Evaluación de estrategias in vitro para la conservación del Canelo de los Andaquíes (Mespilodaphne quixos) especie amazónica
Ilustraciones, fotos, mapas, gráficas
- Autores:
- Tipo de recurso:
- Fecha de publicación:
- 0003
- Institución:
- Universidad de Caldas
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- Acceso en línea:
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- Palabra clave:
- Conservación
Cultivo in vitro,
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Martínez Celis, J. M., Bonilla-Jaimes , D. C., Díaz López, S. M., & Vega Marín , C. A. (2024). Influencia de factores ambientales en rasgos funcionales anatómicos e hidráulicos de madera en bosque seco tropical. Biota Colombiana, 25, e1207. https://doi.org/10.21068/2539200X.1207 Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible. (2021). Libro rojo de plantas de Colombia: Especies maderables amenazadas (Parte I). Bogotá, Colombia: Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible. Recuperado de https://www.minambiente.gov.co/wpcontent/uploads/2021/10/Libro-rojo-de-plantas-de-Colombia-Especies-maderablesamenazadas-I-parte.pdf UICN. (2024). Lista Roja de Especies Amenazadas. Recuperado de https://www.iucnredlist.org González, M., Hernández, P., & Pérez, L. (2019). Microbiota epifítica y contaminantes fúngosos del establecimiento in vitro de la guayaba (Psidium guajava L.). Revista de Biotecnología, 17(2), 45-57. https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/136 Corporación para el Desarrollo Sostenible del Sur de la Amazonia (Corpoamazonia). (s.f.). Mapa del municipio de Belén de los Andaquíes, Caquetá [Mapa]. Recuperado el 31 de enero de 2025, de https://www.corpoamazonia.gov.co/region/caqueta/municipios/caq_belen.html Ramos Amaya, J. E. (2012). Avances de la micropropagación in vitro de plantas leñosas. Vásquez, A. A., & Madrigal, M. P. (2010). El cultivo in vitro como estrategia de conservación de los recursos fitogenéticos. Biocenosis, 24(1), 39–47. https://doi.org/10.15517/biocenosis.v24i1.6626 Ana María Sánchez-Cuervo, T. Mitchell Aide, Clark, M. L., & Etter, A. (2012). Land Cover Change in Colombia: Surprising Forest Recovery Trends between 2001 and 2010. PLOS ONE, 7(8), e43943–e43943. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043943 Trofimov, D., Moraes, P. L. R., & Rohwer, J. G. (2019). Towards a phylogenetic classification of the Ocotea complex (Lauraceae): classification principles and reinstatement of Mespilodaphne. Botanical Journal of the Linnean Society. Kew Science. (s. f.). Mespilodaphne quixos (Lam.) Rohwer. Plants of the World Online. Recuperado de https://powo.science.kew.org/taxon/77198017-1 Sosa, L., Espinoza, L. C., Valarezo, E., et al. (2023). Therapeutic Applications of Essential Oils from Native and Cultivated Ecuadorian Plants. Molecules, 28(15), 5903. https://doi.org/10.3390/molecules2815590. Arroyo, M., Armesto, J., Squeo, F. (2008). Capítulo 1 Conservación de Especies Amenazadas a Nivel Global y Regional. 1, 3–12. https://www.plataformacaldera.cl/biblioteca/589/articles64480_documento.pdf. SINCHI, 2015. Planes de Manejo para la Conservación de Abarco, Caoba, Cedro, Palorosa, y Canelo de los Andaquíes. Dairon Cárdenas López, Nicolás Castaño Arboleda, Sonia Sua Tunjano, Lorena Quintero Barrera [et. al.] Bogotá, Colombia: Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas. López, D. C., & Salinas, N. (2007). Libro rojo de plantas de Colombia. Volumen 4. Especies maderables amenazadas: Primera parte (Vol. 4). Instituto Amazónico de Investigaciones Científicas" SINCHI". Ross, S., Arriaga, M. E., & Pechi, E. (2017). Establecimiento in vitro de Yerba mate (Ilex paraguariensis A. St.