Consumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósito

El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en...

Full description

Autores:
Barajas Pardo, Diana Patricia
Velásquez Penagos, José Guillermo
Gutiérrez Parrado, Sonia Lucía
Neira Rivera, Eliana
Ortiz Valdés, Ciro
Onofre Rodríguez, Héctor G.
Tipo de recurso:
Article of investigation
Fecha de publicación:
2019
Institución:
Universidad Cooperativa de Colombia
Repositorio:
Repositorio UCC
Idioma:
OAI Identifier:
oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/33434
Acceso en línea:
https://doi.org/10.22579/20112629.566
https://hdl.handle.net/20.500.12494/33434
Palabra clave:
Producción
Petróleo
Bovino
Agua tratada
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Petroleum
bovine
Treated water
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Atribución – No comercial – Sin Derivar
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description El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en Villavicencio y el Área de sostenibilidad agroenergetica, ASA en Acacias con disponibilidad de agua tratada de los campos petroleros, Apiay (A) y Castilla (C) respectivamente. Los animales seleccionados fueron distribuidos al azar para cada localidad en 4 tratamientos: 1) Consumo del 100 % agua de producción tratada; 2) consumo de mezcla 50 % agua de producción tratada y 50 % agua cruda; 3) consumo de mezcla 25 % agua de producción tratada y 75 % agua cruda; y 4) consumo 100 % agua cruda. Las variables consideradas fueron: calidad seminal para A y C determinadas por un sistema computarizado y de fertilidad in vitro para A evaluada por tinción fluorescente, Hoechst 33342. Los datos se analizaron estadística descriptiva, análisis de varianza (ANOVA) y pruebas de comparación de medias, Tukey, en un modelo de medidas repetidas en el tiempo. Los resultados indicaron, para calidad seminal, que los tratamientos que consumieron A y C en cada localidad presentaron diferencias (P < 0,05) para motilidad, 75,00±4,50, 69.24±4.13, espermatozoides motiles/100 células evaluadas, en el tratamiento dos respectivamente y en A para morfología, 76,67±2,06 espermatozoides normales/100 en el tratamiento cuatro, el índice de calidad espermática (ICE) no mostró diferencia (P > 0,05). Los resultados de unión espermatozoide - zona pelúcida mostraron diferencias entre tratamientos (P < 0,05), al igual que en fecundación in vitro, sin embargo, el comportamiento de estos cambios no indica asociación con el consumo de este tipo de agua. El estudio muestra que no se observan cambios contundentes o negativos que demuestren efecto en la fertilidad del toro por consumo de agua de producción tratada.
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Anchieta MC, Vale Filho VR, Colosimo E, Sampaio IBM, Andrade VJ. Descarte e congelabilidade do sêmen de touros de raças zebuínas e taurinas em central de inseminação artificial no Brasil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2005;57(2):196-204
Barszcz K, Wiesetek D, Wasowick M, Kupczynska M. Bull semen collection and analysis for artificial insemination. J Agric Sci. 2012;4(3):1-10
Berg HF, Kommisrud E, Bai G, Gaustad ER, Klinkenberg G, Standerholen FB, et al. Comparison of sperm adenosine triphosphate content, motility and fertility of immobilized and conventionally cryopreserved Norwegian Red bull semen. Theriogenology. 2018:121:181-187
Burnett CR, Pratt SL, Long NM, Sell GS, Schrick FN. Assessment of semen quality and fertility in young growing beef bulls exposed to ergot alkaloids. Theriogenology 2018;118:219-224
Braundmeier AG, Demers J, Shanks R, Saacke R, Miller D. Examination of the binding ability of bovine spermatozoa to the zona pellucida as an indicador of fertility. J Androl. 2002;23(5):645-651
Blondin P, Beaulieu M, Fournier V, Morin M, Crawford L, Madan P, King WA. Analysis of bovine sexed sperm for IVF from sorting to the embryo. Theriogenology. 2009;71: 30-38
Brito L. A Multilaboratory study on the variability of bovine semen analysis. Theriogenology. 2016;85(2):254-266
Cabrera P, Pantoja C. Viabilidad espermática e integridade del acrosoma em sêmen congelado de toros nacionales. Rev Investig Vet Perú. 2012;23(2):192-200
Cardozo JA, Velásquez JG, Rodríguez G, Prieto E, Tarazona G, Espitia A. 2002. Evaluación reproductiva del macho bovino en condiciones tropicales. Plan de modernización tecnológica de la ganadería colombiana. Manual técnico.
