Evaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro.

66 p. Cd.

Autores:: Moreno Riaño, Cindy Paola

Tipo de recurso:: Trabajo de grado de pregrado

Fecha de publicación:: 2017

Institución:: Universidad de Santander

Repositorio:: Repositorio Universidad de Santander

Idioma:: spa

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Programa de ordenamiento ambiental – POA evaluación económica opciones productivas amazonia peruana. Iquitos, Perú. ANANDHAM, R., Sridar, R., Nalayini, P., Poonguzhali, S., Madhaiyan, M., Tongmin. 2007. Potential for plant growth promotion in groundnut (Arachis hypogaea L.) cv. ALR-2 by co-inoculation of sulfur-oxidizing bacteria and Rhizobium. Microbiological Research. Japón. 162 (2007): 139-153 ANGULO, C. J. P.; GARCIA, D. A.; PEDRAZA, A. M.; MARTÍNEZ, S. M. M. Y GUTIÉRREZ, R. V. 2012. Diseño de un medio para la producción de un co-cultivo de bacterias fosfato solubilizadoras con actividad fosfatasa. Universitas Scientiarum, Vol. 17 N° 1: 43-52. APONTE, C., GARCÍA, L.V., PÉREZ-RAMOS, I.M., GUTIÉRREZ, E., MARAÑÓN, T. 2010. Oak trees and soil interactions in Mediterranean forests: a positive feedback model. Journal of Vegetation Science 22: 856–867. ASTORGA, Q. K.; MONTERO, M. K.; ZÚÑIGA, V. C.; BRENES, M. J. Y RIVERA, M. W. 2013. Evaluación del antagonismo de Trichoderma sp. Y Bacillus subtilis contra tres patógenos del ajo. Tecnología en Marcha. Vol. 27, No 2. Pág 82-91. AYALA, M. G. A. 2016. Análisis de crecimiento y producción de 3 variedades de sacha inchi (Plukenetia volubilis.), en el municipio de tena Cundinamarca. Trabajo de grado para optar el título de Ingeniero agrónomo. Bogotá D.C. BAUER A W, Kirby W M M, Sherris J C & Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Amer. I. C/in. Pathol. 45:493-6, 1966. (Depts. Microbiology and Medicine, Univ. Washington, Sch. Med., Seattle. WAI) BARRAGAN, C., Zambrano, D., pedriza, A., y Bobadilla, R. (2003). Producción de bacterias fosfato Solubilizadoras mediante fermentación discontinua en caldo de Pikovskaya modificado (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, Colombia. BAREA J.M., M.J. Pozo and C. Azcon-Aguilar.(2005).Microbial cooperation in the rizosphere. Journal of Experimental Botany. Granada, España. 56 (417):1761- 1778. BOIERO, L., Perrig D., Masciarelli, O., Penna, C., Cassán, F. & Luna, V. 2007. Phytohormone production by three strains of Bradyrhizobium japonicum and possible physiological and technological implications. Applied Microbiology and Biotechnology. Argentina. (74):874-880 BELTRÁN, P. M. E. 2014. La solubilización de fosfatos como estrategia microbiana para promover el crecimiento vegetal. Corpoica Cienc. Tecnol. Agropecu. 15(1) 101-113. BOBADILLA C, Rincón S. Aislamiento y producción de bacterias fosfato solubilizadoras a partir de compost obtenido de residuos de plaza. [Tesis de grado]. Colombia; 2008. BOLLETA A., VENANZI S., KRÜGER H. Respuestas del cultivo de trigo a la inoculación con biofertilizantes en el sur de la provincia de Buenos Aires. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Estación Experimental Agropecuaria Bordenave. Buenos Aires, Argentina, 2002. BLESSON, J.; SAJI, V. C.; NIVYA, R. M. Y KUMAR, R. 2015. Synergistic antibacterial activity of natural plant extracts and antibiotics against methicillin resistant staphylococcus aureus (mrsa). World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. Volume 4, Issue 03, 741-763. BRENNER, K, You, L & Arnold, F. (2008). Engineering Microbial Consortia: a new frontier in synthetic biology. En: Trends in Biotechnology, 26 (9): 483-489 CAMELO, M., M. Vera y B. Bonilla. 2011. Mecanismos de acción de las rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal. Revista Corpoica-Ciencia y Tecnología Agropecuaria 12(2): 159-166 CANO; M. A., 2011. Interacción de microorganismos benéficos en plantas: micorrizas, Trichoderma spp. Y Pseudomonas spp. UNA REVISIÓN. Rev. U.D.C.A Act. & Div. Cient. 14(2): 15 – 31. CASSAN, F., Maiale, S., Masciarelli, O., Vidal, A., Luna, V. & Ruiz, O. 2009. Cadaverine production by Azospirillum brasilense and its possible role in plant growth promotion and osmotic stress mitigation. European Journal of Soil Biology. Argentina. (45):12 - 19. CARVAJAL E; Valbuena j, y Viteri S., 2012 In vitro evaluation of Native Microorganisms for their Antagonism against Moniliophthora roreri Cif & Parin Cocoa (Theobroma cacao L.). CELIS, B. L.X. Y GALLARDO, I. R., 2008. Estandarización de métodos de detección para promotores de crecimiento vegetal (ácido indol acético y giberelinas) en cultivos microbianos. Pontificia universidad Javeriana. Trabajo presentado para optar al título de microbiólogo agrícola y veterinario. Bogotá. CHEN, Y. P.; REKHA, P. D.; ARUN, A. B. Y SHEN, F. T. 2005. Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities. Applied Soil Ecology 34: 33-41. CUESTA, M. A.; MONSALVE, F. J.; PEÑA, C.; GALINDO, E. Y ROLDÁN, T. A. M., 2005. Evaluación de medios de cultivo alternativos para la producción de alginatos por Azotobacter vinelandii. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín, Facultad de Minas. CUMDOM M., Mazza S., Gutierrez S., and Mazzanti M. 2003. Evaluacion de trichoderma sp. Contra Rhizoctonia solani in vitro e invernáculo. El-Tarabily KA (2006) Rhizosphere-competent isolates of streptomycete and non-streptomycete actinomycetes capable of producing cell-wall degrading enzymes to control Pythium aphanidermatum damping-off disease of cucumber. Canadian Journal of Botany. United Arab Emirates. (84):211–222 El-Tarabily KA, Nassar , A. & Sivasithamparam K.,2008 Promotion of growth of bean (Phaseolus vulgaris L.) in a calcareous soil by a phosphate-solubilizing, rhizosphere-competent isolate of Micromonospora endolithica. Applied Soil Ecology. United Arab Emirates. (3 9): 1 6 1 – 1 7 1 FIBACH-PALDI, S.; Burdman, S. & Okon, Y. Key physiological properties contributing to rhizosphere adaptation and plant growth promotion abilities of Azospirillum brasilense. FEMS Microbiol Lett. 326:99-108, 2012. FOLLEGATTI-ROMERO L, Piantino C, Grimaldi R, Cabral F. Supercritical CO2 extraction of omega-3 rich oil from Sacha inchi (Plukenetia volubilis L.) seeds. J. of Supercritical Fluids. 2009; 49: 323-329. FRANCO-CORREA, M., Gómez-Méndez, D., Castro-Medina, N., Rendón-Ruiz, M. 2008. Polihidroxialcanoatos en actinomicetos nativos de suelos Colombianos. Revista Peruana de Biología. 16(1): 115- 118 GALEON. 