins as a nutritional basis for the population. However its production has been affected by poor agricultural practices bringing phytosanitary problems of culture in the Department of Santander (Arias Restrepo, Rengijo Martínez, & Jaramillo Carmona, 2007). The objective of this research was to establish the propagation in vitro of Phaseolus vulgaris tolerant to water stress by the technique of organogenesis, for this reason was selected from three disinfection Protocol treatments with different types of disinfectants at different concentrations and times of exposure of embryos. Results showed that T3 treatment had a best activity of removal of impurities and elimination of microorganisms (soapy, Alcohol), 70%, sodium hypochlorite 5% for a period of 5 minutes in the same way the culture medium in whicharose a more callus formation was the modified MS medium N ° 6 (with a significant difference p > 0.005). So in conclusion the use of hormones for regulation as AIA, 2, 4 d and 6-BAP in the culture media, induced the process of indirect organogenesis in all concentrations evaluated, achieving 100% Me6 training at concentrations of 500 uL; 2000 uL 500 uL respectivelyPregradoMicrobiólogo IndustrialLISTA DE FIGURAS ................................................................................................................................... 7 LISTA DE TABLAS ..................................................................................................................................... 9 1. INTRODUCCIÓN............................................................................................................................... 13 2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ............................................................................................ 15 3. JUSTIFICACIÓN ................................................................................................................................ 16 4. HIPÓTESIS ......................................................................................................................................... 17 5. OBJETIVOS ........................................................................................................................................ 18 6. MARCO TEÓRICO ............................................................................................................................ 19 7. MARCO REFERENCIAL .................................................................................................................. 27 8. METODOLOGÍA ............................................................................................................................... 29 8.1 Localización de la investigación ................................................................................................. 29 8.3 Fases de la investigación ............................................................................................................. 29 8.4.1.1 Obtención del material vegetal ................................................................................................ 29 8.4.1.2 Desinfección de los explantes (embriones de frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris). .............. 30 9. RESULTADOS Y DISCUSIÓN. ........................................................................................................ 33 10. CONCLUSIONES........................................................................................................................... 43 11. RECOMENDACIONES ................................................................................................................. 44 12. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................................. 45 ANEXOS ..................................................................................................................................................... 51application/pdfT 33.18 A631ehttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/4343spaBucaramanga : Universidad de Santander, 2018Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y AgropecuariasMicrobiología IndustrialAlbino, R., Turret , A., Cortés , I., Livera, M., & Mendoza , C. (2015). Distribución de raíces y de radiación solar en el dosel de maíz y Fríjol intercalado. Agrociencia- México, 2-9.Antioquía, U. d. (30 de Abril de 2016). Penicillum spp. Obtenido de Aprende en línea: http://aprendeenlinea.udea.edu.co/lms/moodle/mod/page/view.php?id=100815Arias Restrepo , J. H., Rengijo Martínez, T., & Jaramillo Carmona, M. (2007). Buenas prácticas agícolas (BPA) en la producción de fríjol voluble. Medellín , Colombia: FAO.Artiaga Suarez, M. E. (Noviembre de 2012). Efecto del BAP y 2,4-D en la inducción in vitro de tejidos callogénicos a partir de láminas foliares, segmentos peciolares y vitro-explantes hipocotiledonares y radiculares de Moringa oleífera. Obtenido de Zamorano, Honduras: https://bdigital.zamorano.edu/bitstream/11036/1057/1/T3349.pdfBenítez Zequeira, D. E. (2006). Vitaminas y oxidorreductores antioxidantes: defensa ante el estrés oxidativo. Rev. Cubana Invest Biomed., 1-8.Braun, G. A., & Zucari , U. (2014). Aportes tecnológicos al cultivo de orégano. Obtenido de Facultad de agronomía de la Universidad de la Pampa: http://www.biblioteca.unlpam.edu.ar/rdata/tesis/a_braapo054.pdfBraun, G. A., & Zuccari , U. (2014). APORTES TECNOLÓGICOS AL CULTIVO DE ORÉGANO. Obtenido de Facultad de agronomía de la universidad nacional de la Pampa: http://www.biblioteca.unlpam.edu.ar/rdata/tesis/a_braapo054.pdfCámara de Comercio de Bogotá. (2015). MANUAL FRIJOL. Cámara de comercio de Bogotá, 1-60.Cantliffe, D. (1993). Advanced Propagation Systems for Biomass Species. A model system based on Sweet potato. Biomass and Bioenergy, 63-69.Cárdenas Ávila, M. L. (30 de Noviembre de 2017). Cultivo de callo in vitro como una alternativa para evaluar resistencia a salinidad y sequía en frijol "Phaseolus vulgaris L". Obtenido de Universidad autónoma de nuevo león: http://eprints.uanl.mx/5113/1/1080124449.PDFCárdenas Hernández , J., Álvarez Herrera , J., Barrangan , E., & Rivera, C. M. (2010). Efecto del ácido giberélico y la 6- bencilaminopurina sobre el desarrollo de yemas en injertos de caco (Theobroma cacao L.). Revista Agronómica de Colombia, 19-27.Cárdenas Mateus, L. A. (12 de Julio de 2016). Santander, Tierra de frijol de alta calidad. El tiempo, pág. 2.Del Valle Esparza, M. S. (2006). Determinación de sulfonatos de alquilbenceno lineales (LAS) en biosólidos y suelos tratados con biosólidos. Obtenido de Universidad de Chile: http://repositorio.uchile.cl/tesis/uchile/2006/valle_m/sources/valle_m.pdfDersa Ltda. (29 de Noviembre de 2017). Dersa Ltda, jabones para lavar. Obtenido de http://www.dersa.com.co/pagina/index.phpFENALCE. (2010). Importancia de los cultivos representados por FENALCE. El cultivo de frijol, historia e importancia. Federación Nacional de Cultivadores de Cereales y Legumbres, 30-31.Fenalce. (2011). Situción actual y perspectiva del cultivo de Fríjol. Obtenido de http://www.fenalce.org/archivos/Coyuntura_Frijol.pptx.pdfFENALCE. (2016). Federación nacional de cultivadores de cereales y leguminosas. Obtenido de Departamento económico y apoyo a la comercialización: http://www.fenalce.org/archivos/indcer2016b.pdfFernández C., F., Gepts, P., & López , M. (1986). Etapas de desarrollo de la planta de frijol común (Phaseolus vulgaris L.). En F. Fernández C., P. Gepts, & M. López, Etapas de desarrollo de la planta de frijol común (Phaseolus vulgaris L.) (págs. 6-9). Cali: CIAT (Centro Internacional deAgricultura Tropical). Obtenido de http://ciat-library.ciat.cgiar.org/ciat_digital/CIAT/28093.pdfFIRA, F. I. (2016). Panorama Agroalimentario, Dirección de investigación y Evaluación económica y sectorial. Obtenido de Frijol. 2016: https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/200638/Panorama_Agroalimentario_Frijol_2016.pdfGamarra Reinoso, L. (2014). Regeneración in vitro vía organogénesis y aislamiento de protoplastos de Gmelina arboera a partir de plantas in vitro. Obtenido de Pontificia Universidad Javeriana: https://repository.javeriana.edu.co/bitstream/handle/10554/15436/GamarraReinosoLiesel2014.pdf?sequence=1García R, L., Collado, R., Bermúdez Caraballoso, I., Veitía , N., Torres, D., & Romero, C. (2008). Regeneración de plantas vía organogénesis directa en Phaseolus vulgaris L. Biotecnología Vegatal, 109-114.Gómez Gutiérrez, D. C. (2014). Regeneración in vitro a partir de semillas madura en la variedad de soya (Glycine max L.) soyica P34. Obtenido de Universidad Nacional de Colombia: http://www.bdigital.unal.edu.co/39718/1/dianacgomezg.2014.pdfKohashi Shibata, J., Galván Tovar, M., García Esteva, A., Yanéz Jimenez, P., Martinez Villegas, E., & Ruíz Posadas, L. (2002). Estrés hídrico y su efecto en el crecimiento de los fitomeros del frijol común (Phaseolus vulgaris L). Redalyc.com - Agricultura Técnica en México., 65-75.Martínez Castillo, B. (Abril de 2014). Regeneración por organogénesis directa y transfromación genética de frijol (Phaseolus vulgaris L.) mediante bombardeo de micropartículas. Obtenido de https://chapingo.mx/horticultura/pdf/tesis/TESISDCH2014041107126601.pdfMiranda, O., & Belmar, C. (1977). Déficit hídrico y frecuencia de riego en frejol (Phaseolus vulgaris L.). Agricultura Técnica (Chile), 111-117.Misterbino Borges Garcia, E. (2009). Uso de distintos tratamientos de desinfección en el cultivo in vitro de Discorea Alata L. Clon carequeño.Mroginski, L., ., & Roca, W. M. (1991). Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales in vitro. Obtenido de Capítulo 2: https://cgspace.cgiar.org/handle/10568/54686Nuñez Barrios, A., Ritchie, J., & Smucker, A. (1998). Efecto de la sequía en el crecimiento, la fotosíntesis y la intercepción de luz en frijol común. Agronomía mesoamericana, 1-8.Pedroza Marique, J. A. (2009). Efecto del carbón activado, ácido indolacético (AIA) y bencil amino purina(BAP) en el desarrollo de protocromos de Epidendrum elongatum Jacq bajo condiciones in vitro. Revista Colombiana de Biotecnología, 17-32.Pérez Pérez, J. L. (2006). Embriogénesis somática en Frijol tepari. Universidad central "Marta Abreu" de las villas , 1-88.Polón, R., Miranda, C., Lázaro, M., & Ramírez, M. (2013). Efecto de diferentes intensidades d estrés hídrico en la fase vegetativa en el cultivo del fríjol (Phaseolus vulgaris). Ciencias Técnicas Agropecuarias, 60-64.Quintero Jaimes, A., Espinosa Huerta , E., Acosta , A., Guzmán Maldonado, S., & Mora Aviles , A. (2010). Método eficiente de regeneración in vitro de frijol común (Phaseolus vulgaris). Agrociencia, 1-4.Ramos Amaya, J. E. (2012). Avances de la micropropagación in vitro de plantas leñosas. Universidad Nacional Abierta y a Distancia (UNAD), 1-83.Salazar, R. (2010). Historia del cultivo de tejidos vegetales. . Obtenido de Cultivo de tejidos vegetales Robinson Salazar Díaz.: www.calameo.com/subscriptions/632868Salisbury, F., & Ross, C. (2000). Fisiología vegetal: desarrollo de las plantas y fisiología ambiental. España: Thomsop editores Paraninfo.Sánchez Olate, M., Ríos, D., Rodríguez, R., Materán, E., & Pereira, G. (2004). Duración del efecto revigorizante de podas severas de plantas adultas de avellano europeo (Corylus avellana I) cv. negretta sobre el cultivo in vitro. Agricultuta Técnica Chile, 338-346.Torrescano De Labra, L. (2014). Cultivo in vitro y evaluación de la expresión transitoria del gen uidA en Phaseolus vulgaris. Instituto politécnico Nacional, 1-88.Ulloa, J. A., Ulloa, P. R., Ramiréz Ramiréz, j. C., & Ulloa Rangel, B. E. (2011). El frijol (Phaseolus vulgaris): su importancia nutricional y como fuente de fitoquímicos. Fuente, 1-5.Villamizar Galvis, E. A. (2005). Estandarización del protocolo in vitro para el establecimiento de encenillo (Weinmannia tomentosa H.B & K.) y el rodamonte (Escallonia mytilloides L.F) en el laboratorio de cultivos de tejidos del jardín botánico José Celestino Mutis. San José de Cúcuta, Norte de Santander, Colombia. Obtenido de Universidad Frnacisco De Paula Santander.Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018info:eu-repo/semantics/openAccessAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/http://purl.org/coar/access_right/c_abf2Phaseolus vulgarisFrijol arbustivoPropagación in vitroEstrés hídricoBean shrubPropagation in vitroHydric stressEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis.Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionPublicationORIGINALEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdfEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdfapplication/pdf2246603https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/d1b4e48e-6612-4a80-84dd-2fb01cab583d/downloaddb699242a94797c29136742e2a137dd8MD51LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-859https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/e8b55618-806f-4c5c-aaee-db012af68307/download38d94cf55aa1bf2dac1a736ac45c881cMD52TEXTEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdf.txtEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdf.txtExtracted texttext/plain64139https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/2c6f19cc-6048-4b9b-b335-27ad968c648e/download33a5523caf03960ca949945b2b65273cMD53THUMBNAILEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdf.jpgEvaluación del crecimiento in vitro del frijol arbustivo (Phaseolus vulgaris) tolerante al estrés hídrico mediante la técnica de organogénesis..pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1252https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/b2e34e58-8b31-4245-b7d6-79283de73c10/download86521fd2dfa3454d51a6589f994974a1MD54001/4343oai:repositorio.udes.edu.co:001/43432022-10-25 11:21:37.292https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2018https://repositorio.udes.edu.coRepositorio Universidad de Santandersoporte@metabiblioteca.comTGljZW5jaWEgZGUgUHVibGljYWNpw7NuIFVERVMKRGlyZWN0cmljZXMgZGUgVVNPIHkgQUNDRVNPCgo=