Chenoweth PJ, McPherson FJ. Bull breeding soundness, semen evaluation and cattle productivity. Anim Reprod Sci. 2016;169:32-36
Contri A, Valorz C, Faustini M, Wegher L, Carluccio A. Effect of sperm preparation on CASA motility results in cryopreserved bull spermatozoa. Theriogenology. 2010;74: 424-435
Coy P, Romar R, Payton R, McCann L, Saxton A, Edwards L. Maintenance of meiotic arrest in bovine oocytes using the S-enantiomer of roscovitine: effects on maturation, fertilization and subsequent embryo development in vitro. Reproduction. 2005;129(1):19-26
Fair S, Lonergan P. Review: Understanding the causes of variation in reproductive wastage among bulls. Animal. 2018;12(s1):s53-s62. Doi: 10.1017/S1751731118000964
Felipe-Pérez YE, Juárez ML, Hernández EO, Valencia JJ. Viability of fresh and frozen bull sperm compared by two staining techniques. Acta Vet Bras. 2008;2(4):123-130
Ferraz MAMM, Morató R, Yeste M, Arcarons N, Pena AI, Tamargo C, et al. 2014. Evaluation of sperm subpopulation structure in relation to in vitro sperm-oocyte interaction of frozen-thawed semen from Holstein bulls. Theriogenology. 2014;81:1067-1072
Flowers WL. Sperm characteristics that limit success of fertilization. J Anim Sci. 2013;9(7):3022-3029
Hidaka T, Fukumoto Y, Yamamoto S, Ogata Y, Horiuchi T. Variations in bovine embryo production between individual donors for OPU-IVF are closely related to glutathione concentrations in oocytes during in vitro maturation. Theriogenology. 2018;113:176-182
Kastelic JP, Thundathil JC. Breeding soundness evaluation and semen analysis for predicting bull fertility. Reprod Domest Anim. 2008;43(2):368-373
Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AE, Hassan MA, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018;6:s49-s56
Oliveira LZ, Paes de Arruda R, Cesar de Andrade AF, Carvalho Celeghini EC, Dos Santos RM, Beletti ME, et al. Assessment of field fertility and several in vitro sperm characteristics following the use of different Angus sires in a timed-AI program with suckled Nelore cows. Livest Sci. 2012;146:38-46
Orantes MA, Vilaboa J, Ortega E, Córdova V. Comportamiento de los comercializadores de ganado bovino en la región Centro del estado de Chiapas. Quehacer Científico en Chiapas. 2010;1(9):51-56
Páez EM, Corredor ES. Evaluación de la aptitud reproductiva del toro. Ciencia y Agricultura. 2014;11(2):49-59
Parkinson TJ. Evaluation of fertility and infertility in natural service bulls. Vet J. 2004;168(3):215-229. Doi:10.1016/j.tvjl.2003.10.017
Petherick JC. A review of some factors affecting the expression of libido in beef cattle, and individual bull and herd fertility. Appl Anim Behav Sci. 2004;90:185-205
Prinosilova P, Kopecká V, Hlavicová J, Kunetková M. Modified hypoosmotic swelling test for the assessment of boar and bull sperm sensitivity to cryopreservation. Acta Vet Brno. 2014;(83):313-319
Quintero MA, Mayorga JM, Cardona MW. El análisis seminal como herramienta para predecir el potencial reproductivo en toros. Journal of veterinary andrology (JVA). 2017;2(1):30-37
Restrepo BG, Úsuga SA, Rojano BA. Técnicas para el análisis de la fertilidad potencia del semen equino. CES Med Vet Zootec. 2013;8(1):69-81
Rosseto A. O uso de sondas fluorescentes na avaliação morfofuncional de espermatozóides bovinos. Rev Ciêne Agrár Belêm. 2005;43 junio/julio Suplemento
Ruiz SB, Ruiz HH, Mendoza NP, Oliva MA, Gutiérrez MF, Rojas MRI, et al. Caracterización reproductiva de toros Bos taurus y Bos indicus y sus cruzas en un sistema de monta natural y sin reposo sexual en el trópico mexicano. Revista científica UDO Agrícola. 2010;10(1):94-102