2008. Proyecto sacha inchi. -Sacha Inchi (Disponoble en: http://proyecto sachainchi.galeon.com/). GÓMEZ, M.E.J. 2004. Monografía y cultivo de sacha inchi, oleaginosas promisoria para la diversificación productiva en el trópico. Corporación Colombiana de Investigación agropecuaria CORPOICA. Primera edición. GUTIÉRREZ L. F., R. L. 2011. Chemical composition of Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.) seeds and characteristics of their lipid fraction. Grasas y aceites, 62 (1), 76-83. GLICK BR, Todorovic B, Czarny J, Cheng Z, Duan J & McConkey B (2007) Promotion of plant growth by bacterial ACC deaminase. Critical Reviews in Plant Science. Canadá. (26):227–242 HANSSEN, H.; Schmitz, H.; Preedy, R.; Watson, R.; Vinood, B. 2011. Sachai inchi (Plukentia volubilis L.) Nut oil and its therapeutic and nutritional uses. Nuts and seeds in health and disease prevention. Hamburgo, Germany. HAMAKER B, Valles C, Gilman R, Hardmeier D, Clark H, García H, Gonzales A, Kohlstad I, Castro M. Amino Acid and Fatty Acid Profiles of the Inca Peanut (Plukenetia volubilis L.) Cereal Chem. 1992; 69:461-463. HERNÁNDEZ, A. 2002. Obtención de un biopreparado a partir de rizobacterias asociadas al cultivo del maíz (Zea Mays L.). HERNÁNDEZ, Y, 2016 Formulación de un consorcio microbiano mediante criterios de compatibilidad y sinergismo. (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Universidad de Snatenader, Bucaramanga, Colombia. HUGHES, K. 2009. Potencial del Camu camu y Sacha inchi en el mercado estadounidense. Comisión para la Promoción de Exportaciones – PROMPEX; Perú Biocomercio. Lima, Perú. Pp. 1-36. JANISIEWICZ, W.J. and Korsten, L. (2002) Biological Control of Postharvest Diseases of Fruits. Annual Review of Phytopathology, 40, 411-441. JORGE M. Vivanco, Eric Cosio, Víctor M. Loyola-Vargas y Héctor E. Flores., 2005 Mecanismos químicos de defensa de las plantas. KAPRI, A. Y TEWARI, L. 2010. Phosphate solubilization potential and phosphatase activity of rhizospheric Trichoderma spp. Brazilian Journal of Microbiology. (1):1-9. Kucey R M N. 1983. Phosphate solubilizing bacteria and fungi in various cultivated and virgin Alberta soils. Can. J. Soil Sci. 63:671-678. KRAUS, G.F.; I. DRUZHININA; W. GAMS; J. BISSETT; D. ZAFARI; G. SZAKACS; A. KOPTCHINSKI; H. PRILLINGER; R. ZARE Y C.P. KUBIEK. 2004. Trichoderma brevicompactum sp. nov. Mycol. 96(5), 1059-1073. LEON, J.; APONTE, J. J.; CUADRA, D ́L.; GALINDO, N.; JARAMILLO, L.; VALLEJO, M. Y MARGUET, E. 2016. Actinomicetos aislados de Argopecten purpuratus de enzimas extracelulares y con actividad inhibitoria de patógenos marinos. Revista de Biología Marina y Oceanografía. Vol. 51, No1: 69-80. LOAIZA, E. M. E. 2013. “Manejo agroecológico del cultivo de sacha inchi (Plukenetia volubilis)”. Previa a la obtención del título de: tecnólogo agrícola. Guayaquil –Ecuador. LÓPEZ, T, Dominguez, L & García, J. (2007). Arreglo estructural de un consorcio microbiano de interés alimentario en la producción del vinagre. Trabajo presentado en el octavo Congreso Nacional de Microscopía, Octubre, México. LUGTENBERG B, Kamilova F. Plant-growth-promoting rhizobacteria. Annu Rev Microbiol. 2009;63:541–55. MADHAIYAN, M., Poonguzhali, S., Senthilkumar, M., Sundaram, SP. & Tongmin, S. 2009. Nodulation and plant-growth promotion by methylotrophic bacteria isolated from tropical legumes. Microbiological Research. Japón. (164): 114— 120. MAHESHWARI, D. K. 2011. Bacteria in Agrobiology: Plant Nutrient Management.Haridwar (Uttarakhand) India. Springer. MALIK, D.K. and S.S. SINDHU, 2011. Production of indole acetic acid by Pseudomonas sp.: Effect of coinoculation with Mesorhizobium sp. Ciceron nodulation and plant growth of chickpea (Cicer arietinum). Physiol.. Mol. Biol. Plants, 17: 25-32. MANCO, E. 2003. Situación y avances del cultivo de sacha inchi en el Peru. PRONIRGEB-INIEA. E. E. “El Provenir”, Juan Guerra-Tarrapoto. Pp. 50. MANTILLA C, Y NEGRETE P., 2015. Efecto de un bioinoculante a partir de consorcios microbianos nativos fosfato solubilizadores, en el desarrollo de pastos Angleton (Dichantium aristatum). MCGILL, W. B. (2007). The Physiology and Biochemistry of Soil Organismsm (Cap. 9). En: Paul, E. (Ed), Soil Microbiology, Ecology and Biochemistry, Oxford: Elsevier. MELNICK, R., N. Zidack, B. Bailey, S. Maximova, M. Guiltinan and P. Backman. 2008. Bacterial endophytes: Bacillus spp. from annual crops as potential biological control agents of black pod rot of cacao. Biological Control 46(1): 46-56. MENDOZA C., VESGA F. Utilización de inoculantes microbianos para el mejoramiento de suelos contaminados por la extracción de carbón mineral. Universidad Industrial de Santander, Facultad de Ciencias, Escuela de Biología. Bucaramanga, Colombia 1999 MEUNCHANG, S., THONGRA-AR, P., SANOH, S., KAEWSURALIKHIT, S. Y ANDO, S. 2006. Development of rhizobacteria as a biofertilizer for rice production. International workshop on sustained management of the soil-rhizosphere system for efficient crop production and fertilizer use 16th-20th October 2006. Land Development Department, Bangkok Thailand. pp. 1-7. MANJARRES, K.; PIÑEROS, Y. RODRIGUEZ, S. E. 2011. Evaluación del complejo enzimático producido mediante el cocultivo de Aspergillus sp. Y Trichoderma sp. En fase sólida sobre residuos de palma. Bioagro 23(1): 19-26. MONTOYA, D. 2004. Biotecnología y Bionegocios. II Congreso Colombiano de Biotecnología. Memorias, Universidad Nacional de olombia. Bogotá. pp 3-6. MORENO, F. L., D. Malgón, C. Rodríguez y J. Vanegas. 2006. Introducción prácticas de laboratorio y Planta Piloto. Evaluación de la producción de AIA. Curso internacional. Producción de Biofertilizantes desde el laboratorio al campo. Memorias. Universidad Nacional de Colombia, COLCIENICAS- CABBIO-BIOCULTIVOS. Instituto de Biotecnología (IBUN). Santa fé de Bogotá. MOSTACERO L, Mejia C. Taxonomía de fanerógamas peruanas. Concytec. Trujillo; 1993. 219 p. NAUTIYAL C S. 1999. An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiol. Lett. 170:265-270. OCHOA, D. & MONTOYA, A. (2010) Consorcios microbianos: una metáfora biológica aplicada a la asociatividad empresarial en cadenas productivas agropecuarias. En: Revista de la Facultad de Ciencias Económicas de la Universidad Militar Nueva Granada. rev.fac. cienc. econ, XVIII (2) ORIETTA, F y V. Larrea. 2001. Microorganismos antagonistas para el control fitosanitario. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 62: 96-100. ORRALA, R. E. L. 2015. Efecto de la inoculación con bacterias nativas promotoras de crecimiento vegetal (bpcv) en el cultivo de remolacha (beta vulgaris l.), en la comuna prosperidad, cantón Santa Elena. Previa a la obtención del título de: Ingeniero Agropecuario. La Libertad-Ecuador. PEREIRA, E.; SANTOS, A.; REIS, F.; TAVARES, R. M.; BAPTISTA, P.; NETO, T. L. YALMEIDA, A. C. 2013. A new effective assay to detect antimicrobial activity of filamentous fungi. Microbiological Research 168: 1-5. PÉREZ, T. R.; GONZALEZ, M. T. S. Y ROJAS, M. J. 2014. Antagonismo microbiano asociado a cepas bacterianas provenientes de jitomate (Lycopersicum esculentum Mill) y maíz (Zea Mays). Revista Iberoamericana de Ciencias.; Vol. 1 No.3:53-60 PERÚBIODIVERSO – PBD. (2009). Manual de producción de sacha inchi para el biocomercio y la agroforestería sostenible. Lima. Recuperado el 25 de Abril de 2017, de http://sinia.minam.gob.pe/documentos/manual-produccion- sacha-inchi-biocomercio- agroforesteria-sostenible RAHMAN A., Sitepu I. R., Tang S-Y. & Hashidoko Y. 2010. Salkowski’s reagent test as a primary screening index for functionalities of Rhizobacteria isolated from wild Dipterocarp saplings growing naturally on medium-strongly acidic tropical peat soil. Biosci. Biotechnol. Biochem. 72: 2202-2208 RAMOS, E.F. 2014. Caracterización y trazabilidad del aceite de sacha inchi (Plukenetia volubilis L.). Programa de Ciencias y Tecnología, Departamento de Química Analítica. Universidad de Sevilla. REYES, I., VALERY, A. Y VALDUZ, Z. 2006. Phosphate-solubilizing microorganisms isolated from rhizospheric and bulk soil of colonizer plants at abandoned rock phosphate mine. Plant and Soil. 287: 69-75. ROYSE, D.J. Y S.M. RIES. 1978. The influence of fungi isolated from peach twigs on the pathogenecity of Cytospora cincta. Phytopathol. 68, 603-607 ROMERO, H. L.E. 2014. Influencia de la variación de la temperatura sobre el rendimiento y la calidad en la extracción del aceite de sacha inchi (Plukenetia volubilis). Previo a la obtención del Título de: Ingeniero Químico. Guayaquil – Ecuador. RODRIGUEZ H, FRAGA R, GONZAES T, BASHAN Y. 2006. Genetics of phosphate solubilization and potential applications for improving plant growth-promoting bacteria. Plant and soil 287:15-21 RODRÍGUEZ, H. A.; BELTRAN, R. Y.; GUERRERO, A.Y.; SIERRA, M.Y. Y PEREZ, H.M., 2014. Antagonistas microbianos para el manejo de la pudrición negra del fruto en Theobroma cacao L. Estado actual y perspectivas de uso en Cuba. Rev.Protección Veg. Vol. 29 No. 1: 11-19. RODRÍGUEZ, A., I. D. Trujillo, Y. F. Bringas, B. Rojas, J. Manzano, M. Heydrich. 2005. Caracterización fisiológica de la comunidad microbiana endófita de la caña de azúcar. Revista Colombiana de Biotecnología 7 (1) 66-75. SALAZAR, Y. & SANCHEZ E, 2011. Evaluación de consorcios microbianos conformados a partir de aislamientos bacteranos con capacidad degradadora de tetranitrato de pentaeritritol (PETN) y trinitrotolueno (TNT). SALAZAR, L. A. M. Y ORDOÑEZ, G. C.A. 2013. Aislamiento e identificación de actinomicetos fijadores de nitrógeno en suelo del jardín botánico de la universidad tecnológica de Pereira. Trabajo presentado para optar al título de Químico industrial. Pereira. SOLER, J.; Posada, L.F.; Pérez, J.C., 2012 Differential Distrubution of Candidadate Biocontrol Bacteria against Spongospora subterranea in Potato Plants (Solanum tuberosum cv. Diacol Capiro) SANTOS, D., 2016. Evaluación de la actividad promotora de crecimiento vegetal en microrganismos asociados a plantas de sacha inchi (Plukenetia Volúbilis Linneo) (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Universidad de Snatenader, Bucaramanga, Colombia. SARWAR, M., Arshad, M., Martens, D.A. and Frankenberger, W.T. (1992) Tryptophan-dependant biosynthesis of auxins in soil. Plant Soil 147, 207–215. SINGH, B. and SATYANARAYANA, T. (2012). Production of phytate-hydrolyzing enzyme by thermophilic moulds. African Journal of Biotechnology 11(59): 12314-24. SPAEPEN, S., Vanderleyden, J. and Remans, R. (2007) Indole-3- acetic acid in microbial and microorganism–plant signaling. FEMS Microbiol Rev 31, 1–24. SHRIVASTAVA S, D’Souza S & Desai P. (2008). Production of indole-3-acetic acid by immobilized actinomycete (Kitasatospora sp.)for soil applications. Current Science. India. (94):12 SORIA M.J., FERRERA-CERRATO R., ETCHEVERS J., ALCÁNTAR G., SANTOS J.T., BORGES L., PEREYDA G. Producción de biofertilizantes mediante biodigestor de excreta líquida de cerdo. Revista Terra, Volumen 19, Número 4. México, 2001. SUÁREZ, C.L., R.J. Fernández, N.O. Valero, R.M. Gomez, A.R. Paez. 2008. Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium solani (Mart.) Sacc., asociado a la marchitez en maracuyá. Revista Colombiana de Biotecnología 10(2): 35-43. SYLLA, J.; ALSANIUS, B. W.; KRÜGER, E.; BECKER, D. Y WOHANKA, W., 2013. In vitro compatibility of microbial agents for simultaneous application to control strawberry powdery mildew (Podosphaera aphanis). Crop Protection vol. 51: 40e47. TORRES, R. M. G.; VALENCIA, P. S. A.; BERNAL, C. J.; MARTÍNEZ, N. P. Isolation of Enterobacteria, Azotobacter sp. And Pseudomonas sp., Producers of Indole-3-Acetic Acid and Siderophores, from Colombian Rice Rhizosphere. Revista Latinoamericana de Microbiología 42:171-176. VANEGAS, J. Y VÉLEZ, U. D., 2014. Selection of mixed inoculants exhibiting growth- Promoting activity in rice plants from undefined consortia obtained by continuous enrichment. Plant Soil 375:215–227. VALENTINO, M. J. G.; PINEDA, F. G. Y FANDIALAN, M.M. 2016. In Vitro Antagonistic Relationships of Co-Occurring Phytopathogenic and Non-Phytopathogenic Fungi Associated with Guava Fruits. Advances in Environmental Biology, 10(2), Pages: 28-33. VALENZUELA O. KAREN.; 2014. Evaluación de la capacidad antagónica de bacterias promotoras de crecimiento vegetal frente a tres aislamientos de Fusarium oxysporum f. spp. Lycopersici (Sacc.) W.C. Snyder & H.N. Hansen. Universidad católica de Manizales, centro de investigación, proyección y desarrollo, instituto de investigación en microbiología y biotecnología agroindustrial. Rev. Colomb. Biotecnol. Vol. XV No. 2: 81-88. VESSEY, K. 2003. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers. Plant and Soil 255: 571-586. VYAS P, Rahi P, Gulati A: tolerancia al estrés y variabilidad genética de Pseudomonasfluorescentes solubilizadoras de fosfato de los desiertos fríos de los trans-Himalayas. Ecología microbiana. 2009, 58: 425-434. 10.1007 / s00248-009-9511-2. WALKENHORST, W.; SUNDRUD, J. N. Y LAVIOLETTE, J. M. 2014. Additivity and synergy between an antimicrobial peptide and inhibitory ions. Biochimica et Biophysica. Pages 2234–2242. WALPOLA, C. B. Y YOON, M. H. 2012. Prospectus of phosphate solubilizing microorganisms and phosphorus availability in agricultural soils: A review. African Journal of Microbiology Research Vol. 6(37), pp. 6600-6605. WILSON, M.; LINDOW, S. E. 1994a. Coexistence among epiphytic bacterial populations mediated through nutritional resource partitioning. Appl. Environ. Microbiol. 