Generación de un modelo de esfera multicelular organotípica para el estudio del microambiente de células madre hematopoyéticas humanas

Introducción: Se ha descrito que las características biológicas de las células madre hematopoyéticas (CMH) humanas están condicionadas por el microambiente de la médula ósea (MO). Estas células conforman nichos en la MO al interactuar con otras poblaciones celulares como las células madre mesenquima...

Full description

Autores:
Tipo de recurso:
masterThesis
Fecha de publicación:
2018
Institución:
Pontificia Universidad Javeriana
Repositorio:
Repositorio Universidad Javeriana
Idioma:
spa
OAI Identifier:
oai:repository.javeriana.edu.co:10554/35625
Acceso en línea:
http://hdl.handle.net/10554/35625
https://doi.org/10.11144/Javeriana.10554.35625
Palabra clave:
Hematologia
Microambiente
Salud
Haematology
Microenvironment
Health
Maestría en ciencias biológicas - Tesis y disertaciones académicas
Células madre
Hematología
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openAccess
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Mejía Cruz, Claudia Camila
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description Introducción: Se ha descrito que las características biológicas de las células madre hematopoyéticas (CMH) humanas están condicionadas por el microambiente de la médula ósea (MO). Estas células conforman nichos en la MO al interactuar con otras poblaciones celulares como las células madre mesenquimales (CMM) y las células endoteliales (CE). Se han diseñado múltiples estrategias en cultivos en dos dimensiones (2D) y cultivos en tres dimensiones (3D) con el objetivo de comprender las interacciones de las CMH en su nicho; sin embargo, estos cultivos aún distan considerablemente de las condiciones fisiológicas in vivo de la MO humana. Con el objetivo de determinar el efecto sinérgico de las células presentes en MO sobre la viabilidad, proliferación, diferenciación y capacidad multipotente de las CMH, se desarrolló un modelo de esferas multicelulares organotípicas que imitan el microambiente medular in vivo a través de un sistema de cultivo 3D por levitación magnética. Materiales y métodos: Para la generación de las esferas multicelulares organotípicas por levitación magnética se utilizaron CMH aisladas a partir de sangre de sangre de cordón umbilical (SCU), CMM aisladas a partir de MO y CE de microvasculatura dérmica (CC-2811, Lonza®). Se inició con la estandarización del cultivo 3D, posteriormente se realizaron análisis morfológicos de las esferas multicelulares, en donde se determinó la esfericidad, volumen, porcentaje de agregación y viabilidad. Asimismo, se realizaron evaluaciones histológicas, inmunohistoquímicas, tinciones inmunofluorescentes y la determinación del porcentaje de área de expresión de Ki-67, CD133, CD33 y CD7 y su co-expresión con CD34 dentro de las esferas multicelulares. Finalmente, se evaluó la capacidad multipotente de las CMH tras el contacto con CMM y CE en la esfera multicelular. Resultados: La relación óptima de cultivo celular con las tres poblaciones celulares para la generación de esferas multicelulares organotípicas estables fue de 1 CMM: 2 CMH: 2 CE. Se obtuvieron estructuras viables al día 10 y 15 de cultivo con un índice de esfericidad mayor al 0.8 (0.83-0.91), un porcentaje de agregación mayor al 70% (64%-97%) al 5 día de cultivo y una disminución del volumen directamente proporcional al tiempo de incubación. Los estudios histológicos de hematoxilina y eosina, y la evaluación de vimentina de las esferas multicelulares demostró una estructura interna organizada, sin núcleos picnóticos ni centro necrótico. Se aprecia una expresión global de CD34 preservada en el tiempo, una mayor co-expresión de Ki-67 con CD34 en la esfera experimental respecto a los controles, una preservación de las áreas de expresión del antígeno CD133 tras 10 y 15 días de conformación de la esfera y un escaso porcentaje de área de expresión de antígeno asociados con diferenciación mieloide (CD33) y 18 diferenciación linfoide (CD7 citoplasmático). La capacidad funcional de las CMH después de permanecer en cultivo con CMM y CE se preserva en los esferoides experimentales por 10 y 15 días, generando unidades formadoras de colonias primitivas. Conclusiones: Se generó un modelo de estudio de nicho estromal el cual favorece el mantenimiento de las CMH en estadio primitivo, preservando su viabilidad y sus características multipotentes tras 15 días de cultivo. Este modelo de esfera multicelular organotípica permite por primera vez evaluar de manera sinérgica el efecto de dos poblaciones celulares estromales como son las CMM y las CE sobre características biológicas de las CMH.