Thundathil JC, Dance AL, Kastelic JP. Fertility management of bulls to improve beef cattle productivity. Theriogenology. 2016;86(1):397-405
Vejarano OA, Sanabria RD, Trujillo GA. Diagnóstico de la capacidad reproductiva de toros en ganaderías de tres municipios del alto Magdalena. Rev MVZ Córdoba 2005;10(2):648-662
Velásquez JG, Canovas S, Barajas DP, Marcos J, Jiménes-Movilla M, Gutierrez R, et al. Role of Sialic Acid in Bovine Sperm–Zona Pellucida Binding. Mol Reprod Dev. 2007;74:617-628
Velho ALC, Menezes E, Dinh T, Kaya A, Topper E, Moura AA, Memili E. Metabolomic markers of fertility in bull seminal plasma. Plos One. 2018;13(4):e0195279. doi: 10.1371 / journal.pone.0195279
Viana AGA, Martins AMA, Pontes AH, Fontes W, Castro MS, Ricart CAO, et al. Proteomic landscape of seminal plasma associated with dairy bull fertility. Nature. 2018(8):16323. Doi:10.1038/s41598-018-34152-w
Yániz JL, Palacín I, Vicente-Fiel S, Gosalvez J, López-Fernández C, Santolaria P. Evaluation of comercial kit base don acridine orange/propidium iodide to assess the plasma membrane integrity of ram sperm. Span J Agric Res. 2013;11(2):362-365
Yániz JL, Palacín I, Caycho KS, Soler C, Silvestre MA, Santolaria P. Determining the relationship between bull sperm kinematic subpopulations and fluorescence groups using an integrated sperm quality analysis technique. Reprod Fert Develop. 2018;(30):919-923
Youngquist RS, Threlfall WR. 2007. Current therapy in Large Animal Theriogenology. Second edition. Philadelphia, United States: Elsevier.
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Orinoquia, 23(2). https://doi.org/10.22579/20112629.566El objetivo de este estudio fue evaluar el consumo de agua tratada proveniente de la producción petrolera en la calidad seminal del macho bovino reproductor, para ello se seleccionaron 16 toros entre 4 y 5 años distribuidos en dos grupos en los centros de investigaciones La Libertad de Agrosavia en Villavicencio y el Área de sostenibilidad agroenergetica, ASA en Acacias con disponibilidad de agua tratada de los campos petroleros, Apiay (A) y Castilla (C) respectivamente. Los animales seleccionados fueron distribuidos al azar para cada localidad en 4 tratamientos: 1) Consumo del 100 % agua de producción tratada; 2) consumo de mezcla 50 % agua de producción tratada y 50 % agua cruda; 3) consumo de mezcla 25 % agua de producción tratada y 75 % agua cruda; y 4) consumo 100 % agua cruda. Las variables consideradas fueron: calidad seminal para A y C determinadas por un sistema computarizado y de fertilidad in vitro para A evaluada por tinción fluorescente, Hoechst 33342. Los datos se analizaron estadística descriptiva, análisis de varianza (ANOVA) y pruebas de comparación de medias, Tukey, en un modelo de medidas repetidas en el tiempo. Los resultados indicaron, para calidad seminal, que los tratamientos que consumieron A y C en cada localidad presentaron diferencias (P < 0,05) para motilidad, 75,00±4,50, 69.24±4.13, espermatozoides motiles/100 células evaluadas, en el tratamiento dos respectivamente y en A para morfología, 76,67±2,06 espermatozoides normales/100 en el tratamiento cuatro, el índice de calidad espermática (ICE) no mostró diferencia (P > 0,05). Los resultados de unión espermatozoide - zona pelúcida mostraron diferencias entre tratamientos (P < 0,05), al igual que en fecundación in vitro, sin embargo, el comportamiento de estos cambios no indica asociación con el consumo de este