Estandarización del sistema de inmersión temporal para la micropropagación in vitro de cattleya schroederae
55 p. Cd
- Autores:
-
Ávila Duarte, Duban A.
- Tipo de recurso:
- Trabajo de grado de pregrado
- Fecha de publicación:
- 2019
- Institución:
- Universidad de Santander
- Repositorio:
- Repositorio Universidad de Santander
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- Acceso en línea:
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- Palabra clave:
- Oxidación.
Hiperhidricidad
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Ávila Duarte, Duban A.f4c8606e-d8ec-444d-a7ae-0087d1ee199c-1Chacín Zambrano, Christian-Andrei2019-02-05T19:30:56Z2019-02-05T19:30:56Z2019-01-2255 p. CdThe temporary immersion system, known by its acronym (SIT), has emerged as a new alternative for the micropropagation of plant tissues, providing this high rate of multiplication and providing a higher quality to the plant in its acclimatization phase, therefore, the objective of this study, was based on the standardization of a temporary immersion system for the micropropagation of the orchid Cattleya schroederae in the plant tissue laboratory of the University of Santander. For this, the operational conditions of the temporary immersion system were established, where after that, two variables were evaluated, the time and frequency of immersion. The times for SIT-1, was an immersion frequency of 6 hours (4 times / day) with a dive time: 3 minutes, for SIT-2, an immersion frequency of 4 hours (6 times / day) with an 8-minute immersion time and SIT-3, an immersion frequency of 12 hours (2 times / day) and an immersion time of 20 minutes. The study was evaluated over seven weeks, showing that the best response in number of shoots, number of leaves, height and weight, was obtained with the treatment number one, which was working with an immersion frequency every 6 hours (4 times / day) and one immersion time: 3 minutes. Likewise, there was no hyperhydricity or oxidation between the treatments. These results allow establishing an efficient methodology for the micropropagation of Cattleya schroederae through the use of a bioreactor system.El sistema de inmersión temporal, conocido por sus siglas (SIT), ha surgido como una nueva alternativa para la micropropagación de tejidos vegetales, brindando este una alta tasa de multiplicación y proporcionando una mayor calidad a la planta en su fase de aclimatación, por ende, el objetivo de este estudio, se basó en la estandarización de un sistema de inmersión temporal para la micropropagación de la orquídea Cattleya schroederae en el laboratorio de tejidos vegetales de la Universidad de Santander. Para ello, se establecieron las condiciones operacionales del sistema de inmersión temporal, donde posterior a ello, se evaluaron dos variables, el tiempo y frecuencia de inmersión. Los tiempos para el SIT-1, fue una frecuencia de inmersión de 6 horas (4 veces/día) con un tiempo inmersión: 3 minutos, para el SIT-2, una frecuencia de inmersión de 4 horas (6 veces/día) con un tiempo de inmersión de 8 minutos y el SIT-3, una frecuencia de inmersión de 12 horas (2 veces/día) y un tiempo de inmersión de 20 minutos. El estudio se evaluó durante siete semanas, mostrando que la mejor respuesta en cuanto a número de brotes, número de hojas, altura y peso, se obtuvo con el tratamiento número uno, el cual estaba funcionando con una frecuencia de inmersión cada 6 horas (4 veces/día) y un tiempo inmersión: de 3 minutos. Así mismo, no se presentó hiperhidricidad ni oxidación entre los tratamientos. Estos resultados, permiten establecer una metodología eficiente para la micropropagación de Cattleya schroederae mediante el uso de un sistema de biorreactores.PregradoMicrobiólogo IndustrialContenido 1. Introducción ........................................................................................................................... 7 2 PROBLEMA DE INVESTIGACIÓN .................................................................................... 10 2.1 Planteamiento del problema ............................................................................................. 10 2.2 Justificación ....................................................................................................................... 11 3. MARCO TEÓRICO ............................................................................................................ 13 3.1 Cultivo in vitro de “tejidos vegetales” ............................................................................. 13 3.1.1 Métodos de regeneración de tejidos vegetales. ............................................................ 14 3.1.1.1 Embriogénesis somática......................................................................................... 14 3.1.1.2 Organogénesis. ....................................................................................................... 14 3.2 Sistema de inmersión temporal (SIT) .............................................................................. 15 3.2.1 Clases de sistema de inmersión temporal (SIT). .......................................................... 15 3.2.1.1 Biorreactores tipo RITA. ....................................................................................... 15 3.2.1.2 Biorreactores tipo BIT. .......................................................................................... 16 3.2.1.3 Biorreactores tipo BIG. .......................................................................................... 17 3.3 Orquídeas ........................................................................................................................... 18 3.3.1 Cattleya Schroederae. .................................................................................................. 18 3.3.1.1 Ecología. ................................................................................................................ 19 3.3.1.2 Distribución geográfica. ......................................................................................... 19 4. MARCO REFERENCIAL (ESTADO DE ARTE) ........................................................... 21 5. HIPÓTESIS ............................................................................................................................. 25 5.1 Hipótesis nula .................................................................................................................... 