Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada

Introducción: Se optimizó una técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR anidada) para el diagnóstico del protozoario Trypanosoma cruzi, transmitido por un insecto triatómino de la familia Reduviidae. Mediante la PCR anidada, se determinó la prevalencia de infección por T. cruzi en caninos...

Full description

Autores:
Castellanos Banda, María Fernanda
Jiménez Leaño, Ángela Patricia
Tipo de recurso:
Trabajo de grado de pregrado
Fecha de publicación:
2020
Institución:
Universidad Cooperativa de Colombia
Repositorio:
Repositorio UCC
Idioma:
OAI Identifier:
oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/17523
Acceso en línea:
https://hdl.handle.net/20.500.12494/17523
Palabra clave:
Enfermedad de Chagas
Trypanosoma cruzi
PCR anidada
Caninos
TG 2020 MVZ 17523
Chagas disease
Trypanosoma cruzi
PCR
Rights
closedAccess
License
Atribución – No comercial – Sin Derivar
id COOPER2_9294351e058ed5f4a3647454238a9c99
oai_identifier_str oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/17523
network_acronym_str COOPER2
network_name_str Repositorio UCC
repository_id_str
dc.title.spa.fl_str_mv Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
title Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
spellingShingle Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
Enfermedad de Chagas
Trypanosoma cruzi
PCR anidada
Caninos
TG 2020 MVZ 17523
Chagas disease
Trypanosoma cruzi
PCR
title_short Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
title_full Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
title_fullStr Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
title_full_unstemmed Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
title_sort Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada
dc.creator.fl_str_mv Castellanos Banda, María Fernanda
Jiménez Leaño, Ángela Patricia
dc.contributor.advisor.none.fl_str_mv Jiménez Leaño, Ángela Patricia
dc.contributor.author.none.fl_str_mv Castellanos Banda, María Fernanda
Jiménez Leaño, Ángela Patricia
dc.subject.spa.fl_str_mv Enfermedad de Chagas
Trypanosoma cruzi
PCR anidada
Caninos
topic Enfermedad de Chagas
Trypanosoma cruzi
PCR anidada
Caninos
TG 2020 MVZ 17523
Chagas disease
Trypanosoma cruzi
PCR
dc.subject.classification.spa.fl_str_mv TG 2020 MVZ 17523
dc.subject.other.spa.fl_str_mv Chagas disease
Trypanosoma cruzi
PCR
description Introducción: Se optimizó una técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR anidada) para el diagnóstico del protozoario Trypanosoma cruzi, transmitido por un insecto triatómino de la familia Reduviidae. Mediante la PCR anidada, se determinó la prevalencia de infección por T. cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga (AMB) y su asociación con variables sociodemográficas. Metodología: esta técnica se basó en la amplificación de una región de 149pb del gen satélite de T. cruzi; para tal fin, se extrajo el ADN del parásito, manejando el kit de purificación de ADN genómico (DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen®), a partir de 215 muestras de sangre de caninos provenientes del AMB. Se llevó a cabo una primera amplificación de la porción de 188pb del gen satélite de T. cruzi con los primers TCZ1: 5’-CGAGCTCTTGCCCACACGGGTGCT-3’ y TCZ2: 5’CCTCCAAGCAGCGGATAGTTCAGG-3’. El producto de esta primera amplificación se usó de molde para una segunda reacción en la que se amplificó una porción interna de 149pb del gen satélite de T. cruzi empleando los primers TCZ3:5’TGCACTCGGCTGATCGTTT-3’ y TCZ4: 5’ATTCCTCCAAGCAGCGGATA-3’. Se evaluó la asociación entre la prevalencia obtenida por la PCR anidada y variables sociodemográficas. Resultados: Las condiciones óptimas para la primera y segunda reacción de PCR se realizaron con volúmenes finales de 25 µl que contenían 1X de tampón de reacción (Tris-HCl 100 mM, KCl 50 mM, pH 8.8), dNTPs 0.2 mM, 1.5 mM de MgCl2, 0.4 µM de cada cebador, 0.625 UI de Taq polimerasa (CorpoGen, Bogotá, Colombia) y 2 µl (20 ng) de ADN para la primera PCR y 1 µl de producto de PCR para la segunda. Las temperaturas óptimas de anillamiento fueron 55°C para las dos PCRs. De las 215 muestras amplificadas de caninos, un total de 26 perros (12.1%, IC 95% = 7.7% - 16.4%) amplificaron el satélite nuclear de ADN de T. cruzi en la PCR anidada. No se encontró asociación significativa entre la prevalencia de T. cruzi en caninos y las variables sociodemográficas evaluadas.