-Hil.) nativa de Uruguay. Agrociencia (Uruguay), 21(1), 15-23. Santos, U. & Pedraza, M. (2023). ¡El arca moderna de Noé para conservar plantas! “Un método biotecnológico para la conservación de las plantas”. Sabermás, Revista de Divulgación, Universidad Michoacana de San Nicolás de Hidalgo. Consultado en: 29 de Agosto, 2023. Disponible en: https://www.sabermas.umich.mx/archivo/articulos/299-numero-35/541-elarca-moderna-de-noe-para-conservar-plantas-un-metodo-biotecnologico-para-laconservacion-de-las-plantas.html García-Águila, L., de Feria, M. & Acosta, K. (2007). Aspectos básicos de la conservación in vitro de germoplasma vegetal. Instituto de Biotecnología de las Plantas, Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. 7(2) Paruelo, J. M., Guerschman, J. P., & Verón, S. R. (2005). Expansión agrícola y cambios en el uso del suelo. Ciencia hoy, 15(87), 14-23. Domínguez Rosales, M. S., González Jiménez, M. D., Rosales Gómez, C., Quiñones Valles, C., Delgadillo Díaz de León, S., Mireles Ordaz, S. J., & Pérez Molphe Balch, E. (2008). - Amaro, M. R., & Muñoz, M. T. (2018). Cultivo in vitro: alternativa al cultivo tradicional de plantas medicinales. Universidad Complutence, Facultad de Farmacia, Madrid. Gómez-Merino, F. C., Trejo-Téllez, L. I., & Escamilla-Silva, E. M. (2021). Microbiota del suelo y su importancia en la producción agrícola sostenible. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 12(5), 899-915. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342021000500899 Jiménez-Terry, F., & Agramonte, D. (2013). Cultivo in vitro y macropropagación como vía de sostenibilidad de la propagación de especies forestales. Biotecnología Vegetal, 13(1). Recuperado de https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/89/456 |
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Evaluación de estrategias in vitro para la conservación del Canelo de los Andaquíes (Mespilodaphne quixos) especie amazónicaConservaciónCultivo in vitro,Plantas maderablesDesinfecciónConservationIn vitro cultureWoody plantsMespilodaphne quixosDisinfectionBiologíaIlustraciones, fotos, mapas, gráficasEl Canelo de los Andaquíes (Mespilodaphne quixos), especie en peligro, enfrenta una rápida disminución poblacional debido a la deforestación y otros factores antrópicos. Este trabajo evalúa estrategias in vitro para su conservación mediante explantes somáticos y zonas meristemáticas. Los tratamientos de desinfección aplicados a los explantes permitieron reducir contaminantes bacterianos y fúngicos significativamente. Los resultados muestran que el tratamiento D3 constituído por HgCl₂ al 0.5% + Hipoclorito al 5%, fue el más efectivo para el control de hongos, mientras que el uso de Trivia al 1% + Benomil al 1% + Hipoclorito de sodio al 1% mejoró el control de bacterias. Estos avances contribuirán al desarrollo de protocolos optimizados para la propagación in vitro y conservación in vitro y ex situ de esta especie.The endangered Canelo de los Andaquíes (Mespilodaphne quixos) is facing a rapid population decline due to deforestation and other anthropogenic factors. This work evaluates in vitro strategies for their conservation using somatic explants and meristematic zones. The disinfection treatments applied to the explants significantly reduced bacterial and fungal contaminants. The results show that the D3 treatment consisting of 0.5% HgCl₂ + 5% hypochlorite was the most effective for fungal control, while the use of 1% Trivia + 1% Benomyl + 1% sodium hypochlorite improved bacterial control. These advances will contribute to the development of optimized protocols for in vitro propagation and in vitro and ex situ conservation of this species.PregradoDe tipo experimental y se desarrolló en varias etapas. Se utilizó un diseño completamente al azar para evaluar la efectividad de distintos tratamientos de desinfección en explantes de Mespilodaphne quixos. La investigación incluyó la identificación y recolección del material vegetal en campo, seguido de su procesamiento en laboratorio bajo condiciones estériles. Se aplicaron diferentes protocolos de desinfección y se evaluaron variables como la contaminación microbiana, la oxidación fenólica y la regeneración de explantes. Los datos obtenidos se analizaron