Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales
Figuras, tablas
- Autores:
- Tipo de recurso:
- Fecha de publicación:
- 2025
- Institución:
- Universidad de Caldas
- Repositorio:
- Repositorio Institucional U. Caldas
- Idioma:
- spa
- OAI Identifier:
- oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/26193
- Acceso en línea:
- https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/26193
- Palabra clave:
- 570 - Biología
1. Ciencias Naturales
Usnea
Metabolitos secundarios
Ácido úsnico
Polaridad del disolvente
Actividad antimicrobiana
Candida albicans
Staphylococcus aureus
Usnea
Secondary metabolites
Usnic acid
Solvent polarity
Antimicrobial activity
Candida albicans
Staphylococcus aureus
Biología
- Rights
- License
- https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
| id |
REPOUCALDA_d60afd059437b06e82ee08c30bc8c40f |
|---|---|
| oai_identifier_str |
oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/26193 |
| network_acronym_str |
REPOUCALDA |
| network_name_str |
Repositorio Institucional U. Caldas |
| repository_id_str |
|
| dc.title.none.fl_str_mv |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| title |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| spellingShingle |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales 570 - Biología 1. Ciencias Naturales Usnea Metabolitos secundarios Ácido úsnico Polaridad del disolvente Actividad antimicrobiana Candida albicans Staphylococcus aureus Usnea Secondary metabolites Usnic acid Solvent polarity Antimicrobial activity Candida albicans Staphylococcus aureus Biología |
| title_short |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| title_full |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| title_fullStr |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| title_full_unstemmed |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| title_sort |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales |
| dc.contributor.none.fl_str_mv |
Ocampo Serna, Diana Marcela BETANCUR JARAMILLO, LUZ ADRIANA Betancur Jaramillo, Luz Adriana Ocampo Serna, Diana Marcela Grupo de Investigación Estudios Ambientales en Agua y Suelo (Categoría B) Franco Vásquez, Marcelo |
| dc.subject.none.fl_str_mv |
570 - Biología 1. Ciencias Naturales Usnea Metabolitos secundarios Ácido úsnico Polaridad del disolvente Actividad antimicrobiana Candida albicans Staphylococcus aureus Usnea Secondary metabolites Usnic acid Solvent polarity Antimicrobial activity Candida albicans Staphylococcus aureus Biología |
| topic |
570 - Biología 1. Ciencias Naturales Usnea Metabolitos secundarios Ácido úsnico Polaridad del disolvente Actividad antimicrobiana Candida albicans Staphylococcus aureus Usnea Secondary metabolites Usnic acid Solvent polarity Antimicrobial activity Candida albicans Staphylococcus aureus Biología |
| description |
Figuras, tablas |
| publishDate |
2025 |
| dc.date.none.fl_str_mv |
2025-11-18T22:00:45Z 2025-11-18T22:00:45Z 2025-11-11 |
| dc.type.none.fl_str_mv |
Trabajo de grado - Pregrado http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f Text info:eu-repo/semantics/bachelorThesis |
| dc.identifier.none.fl_str_mv |
https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/26193 Universidad de Caldas Repositorio Institucional Universidad de Caldas repositorio.ucaldas.edu.co |
| url |
https://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/26193 |
| identifier_str_mv |
Universidad de Caldas Repositorio Institucional Universidad de Caldas repositorio.ucaldas.edu.co |
| dc.language.none.fl_str_mv |
spa |
| language |
spa |
| dc.relation.none.fl_str_mv |
