Técnicas de Valoración Espermática In Vitro.

Optimizar los resultados de la reproducción asistida ya sea por inseminación artificial o por fecundación in vitro, ha sido a lo largo de los años eje fundamental de investigación, puesto que con los procesos de análisis de semen convencionales se pueden obtener valores predictivos bajos en la tasa...

Full description

Autores:: Vergel Gutierrez, Luis Armando

Tipo de recurso:: Trabajo de grado de pregrado

Fecha de publicación:: 2019

Institución:: Universidad Cooperativa de Colombia

Repositorio:: Repositorio UCC

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Efecto de la velocidad de enfriamiento en la congelabilidad de los espermatozoides de porcino. Master Interuniversitario en Mejora Genética animal y biotecnología de la Reproducción, 98. Bernardi, S., Allende, R., Mazzeo, R., Monti, J., & Marini, P. (2011). Evaluación de los cambios ocasionados en espermatozoides bovinos por variaciones en el manejo de las dosis durante su manipulación en inseminación artificial. InVet vol.13 no.2. Januskauskas, A., Johannisson, A. and Rodriguez-Martinez, H. 2003. Subtle Membrane changes in cryopreserved bull semen in relation with sperm Viability, chromatin structure, and field fertility. Theriogenology. 60: 743-758. Verstegen, J. and Onclin, K. 2002. Computer assisted semen analyzers in Andrology research and veterinary practice. Theriogenology. 57: 149- 179. González, J., Martínez, Y., & Sánchez, D. (2013). Análisis seminal equino y bovino. Espermatozoides In Vitro, 5. Hernández Corredor, L. (2014). Evaluación De La Motilidad Espermática De Semen Caprino Criopreservado Bajo Diferentes Medios Diluyentes A Través Del Sistema Casa (trabajo de tesis) Escuela De Ciencias Agrícolas, Pecuarias Y Del Medio Ambiente, Cúcuta, Colombia. Almela Veracruz, L. (2014). Aportaciones A La Crioconservación De Gametos Masculinos En La Raza Bovina Murciano Levantina: Recongelación De Espermatozoides. Murcia: Universidad De Murcia Laguado José. 2007. Aplicaciones de la citometría de flujo en microbiología, veterinaria y agricultura. Rev. MVZ Córdoba 12 (2): 1077-1095. Piedras Josefa. 2006. Citometría de flujo en el diagnóstico y clasificación de padecimientos hematológicos: leucemias agudas, síndromes linfoproliferativos crónicos y glicoproteínas plaquetarias. Revista de Hematología 7 (2): 53-62 Barrera Ramírez Lourdes María, Drago Serrano Ma. Elisa, Pérez Ramos Julia, Zamora Ana Cecilia, Gómez Arroyo Fabiola, Sainz Espuñes Teresita del Rosario y Mendoza Pérez Felipe. 2004. Citometría de flujo: vínculo entre la investigación básica y la aplicación clínica. Rev. Inst. Nal. Enf. Resp. Mex. 17 (1): 42-55. Loureiro. 2009. Aplicación de la citometría de flujo en el estudio del genoma vegetal. Ecosistemas 18 (2):103-108. Ramos Coaguila Olger. 2013. Utilización del semen sexado en producción de vacunos. Sistema de Revisiones en Investigación de San Marcos: 1-11. Urbina Quito Camilo Ernesto. 2012. Utilización de semen bovino sexado en inseminación artificial, transferencia embrionaria y fertilización in vitro. Monografía de grado, previa a la obtención del título de Médico Veterinario. Universidad de cuenca. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia: 40-55. Villanueva E. y Mellisho E. 2011. Fertilidad de semen sexado “X” comercial en vacunos de leche. APERMOVA 1(1):106-107. Oses M.V. Teruel M.T. Cabodevila J.A. 2009. Utilización de semen bovino sexado en inseminación artificial, transferencia embrionaria y fertilización in vitro. Rev. Vet. 20 (2): 138-145. Marini P.R. y Galassi I. 2011. Relación entre celo-inseminación con semen sexado y porcentaje de preñez en vaquillonas Holstein. Rev. Vet. 22 (1): 52-54. Sharpe J.C y Evans K.M. 2009. Advances in flow citometry for sperm sexing. Theriogenology 71: 4-10. de Graaf SP, Beilby KH, Underwood SL, Evans G, Maxwell WM: Sperm sexing in sheep and cattle: the exception and the rule. Theriogenology 2009;71:89-97 Gamboa S, Rodrigues A, Henriques l, Batista C, Ramalho-Santos J. Seasonal functional relevance of sperm characteristics in equine spermatozoa. Theriogenology 2010; 73(7): 950-958. Gillan L, Evans G, Maxwell W. Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology 2005; 63(2): 445-457. Gravance C, Garner D, Baumber J, Ball B. Assessment of equine sperm mitochondrial function using JC-1. Theriogenology 2000; 53(9): 1691-1703. Brum A, Sabeur K, Ball, B. Apoptotic-like changes in equine spermatozoa separated by density-gradient centrifugation or after cryopreservation. Theriogenology 2008; 69: 1041-1055. Love C, Thompson J, Brinsko S, Rigby S, Blanchard T, et al. Relationship between stallion sperm motility and viability as detected by two fluorescence staining techniques using flow cytometry. Theriogenology 2003; 60(6): 1127-1138. Varner D. Developments in stallion semen evaluation. Theriogenology 2008; 70(3): 448-462. Ramalho-Santos J, Amaral A, Sousa A, Rodrigues A, Martins L, et al. Probing the structure and function of mammalian sperm using optical and fluorescence microscopy. Modern Research and Educational Topics in Microscopy 2007; 394-402. Esteves S, Verza S. Relationship of in vitro acrosome reaction to sperm function: an update. The Open Reproductive Science Journal 2011; 3: 72-84. Neild D, Gadella B, Chavez M, Miragaya M, Colenbrander B, et al. Membrane changes during different stages of a freeze-thaw protocol for equine semen cryopreservation. Theriogenology 2003; 59: 1693-1705. Graham J, Mocé E. Fertility evaluation of frozen/ thawed semen. Theriogenology 2005; 64: 492-504. Love, C. The sperm chromatin structure assay: A review of clinical applications. Volume 89, Issues 1-4, October 2005, Pages 39-45. Turner R.M. Current techniques for evaluation of stallion fertility original research article. Clinical Techniques in Equine Practice 2005; 4 (3): 257-268. Domínguez-Fandos D, Camejo M, Ballescà J, Oliva R. Human sperm DNA fragmentation: Correlation of TUNEL results as assessed by flow cytometry and optical microscopy. Cytometry 2007; 71A: 1011-1018. Cortés-Gutiérrez E, Crespo F, Serres-Dalmau C, Gutiérrez de las Rozas A, Dávila-Rodríguez M, et al. Assessment of sperm DNA fragmentation in stallion (Equus caballus) and donkey (Equus asinus) using the sperm chromatin dispersion test. Reprod Dom Anim 2009; 44: 823-828. Madan, M.L. 2005. Animal biotechnology: applications and economic implication in developing countries. Revue Scientifique et Technique Office International Des Epizooties 24(1): 123-139. Camargo, L., Freitas, C., de Sa, W., de Moraes Ferreira, A., Serapiao, R., & Viana, J. (2010). Gestation length, birth weight and offspring gender ratio of in vitro-produced Gyr (Bos indicus) cattle embryos. Anim Reprod Sci , 120, 10-15. Ball B.A. Diagnostic Methods for Evaluation of Stallion Subfertility: A Review. Journal of Equine Veterinary Science 2008; 28 (11): 650 – 665. Restrepo Betancur, Giovanni, Úsuga Suárez, Alexandra, Rojano, Benjamín Alberto, Técnicas para el análisis de la fertilidad potencial del semen equino. Revista CES Medicina Veterinaria y Zootecnia 8 (1): 69-81, 2013. Graham J, Mocé E. Fertility evaluation of frozen/ thawed semen. Theriogenology 2005; 64: 492-504. Gravance C, Garner D, Baumber J, Ball B. Assessment of equine sperm mitochondrial function using JC-1. Theriogenology 2000; 53(9): 1691-1703. Córdova Izquierdo A. et al.. Revista Complutense de Ciencias Veterinarias 10 (2) 2016: 60-73 APLICACIÓN DE LA CITOMETRÍA DE FLUJO EN VETERINARIA. Piedras Josefa. 