mediante pruebas estadísticas, incluyendo análisis de varianza (ANOVA), para determinar diferencias significativas entre los tratamientos.Biólogo(a)Universidad de CaldasFacultad de Ciencias Exactas y NaturalesManizalesBiologíaGarcía Jaramillo , Edwin AndrésDuque Castrillón, Cesar AugustoGonzalez, María IsabelGarcía Jaramillo, Dora JanethBIONAT: Grupo de investigación en Biodiversidad y Recursos Naturales (Categoría A1)Espinosa Gómez, Yeimy Alejandra 2025-02-03T20:41:16Z2025-02-03T20:41:16Z0003-02-25Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1fTextinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesishttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a8514 páginasapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfhttps://repositorio.ucaldas.edu.co/handle/ucaldas/21920Universidad de CaldasRepositorio Institucional Universidad de Caldashttps://repositorio.ucaldas.edu.cospaMartínez Celis, J. M., Bonilla-Jaimes , D. C., Díaz López, S. M., & Vega Marín , C. A. (2024). Influencia de factores ambientales en rasgos funcionales anatómicos e hidráulicos de madera en bosque seco tropical. Biota Colombiana, 25, e1207. https://doi.org/10.21068/2539200X.1207Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible. (2021). Libro rojo de plantas de Colombia: Especies maderables amenazadas (Parte I). Bogotá, Colombia: Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible. Recuperado de https://www.minambiente.gov.co/wpcontent/uploads/2021/10/Libro-rojo-de-plantas-de-Colombia-Especies-maderablesamenazadas-I-parte.pdfUICN. (2024). Lista Roja de Especies Amenazadas. Recuperado de https://www.iucnredlist.orgGonzález, M., Hernández, P., & Pérez, L. (2019). Microbiota epifítica y contaminantes fúngosos del establecimiento in vitro de la guayaba (Psidium guajava L.). Revista de Biotecnología, 17(2), 45-57. https://revista.ibp.co.cu/index.php/BV/article/view/136Corporación para el Desarrollo Sostenible del Sur de la Amazonia (Corpoamazonia). (s.f.). Mapa del municipio de Belén de los Andaquíes, Caquetá [Mapa]. Recuperado el 31 de enero de 2025, de https://www.corpoamazonia.gov.co/region/caqueta/municipios/caq_belen.htmlRamos Amaya, J. E. (2012). Avances de la micropropagación in vitro de plantas leñosas.Vásquez, A. A., & Madrigal, M. P. (2010). El cultivo in vitro como estrategia de conservación de los recursos fitogenéticos. Biocenosis, 24(1), 39–47. https://doi.org/10.15517/biocenosis.v24i1.6626Ana María Sánchez-Cuervo, T. Mitchell Aide, Clark, M. L., & Etter, A. (2012). Land Cover Change in Colombia: Surprising Forest Recovery Trends between 2001 and 2010. PLOS ONE, 7(8), e43943–e43943. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0043943Trofimov, D., Moraes, P. L. R., & Rohwer, J. G. (2019). Towards a phylogenetic classification of the Ocotea complex (Lauraceae): classification principles and reinstatement of Mespilodaphne. Botanical Journal of the Linnean Society.Kew Science. (s. f.). Mespilodaphne quixos (Lam.) Rohwer. 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Expansión agrícola y cambios en el uso del suelo. Ciencia hoy, 15(87), 14-23.Domínguez Rosales, M. S., González Jiménez, M. D., Rosales Gómez, C., Quiñones Valles, C., Delgadillo Díaz de León, S., Mireles Ordaz, S. J., & Pérez Molphe Balch, E. (2008). - Amaro, M. R., & Muñoz, M. T. (2018). Cultivo in vitro: alternativa al cultivo tradicional de plantas medicinales. Universidad Complutence, Facultad de Farmacia, Madrid.Gómez-Merino, F. C., Trejo-Téllez, L. I., & Escamilla-Silva, E. M. (2021). Microbiota del suelo y su importancia en la producción agrícola sostenible. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 12(5), 899-915. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342021000500899Jiménez-Terry, F., & Agramonte, D. (2013). Cultivo in vitro y macropropagación como vía de sostenibilidad de la propagación de especies forestales. Biotecnología Vegetal, 13(1). 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