publishDate 2020
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv 2020-05-06T23:29:50Z
dc.date.available.none.fl_str_mv 2020-05-06T23:29:50Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv 2020-03-02
dc.type.none.fl_str_mv Trabajo de grado - Pregrado
dc.type.coar.none.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.driver.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.version.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/acceptedVersion
format http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
status_str acceptedVersion
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv https://hdl.handle.net/20.500.12494/17523
dc.identifier.bibliographicCitation.spa.fl_str_mv Castellanos Banda, M. F. y Jimenez Leaño, A. P. (2020). Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada. (Tesis de pregrado). Recuperado de: http://hdl.handle.net/20.500.12494/17523
url https://hdl.handle.net/20.500.12494/17523
identifier_str_mv Castellanos Banda, M. F. y Jimenez Leaño, A. P. (2020). Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada. (Tesis de pregrado). Recuperado de: http://hdl.handle.net/20.500.12494/17523
dc.relation.references.spa.fl_str_mv Batista, A. M., Aguiar, C., Almeida, E. A., Guariento, M. E., Wanderley, J. S., & Costa, S. C. (2010). Evidence of Chagas disease in seronegative Brazilian patients with megaesophagus. Int J Infect Dis, 974-7.
Bezerra, C. M., Cavalcanti, L. P., Souza Rde, S. E., Barbosa, S. E., Xavier, S. C., Jansen, A. M., . . . Diotaiut, L. (2014). Domestic, peridomestic and wild hosts in the transmission of Trypanosoma cruzi in the Caatinga area colonised by Triatoma brasiliensis. . Mem Inst Oswaldo Cruz.
Cantillo-Barraza, O., Garcés, E., Gómez-Palacio, A., Cortés, L. A., Pereira, A., Marcet, P. L., . . . Triana-Chávez, O. (2015). Eco-epidemiological study of an endemic Chagas disease region in northern Colombia reveals the importance of Triatoma maculata (Hemiptera: Reduviidae), dogs and Didelphis marsupialis in Trypanosoma cruzi maintenance. Parasit Vectors, 8: 482
Cordovez, J. M., & Sanabria, C. (2014). Environmental changes can produce shifts in chagas disease infection risk. Environ Health Insights, 43-8.
Crisante, G., Rojas, A., Teixeira, M. M., & Añez, N. (2006). Infected dogs as a risk factor in the transmission of human Trypanosoma cruzi infection in western Venezuela. Acta Trop, 247 - 54.
Diaz, M. L., Leal, S., Mantilla, J. C., Molina - Berrios, J. C., Lopez - Muñoz, R., Solari, A., . . . Gonzales - Rugeles, C. I. (2015). Acute Chagas outbreaks: molecular and biological features of Trypanosoma cruzi isolates, and clinical aspects of acute cases in Santander, Colombia. Parasit Vectors
Duffy, T. (2010). Desarrollo y aplicación de estrategias de PCR para la genotipificación y cuantificación de Trypanosoma cruzi. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires., 1-175
Eloy, L. J., & Lucheis, S. B. (2012). Hemoculture and Polymerase Chain Reaction Using Primers TCZ1/TCZ2 for the Diagnosis of Canine and Feline Trypanosomiasis. ISRN Veterinary Science, 1-6.
Estrada - Franco, J. G., Bathia, V., Diaz-Albither, H., Ochoa-Garcia, L., Barbabosa, A., Vazquez-Chagoyan, J. C., . . . Garg, N. (2006). Human Trypanosoma cruzi infection and seropositivity in dogs, Mexico. Emerg Infect Dis, 624- 30.
Farfán, M. (2015). Biología molecular aplicada al diagnóstico clínico. Rev. Med. Clin. Conde, 788-793.
