Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática

Introducción: Biotecnologías usadas en la preservación y viabilidad del espermatozoide presentan variación en la resistencia de las células espermáticas, ocasionada por la especie, composición lipídica y proteica del plasma seminal, en caprinos hay enzimas que interactúan negativamente con los criop...

Full description

Autores:
Ramírez Ramírez, Diego Andrés
Tipo de recurso:
Trabajo de grado de pregrado
Fecha de publicación:
2023
Institución:
Universidad Cooperativa de Colombia
Repositorio:
Repositorio UCC
Idioma:
OAI Identifier:
oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/48909
Acceso en línea:
https://hdl.handle.net/20.500.12494/48909
Palabra clave:
Crioprotectores
Plasma seminal
Criopreservación
Células espermáticas
TG 2023 MVZ
Cryoprotectants
Seminal plasma
Cryopreservation
sperm cells
Rights
openAccess
License
Atribución – No comercial – Compartir igual
id COOPER2_77661ec206b5f3b859f8c2e31e73f970
oai_identifier_str oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/48909
network_acronym_str COOPER2
network_name_str Repositorio UCC
repository_id_str
dc.title.none.fl_str_mv Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
title Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
spellingShingle Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
Crioprotectores
Plasma seminal
Criopreservación
Células espermáticas
TG 2023 MVZ
Cryoprotectants
Seminal plasma
Cryopreservation
sperm cells
title_short Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
title_full Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
title_fullStr Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
title_full_unstemmed Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
title_sort Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática
dc.creator.fl_str_mv Ramírez Ramírez, Diego Andrés
dc.contributor.advisor.none.fl_str_mv Moreno Jerez, Edgar Ricardo
dc.contributor.author.none.fl_str_mv Ramírez Ramírez, Diego Andrés
dc.subject.none.fl_str_mv Crioprotectores
Plasma seminal
Criopreservación
Células espermáticas
topic Crioprotectores
Plasma seminal
Criopreservación
Células espermáticas
TG 2023 MVZ
Cryoprotectants
Seminal plasma
Cryopreservation
sperm cells
dc.subject.classification.none.fl_str_mv TG 2023 MVZ
dc.subject.other.none.fl_str_mv Cryoprotectants
Seminal plasma
Cryopreservation
sperm cells
description Introducción: Biotecnologías usadas en la preservación y viabilidad del espermatozoide presentan variación en la resistencia de las células espermáticas, ocasionada por la especie, composición lipídica y proteica del plasma seminal, en caprinos hay enzimas que interactúan negativamente con los crioprotectores de origen animal, promoviendo efectos tóxicos en los espermatozoides. Investigaciones resientes reportan efectos nocivos que tienen los procesos de criopreservación, promoviendo desarrollo e incorporación de antioxidantes, proteínas y elementos crioprotectores que maximicen la resistencia celular. Se ha evaluado el uso de sustancias crioprotectoras, que mejoren la resistencia de las células y la interacción con esta enzima, y eviten la extracción del plasma seminal, buscando mejorar la viabilidad de los espermatozoides post-descongelación. Objetivo: Analizar el uso de crioprotectores que permiten optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación caprina. Metodología: Búsqueda mediante uso de palabras claves y operadores boléanos identificando artículos en bases de datos científicas con ayuda de la metodología PRISMA. Resultados: Autores concluyeron que los crioprotectores permeantes de glicerol (7%) y etilenglicol (5%), generan protección superior en la integridad de la membrana a otros crioprotectores internos; diluyentes a base de yema de huevo y lecitina de soja, reportan una protección similar entre ellos cuando se extrae el plasma seminal; otros crioprotectores como la miel y fitoquímicos, demuestran ser eficaces sobre las tasas de motilidad y viabilidad post-descongelación, muestran un potencial como suplemento al extensor, con capacidad de proteger la membrana espermática, del daño del estrés oxidativo, acrosomal e integridad del ADN y podrían prevenir la formación de cristales de hielo durante la criopreservación, sin embargo, carecen de una cantidad de estudios significativos, que permitan realizar una comparación de sus ventajas en la preservación celular. Conclusión: Este análisis podría ayudar como guía para el desarrollo de crioprotectores más apropiados en su modo de acción, capacidad y eficacia en la preservación de semen caprino.
publishDate 2023
dc.date.accessioned.none.fl_str_mv 2023-03-10T13:45:02Z
dc.date.available.none.fl_str_mv 2023-03-10T13:45:02Z
dc.date.issued.none.fl_str_mv 2023-01-20
dc.type.none.fl_str_mv Trabajo de grado - Pregrado
dc.type.coar.none.fl_str_mv http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.type.driver.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.type.version.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/acceptedVersion
format http://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
status_str acceptedVersion
dc.identifier.uri.none.fl_str_mv https://hdl.handle.net/20.500.12494/48909
dc.identifier.bibliographicCitation.none.fl_str_mv Ramírez Ramírez, D. A. (2023). Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática. [Tesis de pregrado, Universidad Cooperativa de Colombia]. Repositorio Institucional UCC.
url https://hdl.handle.net/20.500.12494/48909
identifier_str_mv Ramírez Ramírez, D. A. (2023). Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática. [Tesis de pregrado, Universidad Cooperativa de Colombia]. Repositorio Institucional UCC.
dc.relation.references.none.fl_str_mv ICA, Censos Pecuarios Nacional, 2022
C.A. Meza-Herrera, C. Navarrete-Molina, L.A. Luna-García, C. Pérez-Marín, J.R. Altamirano-Cárdenas, U. Macías-Cruz, C. García de la Peña, J. Abad-Zavaleta, Small ruminants and sustainability in Latin America & the Caribbean: Regionalization, main production systems, and a combined productive, socio-economic & ecological footprint quantification, Small Ruminant Research, Volume 211, 2022, 106676, ISSN 0921-4488
Ridoutt, B. G., & Pfister, S. Towards an Integrated Family of Footprint Indicators. Journal of Industrial Ecology, 2013; 17(3), 337–339. doi:10.1111/jiec.12026
Riesco, M. F., Alvarez, M., Anel-Lopez, L., Neila-Montero, M., Palacin-Martinez, C., Montes-Garrido, R., Boixo, J. C., Paulino, d. P., & Anel, L. Multiparametric study of antioxidant effect on ram sperm Cryopreservation—From field trials to research bench. Animals, 2021; 11(2), 283.