Azmi, N. A. N., Elgharbawy, A., Salleh, H. M., & Hayyan, A. (2021). Evaluation of the antimicrobial performance of menthol and menthol-based deep eutectic solvents as potential future antibiotic. In E3S Web of Conferences (Vol. 287, p. 02010). EDP Sciences. DOI: 10.1051/e3sconf/202128702010 Bharti, S., & Nayaka, S. (2022). Evaluation of some traditional therapeutic properties of Usnea longissima (Ascomycota, lichenized fungi): antimicrobial, antiquorum and antioxidant. Journal of microbiology, biotechnology and food sciences, 11(4), e3163-e3163. DOI: 10.55251/jmbfs.3163 Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). (2018). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeasts (30th ed.; CLSI supplement M44). Gary W. Procop, MD, MS: CLSI. Croce, N., Pitaro, M., Gallo, V., & Antonini, G. (2022). Toxicity of usnic acid: A narrative review. Journal of Toxicology, 2022(1), 8244340. DOI: 10.1155/2022/8244340 European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST). (2025). Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters (Version 15.0, valid from 2025-01-01). EUCAST. https://www.eucast.org/ Fernández-Moriano, C., González-Burgos, E., Divakar, P. K., Crespo, A., & Gómez- Serranillos, M. P. (2016). Evaluation of the antioxidant capacities and cytotoxic effects of ten parmeliaceae lichen species. Evidence‐Based Complementary and Alternative Medicine, 2016(1), 3169751. DOI: 10.21203/rs.3.rs-6922462/v1 Francolini, I., Norris, P., Piozzi, A., Donelli, G., & Stoodley, P. (2004). Usnic acid, a natural antimicrobial agent able to inhibit bacterial biofilm formation on polymer surfaces. Antimicrobial agents and chemotherapy, 48(11), 4360-4365. DOI: 10.1128/AAC.48.11.4360-4365.2004 Harborne, A. J. (1998). Phytochemical methods a guide to modern techniques of plant analysis. springer science & business media Hao, Y. M., Yan, Y. C., Zhang, Q., Liu, B. Q., Wu, C. S., & Wang, L. N. (2023). Phytochemical composition, antimicrobial activities, and cholinesterase inhibitory properties of the lichen Usnea diffracta Vain. Frontiers in Chemistry, 10, 1063645. DOI: 10.3389/fchem.2022.1063645 Huneck, S., & Yoshimura, I. (1996). Identification of lichen substances. In Identification of lichen substances (pp. 11-123). Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg Instituto Nacional de Salud (INS). (2023). Manual de bioseguridad del INS (Versión 03, Código MNL-A01.0000-001). Proceso de Gestión Humana. Bogotá, D.C., Colombia: Instituto Nacional de Salud Kosanić, M., Ranković, B., & Vukojević, J. (2011). Antioxidant properties of some lichen species. Journal of food science and technology, 48(5), 584-590. DOI: 10.1007/s13197-010-0174-2 Leela, K., & Devi, A. (2017). Isolation, purification and application of secondary metabolites from lichen Parmelia Perlata. Biosciences Biotechnology Research Asia, 14(4), 1413-1428. DOI: 10.13005/bbra/2587 Lubis, P. A., Siregar, E. S., & Nurwahyuni, I. (2025). Secondary Metabolites and Antioxidant Properties of Lichens from Sicike-Cike Nature Park, North Sumatra. Jurnal Penelitian Pendidikan IPA, 11(4), 209-215. DOI: 10.29303/jppipa.v11i4.11042 Maulidiyah, M., Rachman, F., La, O. M. Z. M., Natsir, M., Nohong, N., Darmawan, A., ... & Nurdin, M. (2023). Antioxidant Activity of Usnic Acid Compound from Methanol Extract of Lichen Usnea sp. Journal of Oleo Science, 72(2), 179-188. DOI: 10.5650/jos.ess22315 Moncada, B., Coca, L. F., Díaz-Escandón, D., Jaramillo-Ciro, M., Simijaca-Salcedo, D., Soto-Medina, E., ... & Diazgranados, M. (2022). Diversity, ecogeography, and importance of lichens of Colombia. Catalogue of Fungi of Colombia; de Almeida, RF, Lücking, R., Vasco-Palacios, AM, Gaya, E., Diazgranados, M., Eds, 77-90. Orange, A., James, P. W., & White, F. J. (2010). Microchemical methods for the identification of lichens (2ª ed.). British Lichen Society Piñeiro, M., Manrique, S., Gómez, J., Rodriguez, J. M., Barrera, P., Caballero, D., ... & Simirgiotis, M. J. (2025). Biological activities of Usnea lethariiformis lichen extracts and UHPLC-ESI-QTOF-MS analysis of their secondary metabolites. Frontiers in Pharmacology, 15, 1508835. DOI: 10.3389/fphar.2024.1508835 