2006. Citometría de flujo en el diagnóstico y clasificación de padecimientos hematológicos: leucemias agudas, síndromes linfoproliferativos crónicos y glicoproteínas plaquetarias. Revista de Hematología 7 (2): 53-62. Katila T. In vitro evaluation of frozen-thawed stallion semen: A review. Acta vet scand 2001; 42(2): 199-217. Obando, H; Holguín, N. 2003. Inducción de la reacción acrosómica in vitro, como prueba de fertilidad del semen bovino. ICA Informa. 30(1):42- 46. Van Blerkom J. Mitochondria in human oogenesis and preimplantation embryogenesis: Engines of metabolism, ionic regulation and developmental competence. Reproduction 2004; 128: 269-280. Amaral A, Ramalho-Santos J. Assessment of mitochondrial potential: implications for the correct monitoring of human sperm function. International journal of andrology 2010; 33: 180-186.
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Recuperado de: http://repository.ucc.edu.co/handle/ucc/7727Optimizar los resultados de la reproducción asistida ya sea por inseminación artificial o por fecundación in vitro, ha sido a lo largo de los años eje fundamental de investigación, puesto que con los procesos de análisis de semen convencionales se pueden obtener valores predictivos bajos en la tasa de gestación, el desarrollo tecnológico de sistemas de análisis asistido por computadora (CASA) permitió una evaluación más objetiva y precisa, el hallazgo y empleo de una serie de fluorocromos y otras tecnologías permitió visualizar, clasificar y cuantificar las células sexuales, su integridad y anomalías, esta tecnología es muy útil y representa beneficios económicos grandes en las explotaciones ganaderas.Optimizing the results of assisted reproduction, whether by artificial insemination or in vitro fertilization, has been the fundamental axis of research over the years, since with conventional semen analysis processes, low predictive values can be obtained in the rate of gestation, the technological development of computer-aided analysis systems (CASA) allowed a more objective and accurate evaluation, the finding and use of a series of fluorochromes and other technologies allowed to visualize, classify and quantify sexual cells, their integrity and abnormalities , this technology is very useful and represents large economic benefits in livestock farmsluis.vergelg@campusucc.edu.co23Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Ciencias de la Salud, Medicina Veterinaría y Zootecnia, IbaguéMedicina veterinaria y zootecniaIbaguéCasaCitometria flujoAnálisis SeminalFluorocromosIn vitroTG 2019 MVZ 7727CasaFlow CytometrySeminal AnalysisIn VitrofluorochromesTécnicas de Valoración Espermática In Vitro.Trabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1finfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionAtribución – No comercial – Compartir igualinfo:eu-repo/semantics/closedAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_14cbCuberlo, M., & Rodríguez, Z. (2013). Revelantamiento de laboratorios de procesamiento de semen bovino en Uruguay. Universidad de la República.Brogliatti, G., & Bó, G. (2013). Introducción a la Calidad Seminal. Aulas virtuales. Retrieved 10 02, 2016, from http://www.fca.proed.unc.edu.ar/mod/book/tool/print/index.php?id=5335&chapterid=893Madrid-Bury, N. (2005). ¿Es posible predecir la fertilidad en los toros? Manual de Ganadería Doble Propósito.Laboratorio de Estudios en Reproducción. (2016). Análisis de Semen. Retrieved from http://www.lab-ler.com.ar/semen.phpQuintero. (2003). Estudio sobre la dinámica de poblaciones espermáticas en semen de caballo, cerdo y conejo.Muiño