Farnsworth, A., Palacios, M., & Gómez López, A. (2016). The Colombia Reader. History, Culture, Politics. Duke University Press.
Florez Sánchez, A. C. (2018). Programa de evaluación externa del desempeño Chagas inmunodiagnóstico. Instituto Nacional de Salud, 1 - 14.
Guhl, F., Aguilera, G., Pinto, N., & Vergara, D. (2007). Actualización de la distribución geográfica y ecoepidemiología de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia. Biomédica, 143-62
Gutierrez, R., Angulo, V. M., Tarazona, Z., Britto, C., & Fernandes, O. (2004). Comparison of four serological tests for the diagnosis of Chagas disease in a Colombian endemic area. Parasitology, 439 - 444.
Hernandez, L., Ramirez Cano, A. N., Cucunubá, Z., & Zambrano, P. (2009). Brote de Chagas Agudo en Lebrija, Santander 2008. Revista del Observatorio Salud Pública de Santander, 28-36.
Hosmer, D., & Lemeshow, S. (2005). Applied Logistic Regression, Second Edition. Edited by Samuel S. Wilks Walter A. Shewhart: John Wiley & Sons.
IDEAM. (Abril de 2018). Tiempo y Clima. Obtenido de Tiempo y Clima: http://www.ideam.gov.co/web/tiempo-y-clima/seguimiento
Instituto Nacional de Salud. (2017). Guía para la vigilancia por laboratorio del Trypanosoma cruzi. Instituto Nacional de Salud, 1 - 34.
Jaimes-Dueñez, J., Triana-Chávez, O., Cantillo-Barraza, O., Hernández, C., Ramírez, J. D., & Góngora-Orjuela, A. (2017). Molecular and serological detection of Trypanosoma cruzi in dogs (Canis lupus familiaris) suggests potential transmission risk in areas of recent acute Chagas disease outbreaks in Colombia. Prev Vet Med, 1 - 6.
Llau, A. F., Tejada, C. E., & Ahmed, N. U. (2019). Chagas Disease Prevalence in Colombia: A Meta-Analysis and Systematic Review. Vector Borne Zoonotic Dis, 81 - 89.
López, M., Rivera, M. G., Viettri, M., Lares, M., Morocoima, A., Herrera, L., & Ferrer, E. (2014). Comparación de dos protocolos de extracción de ADN de Trypanosoma cruzi cultivados en medio axénico. Rev Peru Med Exp Salud Publica, 222-7
Manrique-Abril, D., Manrique-Abril, F., Lorca H, M., & Ospina D, J. (2012). Prevalencia de anticuerpos para Trypanosoma cruzi en caninos de dos municipios endémicos de Boyacá. Rev. MVZ Córdoba, 2916-2923
Marcili, A., Lima, L., Cavazzana, M., Junqueira, A. C., Veludo, H. H., Maia Da Silva, F., . . . Teixeira, M. M. (2009). A new genotype of Trypanosoma cruzi associated with bats evidenced by phylogenetic analyses using SSU rDNA, cytochrome b and Histone H2B genes and genotyping based on ITS1 rDNA. Parasitology, 641 - 655.
Marcon, G. E., Andrade, P. D., de Albuquerque, D. M., Wanderley, J. S., de Almeida, E. A., Guariento, M. E., & Costa, S. C. (2002). Use of a nested polymerase chain reaction (N-PCR) to detect Trypanosoma cruzi in blood samples from chronic chagasic patients and patients with doubtful serologies. Diagn Microbiol Infect Dis, 39-43.
Martínez, I., Cervantes-Landín, A., & Espinoza, B. (2013). Diagnóstico molecular de la enfermedad de Chagas. Biología Molecular y Medicina, 363-5.
Molina-Garza, Z. J., Rosales-Encina, J. L., Galaviz-Silva, L., & Molina-Garza, D. (2007). Prevalencia de Trypanosoma cruzi en triatominos silvestres de Nuevo León, México. Salud Pública de México, 37-44.
Moncayo, A., & Silveira, A. C. (Mem Inst Oswaldo Cruz). Current epidemiological trends for Chagas disease in Latin America and future challenges in epidemiology, surveillance and health policy. 2009, 17-30.