Peris-Frau P, Soler AJ, Iniesta-Cuerda M, Martín-Maestro A, Sánchez-Ajofrín I, Medina-Chávez DA, Fernández-Santos MR, García-Álvarez O, Maroto-Morales A, Montoro V, Garde JJ. Criodaño espermático en rumiantes: Entendiendo los cambios moleculares inducidos por el proceso de criopreservación para optimizar la calidad del esperma. Int J Mol Sci. 2020 abr 16;21(8):2781.
Santiago-Moreno, J., ⨯, B. B., Pérez-Cerezales, S., Castaño, C., Toledano-Díaz, A., Esteso, M. C., Gutiérrez-Adán, A., López-Sebastián, A., Gil, M. G., Woelders, H., & Blesbois, E. Seminal plasma amino acid profile in different breeds of chicken: Role of seminal plasma on sperm cryoresistance. PLoS One, 2019; 14(1)
M. Bashawat, B. Hensel, K. Müller, M. Schulze, Cooled storage of semen from livestock animals (Part II): Camelids, goats, and sheep, Animal Reproduction Science, Volume 234, 2021, 106855, ISSN 0378-4320
Chung-Hsun Yang, Ting-Wen Wu, Feng-Pang Cheng, Jiann-Hsiung Wang, Jui-Te Wu, Effects of different cryoprotectants and freezing methods on post-thaw boar semen quality, Reproductive Biology, Volume 16, Issue 1, 2016, Pages 41-46, ISSN 1642-431X
J.P. Barbas, T. Leahy, A.E. Horta, M. García-Herreros, Sperm kinematics and subpopulational responses during the cryopreservation process in caprine ejaculates, Cryobiology, Volume 82, 2018, Pages 137-147, ISSN 0011-2240.
Uchechi LO, Uchebuchi IO, Alvarez-Rodríguez M, Yánez-Ortiz I, Tabarez A, María Jesús Palomo. The Re-Addition of Seminal Plasma after Thawing Does Not Improve Buck Sperm Quality Parameters. Animals 2021;11(12):3452.
Moher D, Liberati A, Tetzlaff J, Altman DG; Prisma Group. Preferred reporting items for systematic reviews and metaanalyses: the PRISMA statement. PLoS Med 2009; 6: e1000097
Chunrong Lv, Guoquan Wu, Qionghua Hong y Guobo Quan, Criopreservación de espermatozoides: estado del arte y futuro en pequeños rumiantes, liebertpub, 2019.
Melo Quiroga Mariam, actualización en los diferentes protocolos utilizados en la criopreservación del semen caprino (Capra aegagrus hircus), 2020.
Rojas, A. (2014). Optimización del Protocolo de Crioconservación de Semen Caprino de la Raza Autóctona en Peligro de extinción Blanca De Rasquera. (Tesis Doctoral). Universida Autònoma de Barcelona, Facultad de Veterinària, Departamento de Medicina y Cirugia Animal, Barcelona -España. 20 de julio del 2018
Jia B, Liang J, Lv C, Memon S, Fang Y, Wu G, Quan G. Las características del proteoma y el metaboloma asociadas con la motilidad contrastante de los espermatozoides en el plasma seminal de cabra. 2021 Julio 30;11(1):15562.
Saha A, Asaduzzaman M, Bari FY. Técnicas de criopreservación de espermatozoides de carnero. Vet Med Int. 2022 abril 30;2022:7378379.
Ohaneje UL, Osuagwuh UI, Alvarez-Rodríguez M, Yánez-Ortiz I, Tabarez A, Palomo MJ. La readición de plasma seminal después de la descongelación no mejora los parámetros de calidad del esperma. Animales (Basilea). 2021 Diciembre 3;11(12):3452.
Chunrong Lv, Guoquan Wu, Qionghua Hong y Guobo Quan, Criopreservación de espermatozoides: estado del arte y futuro en pequeños rumiantes, 2019.
Gillan L, Skovgold K, Watson PF, Evans G, Maxwell WM. Destino e integridad funcional de espermatozoides de carnero frescos y congelados-descongelados después de la inseminación intrauterina. 1999;11(6):309-15.
Morrell J.M. Malaluang P, Ntallaris T, Johannisson A. Método práctico para congelar semen de ciervo. Animales (Basilea). 2022 Febrero 1;12(3):352.
Maryam Hezavehei, Mohsen Sharafi, Homa Mohseni Kouchesfahani, Ralf Henkel, Ashok Agarwal, Vahid Esmaeili, Abdolhossein Shahverdi, Sperm cryopreservation: A review on current molecular cryobiology and advanced approaches, Reproductive BioMedicine Online, Volume 37, Issue 3, 2018, Pages 327-339, ISSN 1472-6483.
Marc Yeste, Sperm cryopreservation update: Cryodamage, markers, and factors affecting the sperm freezability in pigs, Theriogenology, Volume 85, Issue 1, 2016, Pages 47-64, ISSN 0093-691X.
Barbas, J.P., Mascarenhas, R.D. Criopreservación de espermatozoides de animales domésticos. Banco de Tejidos Celulares 10, 49–62 (2009).
Harald Sieme, Harriëtte Oldenhof, Willem F. Wolkers, Mode of action of cryoprotectants for sperm preservation, Animal Reproduction Science, Volume 169, 2016, Pages 2-5, ISSN 0378-4320.
S.S. Layek, T.K. Mohanty, A. Kumaresan, J.E. Parks, Cryopreservation of bull semen: Evolution from egg yolk based to soybean based extenders, Animal Reproduction Science, Volume 172, 2016, Pages 1-9, ISSN 0378-4320.
Abouzar Najafi, Hossein Daghigh-Kia, Hossein Vaseghi Dodaran, Mahdieh Mehdipour, Manuel Alvarez-Rodriguez, Ethylene glycol, but not DMSO, could replace glycerol inclusion in soybean lecithin-based extenders in ram sperm cryopreservation, Animal Reproduction Science, Volume 177, 2017, Pages 35-41, ISSN 0378-4320.