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Con el objetivo de determinar el efecto sinérgico de las células presentes en MO sobre la viabilidad, proliferación, diferenciación y capacidad multipotente de las CMH, se desarrolló un modelo de esferas multicelulares organotípicas que imitan el microambiente medular in vivo a través de un sistema de cultivo 3D por levitación magnética. Materiales y métodos: Para la generación de las esferas multicelulares organotípicas por levitación magnética se utilizaron CMH aisladas a partir de sangre de sangre de cordón umbilical (SCU), CMM aisladas a partir de MO y CE de microvasculatura dérmica (CC-2811, Lonza®). Se inició con la estandarización del cultivo 3D, posteriormente se realizaron análisis morfológicos de las esferas multicelulares, en donde se determinó la esfericidad, volumen, porcentaje de agregación y viabilidad. Asimismo, se realizaron evaluaciones histológicas, inmunohistoquímicas, tinciones inmunofluorescentes y la determinación del porcentaje de área de expresión de Ki-67, CD133, CD33 y CD7 y su co-expresión con CD34 dentro de las esferas multicelulares. Finalmente, se evaluó la capacidad multipotente de las CMH tras el contacto con CMM y CE en la esfera multicelular. Resultados: La relación óptima de cultivo celular con las tres poblaciones celulares para la generación de esferas multicelulares organotípicas estables fue de 1 CMM: 2 CMH: 2 CE. Se obtuvieron estructuras viables al día 10 y 15 de cultivo con un índice de esfericidad mayor al 0.8 (0.83-0.91), un porcentaje de agregación mayor al 70% (64%-97%) al 5 día de cultivo y una disminución del volumen directamente proporcional al tiempo de incubación. Los estudios histológicos de hematoxilina y eosina, y la evaluación de vimentina de las esferas multicelulares demostró una estructura interna organizada, sin núcleos picnóticos ni centro necrótico. Se aprecia una expresión global de CD34 preservada en el tiempo, una mayor co-expresión de Ki-67 con CD34 en la esfera experimental respecto a los controles, una preservación de las áreas de expresión del antígeno CD133 tras 10 y 15 días de conformación de la esfera y un escaso porcentaje de área de expresión de antígeno asociados con diferenciación mieloide (CD33) y 18 diferenciación linfoide (CD7 citoplasmático). La capacidad funcional de las CMH después de permanecer en cultivo con CMM y CE se preserva en los esferoides experimentales por 10 y 15 días, generando unidades formadoras de colonias primitivas. Conclusiones: Se generó un modelo de estudio de nicho estromal el cual favorece el mantenimiento de las CMH en estadio primitivo, preservando su viabilidad y sus características multipotentes tras 15 días de cultivo. Este modelo de esfera multicelular organotípica permite por primera vez evaluar de manera sinérgica el efecto de dos poblaciones celulares estromales como son las CMM y las CE sobre características biológicas de las CMH.COLCIENCIASBackground: It has been described that biological characteristics of human hematopoietic stem cells (HSC) are conditioned by the bone marrow microenvironment (BM). These cells form niches in BM interacting with other cell populations such as mesenchymal stem cells (MSCs) and endothelial cells (EC). Multiple strategies have been designed in two-dimensional (2D) and three-dimensional (3D) cutlures in order to understand the interactions of the HSCs in their niche; however, these cultures are still far from the in vivo physiological conditions of the human BM. In order to establish the synergistic effect of the cells in BM in the viability, proliferation, differentiation and multipotent capacity of the HSC, a model of organotypic multicellular spheres was developed that mimic the medullar in vivo microenvironment through 3D culture system by magnetic levitation. Materials & Methods: For the generation of the organotypic spheres by magnetic levitation, HSC were isolated from umbilical cord blood (UCB), MSC were isolated from BM and EC from dermal microvasculature(CC-2811, Lonza®) were used. It began with the standardization of the 3D culture, later morphological analysis of the multicellular spheres was carried out, where the sphericity, volume, aggregation percentage and viability were determined. Likewise, histological, immunohistochemical, immunofluorescent staining and determination of the expression area percentage of ​​Ki-67, CD133, CD33 and CD7 and their co-expression with CD34 within the multicellular spheres were performed. Finally, the multipotent capacity of the HSC was evaluated after contact with CMM and CE in the multicellular sphere. Results: The optimal cell culture ratio with the three cell populations for the generation of stable organotypic multicellular spheres was 1 MSC: 2 HSC: 2 EC. Viable structures were obtained at day 10 and 15 of culture with a sphericity index greater than 0.8 (0.83-0.91), an aggregation percentage greater than 70% (64% -97%) at day 5 of culture and volume decrease