Moser, D. R., Kirchhoff, L. V., & Donelson, J. E. (1989). Detection of Trypanosoma cruzi by DNA amplification using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol, 1477–1482.
Orozco, M. M., Enriquez, G. F., Alvarado -Otegui, J. A., Cardinal, M. V., Schijman , A. G., Kitron, U., & Gurtler, R. E. (2013). New sylvatic hosts of Trypanosoma cruzi and their reservoir competence in the humid Chaco of Argentina: a longitudinal study. Am J Trop Med Hyg, 872 - 882
Paho. (2016). Chagas disease. Obtenido de Pan American Health Organization: https://www.paho.org/hq/index.php?option=com_topics&view=article&id=10&Itemid=40743&lang=en
Palmezano Díaz, J. M., Plazas Rey, L. K., Rivera Castillo, K. E., & Rueda Rojas, V. P. (2014). Enfermedad de chagas: realidad de una patología frecuente en Santander, Colombia. Medica UIS, 81-90.
Pérez de Castro, A. M. (2011). Reacción en cadena de la Polimerasa (Polymerase Chain Reaction, PCR). Universidad Politecnica de Valencia, 1-10.
Ramirez , J. D., Tapia-Calle, G., Muñoz-Cruz, G., Poveda, C., Rendón, L. M., Hincapié, E., & Guhl, F. (2014). Trypanosome species in neo-tropical bats: biological, evolutionary and epidemiological implications. Infect Genet Evol.
Ramirez, J. D., Tapia-Calle, G., & Guhl, F. (2013). Genetic structure of Trypanosoma cruzi in Colombia revealed by a High-throughput Nuclear Multilocus Sequence Typing nMLST approach. BMC Genet, 1- 10
Reyes, M., Torres, A., Esteban, L., Flórez, M., & Angulo, V. M. (2017). Riesgo de transmisión de la enfermedad de Chagas por intrusión de triatominos y mamíferos silvestres en Bucaramanga, Santander, Colombia. Biomédica, 68-78.
Rueda, K., Trujillo, J. E., Carranza, J. C., & Vallejo, G. A. (2014). Transmisión oral de Trypanosoma cruzi: una nueva situación epidemiológica de la enfermedad de Chagas en Colombia y otros países suramericanos. Biomédica, 631-41
SETIC. (2017). Casos de Chagas Agudo en Piedecuesta. Secretaría de las Tecnologías de la Información y Comunicación - SETIC de la Gobernación de Santander.
Turriago Gómez, B. C., Vallejo, G. A., & Guhl, F. (2008). Seroprevalencia de Trypanosoma cruzi en perros de dos áreas endémicas de Colombia. Med, 11 - 18.
Xavier, S. C., Roque, A. L., Lima Vdos, S., Monteiro, K. J., Otaviano, J. C., Ferreira da Silva, L. F., & Jansen, A. M. (2012). Lower richness of small wild mammal species and chagas disease risk. PLoS Negl Trop Dis., 6
dc.rights.license.none.fl_str_mv Atribución – No comercial – Sin Derivar
dc.rights.accessrights.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/closedAccess
dc.rights.coar.none.fl_str_mv http://purl.org/coar/access_right/c_14cb
rights_invalid_str_mv Atribución – No comercial – Sin Derivar
http://purl.org/coar/access_right/c_14cb
eu_rights_str_mv closedAccess
dc.format.extent.spa.fl_str_mv 50 p.
