El nitrógeno líquido como promotor de la germinación de las semillas y del crecimiento de las plántulas en las leguminosas tropicales
Introducción— La semilla dura es la principal causa de latencia en la mayoría de las especies de Leguminoseae. Los métodos de escarificación de la semilla, en los que se busca un daño físico para romper la cubierta dura de la semilla sin disminuir su calidad, se han modificado a lo largo del tiempo...
- Autores:
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Acosta Fernández, Yanier
Fontes Marrero, Dayami
Martínez Montero, Marcos Edel
- Tipo de recurso:
- Article of journal
- Fecha de publicación:
- 2021
- Institución:
- Corporación Universidad de la Costa
- Repositorio:
- REDICUC - Repositorio CUC
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- Palabra clave:
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Introducción— La semilla dura es la principal causa de latencia en la mayoría de las especies de Leguminoseae. Los métodos de escarificación de la semilla, en los que se busca un daño físico para romper la cubierta dura de la semilla sin disminuir su calidad, se han modificado a lo largo del tiempo para hacerlos más efectivos. Los métodos de escarificación de semillas más utilizados son el calor, la escarificación mecánica y la congelación-descongelación. Algunos métodos de escarificación por congelación-descongelación incluyen la inmersión a muy baja temperatura en Nitrógeno Líquido (LN, –196°C). Objetivo— Determinar la efectividad del uso de Nitrógeno Líquido (LN) como método de escarificación para superar la latencia en semillas de especies de la familia Leguminoseae. Metodología— Se determinó la calidad fisiológica de todas las semillas recién cosechadas y se escarificaron por inmersión directa en LN durante 30 minutos. Se determinó la germinación total en condiciones de laboratorio, así como el tiempo necesario para que las semillas alcanzaran el 50% de germinación (T50) y el número total de semillas que permanecieron duras al final del experimento. Se evaluó el porcentaje de plántulas emergidas y su crecimiento vegetativo durante 21 días después de la siembra. Resultados— Las semillas de todas las especies evaluadas mostraron una alta calidad fisiológica en el momento de la cosecha. La escarificación con LN mejoró la germinación, emergencia y crecimiento vegetativo en las especies Desmodium scorpiorus, Teramnus labialis, Neonotonia wigthii y Phueraria phaseoloides. Conclusiones— La dormancia fue superada efectivamente en las semillas de las especies D. scorpiorus, T. labialis, N. wigthii y P. phaseoloides. Se logró aumentar el porcentaje y la velocidad de germinación y emergencia, logrando obtener plantas con mayor crecimiento vegetativo durante los primeros 21 días después de la siembra. |
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E. Kimura & M. A. Islam, “Seed scarification methods and their use in forage legumes,” Res J Seed Sci, vol. 5, no. 2, pp. 38–50, Feb. 2012. https://doi.org/10.3923/rjss.2012.38.50 N. Azani, M. Babineau, C. D. Bailey, H. Banks, A. R. Barbosa, R. Barbosa, J. S. Boatwright, L. M. Borges, G. K. Brown, A. Bruneau et al., “A new subfamily classification of the Leguminosae based on a taxonomically comprehensive phylogeny – The Legume Phylogeny Working Group (LPWG),” Taxon, vol. 66, no. 1, pp. 44–77, Feb. 2017. https://doi.org/10.12705/661.3 A. Díaz, E. Castillo, P. C. Martín & J. L. Hernández, “Pre-fattening of crossbred dairy bulls under grazing with glycine (Neonotonia wightii) and tropical grasses with rumen activator supplement,” Cuba J Agric Sci, vol. 47, no. 1, pp. 23–26, 2013. Available: http://cjascience.com/index.php/CJAS/article/view/250 C. A. Mazorra-Calero, D. Fontes-Marrero, L. H. Donis-García, J. Martínez-Melo, Y. Acosta-Fernández, I. Espinosa-Alemán, C. Lavinge, P. 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Suzán-Azpiri & G. Malda-Barrera, “Viabilidad y germinación de semillas de Taxodium mucronatum (Ten.) en el estado de Querétaro, México,” Agrocienc, vol. 38, no. 3, pp. 375–381, 2004. Available: https://agrociencia-colpos.mx/index.php/agrociencia/article/view/329 G. K. Jaganathan, K. J. Yule & M. Biddick, “Determination of the water gap and the germination ecology of Adenanthera pavonina (Fabaceae, Mimosoideae); the adaptive role of physical dormancy in mimetic seeds,” AoB PLANTS, vol. 10, no. 5, pp. 1–11, Oct. 2018. https://doi.org/10.1093/aobpla/ply048 M. T. Gonzalez-Arnao & F. Engelmann,. Crioconservación de plantas en América Latina y el Caribe, SJ, CR: IICA, 2013. Available: https://horizon.documentation.ird.fr/exl-doc/pleins_textes/divers14-02/010060280.pdf S. N. Acharya, D. G. Stout, B. Brooke & D. Thompson, “Cultivar and storage effects on germination and hard seed content of alfalfa,” Can J Plant Sci, vol. 79, no. 2, pp. 201–208, Apr. 1999. https://doi.org/10.4141/P98-043 H. 