proportional to the incubation time. The histological studies with hematoxylin and eosin, and the vimentin evaluation of the multicellular spheres showed an organized internal structure, without pyknotic nuclei or necrotic center. There is a global expression of CD34 preserved in time, a greater co-expression of Ki-67 with CD34 in the experimental sphere compared with the controls, a preservation of the expression areas of the CD133 antigen after 10 and 15 days of conformation of the sphere and a small percentage of antigen expression area associated with myeloid differentiation (CD33) and lymphoid differentiation (CD7cy). The functional capacity of the HSC after the culture with MSC and EC is preserved in the experimental spheroids for 10 and 15 days, generating hematopoietic colony forming units. Conclusions: A stromal niche study model which favors the maintenance of the HSC in the primitive stage was generated, preserving their viability and their multipotent characteristics after 15 days of culture. This organotypic multicellular sphere model allows for the first time synergistic evaluation of the effect of two stromal cell populations such as MSC and EC on the biological characteristics of HSCs.Magíster en Ciencias BiológicasMaestríaPontificia Universidad JaverianaMaestría en Ciencias BiológicasFacultad de CienciasRodríguez Pardo, Viviana MarcelaGutiérrez Gómez, María LucíaLinero Segrera, Itali MarcellyArango Rodríguez, Martha Ligia2018-07-30T18:38:37Z2020-04-16T19:40:43Z2018-07-30T18:38:37Z2020-04-16T19:40:43Z2018-07-06http://purl.org/coar/version/c_ab4af688f83e57aaTesis/Trabajo de grado - Monografía - Maestríahttp://purl.org/coar/resource_type/c_bdccinfo:eu-repo/semantics/masterThesisinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionPDFapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfapplication/pdfhttp://hdl.handle.net/10554/35625https://doi.org/10.11144/Javeriana.10554.35625instname:Pontificia Universidad Javerianareponame:Repositorio Institucional - Pontificia Universidad Javerianarepourl:https://repository.javeriana.edu.cospaAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacionalhttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/info:eu-repo/semantics/openAccessDe acuerdo con la naturaleza del uso concedido, la presente licencia parcial se otorga a título gratuito por el máximo tiempo legal colombiano, con el propósito de que en dicho lapso mi (nuestra) obra sea explotada en las condiciones aquí estipuladas y para los fines indicados, respetando siempre la titularidad de los derechos patrimoniales y morales correspondientes, de acuerdo con los usos honrados, de manera proporcional y justificada a la finalidad perseguida, sin ánimo de lucro ni de comercialización. De manera complementaria, garantizo (garantizamos) en mi (nuestra) calidad de estudiante (s) y por ende autor (es) exclusivo (s), que la Tesis o Trabajo de Grado en cuestión, es producto de mi (nuestra) plena autoría, de mi (nuestro) esfuerzo personal intelectual, como consecuencia de mi (nuestra) creación original particular y, por tanto, soy (somos) el (los) único (s) titular (es) de la misma. Además, aseguro (aseguramos) que no contiene citas, ni transcripciones de otras obras protegidas, por fuera de los límites autorizados por la ley, según los usos honrados, y en proporción a los fines previstos; ni tampoco contempla declaraciones difamatorias contra terceros; respetando el derecho a la imagen, intimidad, buen nombre y demás derechos constitucionales. Adicionalmente, manifiesto (manifestamos) que no se incluyeron expresiones contrarias al orden público ni a las buenas costumbres. En consecuencia, la responsabilidad directa en la elaboración, presentación, investigación y, en general, contenidos de la Tesis o Trabajo de Grado es de mí (nuestro) competencia exclusiva, eximiendo de toda responsabilidad a la Pontifica Universidad Javeriana por tales aspectos. Sin perjuicio de los usos y atribuciones otorgadas en virtud de este documento, continuaré (continuaremos) conservando los correspondientes derechos patrimoniales sin modificación o restricción alguna, puesto que, de acuerdo con la legislación colombiana aplicable, el presente es un acuerdo jurídico que en ningún caso conlleva la enajenación de los derechos patrimoniales derivados del régimen del Derecho de Autor. De conformidad con lo establecido en el artículo 30 de la Ley 23 de 1982 y el artículo 11 de la Decisión Andina 351 de 1993, “Los derechos morales sobre el trabajo son propiedad de los autores”, los cuales son irrenunciables, imprescriptibles, inembargables e inalienables. En consecuencia, la Pontificia Universidad Javeriana está en la obligación de RESPETARLOS Y HACERLOS RESPETAR, para lo cual tomará las medidas correspondientes para garantizar su observancia.http://purl.org/coar/access_right/c_abf2reponame:Repositorio Universidad Javerianainstname:Pontificia Universidad Javerianainstacron:Pontificia Universidad Javeriana2022-04-29T19:24:12Z