dc.publisher.spa.fl_str_mv Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Ciencias de la Salud, Medicina Veterinaría y Zootecnia, Bucaramanga
dc.publisher.program.spa.fl_str_mv Medicina veterinaria y zootecnia
dc.publisher.place.spa.fl_str_mv Bucaramanga
institution Universidad Cooperativa de Colombia
bitstream.url.fl_str_mv https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/8bc05635-9a80-467b-9307-1f03097f0f6b/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/e6bc4e98-7022-4eac-8bfb-248e9756913f/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/7d0c8553-d6d5-4367-8811-a9f6c69d35bd/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/d16bcfff-9b43-4823-8f21-74d598a3e352/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/299a7769-b936-4914-abd3-69b94053b538/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/56bf571c-4218-4738-924e-ac7922171f53/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/e0aa821f-6547-4f18-a90b-41ed39518b23/download
bitstream.checksum.fl_str_mv 3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45
6a10a564b0724706e4421feaad893182
14366f9d4f019344d9e21146f5a0eaca
8e957f0938387844b993ab684524558d
955accca296d5c3904b8e411d5b55330
2538dc62aebf81d0629bec338383eb2a
c232e5b1d64af0d8bee64f430d1b4f42
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombia
repository.mail.fl_str_mv bdigital@metabiblioteca.com
_version_ 1814246815589990400
spelling Jiménez Leaño, Ángela Patricia Castellanos Banda, María FernandaJiménez Leaño, Ángela Patricia 2020-05-06T23:29:50Z2020-05-06T23:29:50Z2020-03-02https://hdl.handle.net/20.500.12494/17523Castellanos Banda, M. F. y Jimenez Leaño, A. P. (2020). Prevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidada. (Tesis de pregrado). Recuperado de: http://hdl.handle.net/20.500.12494/17523Introducción: Se optimizó una técnica de Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR anidada) para el diagnóstico del protozoario Trypanosoma cruzi, transmitido por un insecto triatómino de la familia Reduviidae. Mediante la PCR anidada, se determinó la prevalencia de infección por T. cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga (AMB) y su asociación con variables sociodemográficas. Metodología: esta técnica se basó en la amplificación de una región de 149pb del gen satélite de T. cruzi; para tal fin, se extrajo el ADN del parásito, manejando el kit de purificación de ADN genómico (DNeasy Blood & Tissue Kit Qiagen®), a partir de 215 muestras de sangre de caninos provenientes del AMB. Se llevó a cabo una primera amplificación de la porción de 188pb del gen satélite de T. cruzi con los primers TCZ1: 5’-CGAGCTCTTGCCCACACGGGTGCT-3’ y TCZ2: 5’CCTCCAAGCAGCGGATAGTTCAGG-3’. El producto de esta primera amplificación se usó de molde para una segunda reacción en la que se amplificó una porción interna de 149pb del gen satélite de T. cruzi empleando los primers TCZ3:5’TGCACTCGGCTGATCGTTT-3’ y TCZ4: 5’ATTCCTCCAAGCAGCGGATA-3’. Se evaluó la asociación entre la prevalencia obtenida por la PCR anidada y variables sociodemográficas. Resultados: Las condiciones óptimas para la primera y segunda reacción de PCR se realizaron con volúmenes finales de 25 µl que contenían 1X de tampón de reacción (Tris-HCl 100 mM, KCl 50 mM, pH 8.8), dNTPs 0.2 mM, 1.5 mM de MgCl2, 0.4 µM de cada cebador, 0.625 UI de Taq polimerasa (CorpoGen, Bogotá, Colombia) y 2 µl (20 ng) de ADN para la primera PCR y 1 µl de producto de PCR para la segunda. Las temperaturas óptimas de anillamiento fueron 55°C para las dos PCRs. De las 215 muestras amplificadas de caninos, un total de 26 perros (12.1%, IC 95% = 7.7% - 16.4%) amplificaron el satélite nuclear de ADN de T. cruzi en la PCR anidada. No se encontró asociación significativa entre la prevalencia de T. cruzi en caninos y las variables sociodemográficas evaluadas.Resumen. -- 3. Abstract. -- 4. Tabla de contenido. -- 5. Índice de figuras. -- 7. Índice de tablas. -- 8. Introducción. -- 9. Planteamiento