tipo de agua. El estudio muestra que no se observan cambios contundentes o negativos que demuestren efecto en la fertilidad del toro por consumo de agua de producción tratada.The objective of this study was to evaluate the consumption of treated water from oil production in the seminal quality of the reproductive bovine male, for this, 16 bulls between 4 and 5 years old were selected distributed in two groups in the La Libertad de Agrosavia research centers in Villavicencio and the Agroenergetic Sustainability Area, ASA in Acacias with availability of treated water from the oil fields, Apiay (A) and Castilla (C) respectively. The selected animals were randomly distributed to each location in 4 treatments: 1) Consumption of 100% treated production water; 2) Consumption of mixture of 50% treated production water and 50% raw water; 3) Consumption of mixture 25% treated production water and 75% raw water; and 4) consumption of 100% raw water. The variables considered were: semen quality for A and C determined by a computerized system and in vitro fertility for A evaluated by fluorescent staining, Hoechst 33342. The data were analyzed descriptive statistics, analysis of variance (ANOVA) and comparison tests of means , Tukey, in a model of repeated measures in time. The results indicated, for semen quality, that the treatments that consumed A and C in each locality presented differences (P <0.05) for motility, 75.00 ± 4.50, 69.24 ± 4.13, motile sperm / 100 cells evaluated, in treatment two respectively and in A for morphology, 76.67 ± 2.06 normal spermatozoa / 100 in treatment four, the sperm quality index (ICE) did not show a difference (P> 0.05). The results of sperm union - zona pellucida showed differences between treatments (P <0.05), as in in vitro fertilization, however, the behavior of these changes does not indicate an association with the consumption of this type of water. The study shows that no strong or negative changes are observed that demonstrate an effect on the fertility of the bull due to the consumption of treated production water.https://orcid.org/0000-0002-7604-4734http://orcid.org/0000-0001-8023-1367http://orcid.org/0000-0001-7617-6588http://orcid.org/0000-0002-8329-8302http://orcid.org/0000-0002-8940-5885http://orcid.org/0000-0003-4538-9083https://orcid.org/0000-0002-1891-2652dianap.barajas@campusucc.edu.co11 p.Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Ciencias de la Salud, Medicina Veterinaría y Zootecnia, VillavicencioMedicina veterinaria y zootecniaVillavicenciohttps://orinoquia.metarevistas.org/index.php/orinoquia/article/view/566Revista OrinoquiaAlmansa E, Velásquez JG, Rodríguez GA. Efecto del uso de aguas provenientes de la producción petrolera en actividades agrícolas y pecuarias. Corpoica Cienc Tecnol Agropecu. 2018;19(2):403-420Anchieta MC, Vale Filho VR, Colosimo E, Sampaio IBM, Andrade VJ. Descarte e congelabilidade do sêmen de touros de raças zebuínas e taurinas em central de inseminação artificial no Brasil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2005;57(2):196-204Barszcz K, Wiesetek D, Wasowick M, Kupczynska M. Bull semen collection and analysis for artificial insemination. J Agric Sci. 2012;4(3):1-10Berg HF, Kommisrud E, Bai G, Gaustad ER, Klinkenberg G, Standerholen FB, et al. Comparison of sperm adenosine triphosphate content, motility and fertility of immobilized and conventionally cryopreserved Norwegian Red bull semen. Theriogenology. 