M. Forouzanfar, M. Sharafi, S.M. Hosseini, S. Ostadhosseini, M. Hajian, L. Hosseini, P. Abedi, N. Nili, H.R. Rahmani, M.H. Nasr-Esfahani, In vitro comparison of egg yolk–based and soybean lecithin–based extenders for cryopreservation of ram semen, Theriogenology, Volume 73, Issue 4, 2010, Pages 480-487, ISSN 0093-691X.
Afshin Seifi-Jamadi, Ejaz Ahmad, Mahdi Ansari, Hamid Kohram, Antioxidant effect of quercetin in an extender containing DMA or glycerol on freezing capacity of goat semen, Cryobiology, Volume 75, 2017, Pages 15-20, ISSN 0011-2240.
Anastasiia Bogdaniuk, Volodymyr Garkavii, The kinetic characteristics of semen from Saanen and Alpine goats after cryopreservation in different freezing media, Cryobiology, Volume 97, 2020, Page 298, ISSN 0011-2240.
Bustani GS, Baiee FH. Extensores de semen: Una visión general evaluativa de los mecanismos conservantes del semen y los diluyentes de semen. Mundo veterinario. 2021 mayo;14(5):1220-1233.
Saieed, A. Y., Mahdi, Z. A., & Ibrahim, a. a. effect of addition from egg yolk of different avian to tris extender on freezing semen traits of awassi rams. The Iraqi Journal of Agricultural Science, (2018 49(4), 663.
Sara Miguel-Jimenez, Maria Montserrat Rivera del Alamo, Manuel Álvarez-Rodríguez, Carlos Olegario Hidalgo, Ana Isabel Peña, Rodrigo Muiño, Joan Enric Rodríguez-Gil, Teresa. Mogas, In vitro assessment of egg yolk-, soya bean lecithin- and liposome-based extenders for cryopreservation of dairy bull semen, Animal Reproduction Science, Volume 215, 2020, 106315, ISSN 0378-4320.
Abigail Tabarez, Wilber García, María Jesús Palomo, Effect of the type of egg yolk, removal of seminal plasma and donor age on buck sperm cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 149, 2017, Pages 91-98, ISSN 0921-4488.
Iusupova K, Batista-Arteaga M, Martín-Martel S, Díaz-Bertrana ML, Rodríguez-Lozano O. Efecto de la edad de la donante y el tipo de diluyente (yema de huevo versus yema de huevo clarificada) sobre la calidad del esperma de los machos Majorera conservados a 4°C: resultados in vitro y ensayos de fertilidad. 2022 mayo;57(5):524-531.
C.A.S. Bispo, G. Pugliesi, P. Galvão, M.T. Rodrigues, P.G. Ker, B. Filgueiras, G.R. Carvalho, Effect of low and high egg yolk concentrations in the semen extender for goat semen cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 100, Issue 1, 2011, Pages 54-58, ISSN 0921-4488.
Eddington Gororo, Prince T. Zulu, Fungayi P. Chatiza, Christine Mhuka, Effects of different extenders and storage temperatures on longevity of small East African goat (Capra hircus) semen, Small Ruminant Research, Volume 175, 2019, Pages 83-89, ISSN 0921-4488.
A. Medrano, A. Terrazas, R. Soto, Principles and perspectives for the conservation of goat buck spermatozoa, Small Ruminant Research, Volume 89, Issues 2–3, 2010, Pages 140-143, ISSN 0921-4488.
M.A. Coloma, A. Toledano-Díaz, A. López-Sebastián, J. Santiago-Moreno, The influence of washing Spanish ibex (Capra pyrenaica) sperm on the effects of cryopreservation in dependency of the photoperiod, Theriogenology, Volume 73, Issue 7, 2010, Pages 900-908, ISSN 0093-691X.
Chang-He Liu, Hai-Bo Dong, Dong-Li Ma, You-Wei Li, Dong Han, Ming-Jiu Luo, Zhong-Le Chang, Jing-He Tan, Effects of pH during liquid storage of goat semen on sperm viability and fertilizing potential, Animal Reproduction Science, Volume 164, 2016, Pages 47-56 ISSN 0378-4320.
Pradeep Kumar, Monika Saini, Dharmendra Kumar, A.K. Balhara, S.P. Yadav, P. Singh, P.S. Yadav, Liposome-based semen extender is suitable alternative to egg yolk-based extender for cryopreservation of buffalo (Bubalus bubalis) semen, Animal Reproduction Science, Volume 159, 2015, Pages 38-45, ISSN 0378-4320.
Andrea Helena Vidal, André Mariano Batista, Ellen Cordeiro Bento da Silva, Wilton Arruda Gomes, Marina Arruda Pelinca, Sildivane Valcácia Silva, Maria Madalena Pessoa Guerra, Soybean lecithin-based extender as an alternative for goat sperm cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 109, Issue 1, 2013, Pages 47-51, ISSN 0921-4488.
Lingwei Sun, Wenhua Fan, Caifeng Wu, Shushan Zhang, Jianjun Dai, Defu Zhang, Effect of substituting different concentrations of soybean lecithin and egg yolk in tris-based extender on goat semen cryopreservation, Cryobiology, Volume 92, 2020, Pages 146-150, ISSN 0011-2240.
Sara Chelucci, Valeria Pasciu, Sara Succu, Daniela Addis, Giovanni G. Leoni, Maria E. Manca, Salvatore Naitana, Fiammetta Berlinguer, Soybean lecithin–based extender preserves spermatozoa membrane integrity and fertilizing potential during goat semen cryopreservation, Theriogenology, Volume 83, Issue 6, 2015, Pages 1064-1074, ISSN 0093-691X.
Morrell JM, Malaluang P, Ntallaris T, Johannisson A. Método práctico para congelar semen de ciervo. Animales (Basilea). 2022 febrero 1;12(3):352.
Silva RAJA, Batista AM, Arruda LCP, de Souza HM, Nery IHAV, Gomes WA, Soares PC, Silva SV, Guerra MMP. La concentración de lecitina de soja afecta el éxito de almacenamiento a corto plazo del semen de cabra relacionado con la eliminación del plasma seminal. 2019 noviembre 18;16(4):895-901.
Faryal, F. C., Liu, H., & Zhao, G. The natural cryoprotectant honey for fertility cryopreservation. Bioengineering, 2022. 9(3), 88.
Malik A. Effects of honey supplementation into the extender on the motility, abnormality and viability of frozen-thaled of Bali bull spermatozoa. Asian J. Anim. Vet. 2019; 13(2):109–113.