60: 4468-4477. WHITELAW, M. A. (1999). Growth promotion of plants inoculated with phosphate solobilizing fungi. En D. L. Sparks, Advances in Agronomy (Vol. LXIX, págs. 99-151). San Diego, San Francisco, New York, Boston, London, Sydney, Tokyo: Academic Press. YAO, L., Wu, Z., Zheng, Y., Kaleem, I. & Li, C. 2010. Growth promotion and protection against salt stress by Pseudomonas putida Rs-198 on cotton. European Journal of Soil Biology. China. (46): 49-54. ZAFAR A.; SHAUKAT S. K.; MAHNAAZ K., 2013. In vitro trials of some antimicrobial combinations against Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. Saudi Journal of Biological Sciences (2013) 20, 79–83. ZDOR, R.E. Y A.J. ANDERSON. 1992. Influence of root colonising bacteria on the defence responses of bean. Plant Soil 140: 99-107. ZAFRA G, Miguel Anducho, Francisco J. Fernández, Angel E. Absalón, Diana V. Cortés-Espinosa., 2016 Construction of PAH-degrading mixed microbial consortia by induced selection in soil. ZEROUAL, Y.; CHADGHAN, R.; HAKAM, A. Y Kossir, A. 2012. Biosolubilization of Mineral Insoluble Phosphates by Immobilized Fungi (Aspergillus Niger) in Fluidized Bed Bioreactor. Biotechnol Biomaterial S6: 004, pp. 1-5. ZHAO, YUNDE. 2010. Auxin Biosynthesis and its Role in Plant Development. Annual Reviews. Estados Unidos. (59): 51-225
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Cd.El propósito de este trabajo fue determinar la compatibilidad de un grupo de microorganismos que fueron aislados de diferentes órganos de la planta sacha inchi (Plukenetia volúbilis Linneo) que presentaron actividad PGPR, estudiados en fases anteriores del macroproyecto de aspecto institucional, con el fin de establecer combinaciones microbianas que potencialicen las actividades de interés como solubilizacion de fosfatos y producción de sustancias indolicas; para ello inicialmente se evaluó el antagonismo mediante ensayos de inhibición de crecimiento utilizando pruebas de botón en césped y plato dual.Los microorganismos que no presentaron antagonismo se les evaluó el sinergismo por la tasa de variación de su actividad mediante técnicas colorimétricas de salkowski y moliddovanadato fosfórico, y finalmente se seleccionaron los microorganismos correlacionando las pruebas de antagonismo y sinergismo mediante el análisis estadístico. Se logró determinar que el 81% de los microorganismos no presentaron antagonismo, destacándose la cepa bacteria TSEBT04-03 quien no inhibió el crecimiento en el enfrentamiento bacteriano y que el asilado microbiano TSEBR01-01 presentó mayor inhibición (36,4%) en los enfrentamientos y su frecuencia represento en más del 50% en los ensayos. Finalmente se pudo establecer que el 35,93% de los microorganismos fueron compatibles, al no presentar antagonismo y aumentar su actividad al ser evaluados en conjunto, encontrándose que los consorcios significativos en el aumento para ambas actividades de interés fueron los consorcios C2, C6, C21 Y C31 de las 32 combinaciones evaluadas. Este trabajo permitió el establecimiento de un consorcio conformado por tres (3) microorganismos, que presenta menor capacidad antagónica y mayor sinergismo para las actividades PGPR evaluadas.Sacha inchi (Plukenetia volúbilis Linneo) that belongs PGPR activity, studied in the previous phases of the macroproject of institutional aspect, with the purpose of a microbial combinations that potentiate the activities of interest as solubilization of phosphates and production of indole substances; To this end, the antagonism is evaluated by growth inhibition tests using button tests on turf and dual plate. The microorganisms do not present antagonism synergism is evaluated by the rate of change of their activity by colorimetric techniques of salkowski and phosphoric moliddovanadato, and finally the microorganisms were selected by correlating the tests of antagonism and synergism through statistical analysis. It was determined that 81% of the microorganisms did not present antagonism, highlighting the strain of the TSEBT04-03 bacteria that did not inhibit the growth in the bacterial confrontation and the microbial asylee TSEBR01-01 showed the greatest inhibition (36.4%) in the confrontations and their frequency represents more than 50% in the trials. Finally, it could be established that 35.93% of the microorganisms were compatible, there was no antagonism and increase their activity when evaluated as a whole, with the consortiums in the increase for both activities of interest were the consortiums C2, C6, C21 And C31 of the 32 combinations evaluated. This is the work of a consortium made up of three (3) microorganisms, which presents less antagonistic capacity and greater synergy for PGPR activities evaluated.PregradoMicrobiólogo IndustrialINTRODUCCIÓN .......................................................................................................................... 5 2. MARCO TEÓRICO.................................................................................................................... 7 2.1.2 Propiedades de la planta. .................................................................................................... 8 2.1.3 Usos y pontecial agroindustrial. ......................................................................................... 9 2.2 MICOORGANISMOS CON PROMOCIÓN DE CRECIMIENTO VEGETAL PGPR .... 11 2.2.1 Micoorganismos pgpr productores de sustancias indólicas. ............................................ 11 2.2.2 Micoorganismos biosolubilizadores de fosfatos. ............................................................. 13 2.3 CONSORCIOS MICROBIANOS ......................................................................................... 15 2.4 ANTAGONISMO Y SINERGISMO MICROBIANO .......................................................... 16 3. OBJETIVOS ............................................................................................................................. 18 3.1 GENERAL .......................................................................................................................... 18 3.2 ESPECÍFICOS .................................................................................................................... 18 4. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................................................. 19 4.3. EVALUACIÓN DEL ANTAGONISMO ENTRE AISLADOS ....................................... 20 4.3.1. Inhibición de crecimiento entre Bacterias....................................................................... 20 4.3.2 Inhibición de crecimiento entre hongos. .......................................................................... 21 4.3.3 Inhibición de crecimiento de Hongos hacia las bacterias. ............................................... 