del problema. --11. Justificación. -- 13. Marco teórico. --15. Enfermedad de Chagas. -- 15. Diagnóstico molecular de T. cruzi por PCR simple. -- 16. Diagnóstico molecular de T. cruzi por PCR anidada. -- 18. Estado de arte. -- 20. Objetivos. -- 22. Objetivo General. -- 22. Objetivos Específicos. -- 22 Metodología. -- 23. Área de estudio y muestreo. –24 Variables sociodemográficas. -- 25. Recolección y procesamiento de muestras de sangre. – 26 Evaluación de integridad del ADN extraído. -- 27. Optimización de la PCR anidada y detección molecular de T. cruzi en muestreas sanguíneas. -- 28. Asociación de la prevalencia a variables sociodemográficas. -- 29. Declaración de ética. -- 30. Resultados. -- 31. Evaluación de calidad del ADN extraído. -- 32. Optimización de la PCR anidada y detección molecular de T. cruzi en muestras sanguíneas. -- 33. Asociación de la prevalencia a variables sociodemográficas. -- 34. Discusión. -- 36. Conclusiones. -- 37. Recomendaciones. -- 38. Referencias.maria.castellanosb@campusucc.edu.coangela.jimenez@campusucc.edu.co50 p.Universidad Cooperativa de Colombia, Facultad de Ciencias de la Salud, Medicina Veterinaría y Zootecnia, BucaramangaMedicina veterinaria y zootecniaBucaramangaEnfermedad de ChagasTrypanosoma cruziPCR anidadaCaninosTG 2020 MVZ 17523Chagas diseaseTrypanosoma cruziPCRPrevalencia de Trypanosoma cruzi en caninos del área metropolitana de Bucaramanga, mediante la técnica de PCR anidadaTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1finfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionAtribución – No comercial – Sin Derivarinfo:eu-repo/semantics/closedAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_14cbBatista, A. M., Aguiar, C., Almeida, E. A., Guariento, M. E., Wanderley, J. S., & Costa, S. C. (2010). Evidence of Chagas disease in seronegative Brazilian patients with megaesophagus. Int J Infect Dis, 974-7.Bezerra, C. M., Cavalcanti, L. P., Souza Rde, S. E., Barbosa, S. E., Xavier, S. C., Jansen, A. M., . . . Diotaiut, L. (2014). Domestic, peridomestic and wild hosts in the transmission of Trypanosoma cruzi in the Caatinga area colonised by Triatoma brasiliensis. . Mem Inst Oswaldo Cruz.Cantillo-Barraza, O., Garcés, E., Gómez-Palacio, A., Cortés, L. A., Pereira, A., Marcet, P. L., . . . Triana-Chávez, O. (2015). Eco-epidemiological study of an endemic Chagas disease region in northern Colombia reveals the importance of Triatoma maculata (Hemiptera: Reduviidae), dogs and Didelphis marsupialis in Trypanosoma cruzi maintenance. Parasit Vectors, 8: 482Cordovez, J. M., & Sanabria, C. (2014). Environmental changes can produce shifts in chagas disease infection risk. Environ Health Insights, 43-8.Crisante, G., Rojas, A., Teixeira, M. M., & Añez, N. (2006). Infected dogs as a risk factor in the transmission of human Trypanosoma cruzi infection in western Venezuela. Acta Trop, 247 - 54.Diaz, M. L., Leal, S., Mantilla, J. C., Molina - Berrios, J. C., Lopez - Muñoz, R., Solari, A., . . . Gonzales - Rugeles, C. I. (2015). Acute Chagas outbreaks: molecular and biological features of Trypanosoma cruzi isolates, and clinical aspects of acute cases in Santander, Colombia. Parasit VectorsDuffy, T. (2010). Desarrollo y aplicación de estrategias de PCR para la genotipificación y cuantificación de Trypanosoma cruzi. Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Universidad de Buenos Aires., 1-175Eloy, L. J., & Lucheis, S. B. (2012). Hemoculture and Polymerase Chain Reaction Using Primers TCZ1/TCZ2 for the Diagnosis of Canine and Feline Trypanosomiasis. ISRN Veterinary Science, 1-6.Estrada - Franco, J. G., Bathia, V., Diaz-Albither, H., Ochoa-Garcia, L., Barbabosa, A., Vazquez-Chagoyan, J. C., . . . Garg, N. (2006). Human Trypanosoma cruzi infection and seropositivity in dogs, Mexico. Emerg Infect Dis, 624- 30.Farfán, M. (2015). Biología molecular aplicada al diagnóstico clínico. Rev. Med. Clin. Conde, 788-793.Farnsworth, A., Palacios, M., & Gómez