Chung E.L.T, Nayan N, Nasir N.S.M, Hing P.S.A, Ramli S, Rahman M.H.A, Kamalludin m.h. Effect of honey as an additive for cryopreservation on bull semen quality from different cattle breeds under tropical condition. J. Anim. Salud Prod. 2019; 7(4):171–178.
A.R. Moradi, H. Malekinejad, F. Farrokhi-Ardabili, I. Bernousi, Royal Jelly improves the sperm parameters of ram semen during liquid storage and serves as an antioxidant source, Small Ruminant Research, Volume 113, Issues 2–3, 2013, Pages 346-352, ISSN 0921-4488
Zaghloul A.A. Relevance of honey bee in semen extender on the quality of refrigered-stored ram semen. J. Anim. Poult. Prod. Mansoura Univ. 2017; 8(1):1–5.
Reda I. El-Sheshtawy, Diya A. El-Badry, Gamal A. El-Sisy, Walid S. El-Nattat, Amal M. Abo Almaaty, Natural honey as a cryoprotectant to improve Arab stallion post-thawing sperm parameters, Asian Pacific Journal of Reproduction, Volume 5, Issue 4, 2016, Pages 331-334, ISSN 2305-0500,
M. Shikh Maidin, M. H. Padlan,S. A. N. Azuan,R. Jonit,N. H. Mohammed,R. Abdullah, Tropical Animal Science Journal. 2018 Vol. 41 No. 2:
Fakhrildin MB, Alsaadi RA. La suplementación con miel al medio de congelación de semen mejora los parámetros del esperma humano después de la descongelación. J Family Reprod Health. 2014 marzo;8(1):27-31.
Ros-Santaella JL, Pintus E. Extractos de plantas como aditivos alternativos para la preservación del esperma. Antioxidantes (Basilea). 2021 Mayo 13;10(5):772.
Pintus, E. Plant extracts as alternative additives for sperm preservation. Antioxidants, (2021). 10(5), 772.
Xing Zhang, Zhang-Tao Hu, Yu Li, Yan-Xue Li, Ming Xian, Song-Mao Guo, Jian-Hong Hu, Effect of Astragalus polysaccharides on the cryopreservation of goat semen, Theriogenology, Volume 193, 2022, Pages 47-57, ISSN 0093-691X.
Hassan, S. A., Khalil, W. A., Hassan, M. A. E., Yousif, A. I., Sabry, O. M., Wink, M., & Sobeh, M. Antioxidant and antiapoptotic effects of a turraea fischeri leaf extract on cryopreserved goat sperm. Animals, (2021). 11(10), 2840.
Afshin Seifi-Jamadi, Ejaz Ahmad, Mahdi Ansari, Hamid Kohram, Antioxidant effect of quercetin in an extender containing DMA or glycerol on freezing capacity of goat semen, Cryobiology, Volume 75, 2017, Pages 15-20, ISSN 0011-2240.
Farshad Ariyan, Abbas Farshad, Jalal Rostamzadeh, Protective effects of Tribulus terrestris and Cinnamomum zeylanicum extracts and trehalose added to diluents on goat epididymal sperm freezability, Cryobiology, Volume 98, 2021, Pages 172-180, ISSN 0011-2240.
A.L.P. Souza, G.L. Lima, G.C.X. Peixoto, A.M. Silva, M.F. Oliveira, A.R. Silva, Use of Aloe vera–based extender for chilling and freezing collared peccary (Pecari tajacu) semen, Theriogenology, Volume 85, Issue 8, 2016, Pages 1432-1438, ISSN 0093-691X.
Azerêdo, G. A., Esper, C. R. y Resende, K. T. Evaluación de la integridad de la membrana plasmática de espermatozoides de cabra congelados-descongelados con o sin plasma seminal. Investigación de pequeños rumiantes, (2021). 41(3), 257–263.
dc.rights.license.none.fl_str_mv Atribución – No comercial – Compartir igual
dc.rights.accessrights.none.fl_str_mv info:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rights.coar.none.fl_str_mv http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
rights_invalid_str_mv Atribución – No comercial – Compartir igual
http://purl.org/coar/access_right/c_abf2
eu_rights_str_mv openAccess
dc.format.extent.none.fl_str_mv 42 p.
dc.publisher.none.fl_str_mv Universidad Cooperativa de Colombia, Medicina Veterinaría y Zootecnia, Bucaramanga
dc.publisher.program.none.fl_str_mv Medicina veterinaria y zootecnia
dc.publisher.place.none.fl_str_mv Bucaramanga
publisher.none.fl_str_mv Universidad Cooperativa de Colombia, Medicina Veterinaría y Zootecnia, Bucaramanga
institution Universidad Cooperativa de Colombia
bitstream.url.fl_str_mv https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/9b7b189b-a714-4e25-ae69-506480ae8469/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/2ecc30e3-0e1e-4480-aaf6-9a245358eedc/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/ad37b128-b449-47a0-9b79-3dd4f5654cc2/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/af749ccd-9841-451c-92a4-dc48615a63c1/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/656e0065-1cb3-4ea8-8663-3f079ab2b253/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/819ce21e-3bc9-4593-bc37-7ca65467c264/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/b78493a8-7755-40df-ae9c-81583d1d9885/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/6d7b77c0-569b-4d7b-b1bc-6bdbc6b2860a/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/3d3fe4a6-fb56-4bec-b7fd-48a80c6c47fd/download
https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/9515bea6-18b5-4382-95a3-2d5b3d7be4c8/download
bitstream.checksum.fl_str_mv 3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45
c19756e83b421dde5325bea9d4c14fc8
2e7ee822ae7c91a9ac78e5b2e72fd24c
9a73b054e2dfe1a8fdb24a707341261d
0bec60913a57013a245483a3121908c1
d6fd2f2ac73c15a7432631778ca4c1ec
abbf6baa45fa1372eef7310358c21d63
3085d0c915362ba260fb0a03eccfdf8a
621057e0f75e3ab1a9965fec508e83f8
fd32bd62ad589a20f55cdcd4563fbd78
bitstream.checksumAlgorithm.fl_str_mv MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
MD5
repository.name.fl_str_mv Repositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombia
repository.mail.fl_str_mv bdigital@metabiblioteca.com
_version_ 1814246625725382656