22 4.3.4 Inhibición de crecimiento de Bacterias hacia los hongos. ............................................... 23 4.4 DETERMINACIÓN DEL SINERGISMO ENTRE AISLADOS MICROBIANOS ............. 24 4.4.1 Crecimiento en medio NBRIP. ........................................................................................ 25 4.4.2 Detección y cuantificación de fósforo solubilizado in vitro. ........................................... 25 4.4.3 Producción de Ácido Indol Acético (AIA). ..................................................................... 26 4.5. MÉTODOS UTILIZADOS. .................................................................................................. 26 4.5.1 Fósforo, Reactivo (Molybdovanadate Rapid Liquid Method) 31. ................................... 26 4.5.2 Salkowski. ........................................................................................................................ 27 4.6 ANALISIS ESTADÍSTICO.................................................................................................... 27 5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .............................................................................................. 28 5.1.1 EVALUACIÓN GENERAL DEL ANTAGONISMO ENTRE LOS AISLADOS ....... 28 5.1.2 Inhibición entre Bacterias. ............................................................................................... 28 5.1.3 Inhibición entre Hongos. .................................................................................................. 30 5.1.4 Inhibición de crecimiento de Hongos hacia las bacterias. ............................................... 32 5.1.5 Inhibición de crecimiento de las Bacterias hacia los Hongos. ......................................... 33 5.1.6 Evaluacion general del antagonismo de los aislados. ...................................................... 34 6 ENSAYO DE SINERGISMO A LOS CONSORCIOS MICROBIANOS ESTABLECIDOS . 36 6.1. Solubilización de fosfatos .................................................................................................. 36 6.1.1 Produccion de sustancias acido indol acético. ................................................................. 40 CONCLUSIONES ........................................................................................................................ 45 Anexos .......................................................................................................................................... 46 Bibliografía ................................................................................................................................... 48Ej. 1application/pdfT 33.17 M672ehttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/2844spaBucaramanga : Universidad de Santander, 2017Facultad de Ciencias Exactas, Naturales y AgropecuariasMicrobiología IndustrialAGUADO SANTACRUZ, G. A. (2012). Introduccion al uso y manejo de los biofertilizantes en la agricultura. Guanajuato: CIRCE-INIFAP.AGUILAR-PIEDRAS, J. J., Xiqui-Vásquez, M. L., García-García, S., Baca, B. E. 2008. Producción de ácido Indol-3- acético en Azospirillum. Artículo de revisión. Rev Lat Microbiol 50: 29-37.AKHTAR, M.S.; SIDDIQUI, Z.A. 2008. Biocontrol of a root-rot disease complex of chickpea by Glomus intraradices, Rhizobium sp. and Pseudomonas straita. Crop Prot. 27:410-417.ALIKHANI, HA; Rastin-Saleh, N; Antoun, H. 2007. Phosphate solubilization activity of rhizobia native Iranian soils. In Velázquez, E.; Rodríguez-Barrueco, C. eds. First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization. Springer, Netherlands. p. 35-41.ALVAREZ, G.F.L.; RIOS, T.R.S. 2007. Estudio de viabilidad económica del cultivo de Plukenetia volubilis Linneo “sacha inchi” – departamento de San Martin. Programa de ordenamiento ambiental – POA evaluación económica opciones productivas amazonia peruana. Iquitos, Perú.ANANDHAM, R., Sridar, R., Nalayini, P., Poonguzhali, S., Madhaiyan, M., Tongmin. 2007. Potential for plant growth promotion in groundnut (Arachis hypogaea L.) cv. ALR-2 by co-inoculation of sulfur-oxidizing bacteria and Rhizobium. Microbiological Research. Japón. 162 (2007): 139-153ANGULO, C. J. P.; GARCIA, D. A.; PEDRAZA, A. M.; MARTÍNEZ, S. M. M. Y GUTIÉRREZ, R. V. 2012. Diseño de un medio para la producción de un co-cultivo de bacterias fosfato solubilizadoras con actividad fosfatasa. Universitas Scientiarum, Vol. 17 N° 1: 43-52.APONTE, C., GARCÍA, L.V., PÉREZ-RAMOS, I.M., GUTIÉRREZ, E., MARAÑÓN, T. 2010. Oak trees and soil interactions in Mediterranean forests: a positive feedback model. Journal of Vegetation Science 22: 856–867.ASTORGA, Q. K.; MONTERO, M. K.; ZÚÑIGA, V. C.; BRENES, M. J. Y RIVERA, M. W. 2013. Evaluación del antagonismo de Trichoderma sp. Y Bacillus subtilis contra tres patógenos del ajo. Tecnología en Marcha. Vol. 27, No 2. Pág 82-91.AYALA, M. G. A. 2016. Análisis de crecimiento y producción de 3 variedades de sacha inchi (Plukenetia volubilis.), en el municipio de tena Cundinamarca. Trabajo de grado para optar el título de Ingeniero agrónomo. Bogotá D.C.BAUER A W, Kirby W M M, Sherris J C & Turck M. Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method. Amer. I. C/in. Pathol. 45:493-6, 1966. (Depts. Microbiology and Medicine, Univ. Washington, Sch. Med., Seattle. WAI)BARRAGAN, C., Zambrano, D., pedriza, A., y Bobadilla, R. (2003). Producción de bacterias fosfato Solubilizadoras mediante fermentación discontinua en caldo de Pikovskaya modificado (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Pontificia Universidad Javeriana, Bogotá, Colombia.BAREA J.M., M.J. Pozo and C. Azcon-Aguilar.(2005).Microbial cooperation in the rizosphere. Journal of Experimental Botany. Granada, España. 56 (417):1761- 1778.BOIERO, L., Perrig D., Masciarelli, O., Penna, C., Cassán, F. & Luna, V. 2007. Phytohormone production by three strains of Bradyrhizobium japonicum and possible physiological and technological implications. Applied Microbiology and Biotechnology. Argentina. (74):874-880BELTRÁN, P. M. E. 2014. La solubilización de fosfatos como estrategia microbiana para promover el crecimiento vegetal. Corpoica Cienc. Tecnol. Agropecu. 15(1) 101-113.BOBADILLA C, Rincón S. Aislamiento y producción de bacterias fosfato solubilizadoras a partir de compost obtenido de residuos de plaza. [Tesis de grado]. Colombia; 2008.BOLLETA A., VENANZI S., KRÜGER H. Respuestas del cultivo de trigo a la inoculación con biofertilizantes en el sur de la provincia de Buenos Aires. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria, Estación Experimental Agropecuaria Bordenave. Buenos Aires, Argentina, 2002.BLESSON, J.; SAJI, V. C.; NIVYA, R. M. Y KUMAR, R. 2015. Synergistic antibacterial activity of natural plant extracts and antibiotics against methicillin resistant staphylococcus aureus (mrsa). World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. Volume 4, Issue 03, 741-763.BRENNER, K, You, L & Arnold, F. (2008). Engineering Microbial Consortia: a new frontier in synthetic biology. En: Trends in Biotechnology, 26 (9): 483-489CAMELO, M., M. Vera y B. Bonilla. 2011. Mecanismos de acción de las rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal. Revista Corpoica-Ciencia y Tecnología Agropecuaria 12(2): 159-166CANO; M. A., 2011. Interacción de microorganismos benéficos en plantas: micorrizas, Trichoderma spp. Y Pseudomonas spp. UNA REVISIÓN. Rev. U.D.C.A Act. & Div. Cient. 14(2): 15 – 31.CASSAN, F., Maiale, S., Masciarelli, O., Vidal, A., Luna, V. & Ruiz, O. 2009. Cadaverine production by Azospirillum brasilense and its possible role in plant growth promotion and osmotic stress mitigation. European Journal of Soil Biology. Argentina. (45):12 - 19.CARVAJAL E; Valbuena j, y Viteri S., 2012 In vitro evaluation of Native Microorganisms for their Antagonism against Moniliophthora roreri Cif & Parin Cocoa (Theobroma cacao L.).CELIS, B. L.X. Y GALLARDO, I. R., 2008. Estandarización de métodos de detección para promotores de crecimiento vegetal (ácido indol acético y giberelinas) en cultivos microbianos. Pontificia universidad Javeriana. Trabajo presentado para optar al título de microbiólogo agrícola y veterinario. Bogotá.CHEN, Y. P.; REKHA, P. D.; ARUN, A. B. Y SHEN, F. T. 2005. Phosphate solubilizing bacteria from subtropical soil and their tricalcium phosphate solubilizing abilities. Applied Soil Ecology 34: 33-41.CUESTA, M. A.; MONSALVE, F. J.; PEÑA, C.; GALINDO, E. Y ROLDÁN, T. A. M., 2005. Evaluación de medios de cultivo alternativos para la producción de alginatos por Azotobacter vinelandii. Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín, Facultad de Minas.CUMDOM M., Mazza S., Gutierrez S., and Mazzanti M. 2003. Evaluacion de trichoderma sp. Contra Rhizoctonia solani in vitro e invernáculo.El-Tarabily KA (2006) Rhizosphere-competent isolates of streptomycete and non-streptomycete actinomycetes capable of producing cell-wall degrading enzymes to control Pythium aphanidermatum damping-off disease of cucumber. Canadian Journal of Botany. United Arab Emirates. (84):211–222El-Tarabily KA, Nassar , A. & Sivasithamparam K.,2008 Promotion of growth of bean (Phaseolus vulgaris L.) in a calcareous soil by a phosphate-solubilizing, rhizosphere-competent isolate of Micromonospora endolithica. Applied Soil Ecology. United Arab Emirates. (3 9): 1 6 1 – 1 7 1FIBACH-PALDI, S.; Burdman, S. & Okon, Y. Key physiological properties contributing to rhizosphere adaptation and plant growth promotion abilities of Azospirillum brasilense. FEMS Microbiol Lett. 326:99-108, 2012.FOLLEGATTI-ROMERO L, Piantino C, Grimaldi R, Cabral F. Supercritical CO2 extraction of omega-3 rich oil from Sacha inchi (Plukenetia volubilis L.) seeds. J. of Supercritical Fluids. 2009; 49: 323-329.FRANCO-CORREA, M., Gómez-Méndez, D., Castro-Medina, N., Rendón-Ruiz, M. 2008. Polihidroxialcanoatos en actinomicetos nativos de suelos Colombianos. Revista Peruana de Biología. 16(1): 115- 118GALEON. 2008. Proyecto sacha inchi. -Sacha Inchi (Disponoble en: http://proyecto sachainchi.galeon.com/).GÓMEZ, M.E.J. 2004. Monografía y cultivo de sacha inchi, oleaginosas promisoria para la diversificación productiva en el trópico. Corporación Colombiana de Investigación agropecuaria CORPOICA. Primera edición.GUTIÉRREZ L. F., R. L. 2011. Chemical composition of Sacha Inchi (Plukenetia volubilis L.) seeds and characteristics of their lipid fraction. Grasas y aceites, 62 (1), 76-83.GLICK BR, Todorovic B, Czarny J, Cheng Z, Duan J & McConkey B (2007) Promotion of plant growth by bacterial ACC deaminase. Critical Reviews in Plant Science. Canadá. (26):227–242HANSSEN, H.; Schmitz, H.; Preedy, R.; Watson, R.; Vinood, B. 2011. Sachai inchi (Plukentia volubilis L.) Nut oil and its therapeutic and nutritional uses. Nuts and seeds in health and disease prevention. Hamburgo, Germany.HAMAKER B, Valles C, Gilman R, Hardmeier D, Clark H, García H, Gonzales A, Kohlstad I, Castro M. Amino Acid and Fatty Acid Profiles of the Inca Peanut (Plukenetia volubilis L.) Cereal Chem. 1992; 69:461-463.HERNÁNDEZ, A. 2002. Obtención de un biopreparado a partir de rizobacterias asociadas al cultivo del maíz (Zea Mays L.).HERNÁNDEZ, Y, 2016 Formulación de un consorcio microbiano mediante criterios de compatibilidad y sinergismo. (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Universidad de Snatenader, Bucaramanga, Colombia.HUGHES, K. 2009. Potencial del Camu camu y Sacha inchi en el mercado estadounidense. Comisión para la Promoción de Exportaciones – PROMPEX; Perú Biocomercio. Lima, Perú. Pp. 1-36.JANISIEWICZ, W.J. and Korsten, L. (2002) Biological Control of Postharvest Diseases of Fruits. Annual Review of Phytopathology, 40, 411-441.JORGE M. Vivanco, Eric Cosio, Víctor M. Loyola-Vargas y Héctor E. Flores., 2005 Mecanismos químicos de defensa de las plantas.KAPRI, A. Y TEWARI, L. 2010. Phosphate solubilization potential and phosphatase activity of rhizospheric Trichoderma spp. Brazilian Journal of Microbiology. (1):1-9.Kucey R M N. 1983. Phosphate solubilizing bacteria and fungi in various cultivated and virgin Alberta soils. Can. J. Soil Sci. 63:671-678.KRAUS, G.F.; I. DRUZHININA; W. GAMS; J. BISSETT; D. ZAFARI; G. SZAKACS; A. KOPTCHINSKI; H. PRILLINGER; R. ZARE Y C.P. KUBIEK. 2004. Trichoderma brevicompactum sp. nov. Mycol. 96(5), 1059-1073.LEON, J.; APONTE, J. J.; CUADRA, D ́L.; GALINDO, N.; JARAMILLO, L.; VALLEJO, M. Y MARGUET, E. 2016. Actinomicetos aislados de Argopecten purpuratus de enzimas extracelulares y con actividad inhibitoria de patógenos marinos. Revista de Biología Marina y Oceanografía. Vol. 51, No1: 69-80.LOAIZA, E. M. E. 2013. “Manejo agroecológico del cultivo de sacha inchi (Plukenetia volubilis)”. Previa a la obtención del título de: tecnólogo agrícola. Guayaquil –Ecuador.LÓPEZ, T, Dominguez, L & García, J. (2007). Arreglo estructural de un consorcio microbiano de interés alimentario en la producción del vinagre. Trabajo presentado en el octavo Congreso Nacional de Microscopía, Octubre, México.LUGTENBERG B, Kamilova F. Plant-growth-promoting rhizobacteria. Annu Rev Microbiol. 