Popovici, V., Bucur, L., Calcan, S. I., Cucolea, E. I., Costache, T., Rambu, D., ... & Badea, V. (2021). Elemental analysis and in vitro evaluation of antibacterial and antifungal activities of Usnea barbata (L.) Weber ex FH Wigg from Călimani Mountains, Romania. Plants, 11(1), 32. DOI: 10.3390/plants11010032 Poulsen-Silva, E., Otero, M. C., Diaz-Cornejo, S., Atala, C., Fuentes, J. A., & Gordillo- Fuenzalida, F. (2025). Secondary metabolites of lichens: The untapped biomedical and pharmaceutical potential of antimicrobial molecules. Fungal Biology Reviews, 51, 100410. DOI: 10.1016/j.fbr.2024.100410 Ranković, B., & Kosanić, M. (2019). Lichens as a potential source of bioactive secondary metabolites. In Lichen secondary metabolites: bioactive properties and pharmaceutical potential (pp. 1-29). Cham: Springer International Publishing Schumm, F., & Elix, J. A. (2015). Atlas of images of thin layer chromatograms. BoD Books on Demand Sepahvand, A., Studzińska-Sroka, E., Ramak, P., & Karimian, V. (2021). Usnea sp.: Antimicrobial potential, bioactive compounds, ethnopharmacological uses and other pharmacological properties; a review article. Journal of Ethnopharmacology, 268, 113656. DOI: 10.1016/j.jep.2020.113656 Thippeswamy, B., Naveenkumar, K. J., Bodharthi, J. G., & Shivaprasad, S. R. (2011). Antimicrobial activity of ethanolic extract of Usnea longissima. Journal of Experimental Sciences, 2(12), 01-03 Tian, H., Lu, J., Liang, F., Ding, H., & Xiao, C. (2025). Unassuming Lichens: Nature’s Hidden Antimicrobial Warriors. International Journal of Molecular Sciences, 26(7), 3136. DOI: 10.3390/ijms26073136 World Health Organization (WHO). (2020). Laboratory biosafety manual (4th ed.). World Health Organization. https://apps.who.int/iris/handle/10665/34713 |
| dc.rights.none.fl_str_mv |
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/ Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0) |
| dc.rights.coar.fl_str_mv |
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 |
| rights_invalid_str_mv |
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/ Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0) http://purl.org/coar/access_right/c_abf2 |
| dc.format.none.fl_str_mv |
38 páginas application/pdf application/pdf application/pdf application/pdf |
| dc.publisher.none.fl_str_mv |
Universidad de Caldas Facultad de Ciencias Exactas y Naturales Manizales Biología |
| publisher.none.fl_str_mv |
Universidad de Caldas Facultad de Ciencias Exactas y Naturales Manizales Biología |
| institution |
Universidad de Caldas |
| repository.name.fl_str_mv |
|
| repository.mail.fl_str_mv |
|
| _version_ |
1855532559031599104 |
| spelling |
Estudio de la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. obtenidos mediante solventes convencionales570 - Biología1. Ciencias NaturalesUsneaMetabolitos secundariosÁcido úsnicoPolaridad del disolventeActividad antimicrobianaCandida albicansStaphylococcus aureusUsneaSecondary metabolitesUsnic acidSolvent polarityAntimicrobial activityCandida albicansStaphylococcus aureusBiologíaFiguras, tablasLos líquenes del género Usnea producen una amplia gama de metabolitos secundarios, entre los cuales el ácido úsnico y los derivados fenólicos presentan reconocida actividad antimicrobiana. Sin embargo, la influencia de la polaridad del disolvente sobre la eficiencia de extracción y la bioactividad sigue siendo poco documentada en especies procedentes de ecosistemas de páramo alto andino de Colombia. Se evaluó el efecto de la polaridad del disolvente sobre el rendimiento de extracción, la composición cualitativa y la actividad antimicrobiana de extractos de Usnea sp. frente a Staphylococcus aureus y Candida albicans. Se recolectaron talos secos de Usnea sp. en el Cerro El Gualí (Caldas, Colombia; 4057 m s. n. m.), los cuales se extrajeron con cinco solventes convencionales de diferente polaridad (hexano, acetato de etilo, acetona, etanol y