spelling Moreno Jerez, Edgar RicardoRamírez Ramírez, Diego Andrés2023-03-10T13:45:02Z2023-03-10T13:45:02Z2023-01-20https://hdl.handle.net/20.500.12494/48909Ramírez Ramírez, D. A. (2023). Uso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemática. [Tesis de pregrado, Universidad Cooperativa de Colombia]. Repositorio Institucional UCC.Introducción: Biotecnologías usadas en la preservación y viabilidad del espermatozoide presentan variación en la resistencia de las células espermáticas, ocasionada por la especie, composición lipídica y proteica del plasma seminal, en caprinos hay enzimas que interactúan negativamente con los crioprotectores de origen animal, promoviendo efectos tóxicos en los espermatozoides. Investigaciones resientes reportan efectos nocivos que tienen los procesos de criopreservación, promoviendo desarrollo e incorporación de antioxidantes, proteínas y elementos crioprotectores que maximicen la resistencia celular. Se ha evaluado el uso de sustancias crioprotectoras, que mejoren la resistencia de las células y la interacción con esta enzima, y eviten la extracción del plasma seminal, buscando mejorar la viabilidad de los espermatozoides post-descongelación. Objetivo: Analizar el uso de crioprotectores que permiten optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación caprina. Metodología: Búsqueda mediante uso de palabras claves y operadores boléanos identificando artículos en bases de datos científicas con ayuda de la metodología PRISMA. Resultados: Autores concluyeron que los crioprotectores permeantes de glicerol (7%) y etilenglicol (5%), generan protección superior en la integridad de la membrana a otros crioprotectores internos; diluyentes a base de yema de huevo y lecitina de soja, reportan una protección similar entre ellos cuando se extrae el plasma seminal; otros crioprotectores como la miel y fitoquímicos, demuestran ser eficaces sobre las tasas de motilidad y viabilidad post-descongelación, muestran un potencial como suplemento al extensor, con capacidad de proteger la membrana espermática, del daño del estrés oxidativo, acrosomal e integridad del ADN y podrían prevenir la formación de cristales de hielo durante la criopreservación, sin embargo, carecen de una cantidad de estudios significativos, que permitan realizar una comparación de sus ventajas en la preservación celular. Conclusión: Este análisis podría ayudar como guía para el desarrollo de crioprotectores más apropiados en su modo de acción, capacidad y eficacia en la preservación de semen caprino.Introduction: Biotechnologies used in the preservation and viability of the spermatozoon present variation in the resistance of sperm cells, caused by the species, lipid and protein composition of the seminal plasma, in goats there are enzymes that interact negatively with cryoprotectants of animal origin, promoting toxic effects in the sperm. Recent research reports harmful effects of cryopreservation processes, promoting the development and incorporation of antioxidants, proteins and cryoprotective elements that maximize cell resistance. The use of cryoprotective substances, which improve cell resistance and interaction with this enzyme, and avoid the extraction of seminal plasma, has been evaluated, seeking to improve post-thawing sperm viability. Goal: Analyze the use of cryoprotectants that allow optimizing the handling of seminal plasma in caprine cryopreservation. Methodology: Search through the use of keywords and Boolean operators, identifying articles in scientific databases with the help of the PRISMA methodology. Results: Authors concluded that the glycerol (7%) and ethylene glycol (5%) permeant cryoprotectants generate superior protection in the integrity of the membrane than other internal cryoprotectants; egg yolk and soy lecithin-based extenders report similar protection between them when seminal plasma is extracted; Other cryoprotectants such as honey and phytochemicals have proven to be effective on post-thawing motility and viability rates, show potential as a supplement to the extender, with the ability to protect the sperm membrane from oxidative and acrosomal stress damage, and DNA integrity. could prevent the formation of ice crystals during cryopreservation, however, they lack a number of significant studies, which allow a comparison of their advantages in cell preservation. Conclusion: This analysis could help as a guide for the development of more appropriate cryoprotectants in their mode of action, capacity and efficacy in the preservation of goat semen.Resumen. -- Lista de ilustraciones. -- Lista de tablas. -- Lista de abreviaturas. -- Introducción. -- Planteamiento del Problema. -- Objetivos. -- Metodología. -- Marco Teórico. -- Discusión. -- Resultados. -- Conclusiones. -- Bibliografía.diego.ramirezr@campusucc.edu.co42 p.Universidad Cooperativa de Colombia, Medicina Veterinaría y Zootecnia, BucaramangaMedicina veterinaria y zootecniaBucaramangaCrioprotectoresPlasma seminalCriopreservaciónCélulas espermáticasTG 2023 MVZCryoprotectantsSeminal plasmaCryopreservationsperm cellsUso de crioprotectores que permitan optimizar el manejo del plasma seminal en la criopreservación del semen caprino: Revisión sistemáticaTrabajo de grado - Pregradohttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1finfo:eu-repo/semantics/bachelorThesisinfo:eu-repo/semantics/acceptedVersionAtribución – No comercial – Compartir igualinfo:eu-repo/semantics/openAccesshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2ICA, Censos Pecuarios Nacional, 2022C.A. Meza-Herrera, C. Navarrete-Molina, L.A. Luna-García, C. Pérez-Marín, J.R. Altamirano-Cárdenas, U. Macías-Cruz, C. García de la Peña, J. Abad-Zavaleta, Small ruminants and sustainability in Latin America & the Caribbean: Regionalization, main