2009;63:541–55.MADHAIYAN, M., Poonguzhali, S., Senthilkumar, M., Sundaram, SP. & Tongmin, S. 2009. Nodulation and plant-growth promotion by methylotrophic bacteria isolated from tropical legumes. Microbiological Research. Japón. (164): 114— 120.MAHESHWARI, D. K. 2011. Bacteria in Agrobiology: Plant Nutrient Management.Haridwar (Uttarakhand) India. Springer.MALIK, D.K. and S.S. SINDHU, 2011. Production of indole acetic acid by Pseudomonas sp.: Effect of coinoculation with Mesorhizobium sp. Ciceron nodulation and plant growth of chickpea (Cicer arietinum). Physiol.. Mol. Biol. Plants, 17: 25-32.MANCO, E. 2003. Situación y avances del cultivo de sacha inchi en el Peru. PRONIRGEB-INIEA. E. E. “El Provenir”, Juan Guerra-Tarrapoto. Pp. 50.MANTILLA C, Y NEGRETE P., 2015. Efecto de un bioinoculante a partir de consorcios microbianos nativos fosfato solubilizadores, en el desarrollo de pastos Angleton (Dichantium aristatum).MCGILL, W. B. (2007). The Physiology and Biochemistry of Soil Organismsm (Cap. 9). En: Paul, E. (Ed), Soil Microbiology, Ecology and Biochemistry, Oxford: Elsevier.MELNICK, R., N. Zidack, B. Bailey, S. Maximova, M. Guiltinan and P. Backman. 2008. Bacterial endophytes: Bacillus spp. from annual crops as potential biological control agents of black pod rot of cacao. Biological Control 46(1): 46-56.MENDOZA C., VESGA F. Utilización de inoculantes microbianos para el mejoramiento de suelos contaminados por la extracción de carbón mineral. Universidad Industrial de Santander, Facultad de Ciencias, Escuela de Biología. Bucaramanga, Colombia 1999MEUNCHANG, S., THONGRA-AR, P., SANOH, S., KAEWSURALIKHIT, S. Y ANDO, S. 2006. Development of rhizobacteria as a biofertilizer for rice production. International workshop on sustained management of the soil-rhizosphere system for efficient crop production and fertilizer use 16th-20th October 2006. Land Development Department, Bangkok Thailand. pp. 1-7.MANJARRES, K.; PIÑEROS, Y. RODRIGUEZ, S. E. 2011. Evaluación del complejo enzimático producido mediante el cocultivo de Aspergillus sp. Y Trichoderma sp. En fase sólida sobre residuos de palma. Bioagro 23(1): 19-26.MONTOYA, D. 2004. Biotecnología y Bionegocios. II Congreso Colombiano de Biotecnología. Memorias, Universidad Nacional de olombia. Bogotá. pp 3-6.MORENO, F. L., D. Malgón, C. Rodríguez y J. Vanegas. 2006. Introducción prácticas de laboratorio y Planta Piloto. Evaluación de la producción de AIA. Curso internacional. Producción de Biofertilizantes desde el laboratorio al campo. Memorias. Universidad Nacional de Colombia, COLCIENICAS- CABBIO-BIOCULTIVOS. Instituto de Biotecnología (IBUN). Santa fé de Bogotá.MOSTACERO L, Mejia C. Taxonomía de fanerógamas peruanas. Concytec. Trujillo; 1993. 219 p.NAUTIYAL C S. 1999. An efficient microbiological growth medium for screening phosphate solubilizing microorganisms. FEMS Microbiol. Lett. 170:265-270.OCHOA, D. & MONTOYA, A. (2010) Consorcios microbianos: una metáfora biológica aplicada a la asociatividad empresarial en cadenas productivas agropecuarias. En: Revista de la Facultad de Ciencias Económicas de la Universidad Militar Nueva Granada. rev.fac. cienc. econ, XVIII (2)ORIETTA, F y V. Larrea. 2001. Microorganismos antagonistas para el control fitosanitario. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 62: 96-100.ORRALA, R. E. L. 2015. Efecto de la inoculación con bacterias nativas promotoras de crecimiento vegetal (bpcv) en el cultivo de remolacha (beta vulgaris l.), en la comuna prosperidad, cantón Santa Elena. Previa a la obtención del título de: Ingeniero Agropecuario. La Libertad-Ecuador.PEREIRA, E.; SANTOS, A.; REIS, F.; TAVARES, R. M.; BAPTISTA, P.; NETO, T. L. YALMEIDA, A. C. 2013. A new effective assay to detect antimicrobial activity of filamentous fungi. Microbiological Research 168: 1-5.PÉREZ, T. R.; GONZALEZ, M. T. S. Y ROJAS, M. J. 2014. Antagonismo microbiano asociado a cepas bacterianas provenientes de jitomate (Lycopersicum esculentum Mill) y maíz (Zea Mays). Revista Iberoamericana de Ciencias.; Vol. 1 No.3:53-60PERÚBIODIVERSO – PBD. (2009). Manual de producción de sacha inchi para el biocomercio y la agroforestería sostenible. Lima. Recuperado el 25 de Abril de 2017, de http://sinia.minam.gob.pe/documentos/manual-produccion- sacha-inchi-biocomercio- agroforesteria-sostenibleRAHMAN A., Sitepu I. R., Tang S-Y. & Hashidoko Y. 2010. Salkowski’s reagent test as a primary screening index for functionalities of Rhizobacteria isolated from wild Dipterocarp saplings growing naturally on medium-strongly acidic tropical peat soil. Biosci. Biotechnol. Biochem. 72: 2202-2208RAMOS, E.F. 2014. Caracterización y trazabilidad del aceite de sacha inchi (Plukenetia volubilis L.). Programa de Ciencias y Tecnología, Departamento de Química Analítica. Universidad de Sevilla.REYES, I., VALERY, A. Y VALDUZ, Z. 2006. Phosphate-solubilizing microorganisms isolated from rhizospheric and bulk soil of colonizer plants at abandoned rock phosphate mine. Plant and Soil. 287: 69-75.ROYSE, D.J. Y S.M. RIES. 1978. The influence of fungi isolated from peach twigs on the pathogenecity of Cytospora cincta. Phytopathol. 68, 603-607ROMERO, H. L.E. 2014. Influencia de la variación de la temperatura sobre el rendimiento y la calidad en la extracción del aceite de sacha inchi (Plukenetia volubilis). Previo a la obtención del Título de: Ingeniero Químico. Guayaquil – Ecuador.RODRIGUEZ H, FRAGA R, GONZAES T, BASHAN Y. 2006. Genetics of phosphate solubilization and potential applications for improving plant growth-promoting bacteria. Plant and soil 287:15-21RODRÍGUEZ, H. A.; BELTRAN, R. Y.; GUERRERO, A.Y.; SIERRA, M.Y. Y PEREZ, H.M., 2014. Antagonistas microbianos para el manejo de la pudrición negra del fruto en Theobroma cacao L. Estado actual y perspectivas de uso en Cuba. Rev.Protección Veg. Vol. 29 No. 1: 11-19.RODRÍGUEZ, A., I. D. Trujillo, Y. F. Bringas, B. Rojas, J. Manzano, M. Heydrich. 2005. Caracterización fisiológica de la comunidad microbiana endófita de la caña de azúcar. Revista Colombiana de Biotecnología 7 (1) 66-75.SALAZAR, Y. & SANCHEZ E, 2011. Evaluación de consorcios microbianos conformados a partir de aislamientos bacteranos con capacidad degradadora de tetranitrato de pentaeritritol (PETN) y trinitrotolueno (TNT).SALAZAR, L. A. M. Y ORDOÑEZ, G. C.A. 2013. Aislamiento e identificación de actinomicetos fijadores de nitrógeno en suelo del jardín botánico de la universidad tecnológica de Pereira. Trabajo presentado para optar al título de Químico industrial. Pereira.SOLER, J.; Posada, L.F.; Pérez, J.C., 2012 Differential Distrubution of Candidadate Biocontrol Bacteria against Spongospora subterranea in Potato Plants (Solanum tuberosum cv. Diacol Capiro)SANTOS, D., 2016. Evaluación de la actividad promotora de crecimiento vegetal en microrganismos asociados a plantas de sacha inchi (Plukenetia Volúbilis Linneo) (Tesis de pregrado en Microbiología Industrial). Universidad de Snatenader, Bucaramanga, Colombia.SARWAR, M., Arshad, M., Martens, D.A. and Frankenberger, W.T. (1992) Tryptophan-dependant