Otero, R. (2008). evaluacion de la motilidad y viabilidad del semen bovino mediante el uso de sistemas casa y citometria de flujo: identificacion de subpoblaciones espermaticas. Universidad de Santiago de Compostela.Juarez, J. (2009, Septiembre). Efecto de la velocidad de enfriamiento en la congelabilidad de los espermatozoides de porcino. Master Interuniversitario en Mejora Genética animal y biotecnología de la Reproducción, 98.Bernardi, S., Allende, R., Mazzeo, R., Monti, J., & Marini, P. (2011). Evaluación de los cambios ocasionados en espermatozoides bovinos por variaciones en el manejo de las dosis durante su manipulación en inseminación artificial. InVet vol.13 no.2.Januskauskas, A., Johannisson, A. and Rodriguez-Martinez, H. 2003. Subtle Membrane changes in cryopreserved bull semen in relation with sperm Viability, chromatin structure, and field fertility. Theriogenology. 60: 743-758.Verstegen, J. and Onclin, K. 2002. Computer assisted semen analyzers in Andrology research and veterinary practice. Theriogenology. 57: 149- 179.González, J., Martínez, Y., & Sánchez, D. (2013). Análisis seminal equino y bovino. Espermatozoides In Vitro, 5.Hernández Corredor, L. (2014). Evaluación De La Motilidad Espermática De Semen Caprino Criopreservado Bajo Diferentes Medios Diluyentes A Través Del Sistema Casa (trabajo de tesis) Escuela De Ciencias Agrícolas, Pecuarias Y Del Medio Ambiente, Cúcuta, Colombia.Almela Veracruz, L. (2014). Aportaciones A La Crioconservación De Gametos Masculinos En La Raza Bovina Murciano Levantina: Recongelación De Espermatozoides. Murcia: Universidad De MurciaLaguado José. 2007. Aplicaciones de la citometría de flujo en microbiología, veterinaria y agricultura. Rev. MVZ Córdoba 12 (2): 1077-1095.Piedras Josefa. 2006. Citometría de flujo en el diagnóstico y clasificación de padecimientos hematológicos: leucemias agudas, síndromes linfoproliferativos crónicos y glicoproteínas plaquetarias. Revista de Hematología 7 (2): 53-62Barrera Ramírez Lourdes María, Drago Serrano Ma. Elisa, Pérez Ramos Julia, Zamora Ana Cecilia, Gómez Arroyo Fabiola, Sainz Espuñes Teresita del Rosario y Mendoza Pérez Felipe. 2004. Citometría de flujo: vínculo entre la investigación básica y la aplicación clínica. Rev. Inst. Nal. Enf. Resp. Mex. 17 (1): 42-55.Loureiro. 2009. Aplicación de la citometría de flujo en el estudio del genoma vegetal. Ecosistemas 18 (2):103-108.Ramos Coaguila Olger. 2013. Utilización del semen sexado en producción de vacunos. Sistema de Revisiones en Investigación de San Marcos: 1-11.Urbina Quito Camilo Ernesto. 2012. Utilización de semen bovino sexado en inseminación artificial, transferencia embrionaria y fertilización in vitro. Monografía de grado, previa a la obtención del título de Médico Veterinario. Universidad de cuenca. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Escuela de Medicina Veterinaria y Zootecnia: 40-55.Villanueva E. y Mellisho E. 2011. Fertilidad de semen sexado “X” comercial en vacunos de leche. APERMOVA 1(1):106-107.Oses M.V. Teruel M.T. Cabodevila J.A. 2009. Utilización de semen bovino sexado en inseminación artificial, transferencia embrionaria y fertilización in vitro. Rev. Vet. 20 (2): 138-145.Marini P.R. y Galassi I. 2011. Relación entre celo-inseminación con semen sexado y porcentaje de preñez en vaquillonas Holstein. Rev. Vet. 22 (1): 52-54.Sharpe J.C y Evans K.M. 2009. Advances in flow citometry for sperm sexing. Theriogenology 71: 4-10.de Graaf SP, Beilby KH, Underwood SL, Evans G, Maxwell WM: Sperm sexing in sheep and cattle: the exception and the rule. Theriogenology 2009;71:89-97Gamboa S, Rodrigues A, Henriques l, Batista C, Ramalho-Santos J. Seasonal functional relevance of