production systems, and a combined productive, socio-economic & ecological footprint quantification, Small Ruminant Research, Volume 211, 2022, 106676, ISSN 0921-4488Ridoutt, B. G., & Pfister, S. Towards an Integrated Family of Footprint Indicators. Journal of Industrial Ecology, 2013; 17(3), 337–339. doi:10.1111/jiec.12026Riesco, M. F., Alvarez, M., Anel-Lopez, L., Neila-Montero, M., Palacin-Martinez, C., Montes-Garrido, R., Boixo, J. C., Paulino, d. P., & Anel, L. Multiparametric study of antioxidant effect on ram sperm Cryopreservation—From field trials to research bench. Animals, 2021; 11(2), 283.Peris-Frau P, Soler AJ, Iniesta-Cuerda M, Martín-Maestro A, Sánchez-Ajofrín I, Medina-Chávez DA, Fernández-Santos MR, García-Álvarez O, Maroto-Morales A, Montoro V, Garde JJ. Criodaño espermático en rumiantes: Entendiendo los cambios moleculares inducidos por el proceso de criopreservación para optimizar la calidad del esperma. Int J Mol Sci. 2020 abr 16;21(8):2781.Santiago-Moreno, J., ⨯, B. B., Pérez-Cerezales, S., Castaño, C., Toledano-Díaz, A., Esteso, M. C., Gutiérrez-Adán, A., López-Sebastián, A., Gil, M. G., Woelders, H., & Blesbois, E. Seminal plasma amino acid profile in different breeds of chicken: Role of seminal plasma on sperm cryoresistance. PLoS One, 2019; 14(1)M. Bashawat, B. Hensel, K. Müller, M. Schulze, Cooled storage of semen from livestock animals (Part II): Camelids, goats, and sheep, Animal Reproduction Science, Volume 234, 2021, 106855, ISSN 0378-4320Chung-Hsun Yang, Ting-Wen Wu, Feng-Pang Cheng, Jiann-Hsiung Wang, Jui-Te Wu, Effects of different cryoprotectants and freezing methods on post-thaw boar semen quality, Reproductive Biology, Volume 16, Issue 1, 2016, Pages 41-46, ISSN 1642-431XJ.P. Barbas, T. Leahy, A.E. Horta, M. García-Herreros, Sperm kinematics and subpopulational responses during the cryopreservation process in caprine ejaculates, Cryobiology, Volume 82, 2018, Pages 137-147, ISSN 0011-2240.Uchechi LO, Uchebuchi IO, Alvarez-Rodríguez M, Yánez-Ortiz I, Tabarez A, María Jesús Palomo. The Re-Addition of Seminal Plasma after Thawing Does Not Improve Buck Sperm Quality Parameters. Animals 2021;11(12):3452.Moher D, Liberati A, Tetzlaff J, Altman DG; Prisma Group. Preferred reporting items for systematic reviews and metaanalyses: the PRISMA statement. PLoS Med 2009; 6: e1000097Chunrong Lv, Guoquan Wu, Qionghua Hong y Guobo Quan, Criopreservación de espermatozoides: estado del arte y futuro en pequeños rumiantes, liebertpub, 2019.Melo Quiroga Mariam, actualización en los diferentes protocolos utilizados en la criopreservación del semen caprino (Capra aegagrus hircus), 2020.Rojas, A. (2014). Optimización del Protocolo de Crioconservación de Semen Caprino de la Raza Autóctona en Peligro de extinción Blanca De Rasquera. (Tesis Doctoral). Universida Autònoma de Barcelona, Facultad de Veterinària, Departamento de Medicina y Cirugia Animal, Barcelona -España. 20 de julio del 2018Jia B, Liang J, Lv C, Memon S, Fang Y, Wu G, Quan G. Las características del proteoma y el metaboloma asociadas con la motilidad contrastante de los espermatozoides en el plasma seminal de cabra. 2021 Julio 30;11(1):15562.Saha A, Asaduzzaman M, Bari FY. Técnicas de criopreservación de espermatozoides de carnero. Vet Med Int. 2022 abril 30;2022:7378379.Ohaneje UL, Osuagwuh UI, Alvarez-Rodríguez M, Yánez-Ortiz I, Tabarez A, Palomo MJ. La readición de plasma seminal después de la descongelación no mejora los parámetros de calidad del esperma. Animales (Basilea). 2021 Diciembre 3;11(12):3452.Chunrong Lv, Guoquan Wu, Qionghua Hong y Guobo Quan, Criopreservación de espermatozoides: estado del arte y futuro en pequeños rumiantes, 2019.Gillan L, Skovgold K, Watson PF, Evans G, Maxwell WM. Destino e integridad funcional de espermatozoides de carnero frescos y congelados-descongelados después de la inseminación intrauterina. 1999;11(6):309-15.Morrell J.M. Malaluang P, Ntallaris T, Johannisson A. Método práctico para congelar semen de ciervo. Animales (Basilea). 2022 Febrero 1;12(3):352.Maryam Hezavehei, Mohsen Sharafi, Homa Mohseni Kouchesfahani, Ralf Henkel, Ashok Agarwal, Vahid Esmaeili, Abdolhossein Shahverdi, Sperm cryopreservation: A review on current molecular cryobiology and advanced approaches, Reproductive BioMedicine Online, Volume 37, Issue 3, 2018, Pages 327-339, ISSN 1472-6483.Marc Yeste, Sperm cryopreservation update: Cryodamage, markers, and factors affecting the sperm freezability in pigs, Theriogenology, Volume 85, Issue 1, 2016, Pages 47-64, ISSN 0093-691X.Barbas, J.P., Mascarenhas, R.D. Criopreservación de espermatozoides de animales domésticos. Banco de Tejidos Celulares 10, 49–62 (2009).Harald Sieme, Harriëtte Oldenhof, Willem F. Wolkers, Mode of action of cryoprotectants for sperm preservation, Animal Reproduction Science, Volume 169, 2016, Pages 2-5, ISSN 0378-4320.S.S. Layek, T.K. Mohanty, A. Kumaresan, J.E. Parks, Cryopreservation of bull semen: Evolution from egg yolk based to soybean based extenders, Animal Reproduction Science, Volume 172, 2016, Pages 1-9, ISSN 0378-4320.Abouzar Najafi, Hossein Daghigh-Kia, Hossein Vaseghi Dodaran, Mahdieh Mehdipour, Manuel Alvarez-Rodriguez, Ethylene glycol, but not DMSO, could replace glycerol inclusion in soybean lecithin-based extenders in ram sperm cryopreservation, Animal Reproduction Science, Volume 177, 2017, Pages 35-41, ISSN 0378-4320.M. Forouzanfar, M. Sharafi, S.M. Hosseini, S. Ostadhosseini, M. Hajian, L. Hosseini, P. Abedi, N. Nili, H.R. Rahmani, M.H. Nasr-Esfahani, In vitro comparison of egg yolk–based and soybean lecithin–based extenders for cryopreservation of ram semen, Theriogenology, Volume 73, Issue 4, 2010, Pages 480-487, ISSN 0093-691X.Afshin Seifi-Jamadi, Ejaz Ahmad, Mahdi Ansari, Hamid Kohram, Antioxidant effect of quercetin in an extender containing DMA or glycerol on freezing capacity of goat semen, Cryobiology, Volume 75, 2017, Pages 15-20, ISSN 0011-2240.Anastasiia Bogdaniuk, Volodymyr Garkavii, The kinetic characteristics of semen from Saanen and Alpine goats after cryopreservation in different freezing media, Cryobiology, Volume 97, 2020, Page 298, ISSN 0011-2240.Bustani GS, Baiee FH. Extensores de semen: Una visión general evaluativa de los mecanismos conservantes del semen y los diluyentes de semen. Mundo veterinario. 