biosynthesis of auxins in soil. Plant Soil 147, 207–215.SINGH, B. and SATYANARAYANA, T. (2012). Production of phytate-hydrolyzing enzyme by thermophilic moulds. African Journal of Biotechnology 11(59): 12314-24.SPAEPEN, S., Vanderleyden, J. and Remans, R. (2007) Indole-3- acetic acid in microbial and microorganism–plant signaling. FEMS Microbiol Rev 31, 1–24.SHRIVASTAVA S, D’Souza S & Desai P. (2008). Production of indole-3-acetic acid by immobilized actinomycete (Kitasatospora sp.)for soil applications. Current Science. India. (94):12SORIA M.J., FERRERA-CERRATO R., ETCHEVERS J., ALCÁNTAR G., SANTOS J.T., BORGES L., PEREYDA G. Producción de biofertilizantes mediante biodigestor de excreta líquida de cerdo. Revista Terra, Volumen 19, Número 4. México, 2001.SUÁREZ, C.L., R.J. Fernández, N.O. Valero, R.M. Gomez, A.R. Paez. 2008. Antagonismo in vitro de Trichoderma harzianum Rifai sobre Fusarium solani (Mart.) Sacc., asociado a la marchitez en maracuyá. Revista Colombiana de Biotecnología 10(2): 35-43.SYLLA, J.; ALSANIUS, B. W.; KRÜGER, E.; BECKER, D. Y WOHANKA, W., 2013. In vitro compatibility of microbial agents for simultaneous application to control strawberry powdery mildew (Podosphaera aphanis). Crop Protection vol. 51: 40e47.TORRES, R. M. G.; VALENCIA, P. S. A.; BERNAL, C. J.; MARTÍNEZ, N. P. Isolation of Enterobacteria, Azotobacter sp. And Pseudomonas sp., Producers of Indole-3-Acetic Acid and Siderophores, from Colombian Rice Rhizosphere. Revista Latinoamericana de Microbiología 42:171-176.VANEGAS, J. Y VÉLEZ, U. D., 2014. Selection of mixed inoculants exhibiting growth- Promoting activity in rice plants from undefined consortia obtained by continuous enrichment. Plant Soil 375:215–227.VALENTINO, M. J. G.; PINEDA, F. G. Y FANDIALAN, M.M. 2016. In Vitro Antagonistic Relationships of Co-Occurring Phytopathogenic and Non-Phytopathogenic Fungi Associated with Guava Fruits. Advances in Environmental Biology, 10(2), Pages: 28-33.VALENZUELA O. KAREN.; 2014. Evaluación de la capacidad antagónica de bacterias promotoras de crecimiento vegetal frente a tres aislamientos de Fusarium oxysporum f. spp. Lycopersici (Sacc.) W.C. Snyder & H.N. Hansen. Universidad católica de Manizales, centro de investigación, proyección y desarrollo, instituto de investigación en microbiología y biotecnología agroindustrial. Rev. Colomb. Biotecnol. Vol. XV No. 2: 81-88.VESSEY, K. 2003. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers. Plant and Soil 255: 571-586.VYAS P, Rahi P, Gulati A: tolerancia al estrés y variabilidad genética de Pseudomonasfluorescentes solubilizadoras de fosfato de los desiertos fríos de los trans-Himalayas. Ecología microbiana. 2009, 58: 425-434. 10.1007 / s00248-009-9511-2.WALKENHORST, W.; SUNDRUD, J. N. Y LAVIOLETTE, J. M. 2014. Additivity and synergy between an antimicrobial peptide and inhibitory ions. Biochimica et Biophysica. Pages 2234–2242.WALPOLA, C. B. Y YOON, M. H. 2012. Prospectus of phosphate solubilizing microorganisms and phosphorus availability in agricultural soils: A review. African Journal of Microbiology Research Vol. 6(37), pp. 6600-6605.WILSON, M.; LINDOW, S. E. 1994a. Coexistence among epiphytic bacterial populations mediated through nutritional resource partitioning. Appl. Environ. Microbiol. 60: 4468-4477.WHITELAW, M. A. (1999). Growth promotion of plants inoculated with phosphate solobilizing fungi. En D. L. Sparks, Advances in Agronomy (Vol. LXIX, págs. 99-151). San Diego, San Francisco, New York, Boston, London, Sydney, Tokyo: Academic Press.YAO, L., Wu, Z., Zheng, Y., Kaleem, I. & Li, C. 2010. Growth promotion and protection against salt stress by Pseudomonas putida Rs-198 on cotton. European Journal of Soil Biology. China. (46): 49-54.ZAFAR A.; SHAUKAT S. K.; MAHNAAZ K., 2013. In vitro trials of some antimicrobial combinations against Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa. Saudi Journal of Biological Sciences (2013) 20, 79–83.ZDOR, R.E. Y A.J. ANDERSON. 1992. Influence of root colonising bacteria on the defence responses of bean. Plant Soil 140: 99-107.ZAFRA G, Miguel Anducho, Francisco J. Fernández, Angel E. Absalón, Diana V. Cortés-Espinosa., 2016 Construction of PAH-degrading mixed microbial consortia by induced selection in soil.ZEROUAL, Y.; CHADGHAN, R.; HAKAM, A. Y Kossir, A. 2012. Biosolubilization of Mineral Insoluble Phosphates by Immobilized Fungi (Aspergillus Niger) in Fluidized Bed Bioreactor. Biotechnol Biomaterial S6: 004, pp. 1-5.ZHAO, YUNDE. 2010. Auxin Biosynthesis and its Role in Plant Development. Annual Reviews. Estados Unidos. (59): 51-225Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2017info:eu-repo/semantics/openAccessAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/http://purl.org/coar/access_right/c_abf2Sacha inchiPGPRConsorciosSolubilización fosfatosProducción AIAEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro.Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttps://purl.org/redcol/resource_type/TPinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85PublicationTHUMBNAILEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdf.jpgEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg1220https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/e3908abb-da76-4ba3-b9a4-d542e864af5e/downloadeeff165eb3d350c866630947c36aa57dMD54LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-859https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/2b59438a-ecbc-4f43-891d-a303e871266c/download38d94cf55aa1bf2dac1a736ac45c881cMD52ORIGINALEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdfEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdfDocumento Principalapplication/pdf846069https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/a01b5770-fd3a-454a-aca2-a84068924c20/downloadc55d7f4361f0fe6ec261f26493a1ea12MD51TEXTEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdf.txtEvaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro..pdf.txtExtracted texttext/plain98018https://repositorio.udes.edu.co/bitstreams/423fb814-a91a-4b57-8b82-dc8f74b9d0a7/downloadd0a8c3f20b6b5a0d7d1f077904e9123dMD53001/2844oai:repositorio.udes.edu.co:001/28442022-10-25 10:13:13.717https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/Derechos Reservados - Universidad de Santander, 2017https://repositorio.udes.edu.coRepositorio Universidad de Santandersoporte@metabiblioteca.comTGljZW5jaWEgZGUgUHVibGljYWNpw7NuIFVERVMKRGlyZWN0cmljZXMgZGUgVVNPIHkgQUNDRVNPCgo=

Evaluación del antagonismo y sinergismo en aislados microbianos obtenidos de plukenetia volúbilis L para la conformación de un consorcio microbiano en condiciones in vitro.

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