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De la Cuadra, “Evaluation of different scarification methods to remove hardseededness in Trifolium subterraneum and Medicago polymorpha accessions of the Spanish base genebank,” Seed Sci Technol, vol. 32, no. 3, pp. 671–681, Oct. 2004. https://doi.org/10.15258/sst.2004.32.3.03 K. Endoh, M. Matsushita, M. K. Kimura, S. Hanaoka, Y. Kurita, E. Hanawa, S. Kinoshita, N. Abe, H. Yamada & M. Ubukata, “Cryopreservation of Fagus crenata seeds: estimation of optimum moisture content for maintenance of seed viability by Bayesian modeling,” Can J For Res, vol. 48, no. 2, pp. 192–196, Feb. 2018. https://doi.org/10.1139/cjfr-2017-0286 S. Mira, A. Arnal & F. Pérez-García, “Seed germination of Phillyrea angustifolia L., a species of difficult propagation,” FS, vol. 26, no. 1, pp. 1–10, May. 2017. https://doi.org/10.5424/fs/2017261-10216 M. Navarro, “Desempeño fisiológico de las semillas de árboles leguminosos de uso múltiple en el trópico,” Pastos y Forrajes, vol. 26, no. 2, pp. 97–114, 2003. 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Mauli, “Comparison of tests for the analysis of vigor and viability in soybean seeds and their relationship to field emergence,” Acta Sci Agron, vol. 35, no. 1, pp. 83–92, Dic. 2013. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v35i1.14955 F. Forcella, R. L. Benech Arnold, R. Sanchez & C. M. Ghersa, “Modeling seedling emergence,” Field Crops Res, vol. 67, no. 2, pp. 123–139, Jul. 2000. https://doi.org/10.1016/S0378-4290(00)00088-5 SPSS. (version 12.0). IBM [Online . Available: https://www.ibm.com/mx-es/analytics/spss-statistics-software |
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Objetivo— Determinar la efectividad del uso de Nitrógeno Líquido (LN) como método de escarificación para superar la latencia en semillas de especies de la familia Leguminoseae. Metodología— Se determinó la calidad fisiológica de todas las semillas recién cosechadas y se escarificaron por inmersión directa en LN durante 30 minutos. Se determinó la germinación total en condiciones de laboratorio, así como el tiempo necesario para que las semillas alcanzaran el 50% de germinación (T50) y el número total de semillas que permanecieron duras al final del experimento. Se evaluó el porcentaje de plántulas emergidas y su crecimiento vegetativo durante 21 días después de la siembra. Resultados— Las semillas de todas las especies evaluadas mostraron una alta calidad fisiológica en el momento de la cosecha. La escarificación con LN mejoró la germinación, emergencia y crecimiento vegetativo en las especies Desmodium scorpiorus, Teramnus labialis, Neonotonia wigthii y Phueraria phaseoloides. Conclusiones— La dormancia fue superada efectivamente en las semillas de las especies D. scorpiorus, T. labialis, N. wigthii y P. phaseoloides. Se logró aumentar el porcentaje y la velocidad de germinación y emergencia, logrando obtener plantas con mayor crecimiento vegetativo durante los primeros 21 días después de la siembra.Introduction: The hard seed is the main cause of dormancy in most of the Leguminoseae species. Seed scarification methods, where physical damage is sought to break hard seed coat without diminishing quality, have been modified over time to make them more effective. The most commonly used seed scarification methods include heat, mechanical scarification, and freeze-thaw. Some methods for freeze-thaw scarification include ultra-low temperature immersion in liquid nitrogen (LN, -196 ° C). Objective: Determine the effectiveness use of Liquid nitrogen (LN) as a scarification method to overcome dormancy in seeds of species of the Leguminoseae family. Methodology: The physiological quality of all freshly harvested seeds was determined and scarified by direct immersion in LN for 30 minutes. Total germination was determined under laboratory conditions, as well as the time required for the seeds to reach 50% germination (T50) and the total number of seeds that remained hard at the end of the experiment. The percentage of emerged seedlings and their vegetative growth was evaluated for 21 days after sowing. Results: The seeds of all species evaluated showed a high physiological quality at the time of harvest. Scarification with LN improved germination, emergence and vegetative growth in the species Desmodium scorpiorus, Teramnus labialis, Neonotonia wigthii and Phueraria phaseoloides. Conclusions: Dormancy was effectively overcome in the seeds of the species D. scorpiorus, T. labialis, N. wigthii and P. phaseoloides. It was possible to increase the percentage and speed of germination and emergence, managing to obtain plants with greater vegetative growth during the first 21 days after sowing.application/pdftext/htmlengUniversidad de la CostaINGE CUC - 2021http://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0info:eu-repo/semantics/openAccessEsta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0.http://purl.org/coar/access_right/c_abf2https://revistascientificas.cuc.edu.co/ingecuc/article/view/3312legumesseed dormancygerminationliquid nitrogenleguminosaslatencia de semillasgerminaciónnitrógeno líquidoEl nitrógeno líquido como promotor de la germinación de las semillas y del crecimiento de las plántulas en las leguminosas tropicalesLiquid Nitrogen as promotor of seeds germination and seedling growth in tropical legumesArtículo de revistahttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501http://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1Textinfo:eu-repo/semantics/articleJournal articlehttp://purl.org/redcol/resource_type/ARTinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85Inge Cuc E. 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