metanol). Los extractos se caracterizaron mediante pruebas colorimétricas (Folin– Ciocalteu, Shinoda y Dragendorff), cromatografía en capa fina (TLC) y espectroscopía UV–Vis. La actividad antimicrobiana se evaluó por el método de difusión en disco conforme a las guías CLSI M44 y EUCAST disk diffusion method manual V13.0 . Los rendimientos de extracción oscilaron entre 6,9 y 9,3 %, con valores mayores en solventes polares e intermedios (etanol, metanol y acetato de etilo). Los espectros UV–Vis mostraron picos característicos en 295 nm, compatibles con derivados del ácido úsnico. En TLC se observaron valores de Rf (0,65–0,82) similares a los estándares de referencia. Las pruebas antimicrobianas evidenciaron inhibición moderada-alta frente a C. albicans (15,6–19,3 mm) y baja frente a S. aureus (2,7–4,4 mm), siendo el extracto de acetato de etilo-incubadora el más activo (19,27 mm). Los extractos de Usnea sp. obtenidos con solventes polares presentan mayor recuperación de compuestos fenólicos y dibenzofuránicos, así como una actividad antifúngica más destacada, lo que confirma su potencial biotecnológico como fuente natural de metabolitos antimicrobianos.Lichens of the genus Usnea produce a wide range of secondary metabolites, among which usnic acid and phenolic derivatives exhibit well-recognized antimicrobial activity. However, the influence of solvent polarity on extraction efficiency and bioactivity remains poorly documented in species from high Andean páramo ecosystems in Colombia. This study evaluated the effect of solvent polarity on extraction yield, qualitative composition, and antimicrobial activity of Usnea sp. extracts against Staphylococcus aureus and Candida albicans. Dried thalli of Usnea sp. were collected from Cerro El Gualí (Caldas, Colombia; 4057 m a.s.l.) and extracted with five conventional solvents of different polarity (hexane, ethyl acetate, acetone, ethanol, and methanol). Extracts were characterized by colorimetric assays (Folin–Ciocalteu, Shinoda, and Dragendorff), thin-layer chromatography (TLC), and UV–Vis spectroscopy. Antimicrobial activity was evaluated using the disk diffusion method according to CLSI M44 and EUCAST disk diffusion method manual V13.0 guidelines. Extraction yields ranged from 6.9 to 9.3%, with higher values in polar and intermediate solvents (ethanol, methanol, and ethyl acetate). UV– Vis spectra showed characteristic peaks at 295 nm, consistent with usnic acid derivatives. TLC revealed Rf values (0.65–0.82) comparable to reference standards. Antimicrobial assays showed moderate to high inhibition against C. albicans (15.6–19.3 mm) and low inhibition against S. aureus (2.7–4.4 mm), with the ethyl acetate–incubator extract being the most active (19.27 mm). Usnea sp. extracts obtained with polar solvents showed greater recovery of phenolic and dibenzofuran compounds, as well as higher antifungal activity, confirming their biotechnological potential as a natural source of antimicrobial metabolites.Introducción -- Métodos -- Origen del material biológico y área de referencia -- Preparación del material biológico -- Extracción de metabolitos secundarios -- Equipos y materiales empleados -- Identificación preliminar de metabolitos mayoritarios -- Pruebas colorimétricas -- Cromatografía en capa fina (TLC) -- Espectroscopía UV–Vis -- Evaluación de la actividad antimicrobiana -- Microorganismos de referencia -- Preparación del inóculo -- Inoculación y aplicación de discos -- Incubación y lectura -- Procesamiento y análisis de datos -- Consideraciones de bioseguridad y control de calidad -- Resultados -- Evaluación química preliminar de extractos de diferente polaridad -- Espectroscopía UV–Vis -- Evaluación de la actividad antimicrobiana de los extractos -- Discusión -- Rendimientos de extracción -- Ensayos químicos presuntivos -- Caracterización cromatográfica (TLC) -- Espectroscopía UV–Vis -- Actividad