López, A. (2016). The Colombia Reader. History, Culture, Politics. Duke University Press.Florez Sánchez, A. C. (2018). Programa de evaluación externa del desempeño Chagas inmunodiagnóstico. Instituto Nacional de Salud, 1 - 14.Guhl, F., Aguilera, G., Pinto, N., & Vergara, D. (2007). Actualización de la distribución geográfica y ecoepidemiología de la fauna de triatominos (Reduviidae: Triatominae) en Colombia. Biomédica, 143-62Gutierrez, R., Angulo, V. M., Tarazona, Z., Britto, C., & Fernandes, O. (2004). Comparison of four serological tests for the diagnosis of Chagas disease in a Colombian endemic area. Parasitology, 439 - 444.Hernandez, L., Ramirez Cano, A. N., Cucunubá, Z., & Zambrano, P. (2009). Brote de Chagas Agudo en Lebrija, Santander 2008. Revista del Observatorio Salud Pública de Santander, 28-36.Hosmer, D., & Lemeshow, S. (2005). Applied Logistic Regression, Second Edition. Edited by Samuel S. Wilks Walter A. Shewhart: John Wiley & Sons.IDEAM. (Abril de 2018). Tiempo y Clima. Obtenido de Tiempo y Clima: http://www.ideam.gov.co/web/tiempo-y-clima/seguimientoInstituto Nacional de Salud. (2017). Guía para la vigilancia por laboratorio del Trypanosoma cruzi. Instituto Nacional de Salud, 1 - 34.Jaimes-Dueñez, J., Triana-Chávez, O., Cantillo-Barraza, O., Hernández, C., Ramírez, J. D., & Góngora-Orjuela, A. (2017). Molecular and serological detection of Trypanosoma cruzi in dogs (Canis lupus familiaris) suggests potential transmission risk in areas of recent acute Chagas disease outbreaks in Colombia. Prev Vet Med, 1 - 6.Llau, A. F., Tejada, C. E., & Ahmed, N. U. (2019). Chagas Disease Prevalence in Colombia: A Meta-Analysis and Systematic Review. Vector Borne Zoonotic Dis, 81 - 89.López, M., Rivera, M. G., Viettri, M., Lares, M., Morocoima, A., Herrera, L., & Ferrer, E. (2014). Comparación de dos protocolos de extracción de ADN de Trypanosoma cruzi cultivados en medio axénico. Rev Peru Med Exp Salud Publica, 222-7Manrique-Abril, D., Manrique-Abril, F., Lorca H, M., & Ospina D, J. (2012). Prevalencia de anticuerpos para Trypanosoma cruzi en caninos de dos municipios endémicos de Boyacá. Rev. MVZ Córdoba, 2916-2923Marcili, A., Lima, L., Cavazzana, M., Junqueira, A. C., Veludo, H. H., Maia Da Silva, F., . . . Teixeira, M. M. (2009). A new genotype of Trypanosoma cruzi associated with bats evidenced by phylogenetic analyses using SSU rDNA, cytochrome b and Histone H2B genes and genotyping based on ITS1 rDNA. Parasitology, 641 - 655.Marcon, G. E., Andrade, P. D., de Albuquerque, D. M., Wanderley, J. S., de Almeida, E. A., Guariento, M. E., & Costa, S. C. (2002). Use of a nested polymerase chain reaction (N-PCR) to detect Trypanosoma cruzi in blood samples from chronic chagasic patients and patients with doubtful serologies. Diagn Microbiol Infect Dis, 39-43.Martínez, I., Cervantes-Landín, A., & Espinoza, B. (2013). Diagnóstico molecular de la enfermedad de Chagas. Biología Molecular y Medicina, 363-5.Molina-Garza, Z. J., Rosales-Encina, J. L., Galaviz-Silva, L., & Molina-Garza, D. (2007). Prevalencia de Trypanosoma cruzi en triatominos silvestres de Nuevo León, México. Salud Pública de México, 37-44.Moncayo, A., & Silveira, A. C. (Mem Inst Oswaldo Cruz). Current epidemiological trends for Chagas disease in Latin America and future challenges in epidemiology, surveillance and health policy. 2009, 17-30.Moser, D. R., Kirchhoff, L. V., & Donelson, J. E. (1989). Detection of Trypanosoma cruzi by DNA amplification using the polymerase chain reaction. J Clin Microbiol, 1477–1482.Orozco, M. M., Enriquez, G. F., Alvarado -Otegui, J. A., Cardinal, M. V., Schijman , A. G., Kitron, U., & Gurtler, R. E. (2013). New sylvatic hosts of Trypanosoma cruzi and their reservoir competence in the humid Chaco of Argentina: a longitudinal study. Am J Trop Med Hyg, 872 - 882Paho. (2016). Chagas disease. Obtenido de Pan American Health Organization: https://www.paho.org/hq/index.php?option=com_topics&view=article&id=10&Itemid=40743&lang=enPalmezano