2021 mayo;14(5):1220-1233.Saieed, A. Y., Mahdi, Z. A., & Ibrahim, a. a. effect of addition from egg yolk of different avian to tris extender on freezing semen traits of awassi rams. The Iraqi Journal of Agricultural Science, (2018 49(4), 663.Sara Miguel-Jimenez, Maria Montserrat Rivera del Alamo, Manuel Álvarez-Rodríguez, Carlos Olegario Hidalgo, Ana Isabel Peña, Rodrigo Muiño, Joan Enric Rodríguez-Gil, Teresa. Mogas, In vitro assessment of egg yolk-, soya bean lecithin- and liposome-based extenders for cryopreservation of dairy bull semen, Animal Reproduction Science, Volume 215, 2020, 106315, ISSN 0378-4320.Abigail Tabarez, Wilber García, María Jesús Palomo, Effect of the type of egg yolk, removal of seminal plasma and donor age on buck sperm cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 149, 2017, Pages 91-98, ISSN 0921-4488.Iusupova K, Batista-Arteaga M, Martín-Martel S, Díaz-Bertrana ML, Rodríguez-Lozano O. Efecto de la edad de la donante y el tipo de diluyente (yema de huevo versus yema de huevo clarificada) sobre la calidad del esperma de los machos Majorera conservados a 4°C: resultados in vitro y ensayos de fertilidad. 2022 mayo;57(5):524-531.C.A.S. Bispo, G. Pugliesi, P. Galvão, M.T. Rodrigues, P.G. Ker, B. Filgueiras, G.R. Carvalho, Effect of low and high egg yolk concentrations in the semen extender for goat semen cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 100, Issue 1, 2011, Pages 54-58, ISSN 0921-4488.Eddington Gororo, Prince T. Zulu, Fungayi P. Chatiza, Christine Mhuka, Effects of different extenders and storage temperatures on longevity of small East African goat (Capra hircus) semen, Small Ruminant Research, Volume 175, 2019, Pages 83-89, ISSN 0921-4488.A. Medrano, A. Terrazas, R. Soto, Principles and perspectives for the conservation of goat buck spermatozoa, Small Ruminant Research, Volume 89, Issues 2–3, 2010, Pages 140-143, ISSN 0921-4488.M.A. Coloma, A. Toledano-Díaz, A. López-Sebastián, J. Santiago-Moreno, The influence of washing Spanish ibex (Capra pyrenaica) sperm on the effects of cryopreservation in dependency of the photoperiod, Theriogenology, Volume 73, Issue 7, 2010, Pages 900-908, ISSN 0093-691X.Chang-He Liu, Hai-Bo Dong, Dong-Li Ma, You-Wei Li, Dong Han, Ming-Jiu Luo, Zhong-Le Chang, Jing-He Tan, Effects of pH during liquid storage of goat semen on sperm viability and fertilizing potential, Animal Reproduction Science, Volume 164, 2016, Pages 47-56 ISSN 0378-4320.Pradeep Kumar, Monika Saini, Dharmendra Kumar, A.K. Balhara, S.P. Yadav, P. Singh, P.S. Yadav, Liposome-based semen extender is suitable alternative to egg yolk-based extender for cryopreservation of buffalo (Bubalus bubalis) semen, Animal Reproduction Science, Volume 159, 2015, Pages 38-45, ISSN 0378-4320.Andrea Helena Vidal, André Mariano Batista, Ellen Cordeiro Bento da Silva, Wilton Arruda Gomes, Marina Arruda Pelinca, Sildivane Valcácia Silva, Maria Madalena Pessoa Guerra, Soybean lecithin-based extender as an alternative for goat sperm cryopreservation, Small Ruminant Research, Volume 109, Issue 1, 2013, Pages 47-51, ISSN 0921-4488.Lingwei Sun, Wenhua Fan, Caifeng Wu, Shushan Zhang, Jianjun Dai, Defu Zhang, Effect of substituting different concentrations of soybean lecithin and egg yolk in tris-based extender on goat semen cryopreservation, Cryobiology, Volume 92, 2020, Pages 146-150, ISSN 0011-2240.Sara Chelucci, Valeria Pasciu, Sara Succu, Daniela Addis, Giovanni G. Leoni, Maria E. Manca, Salvatore Naitana, Fiammetta Berlinguer, Soybean lecithin–based extender preserves spermatozoa membrane integrity and fertilizing potential during goat semen cryopreservation, Theriogenology, Volume 83, Issue 6, 2015, Pages 1064-1074, ISSN 0093-691X.Morrell JM, Malaluang P, Ntallaris T, Johannisson A. Método práctico para congelar semen de ciervo. Animales (Basilea). 2022 febrero 1;12(3):352.Silva RAJA, Batista AM, Arruda LCP, de Souza HM, Nery IHAV, Gomes WA, Soares PC, Silva SV, Guerra MMP. La concentración de lecitina de soja afecta el éxito de almacenamiento a corto plazo del semen de cabra relacionado con la eliminación del plasma seminal. 2019 noviembre 18;16(4):895-901.Faryal, F. C., Liu, H., & Zhao, G. The natural cryoprotectant honey for fertility cryopreservation. Bioengineering, 2022. 