25 5.2 Hipótesis alternativa ......................................................................................................... 25 6. OBJETIVOS ............................................................................................................................ 26 6.1 Objetivo general ................................................................................................................ 26 6.2 Objetivos específicos ......................................................................................................... 26 7. METODOLOGÍA ................................................................................................................... 27 7.1 Diseño de estudio ............................................................................................................... 27 7.2 Ubicación ............................................................................................................................ 27 7.3 Población y muestra .......................................................................................................... 27 7.4 Fases de investigación ....................................................................................................... 27 7.4.1 Establecimiento de las condiciones operacionales de los biorreactores del sistema de inmersión temporal. ............................................................................................................... 28 7.4.2 Evaluación de las variables para la micropropagación de Cattleya schroederae. ........ 28 8. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ............................................................................................ 29 8.1 Establecer las condiciones operacionales del biorreactor del sistema de inmersión temporal ................................................................................................................................... 29 8.2 Evaluación de las variables para la micropropagación de Cattleya schroederae en el sistema de inmersión temporal............................................................................................... 31 8.2.1 Material vegetal. ........................................................................................................... 31 8.2.2 Medición de las variables. ............................................................................................ 32 8.2.2.1 Número de brotes. .................................................................................................. 32 8.2.2.2 Número de hojas. ................................................................................................... 33 8.2.2.3 Altura. .................................................................................................................... 35 8.2.2.4 Peso. ....................................................................................................................... 36 9. CONCLUSIONES................................................................................................................... 38 10. RECOMENDACIONES ...................................................................................................... 39 11. Bibliografía ............................................................................................................................ 40 12. ANEXOS ................................................................................................................................ 42Ej. 1application/pdfT 33.19 A945ehttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/1049spaBucaramanga : Universidad de Santander, 2019Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y AgropecuariasMicrobiología IndustrialCruzat G, R. (2009). Resultados y lecciones aprendidas. En Sistema de Inmersión Temporal En Especies Anuales, Frutales y vides (págs. 5-26). Región Metropolitana del Biobío y de Los Ríos ,Chile: Ograma Ltda.Quiala, E., Barbón, R., Capote, A., Pérez Alonso, N., Chávez, M., De Feria, M., & Jiménez, E. (2014). Scaling-up the biomass production of Cymbopogon citratus L. Revista Biotecnología Vegetal, 14(2), 67 - 71,.Aitken-Christie, J., Toyoki, K., & Smith, M. (1995). Automatización en el cultivo de tejidos vegetales - introducción general y descripción general. En J. Aitken-Christie, K. Toyoki, & T. Shinsaku, Automatización y control ambiental en cultivos de tejidos vegetales (págs. 1-18). Springer, Dordrecht.Bello, J., Spinoso, J., & Iglesias, A. (2014). Establecimiento de un sistema de biorreactores para la micropropagación de vainillla (Vanilla planifolia). Revista Agro Productividad, 63-68.Béllo-Béllo, J., & Iglesias-Andreu, L. (2015). Desarrolla el INBIOTECA sistemas de biorreactores para la micropropagación de especies vegetales de importancia para el estado de Veracruz. Agro Entorno, INBIOTECA, 7-8.Calderón Sáenz, E. 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Revista UNAM, 483-495.Martinez, S., Bonilla, M., & López, H. (2015). LIST OF ORCHIDACEAE FROM SANTANDER AND COMMENTS ON THEIR ENDEMIC SPECIES. Magazine, Faculty of Basic Sciences., 54-111.Mendez, J. (11 de 09 de 2017). Carbón en Agricultura. Engormix, comunidad agropecuaria.Monroy Álvarez, I. E., & Filgueira Duarte, J. J. (2010). Organogenesis directa en medio líquido en clavel en un biorreactor de bajo costo. Revista Facultad De Ciencias Basicas, 84-93.Monroy, J., & Hilguera, f. (2016). ggfhfhfhffhh. ffhffh, 34 45.OJEDA ZACARIAS, C. (1996). INDUCCION DE ORGANOGENESIS Y EMBRIOGENESIS EN Pinus cembroides. (tesis de grado).Oviedo-Pereira, D., Venutolo, S., & Lozano , S. (2016). Micropropagación de Stevia rebaudiana Bertoni, un Cultivo promisorio de México. Revista Biotecnología, 14-26.Pedroza Manrique, J. A. (2009). Efecto del carbón activado, ácido indolacético (AIA) y bencil amino purina (BAP) en el desarrollo de protocormos de Epidendrum elongatum Jacq bajo condiciones in vitro. 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Colombia: Semana.Venutolo, S., & Aguilar Salazar, T. (2015). Micropropagación masiva de Stevia rebaudiana Bertoni en sistemas de inmersión temporal. Revista INCA, 50-57.Vilchez, J., & Albany, N. (2014). Multiplicación in vitro de Psidium guajava L. en sistemas de inmersión temporal. Revista Colombiana de Biotecnología, 1-8.Perez, M., Vega, V., Delgado, M., Torees, Jorge y Pino, Arletys. (2011) Nueva alternativa para la micropropagación en inmersión temporal del cultivar de plátano vianda. Revista Colombiana Biotecnologica. 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