sperm characteristics in equine spermatozoa. Theriogenology 2010; 73(7): 950-958.Gillan L, Evans G, Maxwell W. Flow cytometric evaluation of sperm parameters in relation to fertility potential. Theriogenology 2005; 63(2): 445-457.Gravance C, Garner D, Baumber J, Ball B. Assessment of equine sperm mitochondrial function using JC-1. Theriogenology 2000; 53(9): 1691-1703.Brum A, Sabeur K, Ball, B. Apoptotic-like changes in equine spermatozoa separated by density-gradient centrifugation or after cryopreservation. Theriogenology 2008; 69: 1041-1055.Love C, Thompson J, Brinsko S, Rigby S, Blanchard T, et al. Relationship between stallion sperm motility and viability as detected by two fluorescence staining techniques using flow cytometry. Theriogenology 2003; 60(6): 1127-1138.Varner D. Developments in stallion semen evaluation. Theriogenology 2008; 70(3): 448-462.Ramalho-Santos J, Amaral A, Sousa A, Rodrigues A, Martins L, et al. Probing the structure and function of mammalian sperm using optical and fluorescence microscopy. Modern Research and Educational Topics in Microscopy 2007; 394-402.Esteves S, Verza S. Relationship of in vitro acrosome reaction to sperm function: an update. The Open Reproductive Science Journal 2011; 3: 72-84.Neild D, Gadella B, Chavez M, Miragaya M, Colenbrander B, et al. Membrane changes during different stages of a freeze-thaw protocol for equine semen cryopreservation. Theriogenology 2003; 59: 1693-1705.Graham J, Mocé E. Fertility evaluation of frozen/ thawed semen. Theriogenology 2005; 64: 492-504.Love, C. The sperm chromatin structure assay: A review of clinical applications. Volume 89, Issues 1-4, October 2005, Pages 39-45.Turner R.M. Current techniques for evaluation of stallion fertility original research article. Clinical Techniques in Equine Practice 2005; 4 (3): 257-268.Domínguez-Fandos D, Camejo M, Ballescà J, Oliva R. Human sperm DNA fragmentation: Correlation of TUNEL results as assessed by flow cytometry and optical microscopy. Cytometry 2007; 71A: 1011-1018.Cortés-Gutiérrez E, Crespo F, Serres-Dalmau C, Gutiérrez de las Rozas A, Dávila-Rodríguez M, et al. Assessment of sperm DNA fragmentation in stallion (Equus caballus) and donkey (Equus asinus) using the sperm chromatin dispersion test. Reprod Dom Anim 2009; 44: 823-828.Madan, M.L. 2005. Animal biotechnology: applications and economic implication in developing countries. Revue Scientifique et Technique Office International Des Epizooties 24(1): 123-139.Camargo, L., Freitas, C., de Sa, W., de Moraes Ferreira, A., Serapiao, R., & Viana, J. (2010). Gestation length, birth weight and offspring gender ratio of in vitro-produced Gyr (Bos indicus) cattle embryos. Anim Reprod Sci , 120, 10-15.Ball B.A. Diagnostic Methods for Evaluation of Stallion Subfertility: A Review. Journal of Equine Veterinary Science 2008; 28 (11): 650 – 665.Restrepo Betancur, Giovanni, Úsuga Suárez, Alexandra, Rojano, Benjamín Alberto, Técnicas para el análisis de la fertilidad potencial del semen equino. Revista CES Medicina Veterinaria y Zootecnia 8 (1): 69-81, 2013.Graham J, Mocé E. Fertility evaluation of frozen/ thawed semen. Theriogenology 2005; 64: 492-504.Gravance C, Garner D, Baumber J, Ball B. Assessment of equine sperm mitochondrial function using JC-1. Theriogenology 2000; 53(9): 1691-1703.Córdova Izquierdo A. et al.. Revista Complutense de Ciencias Veterinarias 10 (2) 2016: 60-73 APLICACIÓN DE LA CITOMETRÍA DE FLUJO EN VETERINARIA.Piedras Josefa. 2006. Citometría de flujo en el diagnóstico y clasificación de padecimientos hematológicos: leucemias agudas, síndromes linfoproliferativos crónicos y glicoproteínas plaquetarias. Revista de Hematología 7 (2): 53-62.Katila T. In vitro evaluation of frozen-thawed stallion semen: A review. Acta vet scand 2001; 42(2): 199-217.Obando, H; Holguín, N. 2003. Inducción de la reacción acrosómica in vitro, como prueba de fertilidad del semen bovino. ICA Informa. 