antimicrobiana -- Conclusiones -- Recomendaciones -- ReferenciasPregradoEstudio experimental en laboratorio que incluyó la recolección y determinación taxonómica del talo de Usnea sp., seguido de la obtención de extractos mediante maceración sucesiva con solventes convencionales de diferente polaridad (hexano, acetato de etilo, acetona, etanol y metanol). La caracterización química preliminar se desarrolló mediante ensayos colorimétricos (Folin-Ciocalteu, Shinoda y Dragendorff), cromatografía en capa fina (TLC) para estimar perfiles de Rf, y espectroscopía UV-Vis para la detección de metabolitos característicos como derivados del ácido úsnico. La actividad antimicrobiana se evaluó mediante el método de difusión en disco siguiendo las guías CLSI M44 y EUCAST Disk Diffusion Method Manual V15.0, determinando los halos de inhibición frente a Staphylococcus aureus y Candida albicans para comparar el efecto bioactivo según la polaridad del solvente utilizado.Biólogo(a)Actividad antimicrobiana y análisis de metabolitosUniversidad de CaldasFacultad de Ciencias Exactas y NaturalesManizalesBiologíaOcampo Serna, Diana MarcelaBETANCUR JARAMILLO, LUZ ADRIANABetancur Jaramillo, Luz AdrianaOcampo Serna, Diana MarcelaGrupo de Investigación Estudios Ambientales en Agua y Suelo (Categoría B)Franco Vásquez, MarceloGallego, Daniel LeónGonzález Orrego, Juan José2025-11-18T22:00:45Z2025-11-18T22:00:45Z2025-11-11Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesis38 páginasapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfhttps://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/26193Universidad de CaldasRepositorio Institucional Universidad de Caldasrepositorio.ucaldas.edu.cospaAzmi, N. A. N., Elgharbawy, A., Salleh, H. M., & Hayyan, A. (2021). Evaluation of the antimicrobial performance of menthol and menthol-based deep eutectic solvents as potential future antibiotic. In E3S Web of Conferences (Vol. 287, p. 02010). EDP Sciences. DOI: 10.1051/e3sconf/202128702010Bharti, S., & Nayaka, S. (2022). Evaluation of some traditional therapeutic properties of Usnea longissima (Ascomycota, lichenized fungi): antimicrobial, antiquorum and antioxidant. Journal of microbiology, biotechnology and food sciences, 11(4), e3163-e3163. DOI: 10.55251/jmbfs.3163Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). (2018). Method for Antifungal Disk Diffusion Susceptibility Testing of Yeasts (30th ed.; CLSI supplement M44). Gary W. Procop, MD, MS: CLSI.Croce, N., Pitaro, M., Gallo, V., & Antonini, G. (2022). Toxicity of usnic acid: A narrative review. Journal of Toxicology, 2022(1), 8244340. DOI: 10.1155/2022/8244340European Committee on Antimicrobial Susceptibility Testing (EUCAST). (2025). Breakpoint tables for interpretation of MICs and zone diameters (Version 15.0, valid from 2025-01-01). EUCAST. https://www.eucast.org/Fernández-Moriano, C., González-Burgos, E., Divakar, P. K., Crespo, A., & Gómez- Serranillos, M. P. (2016). Evaluation of the antioxidant capacities and cytotoxic effects of ten parmeliaceae lichen species. Evidence‐Based Complementary and Alternative Medicine, 2016(1), 3169751. DOI: 10.21203/rs.3.rs-6922462/v1Francolini, I., Norris, P., Piozzi, A., Donelli, G., & Stoodley, P. (2004). Usnic acid, a natural antimicrobial agent able to inhibit bacterial biofilm formation on polymer surfaces. Antimicrobial agents and chemotherapy, 48(11), 4360-4365. DOI: 10.1128/AAC.48.11.4360-4365.2004Harborne, A. J. (1998). Phytochemical methods a guide to modern techniques of plant analysis. springer science & business mediaHao, Y. M., Yan, Y. C., Zhang, Q., Liu, B. Q., Wu, C. S., & Wang, L. N. (2023). Phytochemical composition, antimicrobial activities, and cholinesterase inhibitory properties of the lichen Usnea diffracta Vain. Frontiers in Chemistry, 10, 1063645. DOI: 10.3389/fchem.2022.1063645Huneck, S., & Yoshimura, I. (1996). Identification of