2018:121:181-187Burnett CR, Pratt SL, Long NM, Sell GS, Schrick FN. Assessment of semen quality and fertility in young growing beef bulls exposed to ergot alkaloids. Theriogenology 2018;118:219-224Braundmeier AG, Demers J, Shanks R, Saacke R, Miller D. Examination of the binding ability of bovine spermatozoa to the zona pellucida as an indicador of fertility. J Androl. 2002;23(5):645-651Blondin P, Beaulieu M, Fournier V, Morin M, Crawford L, Madan P, King WA. Analysis of bovine sexed sperm for IVF from sorting to the embryo. Theriogenology. 2009;71: 30-38Brito L. A Multilaboratory study on the variability of bovine semen analysis. Theriogenology. 2016;85(2):254-266Cabrera P, Pantoja C. Viabilidad espermática e integridade del acrosoma em sêmen congelado de toros nacionales. Rev Investig Vet Perú. 2012;23(2):192-200Cardozo JA, Velásquez JG, Rodríguez G, Prieto E, Tarazona G, Espitia A. 2002. Evaluación reproductiva del macho bovino en condiciones tropicales. Plan de modernización tecnológica de la ganadería colombiana. Manual técnico.Chenoweth PJ, McPherson FJ. Bull breeding soundness, semen evaluation and cattle productivity. Anim Reprod Sci. 2016;169:32-36Contri A, Valorz C, Faustini M, Wegher L, Carluccio A. Effect of sperm preparation on CASA motility results in cryopreserved bull spermatozoa. Theriogenology. 2010;74: 424-435Coy P, Romar R, Payton R, McCann L, Saxton A, Edwards L. Maintenance of meiotic arrest in bovine oocytes using the S-enantiomer of roscovitine: effects on maturation, fertilization and subsequent embryo development in vitro. Reproduction. 2005;129(1):19-26Fair S, Lonergan P. Review: Understanding the causes of variation in reproductive wastage among bulls. Animal. 2018;12(s1):s53-s62. Doi: 10.1017/S1751731118000964Felipe-Pérez YE, Juárez ML, Hernández EO, Valencia JJ. Viability of fresh and frozen bull sperm compared by two staining techniques. Acta Vet Bras. 2008;2(4):123-130Ferraz MAMM, Morató R, Yeste M, Arcarons N, Pena AI, Tamargo C, et al. 2014. Evaluation of sperm subpopulation structure in relation to in vitro sperm-oocyte interaction of frozen-thawed semen from Holstein bulls. Theriogenology. 2014;81:1067-1072Flowers WL. Sperm characteristics that limit success of fertilization. J Anim Sci. 2013;9(7):3022-3029Hidaka T, Fukumoto Y, Yamamoto S, Ogata Y, Horiuchi T. Variations in bovine embryo production between individual donors for OPU-IVF are closely related to glutathione concentrations in oocytes during in vitro maturation. Theriogenology. 2018;113:176-182Kastelic JP, Thundathil JC. Breeding soundness evaluation and semen analysis for predicting bull fertility. Reprod Domest Anim. 2008;43(2):368-373Khalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AE, Hassan MA, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018;6:s49-s56Oliveira LZ, Paes de Arruda R, Cesar de Andrade AF, Carvalho Celeghini EC, Dos Santos RM, Beletti ME, et al. Assessment of field fertility and several in vitro sperm characteristics following the use of different Angus sires in a timed-AI program with suckled Nelore cows. Livest Sci. 2012;146:38-46Orantes MA, Vilaboa J, Ortega E, Córdova V. Comportamiento de los comercializadores de ganado bovino en la región Centro del estado de Chiapas. Quehacer Científico en Chiapas. 2010;1(9):51-56Páez EM, Corredor ES. Evaluación de la aptitud reproductiva del toro. Ciencia y Agricultura. 