30(1):42- 46.Van Blerkom J. Mitochondria in human oogenesis and preimplantation embryogenesis: Engines of metabolism, ionic regulation and developmental competence. Reproduction 2004; 128: 269-280.Amaral A, Ramalho-Santos J. Assessment of mitochondrial potential: implications for the correct monitoring of human sperm function. International journal of andrology 2010; 33: 180-186.PublicationORIGINAL2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdf2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdfapplication/pdf901717https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/0423670f-520f-4718-8cc4-2d9fe69dc22c/downloadf5780d683f936b72ef70537863fa513cMD512019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdf2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdfapplication/pdf416163https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/b0aa3771-c29e-467a-a63a-b75817cc684c/downloadf172addf11bed7536fa2ef3712105557MD522019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdf2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdfapplication/pdf459255https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/0800a77b-dd13-4b09-b972-b0a8aa0c51f1/download61348f810b6fb678f0354aa6507ddc7cMD53LICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84334https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/e05d10dd-3a5e-4a95-9de3-a76de1f761d8/download3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45MD54THUMBNAIL2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdf.jpg2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg3507https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/6e0a8289-cb17-4456-abd6-81623f898e67/download678dcab577adcd22be5ba8cb54a2fbf6MD552019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdf.jpg2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg5523https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/4714d413-ebc5-44a7-9470-6da7097a5855/downloadb4c7613965078b92aa8b9ca622c8e3f7MD562019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdf.jpg2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg5102https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/543d7228-49c7-495a-bb8c-d749ce69145b/download1c5a6f18babf50a026b7ddc2f8bc9feaMD57TEXT2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdf.txt2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro.pdf.txtExtracted texttext/plain41638https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/6feb6806-ce50-47d6-9976-91d63f8de40c/download53034e565f4facbef914f3709e7e961aMD582019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdf.txt2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-FormatoPublicacionWeb.pdf.txtExtracted texttext/plain25https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/b84bae48-4f9d-4814-a52b-a071b863c5d7/downloadeee6b4535a44c369c04b34dbdfacd0c0MD592019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdf.txt2019_tecnicas_valoracion_espermatica_invitro-LicenciaUso.pdf.txtExtracted texttext/plain5473https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/a8981cdd-149b-4577-aba9-8401818c1d55/downloadca7f83f480d2d2672079fbd89ad47857MD51020.500.12494/7727oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/77272024-08-09 12:31:59.346restrictedhttps://repository.ucc.edu.coRepositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombiabdigital@metabiblioteca.com

Técnicas de Valoración Espermática In Vitro.

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