9(3), 88.Malik A. Effects of honey supplementation into the extender on the motility, abnormality and viability of frozen-thaled of Bali bull spermatozoa. Asian J. Anim. Vet. 2019; 13(2):109–113.Chung E.L.T, Nayan N, Nasir N.S.M, Hing P.S.A, Ramli S, Rahman M.H.A, Kamalludin m.h. Effect of honey as an additive for cryopreservation on bull semen quality from different cattle breeds under tropical condition. J. Anim. Salud Prod. 2019; 7(4):171–178.A.R. Moradi, H. Malekinejad, F. Farrokhi-Ardabili, I. Bernousi, Royal Jelly improves the sperm parameters of ram semen during liquid storage and serves as an antioxidant source, Small Ruminant Research, Volume 113, Issues 2–3, 2013, Pages 346-352, ISSN 0921-4488Zaghloul A.A. Relevance of honey bee in semen extender on the quality of refrigered-stored ram semen. J. Anim. Poult. Prod. Mansoura Univ. 2017; 8(1):1–5.Reda I. El-Sheshtawy, Diya A. El-Badry, Gamal A. El-Sisy, Walid S. El-Nattat, Amal M. Abo Almaaty, Natural honey as a cryoprotectant to improve Arab stallion post-thawing sperm parameters, Asian Pacific Journal of Reproduction, Volume 5, Issue 4, 2016, Pages 331-334, ISSN 2305-0500,M. Shikh Maidin, M. H. Padlan,S. A. N. Azuan,R. Jonit,N. H. Mohammed,R. Abdullah, Tropical Animal Science Journal. 2018 Vol. 41 No. 2:Fakhrildin MB, Alsaadi RA. La suplementación con miel al medio de congelación de semen mejora los parámetros del esperma humano después de la descongelación. J Family Reprod Health. 2014 marzo;8(1):27-31.Ros-Santaella JL, Pintus E. Extractos de plantas como aditivos alternativos para la preservación del esperma. Antioxidantes (Basilea). 2021 Mayo 13;10(5):772.Pintus, E. Plant extracts as alternative additives for sperm preservation. Antioxidants, (2021). 10(5), 772.Xing Zhang, Zhang-Tao Hu, Yu Li, Yan-Xue Li, Ming Xian, Song-Mao Guo, Jian-Hong Hu, Effect of Astragalus polysaccharides on the cryopreservation of goat semen, Theriogenology, Volume 193, 2022, Pages 47-57, ISSN 0093-691X.Hassan, S. A., Khalil, W. A., Hassan, M. A. E., Yousif, A. I., Sabry, O. M., Wink, M., & Sobeh, M. Antioxidant and antiapoptotic effects of a turraea fischeri leaf extract on cryopreserved goat sperm. Animals, (2021). 11(10), 2840.Afshin Seifi-Jamadi, Ejaz Ahmad, Mahdi Ansari, Hamid Kohram, Antioxidant effect of quercetin in an extender containing DMA or glycerol on freezing capacity of goat semen, Cryobiology, Volume 75, 2017, Pages 15-20, ISSN 0011-2240.Farshad Ariyan, Abbas Farshad, Jalal Rostamzadeh, Protective effects of Tribulus terrestris and Cinnamomum zeylanicum extracts and trehalose added to diluents on goat epididymal sperm freezability, Cryobiology, Volume 98, 2021, Pages 172-180, ISSN 0011-2240.A.L.P. Souza, G.L. Lima, G.C.X. Peixoto, A.M. Silva, M.F. Oliveira, A.R. Silva, Use of Aloe vera–based extender for chilling and freezing collared peccary (Pecari tajacu) semen, Theriogenology, Volume 85, Issue 8, 2016, Pages 1432-1438, ISSN 0093-691X.Azerêdo, G. A., Esper, C. R. y Resende, K. T. Evaluación de la integridad de la membrana plasmática de espermatozoides de cabra congelados-descongelados con o sin plasma seminal. Investigación de pequeños rumiantes, (2021). 41(3), 257–263.PublicationLICENSElicense.txtlicense.txttext/plain; charset=utf-84334https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/9b7b189b-a714-4e25-ae69-506480ae8469/download3bce4f7ab09dfc588f126e1e36e98a45MD51ORIGINAL2023_uso_crioprotectores_permitan.pdf2023_uso_crioprotectores_permitan.pdfTrabajo de gradosapplication/pdf544721https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/2ecc30e3-0e1e-4480-aaf6-9a245358eedc/downloadc19756e83b421dde5325bea9d4c14fc8MD522023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdf2023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdfActa de sustentaciónapplication/pdf101164https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/ad37b128-b449-47a0-9b79-3dd4f5654cc2/download2e7ee822ae7c91a9ac78e5b2e72fd24cMD532023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdf2023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdfFormato licencia de usoapplication/pdf191235https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/af749ccd-9841-451c-92a4-dc48615a63c1/download9a73b054e2dfe1a8fdb24a707341261dMD54TEXT2023_uso_crioprotectores_permitan.pdf.txt2023_uso_crioprotectores_permitan.pdf.txtExtracted texttext/plain78497https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/656e0065-1cb3-4ea8-8663-3f079ab2b253/download0bec60913a57013a245483a3121908c1MD552023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdf.txt2023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdf.txtExtracted texttext/plain985https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/819ce21e-3bc9-4593-bc37-7ca65467c264/downloadd6fd2f2ac73c15a7432631778ca4c1ecMD572023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdf.txt2023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdf.txtExtracted texttext/plain5876https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/b78493a8-7755-40df-ae9c-81583d1d9885/downloadabbf6baa45fa1372eef7310358c21d63MD59THUMBNAIL2023_uso_crioprotectores_permitan.pdf.jpg2023_uso_crioprotectores_permitan.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg6327https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/6d7b77c0-569b-4d7b-b1bc-6bdbc6b2860a/download3085d0c915362ba260fb0a03eccfdf8aMD562023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdf.jpg2023_uso_crioprotectores_permitan-ActaSustentacion.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg11668https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/3d3fe4a6-fb56-4bec-b7fd-48a80c6c47fd/download621057e0f75e3ab1a9965fec508e83f8MD582023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdf.jpg2023_uso_crioprotectores_permitan-FormatoLicenciaUso.pdf.jpgGenerated Thumbnailimage/jpeg12149https://repository.ucc.edu.co/bitstreams/9515bea6-18b5-4382-95a3-2d5b3d7be4c8/downloadfd32bd62ad589a20f55cdcd4563fbd78MD51020.500.12494/48909oai:repository.ucc.edu.co:20.500.12494/489092024-08-09 12:56:18.525open.accesshttps://repository.ucc.edu.coRepositorio Institucional Universidad Cooperativa de Colombiabdigital@metabiblioteca.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