2014;11(2):49-59Parkinson TJ. Evaluation of fertility and infertility in natural service bulls. Vet J. 2004;168(3):215-229. Doi:10.1016/j.tvjl.2003.10.017Petherick JC. A review of some factors affecting the expression of libido in beef cattle, and individual bull and herd fertility. Appl Anim Behav Sci. 2004;90:185-205Prinosilova P, Kopecká V, Hlavicová J, Kunetková M. Modified hypoosmotic swelling test for the assessment of boar and bull sperm sensitivity to cryopreservation. Acta Vet Brno. 2014;(83):313-319Quintero MA, Mayorga JM, Cardona MW. El análisis seminal como herramienta para predecir el potencial reproductivo en toros. Journal of veterinary andrology (JVA). 2017;2(1):30-37Restrepo BG, Úsuga SA, Rojano BA. Técnicas para el análisis de la fertilidad potencia del semen equino. CES Med Vet Zootec. 2013;8(1):69-81Rosseto A. O uso de sondas fluorescentes na avaliação morfofuncional de espermatozóides bovinos. Rev Ciêne Agrár Belêm. 2005;43 junio/julio SuplementoRuiz SB, Ruiz HH, Mendoza NP, Oliva MA, Gutiérrez MF, Rojas MRI, et al. Caracterización reproductiva de toros Bos taurus y Bos indicus y sus cruzas en un sistema de monta natural y sin reposo sexual en el trópico mexicano. Revista científica UDO Agrícola. 2010;10(1):94-102Thundathil JC, Dance AL, Kastelic JP. Fertility management of bulls to improve beef cattle productivity. Theriogenology. 2016;86(1):397-405Vejarano OA, Sanabria RD, Trujillo GA. Diagnóstico de la capacidad reproductiva de toros en ganaderías de tres municipios del alto Magdalena. Rev MVZ Córdoba 2005;10(2):648-662Velásquez JG, Canovas S, Barajas DP, Marcos J, Jiménes-Movilla M, Gutierrez R, et al. Role of Sialic Acid in Bovine Sperm–Zona Pellucida Binding. Mol Reprod Dev. 2007;74:617-628Velho ALC, Menezes E, Dinh T, Kaya A, Topper E, Moura AA, Memili E. Metabolomic markers of fertility in bull seminal plasma. Plos One. 2018;13(4):e0195279. doi: 10.1371 / journal.pone.0195279Viana AGA, Martins AMA, Pontes AH, Fontes W, Castro MS, Ricart CAO, et al. Proteomic landscape of seminal plasma associated with dairy bull fertility. Nature. 2018(8):16323. Doi:10.1038/s41598-018-34152-wYániz JL, Palacín I, Vicente-Fiel S, Gosalvez J, López-Fernández C, Santolaria P. Evaluation of comercial kit base don acridine orange/propidium iodide to assess the plasma membrane integrity of ram sperm. Span J Agric Res. 2013;11(2):362-365Yániz JL, Palacín I, Caycho KS, Soler C, Silvestre MA, Santolaria P. Determining the relationship between bull sperm kinematic subpopulations and fluorescence groups using an integrated sperm quality analysis technique. Reprod Fert Develop. 2018;(30):919-923Youngquist RS, Threlfall WR. 2007. Current therapy in Large Animal Theriogenology. Second edition. Philadelphia, United States: Elsevier.ProducciónPetróleoBovinoAgua tratadaProducctionPetroleumbovineTreated waterConsumo de agua tratada de producción petrolera en la fertilidad del bovino macho del sistema doble propósitoArtículos Científicoshttp://purl.org/coar/resource_type/c_2df8fbb1http://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85info:eu-repo/semantics/articleinfo:eu-repo/semantics/publishedVersionAtribución – No comercial – Sin Derivarinfo:eu-repo/semantics/closedAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_14cbPublicationLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84334https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/73abc3fe-37cd-4a64-be52-565d654992b1/download3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45MD5220.500.12494/33434oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/334342024-08-09 12:27:14.291metadata.onlyhttps://repository.ucc.edu.coRepositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombiabdigital@metabiblioteca.com