Díaz, J. M., Plazas Rey, L. K., Rivera Castillo, K. E., & Rueda Rojas, V. P. (2014). Enfermedad de chagas: realidad de una patología frecuente en Santander, Colombia. Medica UIS, 81-90.Pérez de Castro, A. M. (2011). Reacción en cadena de la Polimerasa (Polymerase Chain Reaction, PCR). Universidad Politecnica de Valencia, 1-10.Ramirez , J. D., Tapia-Calle, G., Muñoz-Cruz, G., Poveda, C., Rendón, L. M., Hincapié, E., & Guhl, F. (2014). Trypanosome species in neo-tropical bats: biological, evolutionary and epidemiological implications. Infect Genet Evol.Ramirez, J. D., Tapia-Calle, G., & Guhl, F. (2013). Genetic structure of Trypanosoma cruzi in Colombia revealed by a High-throughput Nuclear Multilocus Sequence Typing nMLST approach. BMC Genet, 1- 10Reyes, M., Torres, A., Esteban, L., Flórez, M., & Angulo, V. M. (2017). Riesgo de transmisión de la enfermedad de Chagas por intrusión de triatominos y mamíferos silvestres en Bucaramanga, Santander, Colombia. Biomédica, 68-78.Rueda, K., Trujillo, J. E., Carranza, J. C., & Vallejo, G. A. (2014). Transmisión oral de Trypanosoma cruzi: una nueva situación epidemiológica de la enfermedad de Chagas en Colombia y otros países suramericanos. Biomédica, 631-41SETIC. (2017). Casos de Chagas Agudo en Piedecuesta. Secretaría de las Tecnologías de la Información y Comunicación - SETIC de la Gobernación de Santander.Turriago Gómez, B. C., Vallejo, G. A., & Guhl, F. (2008). Seroprevalencia de Trypanosoma cruzi en perros de dos áreas endémicas de Colombia. Med, 11 - 18.Xavier, S. C., Roque, A. L., Lima Vdos, S., Monteiro, K. J., Otaviano, J. C., Ferreira da Silva, L. F., & Jansen, A. M. (2012). Lower richness of small wild mammal species and chagas disease risk. PLoS Negl Trop Dis., 6PublicationLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84334https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/8bc05635-9a80-467b-9307-1f03097f0f6b/download3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45MD56ORIGINAL2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdf2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdfapplication/pdf721943https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/e6bc4e98-7022-4eac-8bfb-248e9756913f/download6a10a564b0724706e4421feaad893182MD542020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdf2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdfapplication/pdf321442https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/7d0c8553-d6d5-4367-8811-a9f6c69d35bd/download14366f9d4f019344d9e21146f5a0eacaMD55THUMBNAIL2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdf.jpg2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg2931https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/d16bcfff-9b43-4823-8f21-74d598a3e352/download8e957f0938387844b993ab684524558dMD572020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdf.jpg2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg5163https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/299a7769-b936-4914-abd3-69b94053b538/download955accca296d5c3904b8e411d5b55330MD58TEXT2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdf.txt2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi.pdf.txtExtracted texttext/plain66346https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/56bf571c-4218-4738-924e-ac7922171f53/download2538dc62aebf81d0629bec338383eb2aMD592020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdf.txt2020_prevalencia_trypanosoma_cruzi-FormatoLicenciaUso.pdf.txtExtracted texttext/plain5525https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/e0aa821f-6547-4f18-a90b-41ed39518b23/downloadc232e5b1d64af0d8bee64f430d1b4f42MD51020.500.12494/17523oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/175232024-08-09 12:34:00.383restrictedhttps://repository.ucc.edu.coRepositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombiabdigital@metabiblioteca.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