lichen substances. In Identification of lichen substances (pp. 11-123). Berlin, Heidelberg: Springer Berlin HeidelbergInstituto Nacional de Salud (INS). (2023). Manual de bioseguridad del INS (Versión 03, Código MNL-A01.0000-001). Proceso de Gestión Humana. Bogotá, D.C., Colombia: Instituto Nacional de SaludKosanić, M., Ranković, B., & Vukojević, J. (2011). Antioxidant properties of some lichen species. Journal of food science and technology, 48(5), 584-590. DOI: 10.1007/s13197-010-0174-2Leela, K., & Devi, A. (2017). Isolation, purification and application of secondary metabolites from lichen Parmelia Perlata. Biosciences Biotechnology Research Asia, 14(4), 1413-1428. DOI: 10.13005/bbra/2587Lubis, P. A., Siregar, E. S., & Nurwahyuni, I. (2025). Secondary Metabolites and Antioxidant Properties of Lichens from Sicike-Cike Nature Park, North Sumatra. Jurnal Penelitian Pendidikan IPA, 11(4), 209-215. DOI: 10.29303/jppipa.v11i4.11042Maulidiyah, M., Rachman, F., La, O. M. Z. M., Natsir, M., Nohong, N., Darmawan, A., ... & Nurdin, M. (2023). Antioxidant Activity of Usnic Acid Compound from Methanol Extract of Lichen Usnea sp. Journal of Oleo Science, 72(2), 179-188. DOI: 10.5650/jos.ess22315Moncada, B., Coca, L. F., Díaz-Escandón, D., Jaramillo-Ciro, M., Simijaca-Salcedo, D., Soto-Medina, E., ... & Diazgranados, M. (2022). Diversity, ecogeography, and importance of lichens of Colombia. Catalogue of Fungi of Colombia; de Almeida, RF, Lücking, R., Vasco-Palacios, AM, Gaya, E., Diazgranados, M., Eds, 77-90.Orange, A., James, P. W., & White, F. J. (2010). Microchemical methods for the identification of lichens (2ª ed.). British Lichen SocietyPiñeiro, M., Manrique, S., Gómez, J., Rodriguez, J. M., Barrera, P., Caballero, D., ... & Simirgiotis, M. J. (2025). Biological activities of Usnea lethariiformis lichen extracts and UHPLC-ESI-QTOF-MS analysis of their secondary metabolites. Frontiers in Pharmacology, 15, 1508835. DOI: 10.3389/fphar.2024.1508835Popovici, V., Bucur, L., Calcan, S. I., Cucolea, E. I., Costache, T., Rambu, D., ... & Badea, V. (2021). Elemental analysis and in vitro evaluation of antibacterial and antifungal activities of Usnea barbata (L.) Weber ex FH Wigg from Călimani Mountains, Romania. Plants, 11(1), 32. DOI: 10.3390/plants11010032Poulsen-Silva, E., Otero, M. C., Diaz-Cornejo, S., Atala, C., Fuentes, J. A., & Gordillo- Fuenzalida, F. (2025). Secondary metabolites of lichens: The untapped biomedical and pharmaceutical potential of antimicrobial molecules. Fungal Biology Reviews, 51, 100410. DOI: 10.1016/j.fbr.2024.100410Ranković, B., & Kosanić, M. (2019). Lichens as a potential source of bioactive secondary metabolites. In Lichen secondary metabolites: bioactive properties and pharmaceutical potential (pp. 1-29). Cham: Springer International PublishingSchumm, F., & Elix, J. A. (2015). Atlas of images of thin layer chromatograms. BoD Books on DemandSepahvand, A., Studzińska-Sroka, E., Ramak, P., & Karimian, V. (2021). Usnea sp.: Antimicrobial potential, bioactive compounds, ethnopharmacological uses and other pharmacological properties; a review article. Journal of Ethnopharmacology, 268, 113656. DOI: 10.1016/j.jep.2020.113656Thippeswamy, B., Naveenkumar, K. J., Bodharthi, J. G., & Shivaprasad, S. R. (2011). Antimicrobial activity of ethanolic extract of Usnea longissima. Journal of Experimental Sciences, 2(12), 01-03Tian, H., Lu, J., Liang, F., Ding, H., & Xiao, C. (2025). Unassuming Lichens: Nature’s Hidden Antimicrobial Warriors. International Journal of Molecular Sciences, 26(7), 3136. DOI: 10.3390/ijms26073136World Health Organization (WHO). (2020). Laboratory biosafety manual (4th ed.). World Health Organization. https://apps.who.int/iris/handle/10665/34713https://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)http://purl.org/coar/access_right/c_abf2oai:repositorio.ucaldas.edu.co:ucaldas/261932025-11-19T08:01:31Z |
